Изобретение относится к животноводству, в частности к способам разведения и выращивания беспозвоночных, а именно насекомых.
Известен способ выращивания личинок синантропных мух, согласно которому в субстрат, являющийся питательной средой для выращивания личинок, вводят лечебный препарат химического происхождения, например метиленовую синь, а личинок выдерживают на субстрате в течение 10-12 ч (авт. свид. СССР 495060, А 01 К 61/00, 1976). Способ позволяет повысить биологическую ценность личинок в качестве корма для рыб. Однако он не влияет на процесс метаморфоза насекомых.
Известен способ сокращения сроков развития энтомофагов и повышения их продуктивности, при котором имаго обрабатывают биостимулятором. В качестве биостимулятора используют нативные или модифицированные предшественники РНК соответствующей концентрации (патент РФ 2032335, кл. А 01 К 67/00, 1995). Способ позволяет изменить длительность отдельных этапов онтогенеза энтомофагов, в частности увеличить длительность жизни имаго и сократить сроки развития одной генерации энтомофагов. Однако и этот способ не позволяет регулировать процесс метаморфоза насекомых.
При создании изобретения задача заключалась в разработке способа регулирования процесса метаморфоза синантропных мух, а именно степени выводимости имаго из пупариев.
Технический результат изобретения достигается тем, что предложен способ регулирования метаморфоза синантропных мух, включающий обработку их личинок биохимическими препаратами и физическими средствами, причем в качестве биохимических препаратов используют модифицированную воду (MB) или 1,5%-ный водный раствор низкомолекулярных органических кислот (НМОК) при соотношении компонентов, в %: муравьиная кислота - 68, пропионовая кислота - 20, дистиллированная вода - остальное, или эту же смесь низкомолекулярных органических кислот, но вместо дистиллированной воды используют MB, причем экспозицию осуществляют во всех указанных вариантах в растворе при соотношении 1 весовая часть личинок и 1 весовая часть 1,5%-ного раствора НМОК (раствор 1:1) в течение 1,5-2 мин, после чего личинки помещают в условия пониженной температуры и содержат при +6oС в течение 5-20 суток, а затем их помещают в условия с температурой не ниже +23oС и содержат до окукливания и вылета имаго.
Особенностью изобретения является также то, что в качестве физического средства используют ультрафиолетовое облучение (лампа ДБ-30) в течение 30 мин с расстояния 50 см или в качестве биохимического препарата используют 1%-ный раствор сукцината хитозана или 0,5%-ный раствор хитозана на 1,5%-ном растворе НМОК при соотношении компонентов, %: муравьиная кислота - 68, пропионовая кислота - 20, дистиллированная вода - остальное, причем обработку личинок водо- и кислоторастворимым хитозаном осуществляют в растворе 1:1 в течение 1,5-2 мин, после чего во всех упомянутых вариантах личинки помещают в условия пониженной температуры и содержат при (+9)-(+10)oС в течение 5-30 суток, а затем их помещают в условия с температурой не ниже +23oС и содержат до окукливания и вылета имаго.
Пример 1. Брали 4 группы личинок по 150 г в каждой. Все манипуляции с личинками проводили в асептических условиях с использованием стерильных растворов, посуды, инструментов.
С целью снижения бактериальной обсемененности и повышения сохранности личинки сначала обрабатывали MB или биохимическими препаратами, после чего с целью воздействия на стадии онтогенеза личинки подвергали воздействию пониженной температуры путем хранения в условиях холодильника при +6oС в течение 5-20 суток, а затем для завершения онтогенеза их помещали в условия с температурой не ниже +23oС и содержали до окукливания и вылета имаго.
Обработку личинок MB проводили путем их экспозиции в MB в течение 1,5-2 мин, a MB получали путем пропуска дистиллированной воды через модификатор ОМ-28075, (Тебенихин Е. Ф. Безреагентные методы обработки воды в энергетических установках, -М.: Энергоатомиздат, 1985, 142 с.).
Обработку личинок в растворе смеси НМОК, состоящей из 68% муравьиной, 20% пропионовой кислот и 12% дистиллированной воды или MB, проводили также путем их экспозиции в растворе 1:1 в течение 1,5-2 мин (табл. 1).
Через два часа после антисептической обработки личинок из каждой группы брали навеску массой 25 г, с которой делали смыв дистиллированной водой в соотношении 1: 1, то есть на 1 весовую часть личинок брали 1 весовую часть рабочего раствора. Из смывов делали ряд последовательных разведений на физиологическом растворе со степенью разведения от 1 до 9.
С целью контроля личинки, обработанные для смыва, использовали для изучения дальнейшего их развития в оптимальных условиях, то есть при температуре не ниже +23oС на 8, 15, 22 и 29-й дни наблюдений. Результаты состояния личинок представлены в табл.2.
После обработки личинок препаратами в 1-й день наблюдения содержание в 1 мл смывов стафилококковой микрофлоры, МКБ, БГКП снизилось с 106 до 103 КОЭ, МАФАН М с 106 до 104 КОЭ, а дрожжей и плесени с 103 до 0. При дальнейшем хранении личинок происходило увеличение их обсемененности всеми группами микроорганизмов, но было оно менее интенсивным, чем в контроле.
Личинки третьей стадии развития, обработанные антисептиками, помещались в холодильник, где их хранили при +6oС в течение 5-20 суток, после чего переводили в оптимальные условия, то есть в условия с температурой не ниже +23oС. Результаты представлены в табл. 3.
После 5-дневного охлаждения при +6oС в оптимальных условиях все личинки образовали пупарии. А из них вылетели имаго.
После 14-дневного охлаждения последовало окукливание, а после 20-дневного хранения личинок в холодильнике окукливание составило 100%.
Однако в третьем варианте доля личинок, не образовавших кокона, была наибольшей и составила 8% при 14-дневном хранении в холодильнике и 34% при 20-дневном хранении в холодильнике.
При перенесении личинок в оптимальные условия не все личинки образовывали пупарии (кокон). Больше всего личинок, которые не образовывали пупарии, было в третьей группе:
- при 14-дневном хранении 9% личинок
- при 20-дневном хранении 17% личинок.
При образовании куколок вылет имаго составил:
- после 20-дневного хранения в контроле 31,5%;
- в экспериментальных группах 0%.
При обработке личинок названными препаратами личинки третьей стадии сохраняют подвижность и способность к дальнейшему развитию после хранения в холодильнике в течение двух недель. Далее начинается окукливание, а вылет имаго не происходит.
В контроле личинки также подвергались охлаждению, но не обрабатывались препаратами. Их метаморфоз завершился нормально.
Пример 2. Брали 4 группы личинок по 150 г в каждой. С целью снижения бактериальной обсемененности и повышения сохранности личинки сначала обрабатывали ультрафиолетовым облучением и биохимическими препаратами, после чего их подвергали воздействию пониженной температуры путем хранения в условиях холодильника при (+9)-(+10)oС в течение 5-30 суток, а затем их помещали в условия с температурой не ниже +23oС и содержали до окукливания и вылета имаго.
Обработку личинок УФ и биохимическими препаратами проводили согласно схеме, приведенной в табл. 4.
Обработку личинок ультрафиолетом проводили путем их облучения УФ лампой ДБ-30 в течение 30 мин на расстоянии 50 см от источника (II группа); 1%-ным раствором сукцината хитозана (III группа) и 0,5%-ным раствором хитозана в 1,5%-ном растворе НМОК (IV группа) путем их экспозиции в растворе 1:1 в течение 1,5-2 мин.
Сукцинат хитозана-С и хитозан были выработаны ЗАО "Биопрогресс" и имели соответственно кДа 393 и 243.
Через два часа после антисептической обработки личинок из каждой группы брали навеску массой 25 г, с которой делали смыв дистиллированной водой в соотношении 1:1. Из смывов делали ряд последовательных разведений от 1 до 9.
С целью контроля личинки, отобранные для смывов, использовали для изучения дальнейшего их развития в оптимальных условиях, то есть при температуре не ниже +23oС на 5, 10, 20 и 30-й дни наблюдения. Результаты состояния личинок представлены в табл. 5.
Более сильное антисептическое действие оказал 0,5%-ный раствор хитозана в 1,5%-ном растворе НМОК. Так, после обработки личинок данным раствором в 1-й день наблюдения их обсемененность МАФАнМ снизилась с 3,0•107 до 3,2•103 КОЕ в 1 мл смыва, а обсемененность МКБ, БГКП и стафилококками соответственно с 1,5•107 до 1,1•105 с 3,1•107 до 5,0•104 и с 1,1•107 до 5,0•103 КОЕ. Как и в первом примере, при дальнейшем хранении личинок происходило увеличение их обсемененности всеми группами микроорганизмов, но оно было менее интенсивным, чем в контроле.
Личинок мух, оставшихся на третьей стадии развития после обработки антисептиками, помещали в холодильную камеру, где их хранили при температуре (+9)-(+10)oС в течение 5-30 суток, после чего переводили их в условия с температурой +23oС. Результаты представлены в табл. 6.
Хранение личинок при (+9)-(+10)oС в течение 20 суток и более и дальнейшее содержание их в оптимальных условиях уменьшило долю имаго: чем больше срок хранения личинок при температуре воздействия, тем меньше доля имаго. У 30-суточных личинок в контроле доля имаго составила 6%, в экспериментальных группах от 0,5 до 2,5%. Все обработки не повлияли на образование пупариев, но повлияли на вылет имаго.
Изменение метаморфоза обнаружилось у особей, хранившихся в холодильнике в течение 20 суток и более.
По сравнению с 10-дневным, 20-дневное охлаждение уменьшило долю пупариев во всех вариантах на 10%, 20-дневное охлаждение уменьшило долю имаго на 40-70%. Максимальным (70%) оно было в группе сочетания охлаждения с ультрафиолетом.
30-дневное охлаждение личинок в сочетании с обработкой их ультрафиолетовым облучением, водо- и кислоторастворимым хитозаном уменьшило выход имаго до 0,5-2,5%.
Изобретение может быть использовано в животноводстве с целью переработки свиного навоза и куриного помета с помощью личинок синантропных мух, в ветеринарии при разработке ветеринарно-санитарных норм и мер борьбы с кровососущими насекомыми, а также в рыбоводстве при выращивании живых личинок синантропных мух для кормления рыб.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
СПОСОБ БОРЬБЫ С БООПОНУОЗОМ | 2005 |
|
RU2292204C2 |
СПОСОБ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ ЛИЧИНОК ПАНТОВОЙ МУХИ И УСТРОЙСТВО ДЛЯ ЕГО ОСУЩЕСТВЛЕНИЯ | 2006 |
|
RU2333641C2 |
СПОСОБ ХРАНЕНИЯ БИОМАТЕРИАЛА DIBRACHYS CAVUS WALK | 1996 |
|
RU2136153C1 |
Состав пищевой среды для разведения личинок синантропных мух | 1986 |
|
SU1412688A1 |
КОРМ ДЛЯ СИНАНТРОПНЫХ МУХ | 2000 |
|
RU2209551C2 |
СПОСОБ МАССОВОГО РАЗВЕДЕНИЯ ГАЛЛИЦЫ APHIDOLETES APHIDIMYZA (ROND.) | 2002 |
|
RU2216171C2 |
СПОСОБ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ ВОЛЬФАРТОВОЙ МУХИ | 2005 |
|
RU2292135C2 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ХИТИНА И СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ХИТОЗАНА | 1999 |
|
RU2139887C1 |
ХЕМОСТЕРИЛЯНТ МУХ СЕМЕЙСТВ MUSCIDAE И CALLIPHORIDAE | 1967 |
|
SU223528A1 |
ШТАММ БАКТЕРИЙ BACILLUS THURINGIENSIS SPP THURINGIENSIS ДЛЯ ПРОИЗВОДСТВА ЭКЗОТОКСИНСОДЕРЖАЩИХ БИОИНСЕКТИЦИДОВ | 1993 |
|
RU2061376C1 |
Изобретение относится к животноводству. Личинки сначала обрабатывают антисептическими средствами, в качестве которых используют модифицированную воду; 1,5%-ный водный раствор низкомолекулярных органических кислот (НМОК) или ультрафиолетовое облучение; 1%-ный раствор сукцината хитозана или 0,5%-ный раствор хитозана на 1,5%-ном растворе НМОК. Затем личинок выдерживают при пониженной температуре, после чего и помещают в условия с температурой не ниже +23oС и содержат до окукливания и вылета имаго. Способ позволяет регулировать степень выводимости имаго. 2 с. и 5 з.п. ф-лы, 6 табл.
Муравьиная кислот 68
Пропионовая кислота 20
Дистиллированная вода Остальное
Муравьиная кислот 68
Пропионовая кислота 20
Модифицированная вода Остальное
Муравьиная кислота 68
Пропионовая кислота 20
Дистиллированная вода Остальное
при соотношении 1 вес.ч. личинок и 1 вес.ч. 0,5%-ного раствора хитозана на 1,5%-ном растворе НМОК с экспозицией 1,5-2 мин.
СПОСОБ ВЫРАЩИВАНИЯ ЭНТОМОФАГОВ | 1989 |
|
RU2032335C1 |
ЧУЛКОВА Н.В | |||
Гормональная регуляция метаморфоза у насекомых | |||
- М.: Domestica // Вопросы общей биологии и ветеринарии, 2000, с.109-112. |
Авторы
Даты
2003-12-10—Публикация
2001-06-13—Подача