Изобретение относится к промышленному рыбоводству, например, к воспроизводству и/или товарному выращиванию рыб осетровых видов и их гибридов, и предназначено для реабилитации рыб после хирургического вмешательства.
Актуальность изобретения обусловлена значительным распространением в рыбоводной практике хирургических вмешательств, например, прижизненного получения половых продуктов и/или прижизненного определения пола у производителей и особей ремонтных групп рыб осетровых видов и их гибридов.
Общеизвестен эффект использования химиопрепаратов для снижения риска инфицирования и ускорения заживления раневой поверхности шва, например, широкое внедрение в рыбоводство антибактериальных средств природного, полусинтетического и синтетического происхождения как с лечебной, так и с профилактической целью. Однако регулярное использование антибиотиков вызывает определенные негативные последствия: изменение микробоценоза рыбы и воды, появление резистентных форм бактерий, а также остаточное содержание химических веществ в рыбоводной продукции.
Известно применение иммуномодулятора Ронколейкин® в ветеринарии в качестве иммунокорректора (Наставление по применению иммуномодулятора Ронколейкин® разработано ООО БИОТЕХ, г.Санкт-Петербург). Ронколейкин® применяют для животных в качестве иммунокорректора при различных инфекциях, гнойно-воспалительных, кожных, онкологических заболеваниях, постоперационных осложнениях и их профилактики, заболеваниях глаз и дыхательных путей, в качестве адъюванта вакцин. Однако способы и порядок его применения для холоднокровных животных, к которым относятся рыбы, отсутствуют.
Цель изобретения - экологически чистый способ реабилитации рыб после хирургического вмешательства, обеспечивающий устойчивый эффект.
Техническим результатом изобретения является применение иммуномодулятора для реабилитации рыб осетровых видов и их гибридов после хирургических вмешательств, используемых в рыбоводной практике.
Технический результат достигается тем, что применение иммуномодулятора проводится путем инъекций лекарственной формы рекомбинантного интерлекина-2 человека (в дальнейшем рИЛ-2) согласно изобретению, что обуславливает активную регенерацию тканей рыб, а также пролиферацию лимфоцитов и восстановление характерного для осетровых рыб лимфоцитарного профиля.
Экспериментальные работы с осетровыми рыбами разных возрастных групп проводились в период 2005-2006 гг. на производственной базе ФГУП «НПЦ «БИОС» (с.Икряное, Астраханской обл.).
Изучали действие рИЛ-2 на организм осетровых рыб: средний ремонт гибрида (2-годовики) - белуга × стерлядь (в дальнейшем бестер) после прижизненной диагностики пола операционным способом (лапаротомия), производители стерляди после прижизненного получения икры путем подрезания яйцеводов.
Способ реабилитации осуществляют следующим образом.
Инъекции рИЛ-2 проводят внутривенно (в хвостовую вену) - из расчета 2 тыс.ед. на 1 кг массы тела рыбы, однократно, в течение 3-4 мин, непосредственно перед или после операции; подкожно - из расчета 5 тыс.ед. на 1 кг массы тела рыбы, двукратно с интервалом 24 часа, непосредственно после операции.
Перед введением каждую расчетную дозу рИЛ-2 разводят 1,0-3,5 мл 0,65% стерильного физиологического раствора или воды для инъекций.
Сведения, подтверждающие возможность осуществления изобретения.
В описанные выше технические решения могут быть внесены различные модификации, не выходящие за рамки сферы изобретения. Для более полной иллюстрации изобретения и подтверждения представлены примеры его реализации.
Пример 1. Инъекции рИЛ-2 2-х годовикам бестера после хирургического вмешательства при прижизненном определении пола методом лапаротомии.
Экспериментальные работы проводили с 26.04.05 по 22.06.05 г. на производственной базе ФГУП «НПЦ «БИОС» (с. Икряное, Астраханской обл.).
Для постановки эксперимента использовались 4 группы рыб.
В группе «опыт 1» рыбам вводили рИЛ-2 в дозе 1 тыс.ед./кг массы тела; в группе «опыт 2» - 2 тыс.ед./кг.
Препарат вводили однократно внутривенно в хвостовую вену, медленно в течение 3-4 мин непосредственно перед операцией. Перед введением каждую расчетную дозу препарата разводили 2,5-3,5 мл 0,65% стерильного физиологического раствора или воды для инъекций.
В группе «контроль 1» после операции однократно внутремышечно вводили окситетрациклин пролонгированного действия, используемый в ветеринарии, в дозе 0,1 мл/кг массы тела.
Группа «контроль 2» была сформирована для оценки условий содержания и особи из этой группы не подвергались оперативному вмешательству.
Все особи имели индивидуальные метки. Мечение осуществлялось путем удаления латеральных жучек и пробиванием плавников. В течение всего периода эксперимента все рыбы находились под регулярным ихтипатологическим наблюдением. Рацион рыб, а также условия их содержания не имели различий между контролем и опытом.
Перед введением препарата и оперативным вмешательством у всех особей определяли размерно-весовые показатели и проводили клинический осмотр по общепринятым в ихтиопатологии методикам. Взятие крови от рыб четырех групп осуществляли до введения рИЛ-2 и, соответственно, операции и через 15, 30, 45 суток после операции. Результаты применения инъекций рИЛ-2 для реабилитации рыб после хирургического вмешательства, а именно прижизненного определения пола методом лапаротомии, приведены в таблицах 1, 2, 3.
Клиническая картина операционных швов
Из данных табл.1 следует, что применение иммуномодулятора путем инъекций рИЛ-2, разведенного в 2,5-3,5 мл 0,65% стерильного физиологического раствора или воды для инъекций из расчета 2 тыс.ед./кг массы тела и введенного однократно внутривенно в хвостовую вену, медленно в течение 3-4 мин, непосредственно перед операцией обуславливает активную регенерацию тканей рыб в постоперационный период.
Таким образом, клиническая картина операционных швов у бестеров, подвергнутых лапаротомии, подтверждает терапевтический эффект рИЛ-2 в дозе 2 тыс.ед./кг массы тела.
В таблице 2 представлены показатели лизосомально-катионного теста (ЛКТ) у бестеров в условиях эксперимента, которые указывают на восстановление фагоцитарной функции нейтрофильных гранулоцитов при использовании рИЛ-2 в дозе 2 тыс.ед./кг массы тела.
Показатели лизосомально-катионного теста (ЛКТ) у бестера, у.е.
В таблице 3 приведены показатели клеток белой крови бестеров в условиях эксперимента, которые указывают на активную пролиферацию лимфоцитов и восстановление характерного для осетровых рыб лимфоцитарного профиля.
Лейкограмма бестеров, %
В начале эксперимента лейкограммы рыб находились в пределах физиологических норм и были относительно идентичны, так как достоверных различий не выявлено.
На пятнадцатые сутки наблюдается достоверное (р<0,05) перераспределение лимфоцитарного профиля в сторону нейтрофилии. На этом этапе выявляется преимущество применения иммуномодулятора по сравнению с антибиотиком. Если у рыб инъецированных рИЛ-2 наблюдается снижение доли эозинофилов, относительно первоначальных показателей, то у рыб инъецированных окситетрациклином (контроль 1), количество эозинофилов достоверно (р<0,05) превысило типичные показатели в 1,5 раза, что говорит об интоксикации организма, вызванной окситетрациклином (графа 5, табл.3).
На тридцатые сутки в лейкоцитарной формуле обнаружены процессы восстановления лимфоцитарного профиля. При этом выявлены достоверные различия (р<0,05) по количеству лимфоцитов у рыб из опытных вариантов и 1-й контрольной группой.
К сорок пятым суткам отмечен относительный баланс клеток белой крови опытных рыб, тогда как у рыб из 1-й контрольной группы, еще было достоверное (р<0,05) превышение количества палочкоядерных нетрофилов (графа 7, табл.3). Это свидетельствует о том, что в организме опытных рыб воспалительный процесс начался и закончился раньше по сравнению с оперированным контролем.
Следовательно, анализ лейкоцитарной формулы крови особей бестера подтверждает более раннее развитие воспалительной реакции на оперативное вмешательство и восстановление лимфоцитарного профиля у рыб опытных групп, инъецированных рИЛ-2.
Кроме того, при анализе среднесуточного темпа роста рыб особей инъецированных рИЛ-2 в дозе 2 тыс.ед./кг выявлены значения на 21,4% выше по сравнению с рыбами контрольной группы.
Пример 2. Инъекции рИЛ-2 зрелым самкам стерляди после подрезания им яйцевода при прижизненном получении половых продуктов (икры).
Прижизненное получение икры осуществляется при помощи хирургического вмешательства, наиболее часто используемым из которых является подрезание яйцеводов. В обычной рыбоводной практике постоперационное воспаление в области яйцеводов и анального отверстия лечится внутримышечными инъекциями антибиотиков.
Экспериментальные работы проводили с 10.05.06 по 13.06.06 г. на производственной базе ФГУП «НПЦ «БИОС» (с.Икряное, Астраханской обл.). В эксперименте было задействовано 31 экз. стерляди. Все рыбы имели индивидуальные метки. Мечение осуществлялось цветными проволочными метками, которые закреплялись на первом костном луче грудных плавников, и пробиванием плавников.
Для постановки эксперимента использовались 3 группы рыб (производители стерляди), средняя масса которых составляла 1,47 кг. Для стимуляции одновременного созревания икры всем особям была сделана двукратная инъекция синтетического гормонального препарата (Сурфагон), применяемого в рыбоводной практике. В течение всего периода эксперимента рыбы трех групп находились под регулярным ихтиопатологическим наблюдением. Кормовой рацион рыб, а также условия их содержания не имели различий между контролем и опытом.
Перед оперативным вмешательством у стерляди рыб определяли размерно-весовые показатели и провели клинический осмотр. Взятие крови от рыб трех групп осуществляли за 10 дней до оперативного вмешательства, непосредственно после получения половых продуктов и через 7, 14 суток.
Особям стерляди группы "контроль " после операции не вводили каких-либо препаратов. В группе "опыт 1" рыбам после проведения операции (подрезание яйцеводов) вводили рИР-2 в дозе 5 тыс.ед./кг массы тела; группе "опыт 2" - 3 тыс.ед./кг.
Инъекции рИР-2 осуществляли подкожно, двукратно с интервалом 24 часа, непосредственно после операции и процедуры отбора крови из хвостовой вены.
Перед введением каждую расчетную дозу рИЛ-2 разводили в 1,0-1,5 мл 0,65% физиологического раствора.
В таблице 4 представлены показатели лизосомально-катионного теста (ЛКТ) у самок стерляди в условиях эксперимента.
Показатели лизосомально-катионного теста (ЛКТ) у стерляди, у.е
Выявлена достоверность различий между показателями СЦК ЛКТ на 7 и 14 сутки после введения рИЛ-2 в дозе 5 тыс.ед./кг и других групп.
При рассмотрении лейкоцитарной формулы производителей стерляди выявлен характер протекания воспалительных процессов и восстановление лимфоцитарного профиля, аналогичный описанному в примере 1.
Кроме того, данные ихтиопатологического обследования свидетельствуют, что на 7, 14 сутки у группы 2 (доза 5 тыс.ед./кг) физиологическое состояние было лучше в сравнении с группой 1 (доза 3 тыс.ед./кг) и контролем, в которых за этот период наблюдалась гибель рыбы.
Таким образом, способ позволяет улучшить послеоперационную реабилитацию, осуществить ее в более короткий срок, исключить токсичное воздействие лечебных препаратов, расширить арсенал средств, обеспечивающих получение экологически чистой рыбоводной продукции, способствует сохранению рыб маточного стада и повышению эффективности воспроизводства таких ценных рыб, как осетровые.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
СПОСОБ РАННЕЙ ПРИЖИЗНЕННОЙ ДИАГНОСТИКИ ПОЛА У ОСЕТРОВЫХ ВИДОВ РЫБ И ИХ ГИБРИДОВ | 2006 |
|
RU2332844C1 |
СПОСОБ УСКОРЕНИЯ СОЗРЕВАНИЯ ПРОИЗВОДИТЕЛЕЙ ОСЕТРОВЫХ РЫБ ПРИ СОДЕРЖАНИИ В РЫБОВОДНЫХ УСТАНОВКАХ С ЗАМКНУТОЙ СИСТЕМОЙ ВОДООБЕСПЕЧЕНИЯ | 2013 |
|
RU2533360C1 |
СПОСОБ ВОСПРОИЗВОДСТВА ОСЕТРОВЫХ РЫБ | 2012 |
|
RU2500101C1 |
СПОСОБ КРИОКОНСЕРВАЦИИ ЯЙЦЕКЛЕТОК ОСЕТРОВЫХ РЫБ | 2010 |
|
RU2460284C2 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ИКРЫ ОТ САМОК ОСЕТРОВЫХ РЫБ | 2005 |
|
RU2290794C1 |
СПОСОБ ЭКСПЛУАТАЦИИ МАТОЧНОГО СТАДА ОСЕТРОВЫХ РЫБ | 2002 |
|
RU2217910C2 |
СПОСОБ ВЫРАЩИВАНИЯ МАТОЧНЫХ ОСЕТРОВЫХ РЫБ С НЕОДНОКРАТНЫМ ПОЛУЧЕНИЕМ ИКРЫ В УСЛОВИЯХ НЕВОЛИ | 2002 |
|
RU2203541C1 |
СПОСОБ ПРИМЕНЕНИЯ ХВОЙНО-ЭНЕРГЕТИЧЕСКОЙ ДОБАВКИ В КОРМЛЕНИИ МОЛОДИ ОСЕТРОВЫХ РЫБ | 2018 |
|
RU2676727C1 |
ПРОДУКЦИОННЫЙ КОМБИКОРМ ДЛЯ ОСЕТРОВЫХ РЫБ С АНТИОКСИДАНТНЫМИ СВОЙСТВАМИ | 2023 |
|
RU2819150C1 |
СПОСОБ ПОВЫШЕНИЯ РЕЗИСТЕНТНОСТИ ОСЕТРОВЫХ РЫБ К БАКТЕРИАЛЬНЫМ ИНФЕКЦИЯМ | 2024 |
|
RU2827392C1 |
Изобретение относится к области ветеринарии. Способ включает инъекции иммуномодулятора рИЛ-2 в дозе 2 тыс.ед./кг массы тела рыбы, который разводят в 2,5-3,5 мл 0,65% стерильного физиологического раствора или воды для инъекций. Инъекции осуществляют однократно внутривенно в течение 3-4 минут в хвостовую вену непосредственно перед операцией. Или инъекции осуществляют в дозе 5 тыс.ед./кг массы тела рыбы двукратно подкожно непосредственно после операции с интервалом 24 часа. При этом иммуномодулятор разводят в 1,0-1,5 мл 0,65% стерильного физиологического раствора или воды для инъекций. Способ позволяет улучшить реабилитацию, осуществить ее в более короткий срок, исключить токсичное воздействия лечебных препаратов, расширить арсенал средств, обеспечивающих получение экологически чистой рыбоводной продукции, способствует сохранению рыб маточного стада и повышению эффективности воспроизводства осетровых. 4 табл.
Способ реабилитации рыб после хирургического вмешательства, включающий инъекции иммуномодулятора рИЛ-2 в дозе 2 тыс.ед./кг массы тела рыбы, разводимого в 2,5-3,5 мл 0,65%-ного стерильного физиологического раствора или воды для инъекций, при однократном внутривенном введении в течение 3-4 мин в хвостовую вену непосредственно перед операцией или в дозе на одно инъецирование 5 тыс.ед./кг массы тела рыбы, разводимого в 1,0-1,5 мл 0,65%-ного стерильного физиологического раствора или воды для инъекций при двукратном подкожном введении непосредственно после операции с интервалом 24 ч.
Печь для непрерывного получения сернистого натрия | 1921 |
|
SU1A1 |
Печь для непрерывного получения сернистого натрия | 1921 |
|
SU1A1 |
Печь для непрерывного получения сернистого натрия | 1921 |
|
SU1A1 |
Авторы
Даты
2008-11-10—Публикация
2007-04-28—Подача