Способ определения характера фильтрации жидкости в пласте Советский патент 1994 года по МПК E21B43/00 

Изобретение относится к нефтедобывающей промышленности, в частности к инди- каторным способам, служащим для определения характера фильтрации жидкости в пласте.

Целью изобретения является упрощение способа.

Способ основан на закачке индикатора в пласт в одной скважине, отборе проб жидкости с индикатором в другой скважине и определении содержания индикатора в отобранных пробах по данным люминесцентного анализа. Особенностью способа является то, что в качестве индикатора закачивают биомассу микроорганизмов (дрожжевые клетки).

Примеры осуществления способа.

Пример 1. Для изучения способности сухой биомассы микроорганизмов к собственной люминесценции в различных жидких средах под воздействием ультрафиолетовых или сине-фиолетовых лучей с длиной волны 300-400 нм и устойчивости собственного люминесцентного свечения использовали сухие дрожжи Hansenula polymorpha ВНИИгенетика-МЛб, сухие бактерии Methylomonas methanlca, полученные на метанольных питательных средах, и сухой активный ил биологических очистных сооружений.

Сухую биомассу микроорганизмов и в концентрации 0,5 г/л по сухому веществу помещали в растворы следующего состава: 0,9%-ный раствор NaCI (физиологический раствор), дистиллированная вода, водопроводная вода, пластовая вода, насыщенная сероводородом, раствор фосфатного буфера (рН 9). Приготовленные ня различных растворах суспензии клеток сухой биомассы микроорганизмов выдерживали при постоянной температуре +30°С 10 мес. Еженедельно проводился микроскопический контроль описанных проб.

Установлено, что способность клеток сухой биомассы микроорганизмов к собственному люминесцентному свечению не исчезает под воздействием растворов различного состава и концентрации, и не снижается ее интенсивность с течением времени. Наиболее сильным собственным люминесцентным свечением обладает сухая дрожжевая биомасса.

Пример 2. Для изучения устойчивости собственного люминесцентного свечения клеток сухой биомассы микроорганизмов к воздействию пластовых условий (наличие пластовой воды, содержащей сероводород, повышенная температура, наличие сульфизированного карбонатного керна), сухие биомассы микроорганизмов согласно примеру 1 помещали в герметические емкости 150 мм и имитировали пластовые условия. Для этого в каждую пробу добавляли по 100 мл плзсто- вой воды, содержащей сероводород, просушенный сульфатизированный карбонатный керн массой Зги продували аргоном для создания анаэробных условий. Обработанные таким образом пробы помещали в тер0

мостат, где поддерживали постоянную

температуру +30°С. Продолжительность опыта 12 мес.

Еженедельно проводился люминесцентный микроскопический контроль опытных

5 проб.

В опытных пробах не наблюдается снижение интенсивности люминесцентного свечения от воздействия пластовых условий.

0П р и м е р 3. Изучение адсорбции и

движения сухой биомассы, микроорганизмов через пористую среду, насыщенную пластовой водой, содержащей сероводород, проводили на специальном стенде.

5 Стенд состоит из колонки длиной 60 см с внутренним диаметром 3,3 см. Внутрь колонки помещаются пористая среда (дробленый керн с диаметром частиц 0,315-0,620 мм). С одной стороны колонку соединяли

0 посредством штуцера с манометром и мерной емкостью, предназначенной для сбора вытесняемых клеток, с другой стороны к колонке подключали источник давления с манометром, соединенный со специально

5 оборудованным потенциометром для подачи в колонку 0,1% клеточных суспензий, приготовленных на минерализованной пластовой воде. Сухая биомасса микроорганизмов взята согласно примеру 1.

0 Предварительно провели люминесцентную микроскопию клеточных суспензий в микроскопе МБИ 15 и определили наличие светящихся клеток. Затем заполнили потенциометр одним из указанных раство5 ров клеточной суспензии и прокачали его через отдельную колонку. Объемная скорость прокачки мл3/с. В процессе прокачки происходит частичная незначительная адсорбция клеток дрожжевой биомассы по0 ристой средой.

При появлении состава в сборнике провели люминесцентную микроскопию жидкости, прошедшей через колонку. Общий объем прокачанной жидкости равнялся 10

5 поровым обьемам. Для люминесцентной микроскопии отбирались пробы из каждого прокачанного перового объема жидкости.

При люминесцентном микроскопическом анализе вытесненной жидкости при прокачивании суспензии дрожжевых клеток

отличались конгломераты, состоящие из нескольких клеток и имеющие строго определенную специфическую форму, что позволяет четко их идентифицировать.

Использование биомассы микроорганизмов в качестве индикатора для определения характера фильтрации жидкости в пласте позволяет удешевить и упростить процесс определения по сравнению с использованием известного индикатора. Указанный индикатор может использоваться в нефтегазодобывающей промышленности при определении путей и характера фильтрации жидкости в пластах, вскрытых системами добавляющих и нагнетательных

скважин, что необходимо для выбора рациональной системы вскрытия нефтегазокон- денсатных пластов, управления вытеснением нефти при поддержании пластового давления водой, разработки эффек- тивных технологий уменьшения прогрессирующего обводнения эксплуатационных нефтяных и газовых скважин.

(56) Соколовский Э. В. и Зайцев В. М. Применение изотопов на нефтяных промыслах. М.: Недра, 1971, с. 23.

Авторское свидетельство СССР № 1473405, кл. Е 21 В 43/00, 1987.

Изобретение относится к нефтегазодобывающей промышленности. Целью изобретения является упрощение способа Для этого закачивают индикатор в пласт в одной скважине. В качестве индикатора закачивают биомассу микроорганизмов. В качестве биомассы микроорганизмов закачивают дрожжевые клетки. Отбирают пробы жидкости с индикатором в другой скважине. Определяют содержание индикатора в отобранных пробах по данным люминесцентного анализа 1 элф-лы.

Формула изобретения

отобранных пробах по данным люминесцентного анализа, отличающийся тем, что. с целью упрощения способа, в качестве индикатора закачивают биомассу микроорганизмов.

2. Способ по п.1, отличающийся тем, что в качестве биомассы микроорганизмов закачивают дрожжевые клетки.