Способ профилактики оспы овец и коз Российский патент 2017 года по МПК A61L9/15 A61K9/72 A61P31/20 

Описание патента на изобретение RU2619336C1

Изобретение относится к области ветеринарии, в частности к способу профилактики оспы овец и коз.

Известен способ санации животноводческих помещений в присутствии животных, в котором осуществляют обработку животноводческих помещений озоновоздушной смесью, отличающийся тем, что обработку осуществляют озоновоздушной смесью с концентрацией озона 1-3 мг/м3 с периодичностью 24 часа в течение 1,5-2 часа, которую готовят с помощью озонатора, установленного непосредственно в животноводческом помещении (RU №2542504).

Недостатком данного способа является невозможность его использования для проведения дезинфекции помещений в присутствии животных в случае их заражения вирусом африканской чумы свиней, т.к. для уничтожения данной инфекции необходима обработка озоно-воздушной смесью с более высокой концентрацией озона.

Известен способ оздоровления хозяйств от лейкоза крупного рогатого скота (ВЛКРС), включающий оздоровительные мероприятия, которые проводят по вариантам в зависимости от первоначальной инфицированности стада, определенной по результатам серологического исследования, изоляцию инфицированных ВЛКРС животных и немедленную сдачу на убой больных животных, отличающийся тем, что при первоначальной инфицированности стада до 2,5% инфицированных животных немедленно сдают на убой, а остальных животных исследуют каждые 3 месяца с обязательным удалением инфицированных животных; в хозяйствах, где выявлено 2,6-10,0% животных, инфицированных ВЛКРС, инфицированных животных собирают на отдельной ферме, откуда молодняк после откорма коров после отела и по мере прекращения лактации сдают на убой, оставшихся животных исследуют серологическим методом на ВЛКРС и вновь выявленных инфицированных животных немедленно переводят на указанную ферму; при первоначальной инфицированности стада 10,1-40,0% всех животных в хозяйстве делят на две группы: серопозитивные и серонегативные и содержат их изолированно друг от друга, инфицированных животных каждые 6 месяцев исследуют гематологическим методом и признанных больными сдают на убой, а коров и нетелей, не инфицированных ВЛКРС, исследуют серологическим методом с интервалом три месяца, при этом вновь выявленных серопозитивных животных переводят в группу инфицированных коров; при первоначальной инфицированности стада более 40,0% всех взрослых животных исследуют только гематологическим методом через каждые 6 месяцев и выявленных больных сдают на убой (RU №2268589).

Недостатком данного способа является продолжительность диагностирования лейкоза крупного рогатого скота серологическим методом, что в свою очередь способствует прогрессивному развитию заболевания, ведущему к массовой гибели животных.

Техническим результатом является расширение функциональных возможностей способа профилактики оспы овец и коз.

Технический результат достигается тем, что в способе профилактики оспы овец и коз, включающем выявление 2,5-3% от общего количества животных с инфекционным заболеванием на начальной стадии развития в очаге и 1-й угрожаемой зоне, убой больных и дальнейшее обследование остальных животных, согласно изобретению остальных животных в очаге инфекционного заболевания оспы овец и коз обследуют в течение суток методом экспресс-диагностики, включающим отбор проб крови животных, выделение из нее ДНК генома вирусного заболевания, проведение полимеразной цепной реакции с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени, по результатам которой выявляют животных-носителей вируса и здоровых животных, которых переводят в отдельные помещения и в их присутствии осуществляют санацию помещений озоновоздушной смесью: в помещении с животными-носителями вируса в течение месяца не менее 3-4 раз в неделю с концентрацией озона 4-6 г/м3 в течение 20-30 минут, в помещении со здоровыми животными - в течение не более двух недель 2-3 раза в неделю с концентрацией озона 3-4 г/м3 в течение 15-20 минут.

Новизна заявляемого способа профилактики оспы овец и коз состоит в идентификации вируса в пробах патологического материала с помощью полимеразной цепной реакции (ПЦР) с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени в течение суток, что в свою очередь позволяет выявить животных-носителей вируса оспы овец и коз на начальной стадии их инфицирования, а также осуществление санации помещений, в которых отдельно друг от друга присутствуют животные-носители вируса и здоровые животные.

Признаки, отличающие заявляемое техническое решение от прототипа, направлены на достижение технического результата и не выявлены при изучении данной и смежной областей науки и техники и, следовательно, соответствуют критерию «изобретательский уровень».

Эти отличия позволяют сделать вывод о соответствии заявляемых технических решений критерию «новизна».

Заявляемый способ профилактики оспы овец и коз рекомендовано использовать в специализированных ветеринарных, животноводческих, сельскохозяйственных предприятиях.

Способ профилактики оспы овец и коз осуществляют следующим образом.

В стаде животных ведут забор проб крови от каждого. Для получения сыворотки пробирки с кровью отстаивают при комнатной температуре до полного образования сгустка, затем центрифугируют. После сыворотку в количестве не менее 1 мл переносят одноразовыми наконечниками с фильтром в одноразовые пробирки объемом 1,5 мл. Помимо крови, в качестве исследуемого образца также используют содержимое везикул, пустул после предварительной очистки их поверхности спиртом, папулы и оспенные корки, фрагменты измененных органов (лимфатические узлы, селезенка, легкие). Для подготовки пробы к проведению полимеразной цепной реакции используют различные методики, с помощью которых осуществляют экстракцию ДНК из полученных образцов сыворотки крови животных и удалении или нейтрализации посторонних примесей для получения препарата /ДНК с чистотой, пригодной для проведения полимеразной цепной реакции.

Перед выделением ДНК осуществляют подготовку исследуемых проб с помощью набора реагентов «ПЦР-ОСПА-ФАКТОР», состоящего из 2 комплектов (таблица 1 и 2).

В отдельной пробирке смешивают компоненты набора из расчета на каждую реакцию 10 мкл ПЦР СМЕСЬ РОХ, 5 мкл смеси ПЦР БУФЕР РОХ, 0,5 мкл TAQ POLYMERASE. Перемешивают смесь на вортексе и сбрасывают капли кратковременным центрифугированием. Затем отбирают необходимое количество пробирок для амплификации ДНК исследуемых и контрольных проб, вносят по 15 мкл приготовленной реакционной смеси. Используя наконечники с фильтром, в подготовленные пробирки добавляют:

1) отрицательный контроль ПЦР (К-) - вносят в пробирку по 10 мкл ОКО;

2) по 10 мкл Д НК из исследуемых образцов в соответствующие пробирки;

3) положительный контроль ПЦР (К+) - вносят в пробирку 10 мкл ПКО.

При этом не наносят маркировку на крышку пробирок, т.к. это затрудняет процесс считывания амплификатором.

Далее осуществляют полимеразную цепную реакцию с флуоресцентным детектором в режиме реального времени на амплификаторе Rotor-Gene 3000/6000. Прибор программируют, устанавливают параметры температурно-временного режима амплификации, детекцию флуоресцентного сигнала назначают после стации отжига праймеров, после чего начинают процесс амплификации с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени. В его основе лежит принцип флуоресцентной детекции продуктов полимеразной цепной реакции непосредственно в ходе амплификации. Детекция продуктов амплификации проводится прямо в реакционной среде через стенки или крышку закрытой пробирки.

ПЦР с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени имеет ряд значительных преимуществ:

- объединение этапов амплификации и детекции результатов. Появляется возможность оценить кинетику процесса, которая зависит от начального количества исследуемого материала;

- существенное снижение риска контаминации и ошибок при анализе результатов;

- высокая специфичность реакции за счет использования высокоспецифичных флуоресцентных зондов;

- высокая производительность;

- упрощение требований к организации ПЦР-лаборатории;

- возможность количественной оценки исходной ДНК матрицы;

- регистрация и учет данных в электронном формате.

ПЦР в реальном времени характеризуется возможностью проведения качественного и количественного анализа. Регистрируемое в процессе амплификации нарастание сигнала от отделенного флуорофора прямо пропорционально увеличению концентрации синтезированных специфических продуктов и отражает концентрацию ДНК в исходной матрице.

Учет результатов полимеразной цепной реакции, согласно указанной выше инструкции, проводят по наличию или отсутствию пересечения кривой флуоресценции с установленной на соответствующем уровне пороговой линией. Образец считают положительным (вирус оспы овец и коз присутствует), если наблюдают рост специфического сигнала, при этом значения контрольных образцов находятся в пределах нормы. Образец считают отрицательным (вирус оспы овец и коз отсутствует), если не наблюдают рост специфического сигнала, при этом значения контрольных образцов находятся в пределах нормы.

В результате проведения полимеразной цепной реакции с флуоресцентным детектором в режиме реального времени при выявлении первоначального инфицирования вирусом оспы овец и коз 2,5-3% голов животных от общего количества в стаде, инфицированных особей сдают на убой, после чего животных-носителей инфекции и здоровых особей переводят в отдельные помещения. Затем осуществляют санацию помещений в присутствии животных с помощью озоновоздушной смеси, при этом в помещении с животными-носителями вируса ее проводят в течение месяца 3 раза в неделю с концентрацией озона 5 мг/м3 в течение 25 минут. В помещении со здоровыми животными санацию проводят в течение двух недель 2 раза в неделю с концентрацией озона 4 мг/м3 в течение 18 минут.

Результаты проведения опытов по санации помещений показывают, что санация помещения озоновоздушной смесью с концентрацией озона 1-3 мг/м3 является малоэффективной при содержании общего микробного числа по результатам анализа санитарно-микробиологического контроля воздуха в животноводческом помещении более 200 тыс./м3, уровнем аммиака более 20 мг/м3 и сероводорода более 15 мг/м3, т.к. незначительно повлияла на снижение указанных показателей.

После санации помещений озоновоздушной смесью с концентрацией озона 7-10 мг/м3 наблюдалось значительное снижение параметров ОМЧ, аммиака и сероводорода в воздухе, однако последствием такой дезинфекции являлось ухудшение общего самочувствия животных, снижение их активности и аппетита. Поэтому по итогам проведенных испытаний наиболее оптимальной признана санация с концентрациями озона 4 и 5 мг/м3, т.к. санация озоновоздушной смесью с данными концентрациями озона не оказывала токсикологического побочного эффекта, а также снижала уровень содержания вредных веществ в животноводческих помещениях до регламентированных норм. Данные по содержанию вредных соединений в воздухе животноводческих помещений до и после санации в зависимости от концентрации озона в озоновоздушной смеси представлены в таблицах 3 и 4.

По итогам санации видно, что обработка помещений озоновоздушной смесью с концентрацией озона 4-5 мг/м3 в течение 15-25 минут снижает уровень загрязнения воздуха вредными соединениями до предельно-допустимых значений, при этом не оказывая вредного токсикологического воздействия на состояние здоровья животных.

Результаты проведенных мероприятий в животноводческих помещениях в присутствии животных позволяют сделать вывод о том, что данный способ профилактики оспы овец и коз свиней эффективен в качестве улучшения и сохранения санитарного состояния на животноводческих предприятиях.

Похожие патенты RU2619336C1

название год авторы номер документа
Способ профилактики нодулярного дерматита КРС 2016
  • Черных Олег Юрьевич
  • Баннов Василий Александрович
  • Мищенко Алексей Владимирович
  • Шевкопляс Владимир Николаевич
  • Кривонос Роман Анатольевич
  • Кощаев Андрей Георгиевич
  • Джаилиди Георгий Анастасович
  • Лысенко Юрий Андреевич
  • Лысенко Александр Анатолиевич
  • Дресвянникова Светлана Георгиевна
  • Чернов Альберт Николаевич
  • Шевченко Александр Алексеевич
  • Федоренко Карина Петровна
RU2619337C1
Способ профилактики африканской чумы свиней 2016
  • Черных Олег Юрьевич
  • Баннов Василий Александрович
  • Мищенко Алексей Владимирович
  • Шевкопляс Владимир Николаевич
  • Кривонос Роман Анатольевич
  • Кощаев Андрей Георгиевич
  • Джаилиди Георгий Анастасович
  • Лысенко Юрий Андреевич
  • Лысенко Александр Анатолиевич
  • Дресвянникова Светлана Георгиевна
  • Чернов Альберт Николаевич
  • Шевченко Александр Алексеевич
  • Федоренко Карина Петровна
RU2629399C1
Способ экспресс-диагностики оспы овец и коз 2016
  • Черных Олег Юрьевич
  • Баннов Василий Александрович
  • Мищенко Алексей Владимирович
  • Шевкопляс Владимир Николаевич
  • Кривонос Роман Анатольевич
  • Кощаев Андрей Георгиевич
  • Джаилиди Георгий Анастасович
  • Лысенко Юрий Андреевич
  • Лысенко Александр Анатолиевич
  • Дресвянникова Светлана Георгиевна
  • Чернов Альберт Николаевич
RU2648845C2
Способ экспресс-диагностики нодулярного дерматита КРС 2016
  • Черных Олег Юрьевич
  • Баннов Василий Александрович
  • Мищенко Алексей Владимирович
  • Шевкопляс Владимир Николаевич
  • Кривонос Роман Анатольевич
  • Кощаев Андрей Георгиевич
  • Джаилиди Георгий Анастасович
  • Лысенко Юрий Андреевич
  • Лысенко Александр Анатолиевич
  • Дресвянникова Светлана Георгиевна
  • Чернов Альберт Николаевич
  • Коновалов Михаил Геннадиевич
RU2648773C2
Способ определения ДНК вируса нодулярного дерматита (LSDV) в биологическом материале животных методом ПЦР с электрофоретической детекцией продуктов амплификации в агарозном геле 2019
  • Малышев Денис Владиславович
  • Черных Олег Юрьевич
  • Баннов Василий Александрович
  • Котельникова Александра Андреевна
  • Кривонос Роман Анатольевич
  • Лысенко Александр Анатолиевич
  • Кощаев Андрей Георгиевич
  • Вацаев Шахаб Вахидович
  • Шевченко Александр Алексеевич
  • Хахов Латиф Асланбиевич
  • Черных Владимир Олегович
  • Лысенко Юрий Андреевич
  • Дробин Юрий Дмитриевич
  • Дмитрив Николай Иванович
  • Мищенко Алексей Владимирович
  • Дайбова Любовь Анатольевна
  • Семененко Марина Петровна
  • Неверова Ольга Петровна
  • Коломиец Сергей Николаевич
  • Гулюкин Михаил Иванович
  • Исаева Альбина Геннадьевна
  • Клименко Александр Иванович
  • Гринь Светлана Анатольевна
RU2728660C1
Тест-система для выявления генома вируса оспы овец методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени 2020
  • Спрыгин Александр Владимирович
  • Шалина Ксения Александровна
  • Пестова Яна Евгеньевна
  • Белый Артём Сергеевич
  • Нестеров Александр Александрович
  • Шумилова Ирина Николаевна
  • Кононова Светлана Владимировна
  • Прутников Павел Владимирович
  • Бьядовская Ольга Петровна
  • Кононов Александр Владимирович
RU2744092C1
Тест-система для определения ДНК вируса нодулярного дерматита (LSDV) в биологическом материале животных методом ПЦР с электрофоретической детекцией продуктов амплификации в агарозном геле 2019
  • Черных Олег Юрьевич
  • Малышев Денис Владиславович
  • Баннов Василий Александрович
  • Кривонос Роман Анатольевич
  • Лысенко Александр Анатолиевич
  • Кощаев Андрей Георгиевич
  • Вацаев Шахаб Вахидович
  • Шевченко Александр Алексеевич
  • Хахов Латиф Асланбиевич
  • Черных Владимир Олегович
  • Лысенко Юрий Андреевич
  • Дробин Юрий Дмитриевич
  • Дмитрив Николай Иванович
  • Коновалов Михаил Геннадьевич
  • Котельникова Александра Андреевна
  • Кривоногова Анна Сергеевна
  • Кузьминова Елена Васильевна
  • Дельцов Александр Александров
  • Донник Ирина Михайловна
  • Инюкина Татьяна Андреевна
  • Самуйленко Анатолий Яковлевич
  • Шахов Алексей Гаврилович
RU2726432C1
Способ диагностики лейкоза крупного рогатого скота с использованием ПЦР в режиме реального времени 2018
  • Абакин Сергей Стефанович
  • Красовская Татьяна Леонидовна
RU2722137C1
Способ диагностики вируса лейкоза крупного рогатого скота 2018
  • Красовская Татьяна Леонидовна
  • Абакин Сергей Стефанович
  • Сулыга Наталья Владимировна
RU2694966C1
Способ выявления ДНК вируса нодулярного дерматита (LSDV) в биологическом материале животных с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени 2019
  • Черных Олег Юрьевич
  • Малышев Денис Владиславович
  • Баннов Василий Александрович
  • Кривонос Роман Анатольевич
  • Лысенко Александр Анатолиевич
  • Кощаев Андрей Георгиевич
  • Чернов Альберт Николаевич
  • Шевченко Александр Алексеевич
  • Хахов Латиф Асланбиевич
  • Вацаев Шахаб Вахидович
  • Черных Владимир Олегович
  • Лысенко Юрий Андреевич
  • Дробин Юрий Дмитриевич
  • Шевкопляс Владимир Николаевич
  • Дмитрив Николай Иванович
  • Исаева Альбина Геннадьевна
  • Гулюкин Михаил Иванович
  • Семенов Владимир Григорьевич
  • Стекольников Анатолий Александрович
  • Барашкин Михаил Иванович
  • Василевич Федор Иванович
  • Ларионов Сергей Васильевич
RU2719719C1

Реферат патента 2017 года Способ профилактики оспы овец и коз

Изобретение относится к области ветеринарии и предназначено для профилактики оспы овец и коз. Способ включает выявление 2,5-3% от общего количества животных с инфекционным заболеванием на начальной стадии развития в очаге и 1-й угрожаемой зоне, убой больных и дальнейшее обследование остальных животных. Остальных животных в очаге инфекционного заболевания оспы овец и коз обследуют в течение суток методом экспресс-диагностики, включающим отбор проб крови животных, выделение из нее ДНК генома вирусного заболевания, проведение полимеразной цепной реакции с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени. По результатам диагностики выявляют животных-носителей вируса и здоровых животных, которых переводят в отдельные помещения и в их присутствии осуществляют санацию помещений озоновоздушной смесью. В помещении с животными-носителями вируса санацию осуществляют в течение месяца не менее 3-4 раз в неделю с концентрацией озона 4-6 г/м3 в течение 20-30 минут. В помещении со здоровыми животными санацию осуществляют в течение не более двух недель 2-3 раза в неделю с концентрацией озона 3-4 г/м3 в течение 15-20 минут. Способ высокоэффективен при профилактике оспы овец и коз. 4 табл., 1 пр.

Формула изобретения RU 2 619 336 C1

Способ профилактики оспы овец и коз, включающий выявление 2,5-3% от общего количества животных с инфекционным заболеванием на начальной стадии развития в очаге и 1-й угрожаемой зоне, убой больных и дальнейшее обследование остальных животных, отличающийся тем, что остальных животных в очаге инфекционного заболевания оспы овец и коз обследуют в течение суток методом экспресс-диагностики, включающим отбор проб крови животных, выделение из нее ДНК генома вирусного заболевания, проведение полимеразной цепной реакции с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени, по результатам которой выявляют животных-носителей вируса и здоровых животных, которых переводят в отдельные помещения и в их присутствии осуществляют санацию помещений озоновоздушной смесью: в помещении с животными-носителями вируса в течение месяца не менее 3-4 раз в неделю с концентрацией озона 4-6 г/м3 в течение 20-30 мин, в помещении со здоровыми животными - в течение не более двух недель 2-3 раза в неделю с концентрацией озона 3-4 г/м3 в течение 15-20 мин.

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 2017 года RU2619336C1

ДИЕВ В.И
И ДР
Оспа овец и коз: эпизоотическая ситуация и профилактика// Ветеринария, 2003; N 11
С
Переносная печь для варки пищи и отопления в окопах, походных помещениях и т.п. 1921
  • Богач Б.И.
SU3A1
СПОСОБ САНАЦИИ ЖИВОТНОВОДЧЕСКИХ ПОМЕЩЕНИЙ В ПРИСУТСТВИИ ЖИВОТНЫХ 2014
  • Терехов Владимир Иванович
  • Нормов Дмитрий Александрович
  • Курзин Николай Николаевич
  • Сторчевой Владимир Федорович
  • Абауи Мишель Муфид
RU2542504C1
CN 104147145 A, 19.11.2014.

RU 2 619 336 C1

Авторы

Черных Олег Юрьевич

Баннов Василий Александрович

Мищенко Алексей Владимирович

Шевкопляс Владимир Николаевич

Кривонос Роман Анатольевич

Кощаев Андрей Георгиевич

Джаилиди Георгий Анастасович

Лысенко Юрий Андреевич

Лысенко Александр Анатолиевич

Дресвянникова Светлана Георгиевна

Чернов Альберт Николаевич

Шевченко Александр Алексеевич

Федоренко Карина Петровна

Даты

2017-05-15Публикация

2016-08-08Подача