Область техники, к которой относится изобретение
Настоящее изобретение относится к серологическому выявлению инфекции Neospora caninum посредством реакции сыворотки субъекта с белком, реагирующим с N.caninum.
Предпосылки создания изобретения
Neospora caninum и Toxoplasma gondii представляют собой близкородственные простейшие паразиты, вызывающие заболевание у множества животных. N.caninum рассматривают как причину выкидыша, дефектов конечностей неврологического характера и неонатальной смертности у крупного рогатого скота и других животных. T.gondii является основной причиной выкидыша у овец. Для эффективной борьбы с неоспорозом и токсоплазмозом требуется быстрая диагностика. В этой связи развитие эффективных диагностических тестов на N.caninum представляет собой решающий фактор.
Имеется ряд признанных тестов, доступных для выявления наличия у животного N.caninum. Однако диагностические тесты и методики для дифференциации между животными, которые являются по природе серопозитивными по N.caninum, и животными, которые подверглись вакцинации N.caninum и/или представляют собой серонегативные по N.caninum (невакцинированные) животные, до настоящего времени отсутствовали.
Краткое описание сущности изобретения
Настоящее изобретение, в первую очередь, относится к способу дифференциации по природе серопозитивного по N.caninum животного и животного, вакцинированного вакциной с N.caninum.
В одном аспекте настоящее изобретение относится к способу выявления антител к Neospora caninum в образце сыворотки при контакте сыворотки с белком Toxoplasma gondii и к анализу сыворотки на наличие связанных антител.
Краткое описание фигур
На фиг. 1. показана реактивность вестерн-блоттов в сравнении с усеченным BAG1-GST.
Полоса 1: антисыворотка кролика, индуцированного полноразмерным BAG1-GST (положительный контроль).
Полоса 2: сыворотка от неиммунизированной серонегативной коровы (отрицательный контроль).
Полоса 3: объединенная антисыворотка, отобранная на 49 день от коров, иммунизированных убитой вакциной N.caninum.
Полоса 4: объединенная антисыворотка, отобранная на 49 день от коров, иммунизированных ослабленной вакциной N.caninum.
Полоса 5: объединенная антисыворотка, отобранная от природно-инфицированных серопозитивных коров.
Полоса 6: Маркеры молекулярной массы (кДа).
На фиг.2 показана реактивность вестерн-блоттов в сравнении с усеченным и полноразмерным BAG1-GST.
Полосы 1-4: усеченный антиген BAG1-GST.
Полоса 5: маркеры молекулярной массы (кДа).
Полосы 6-9: полноразмерный антиген BAG1-GST.
Полосы 1, 6: сыворотка от неиммунизированной серонегативной коровы (отрицательный контроль).
Полосы 2, 7: объединенная антисыворотка, отобранная на 119 день от коров, иммунизированных убитой вакциной N.caninum.
Полосы 3, 8: объединенная антисыворотка, отобранная на 119 день от коров, иммунизированных ослабленной вакциной N.caninum.
Полосы 4, 9: объединенная антисыворотка, отобранная от природно-инфицированных серопозитивных коров.
Полоса 5: маркеры молекулярной массы (кДа).
Подробное описание изобретения
Настоящее изобретение относится к аналитической системе, которая способна осуществлять дифференциацию между вакцинированными и по природе содержащими Neospora-положительными животными. В настоящем изобретении показано, что белки Toxoplasma gondii и N.caninum присутствуют только у серопозитивных по природе животных. Серонегативные по N.caninum животные и животные, которые предварительно подверглись вакцинации вакцинами на основе Neospora (см., например, серийную заявку на патент США № 09/260414 "Attenuated Live Neospora Vaccine", включенную в настоящее описание в качестве ссылки, и серийную заявку на патент США № 09/138985 "Neospora Vaccine", включенную в настоящее описание в качестве ссылки), могут быть теперь идентифицированы и отделены от серопозитивных (т.е. по природе содержащих) животных на основании результатов анализа, проводимого в соответствии со способами согласно настоящему изобретению.
Сыворотки от животных, содержащих N.caninum, будут реагировать с белками Toxoplasma gondii и N.caninum и их фрагментами. Термин «реагировать» означает наличие выявляемого комплекса антиген-антитело. Образование комплекса антиген-антитело является показательным для животного, природно-инфицированного N.caninum. Сыворотки от животных, предварительно вакцинированных N.caninum, и сыворотки от животных, которые являются по природе серонегативными по N.caninum, не будут реагировать с белками Toxoplasma gondii и N.caninum и их фрагментами. Соответственно, настоящее изобретение относится к способу дифференциации между вакцинированными (серонегативными) и по природе содержащими Neospora caninum серопозитивными животными.
Кроме того, в соответствии с настоящим изобретением, серопозитивные по N.caninum животные могут быть, при желании, вакцинированы на основании результатов анализа согласно настоящему изобретению. Животные, охватываемые настоящим изобретением, включают в себя крупный рогатый скот, телят, быков, коров и волов. Предпочтительно способ согласно настоящему изобретению применим к коровам и наиболее предпочтительно, к телятам.
В соответствии с настоящим изобретением, любой очищенный, нативный или рекомбинантный брадизоитный антиген или его фрагмент из Toxoplasma gondii или Neospora caninum может использоваться в качестве выявляемого антигена в рамках серологического анализа согласно настоящему изобретению. Термин «фрагмент» означает пептидную часть полноразмерного белка из T.gondii или N.caninum, который содержит эпитоп, распознаваемый антителами, имеющимися в сыворотках животных. Усеченные формы полноразмерных белков из T.gondii и N.caninum также охватываются понятием фрагменты согласно настоящему изобретению.
В одном варианте осуществления изобретения полноразмерный брадизоитный антиген, представляющий собой белок слияния глютатион-S-трансферазы (GST) и BAG-1, является выявляемым антигеном (SEQ ID NO.2). В другом варианте осуществления изобретения усеченный белок слияния BAG-1-GST, лишенный 28 аминокислот на N-конце BAG-1, является выявляемым антигеном (SEQ ID NO.3). BAG-1 также известен в данной области как BAG-5. В настоящем изобретении утверждается, что антисыворотки из животного, природно-инфицированного N.caninum, или антисыворотки из животного, вакцинированного N.caninum, или неинфицированные антисыворотки могут быть использованы в качестве образца для тестирования.
Реактивность брадизоитного антигена или его фрагмента при иммобилизации на твердой подложке можно определить по способу, основанному на обнаружении антител к N.caninum в соответствии с настоящим изобретением. Конкретно, способы согласно изобретению могут быть осуществлены посредством контакта образца сыворотки животного с брадизоитным белком или его фрагментном, которые затем вступают в реакцию с образованием комплекса антиген-антитело, с последующим анализом полученного в результате реакции комплекса традиционными методами выявления и количественной оценки. Термин «антитело» означает молекулу иммуноглобулина, способную связываться с определенным эпитопом на антигене. Антитела могут представлять собой смесь поликлональных антител или могут быть моноклональными. Антитела могут представлять собой интактные иммуноглобулины, полученные из природных источников или из рекомбинантных источников, и могут представлять собой иммунологически реактивные части интактных иммуноглобулинов.
Известны многочисленные способы определения количества и/или наличия или отсутствия комплекса антиген-антитело, и все они охватываются настоящим изобретением. Например, может проводиться вестерн-блоттинг путем присоединения антигена к твердой подложке, такой как нитроцеллюлозная бумага, инкубирования бумаги с образцом исследуемой сыворотки, с последующим определением на нитроцеллюлозной бумаге наличия или отсутствия определенной полосы белка с ожидаемой молекулярной массой, соответствующей полноразмерному белку (примерно 55 кДа) или усеченному белку (примерно 51 кДа) BAG1-GST из T.gondii. Наличие полосы в положении, соответствующем любой ожидаемой молекулярной массе, указывает на то, что исследуемое животное является серопозитивным по N.caninum. И наоборот, отсутствие полосы в положении, соответствующем любой ожидаемой молекулярной массе, указывает на то, что исследуемое животное вакцинировано.
Настоящее изобретение относится также к вестерн-блотт-анализу, при котором антиген присоединяют к нитроцеллюлозной бумаге и антиген окрашивают антителом, которое содержит присоединенный к нему краситель. Может также использоваться иммуноферментный твердофазный анализ (ИФТФА, ELISA), при котором антиген или антитело метят ферментом. Настоящее изобретение также относится к радиоиммуноанализу, при котором антиген или антитело метят радиоактивным элементом.
Настоящее изобретение относится к способу исследования сыворотки животного с целью определения наличия/количества или отсутствия антител к N.caninum. Так, в соответствии с настоящим изобретением может быть подготовлен диагностический набор, содержащий реактивы и контроли для обнаружения положительных и/или отрицательных реакций.
Для специалистов в данной области очевидно, что в настоящее изобретение могут быть введены различные вариации и/или модификации, как видно из приведенных конкретных вариантов его осуществления, без отступления от принципов и тематики настоящего изобретения, которое следует рассматривать в широком диапазоне. Исходя из этого, приведенные конкретные варианты его осуществления следует рассматривать во всех отношениях как иллюстративные и не ограничивающие настоящее изобретение.
ПРИМЕР 1
Антисыворотка из серонегативных по N.caninum,
вакцинированных с использованием N.caninum животных
Может использоваться любой образец сыворотки от серонегативного или ПЦР-негативного животного, которому впоследствии вводят тахизоитную живую модифицированную, убитую вакцину N.caninum или ее субъединичный вариант. В данном примере было определено, что четырехмесячные телята являются серонегативными на основании диагностики методом ИФТФА, проведенной в квалифицированной ветеринарной диагностической лаборатории (Washington State Diagnostic Lab, Pullman, WA). Телят вакцинируют на день 0 и 21 день тахизоитной либо i) модифицированной живой ослабленной вакциной Neospora (серийная заявка на патент USPTO 09/260414 "Attenuated Live Neospora Vaccine", включенная в настоящее описание в качестве ссылки), либо ii) инактивированной вакциной из гомогената цельных клеток Neospora (серийная заявка на патент USPTO 09/138985 "Neospora Vaccine", включенная в настоящее описание в качестве ссылки). Обе вакцины основаны на тахизоитных антигенах в качестве защитного компонента вакцины. Модифицированная живая ослабленная вакцина N.caninum содержит 5×107 Ncts-8 тахизоитов на дозу, ее вводят подкожно 3 серонегативным животным. Инактивированную вакцину на основе гомогената N.caninum, которая содержит 100 мкг общего белка тахизоита/дозу, приготовлена на основе сапонинового адъюванта (750 мкг Quil A/150 мкг холестерина), вводят подкожно 3 серонегативным животным. На 49 и 119 день после вакцинации отбирают сыворотку у трех телят в каждой группе, рассчитанной на каждый вариант вакцины, объединяют и замораживают в аликвотах при -20°С до момента исследования методом серологического анализа (см. пример 4).
ПРИМЕР 2
Антисыворотки из природно инфицированных
N.caninum, серопозитивных животных
Может использоваться любой образец сыворотки от природно-инфицированного, серопозитивного или ПЦР-позитивного животного. В данном примере серологический статус индивидуальных животных из коммерческой фермы (в стаде крупного рогатого скота) определяют на основании диагностики методом ИФТФА, проведенной в квалифицированной ветеринарной диагностической лаборатории (Washington State Diagnostic Lab, Pullman, WA). Двадцать одно животное было идентифицировано по результатам данного теста как серопозитивное. Отбирают образец сыворотки у каждого серопозитивного животного, объединяют образцы и замораживают в аликвотах при -20°С до момента исследования методом серологического анализа (см. пример 4).
ПРИМЕР 3
Брадизоитный антиген, использованный
в серологическом тесте с Neospora
Может использоваться любой очищенный нативный или рекомбинантный брадизоитный белок из Neospora caninum или Toxoplasma gondii (брадизоитный белок BAG1 из T.gondii, номер хранения в Генбанке (Genebank) № U23944). В данном примере используют две различные рекомбинантные формы брадизоитного антигена из T.gondii, BAG1 (также известный как BAG5). Первая форма представляет собой полноразмерный белок слияния BAG1-глутатион-S-трансферазы (GST), который экспрессируется в E.coli и был выделен из нее и очищен с помощью аффинной хроматографии (S.F.Parmley, et al. 1995. Mol. Biochem. Parasit. 73: 253-257, включенная в настоящее описание в качестве ссылки). Вторая форма представляет собой усеченный белок слияния BAG1-GST, лишенный первых 28 аминокислот, который экспрессируется в E.coli и был выделен из нее и очищен с помощью аффинной хроматографии (Parmley, et al. 1995). Очищенный рекомбинантный полноразмерный белок BAG1-GST и усеченный белок BAG1-GST хранят в замороженном состоянии при -20°С до момента исследования методом серологического анализа (см. пример 4).
ПРИМЕР 4
Серологический анализ
Может использоваться любой известный в данной области тест, основанный на выявлении антитела (ИФТФА, метод конкурентного ИФТФА, РИА, вестерн-блоттинг и т.п.). В данном примере используют вестерн-блоттинг. Подвергают оттаиванию всего 5 мг рекомбинантного полноразмерного белка BAG1-GST или усеченного BAG1-GST из T.gondii, смешивают с 5X денатурирующим буфером для образца (Pierce, IL) и наносят на преформированный Трис-глициновый непрерывный гель в градиенте 4-20% (1 мм × 2 ячейки) (Novex, San Diego, CA). Гель разгоняют в соответствии с инструкцией производителя под напряжением 125 В в течение 1,5 часа. Далее гель переносят на 20 мкМ нитроцеллюлозные пластины (Bio-Read, Hercules, CA) при 25 В в течение 1 часа. Пластины сушат и нарезают на равные по длине/ширине полоски. Полоски инкубируют в течение ночи при комнатной температуре в блокирующем растворе (5% сепарированное молоко в фосфатно-буферном растворе (ФБР)), промывают ФБР и затем инкубируют с образцом исследуемой сыворотки (из приведенного выше примера 1 или 2).
Аликвоты образцов исследуемой сыворотки из примера 1 или 2 подвергают оттаиванию при комнатной температуре, и делают разбавление 1:200 свежеприготовленным ФБР. Сыворотку от неиммунизированной серонегативной коровы используют в качестве отрицательного контроля (разбавление 1:200). Антисыворотку кролика против полноразмерного BAG1-GST используют в качестве положительного контроля (любезно была предоставлена M.McAllister; M.McAllister, et al, 1996. J. Parasitol. 82(2): 354-355), разбавляя ее 1:12500 ФБР перед использованием.
Добавляют к каждому образцу разбавленной сыворотки индивидуальную тест-полоску (приготовленную в примере 3) и инкубируют в течение 1 часа при комнатной температуре. Полоски быстро промывают два раза ФБР, содержащим 0,05% Твин 20 (PBST) и добавляют к раствору, содержащему в разбавлении 1:400 (в ФБР) очищенный методом аффинной хроматографии меченный фосфатазой козий анти-бычий IgG (KPL, Gaithersburg, MD). После 1-часовой инкубации при комнатной температуре указанные полоски быстро промывают два раза в PBST и затем инкубируют в фосфатазном субстрате, BCIP/NBT (KPL, Gaithersburg, MD). После развития соответствующей окраски (примерно через 10 минут) ферментативную реакцию останавливают, помещая полоски ненадолго в дистиллированную воду. Затем полоски сушат на воздухе. Результаты анализа проиллюстрированы на фиг. 1.
ПРИМЕР 5
Интерпретация результатов серологического анализа
Положительный результат серологического анализа указывает на наличие специфической реакции между образцом исследуемой сыворотки и брадизоитным антигеном из N.caninum или T.gondii. В данном примере полоски, использованные в примере 4, изучают с целью выявления специфической реакции, определяя наличие специфических полос, соответствующих ожидаемой молекулярной массе полноразмерного белка BAG1-GST (примерно 55 кДа) или усеченного белка BAG1-GST (51 кДа) из T.gondii.
Как видно из фиг. 1, линия 5, полоса, соответствующая примерно 52-55 кДа, отмечается в полоске, инкубированной с объединенными сыворотками из природно содержащих N.caninum, инфицированных животных (крупный рогатый скот), указывая на наличие специфической реакции между природно содержащим N.caninum, инфицированным серопозитивным образцом и усеченным брадизоитным антигеном BAG1-GST. И наоборот, в линиях 3 и 4 на фиг. 1 не отмечается реактивности против белка BAG1-GST размером 55 кДа, что указывает на отсутствие специфической реакции с любым образцом, взятым после вакцинации N. caninum.
Как видно из фиг.2, линии 4 и 9, полоса, соответствующая примерно 52-55 кДа, отмечается в полосках, инкубированных с объединенными сыворотками из природно содержащих N.caninum, инфицированных животных (крупный рогатый скот), что указывает на наличие специфической реакции между природно содержащим N.caninum, инфицированным серопозитивным образцом и усеченным (линия 4) или полноразмерным (линия 9) брадизоитным антигеном BAG1-GST. И наоборот, в линиях 2 и 7 на фиг. 2 не отмечается реактивности ни против какой из форм белка BAG1-GST при использовании объединенной антисыворотки, отобранной на 119 день у коров, иммунизированных убитой вакциной N.caninum. Аналогично, в линиях 3 и 8 на фиг. 2 не отмечается реактивности против какой бы то ни было из форм белка BAG1-GST при использовании объединенной антисыворотки, отобранной на 119 день у коров, иммунизированных ослабленной вакциной N. caninum.
Различие в реактивности по отношении к рекомбинантному брадизоитному антигену из T.gondii, описанное в настоящем изобретении, показывает, что серологический анализ с использованием брадизоитного антигена может использоваться для дифференциации, или диагностики, животного, природно-инфицированного N.caninum, от животного, вакцинированного N.caninum. Любой очищенный, нативный или рекомбинантный брадизоитный антиген или его фрагмент из N.caninum (например, SEQ ID No. 1 или 2) или другой фрагмент из N.caninum (например, SEQ ID No.3 или 4) может использоваться в качестве выявляемого антигена в данном диагностическом тесте. Любые антисыворотки из животных, природно инфицированных N.caninum или вакцинированных N.caninum, могут использоваться в качестве исследуемого образца в данном диагностическом тесте.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
ВАКЦИНА ПРОТИВ КЛЕЩЕЙ РОДА RHIPICEPHALUS | 2014 |
|
RU2677347C2 |
ВИРУС ДИАРЕИ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА С МОДИФИЦИРОВАННЫМ БЕЛКОМ E | 2009 |
|
RU2524426C2 |
КОМПОЗИЦИЯ ДЛЯ ЛЕЧЕНИЯ ИЛИ ПРОФИЛАКТИКИ ИНФЕКЦИИ, ВЫЗВАННОЙ БАКТЕРИЕЙ NEISSERIA | 2000 |
|
RU2244749C2 |
ВАКЦИННЫЙ АНТИГЕН БАБЕЗИОЗА СОБАК | 2011 |
|
RU2599544C2 |
ВЫДЕЛЕННАЯ ПОЛИНУКЛЕОТИДНАЯ МОЛЕКУЛА, КОДИРУЮЩАЯ ВИРУС Torque teno, МОЛЕКУЛА РНК И ВЕКТОР ЭКСПРЕССИИ | 2009 |
|
RU2502801C2 |
СОБАЧИЙ ТИМУСНЫЙ СТРОМАЛЬНЫЙ ЛИМФОПОЭТИЧЕСКИЙ БЕЛОК И ЕГО ПРИМЕНЕНИЕ | 2007 |
|
RU2457217C2 |
БЕЛОК СЛИЯНИЯ, СОДЕРЖАЩИЙ ТИМУСНЫЙ СТРОМАЛЬНЫЙ ЛИМФОПОЭТИЧЕСКИЙ БЕЛОК, ВАКЦИНА, СОДЕРЖАЩАЯ ЭКСПРЕССИОННЫЙ ВЕКТОР ДЛЯ ЭКСПРЕССИИ БЕЛКА, И ВАКЦИНА, СОДЕРЖАЩАЯ УКАЗАННЫЙ ВЕКТОР ДЛЯ ЭКСПРЕССИИ | 2012 |
|
RU2617957C2 |
ИММУНОГЕННАЯ КОМПОЗИЦИЯ НА ОСНОВЕ АНТИГЕНА Chlamydia trachomatis (ВАРИАНТЫ) И ЕЕ ИСПОЛЬЗОВАНИЕ | 2004 |
|
RU2352356C2 |
ВАКЦИННАЯ КОМПОЗИЦИЯ ДЛЯ БОРЬБЫ С ЗАРАЖЕНИЯМИ ЭКТОПАРАЗИТАМИ | 2011 |
|
RU2585226C2 |
СТАБИЛИЗИРОВАННЫЕ КАПСИДЫ FMDV | 2014 |
|
RU2663004C2 |
Изобретение относится к области ветеринарии и касается серологического анализа на Neospora caninum у животных. Сущность изобретения заключается в выявлении посредством иммуноферментного твердофазного анализа, радиоиммунного анализа, вестерн-блоттинга взаимодействия сыворотки животных с белком, реактивным в отношении Neospora caninum животных, серопозитивных по указанному паразиту. В качестве белка используют нативный или рекомбинатный брадизоитный полноразмерный белок слияния из N. caninum или Toxoplasma gondii или усеченный белок слияния или его фрагмент. Преимущество изобретения заключается в серологическом выявлении животных, серопозитивных по N. caninum, отличных от вакцинированных животных. 4 н. и 10 н.п. ф-лы, 2 ил.
US 5942394, 24.08.1999 | |||
US 5889166, 30.03.1999 | |||
MINEO T.W.P | |||
et al., Detection antibodies to Neospora caninum and Toxoplasma gondii in dogs examined in veterinary hospital from Brazil, Veterinary parasitalogy, 2001, v.98, №4, pp.239-245. |
Авторы
Даты
2006-06-10—Публикация
2002-10-08—Подача