Способ прогнозирования риска развития хронического миелоидного лейкоза Российский патент 2020 года по МПК C12Q1/68 C12N15/00 

Описание патента на изобретение RU2726439C1

Изобретение относится к области медицины, а именно к гематологии, и может быть использовано для прогнозирования риска развития хронического миелолейкоза.

Хронический миелоидный лейкоз (ХМЛ) - клональное заболевание гемопоэтических стволовых клеток с усиленной пролиферацией и сниженным апоптозом гемопоэтических клеток-предщественниц. У 95-98% больных встречается транслокация t(9;22)(q34;q11), в результате которой на укороченной (так называемой «филадельфийской», Ph) хромосоме 22 образуется химерный онкоген BCR-ABL1, приводящий к продукции конституционально активной тирозинкиназы с преимущественно цитоплазматической локализацией. ХМЛ, как правило, диагностируется в развернутой хронической стадии, когда филадельфийская хромосома присутствует почти во всех клетках костного мозга.

Несмотря на достигнутые успехи в понимании отдельных звеньев патогенеза, этиологические факторы неизвестны. В последние годы накапливается все больше данных, свидетельствующих о том, что определенный вклад в возникновение злокачественных заболеваний, включая лейкозы, могут вносить конституциональные особенности генома, в частности полиморфизм ряда генов ферментов биотрансформации ксенобиотиков (ФБК). К числу таких ферментов, несомненно, следует отнести ключевой фермент детоксикации ксенобиотиков фазы I - цитохром Р4501А2 (CYP1A2), который участвует в метаболической активации ряда проканцерогенов, таких как полиароматические углеводороды и гетероциклические амины, нитроароматические соединения, микотоксины (в частности афлотоксин В1), кофеин, ацетаминофен. Подобная активация приводит к образованию реактивных метаболитов, которые при связывании с ДНК образуют аддукты, способные вызвать мутации, в частности, в протоонкогенах и/или антионкогенах, что, в конечном счете, может вызвать онкозаболевания, в том числе ХМЛ.

В свете вышеизложенного особый интерес вызывает функционально значимый полиморфизм -2467T>delT гена CYP1A2, расположенный в положении -2467, являющимся ключевым для области связывания (положения -2495 и -2000) чувствительного ксенобиотического элемента (XRE), участвующего в механизме индукции CYP1A2. В частности, в ядре активируется лиганд рецептора ароматических углеводородов (лиганд-AhR) и образует гетеродимер с ядерным транслокатором рецептора Ah (Arnt), как результат связывания с полиароматическими химическими веществами. Затем этот гетеродимер активирует транскрипцию CYP1A2 путем связывания XRE в положениях -2495 и -2000. В результате можно предположить, что полиморфизм CYP1A2 - 2467delT может модифицировать участки связывания (в структуре хроматина), тем самым увеличивая индукцию CYP1A2 компонентами полиароматических химических веществ.

Вышеприведенные сведения свидетельствуют о перспективности использования полиморфного маркера -2467T>delT гена CYP1A2 для определения риска развития ХМЛ.

В настоящее время известен способ прогнозирования развития ХМЛ, основанный на идентификации однонуклеотидных полиморфных маркеров T-309G и G-1082A соответственно генов MDM2 и IL-10 (Овсепян В.А., Габдулхакова А.Х., Лучинин А.С., Докшина И.А. «Возможная роль полиморфизмов генов MDM2 и IL10 в патогенезе хронического миелоидного лейкоза» // «Злокачественные опухоли». - 2016. - №4s (21). - С. 205-206). Способ включает выделение ДНК из цельной периферической крови с последующими типированием указанных генов методом аллель-специфичной полимеразной цепной реакции (ПЦР) и последующим анализом ее продуктов с помощью электрофореза в 7% полиакриламидном геле (ПААГ).

Установлен повышенный риск развития ХМЛ при совместном носительстве генотипов IL10*1082AA и MDM2*309GG. Недостатком приведенного способа является трудоемкость, связанного с раздельным исследованием полиморфных маркеров двух генов.

Известен другой способ прогнозирования развития ХМЛ (Овсепян В.А., Лучинин А.С., Загоскина Т.П. «Роль полиморфизмов генов глутатион-S-трансфераз M1 (GSTM1) и T1 (GSTT1) в развитии и прогрессировании хронического миелолейкоза, а также в формировании ответа на терапию иматинибом» // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2014. - №8.- С. 78-81), который нами был выбран качестве прототипа. В основе данного способа лежит идентификация полиморфных маркеров генов глутатион-S-трансфераз M1 (GSTM1) и T1 (GSTT1), характеризующихся наличием или отсутствием протяженных делеций, выявляемых с помощью мультиплексной ПЦР и последующим анализом ее продуктов с помощью электрофореза в 7% ПААГ. Недостатком данного способа прогнозирования предрасположенности к ХМЛ является невозможность дифференцировать гетерозигот и гомозигот по аллелю с отсутствием делеций, что, в частности, не позволяет проводить тестирование исследуемых выборок на соблюдение равновесия Харди-Вайнберга.

В связи с вышеизложенным технической задачей изобретения является разработка простого и экономичного способа прогнозирования развития ХМЛ, лишенного указанного недостатка прототипа.

Технический результат - получение объективных критериев оценки риска развития ХМЛ.

Указанный технический результат достигается разработанным способом, включающим:

• выделение ДНК из периферической крови;

• амплификацию фрагмента ДНК, содержащего локус -2467T>delT гена CYP1A2;

• обработку амплифицированных фрагментов ДНК эндонуклеазой рестрикции FauNDI;

• анализ продуктов ПЦР-ПДРФ (полиморфизм длин рестрикционных фрагментов), соответствующих аллелям -2467Т и -2467delT, с помощью электрофореза в ПААГ;

• оценку риска развития ХМЛ.

Способ осуществляют следующим образом.

В качестве материала для генотипирования используют ДНК, полученную стандартным методом фенольно-хлороформной экстракции. К 3 мл периферической крови добавляют 27 мл 0,84% раствора NH4Cl, для гемолиза выдерживают в течение 15 минут при температуре от 4°С до 8°С, затем центрифугируют 10 минут при 2700 об/мин. Осадки растворяют в 1 мл буфера, содержащего 0,32 М сахарозы, 5 мМ MgCl2, 1% раствор тритона Х-100, 0,01 М Tris-HCl. Затем центрифугируют в течение 5 минут при 5000 об/мин и к осадку добавляют 0,4 мл буфера, содержащего 5 М NaCl и 0,5 М ЕДТА (рН=8,0), 0,02 мл 10% SDS, 0,01 мл протеиназы К (10 мг/мл). Смесь инкубируют 3-4 часа при температуре 56°С. Затем проводят последовательную фенол-хлороформную экстракцию ДНК. Осаждение ДНК проводят в 0,8 мл 96% этилового спирта с добавлением 0,04 мл 3М ацетата натрия. Затем ДНК растворяют в ТЕ-буфере.

Исследование полиморфизма -2467T>delT гена CYP1A2 проводят методом ПЦР-ПДРФ. Нуклеотидная последовательность использованных праймеров представлена в таблице 1.

Амплификацию полиморфных ДНК-локусов проводят в 10>20 мкл общего объема смеси, содержащей 1 мкл буфера Hot Start, 1,25 мМ MgCl2, 0,1 мкг геномной ДНК, по 10 пМ каждого праймера (таблица 1), по 200 мкМ dNTP и 1 единицу Taq-полимеразы. Амплификацию проводят на программируемом термоциклере фирмы «BIO-RAD» при следующих условиях: денатурация при 94°С - 10 мин, 35 циклов в режиме 94°С - 30 с, 62°С - 10 с, 72°С - 60 с, заключительный синтез - 72°С, 10 мин. Амплифицированные фрагменты ДНК обрабатывают эндонуклеазой рестрикции FauNDI при 37°С в течение 16 ч. Продукты ПЦР-ПДРФ, соответствующие аллелям -2467Т и -2467delT гена CYP1A2, разделяют методом электрофореза в 7% полиакриламидном геле с последующей окраской бромистым этидием и визуализацией в проходящем УФ-свете. Результаты регистрируют с помощью гель-документирующей системы («Vilber Lourmat»).

Полиморфные маркеры идентифицируют по длине фрагмента рестрикции, представленной в таблице 2.

Статистическую обработку полученной в ходе исследования информации проводили с помощью программ SPSS for Windows version 12 и StatSoft version 6.

Возможность применения предложенного способа для прогнозирования риска развития ХМЛ подтверждает анализ результатов наблюдений 163 больных ХМЛ и 310 человек популяционного контроля (условно здоровые жители Вятского края). Пациенты включались в группу больных только после установления диагноза заболевания, подтвержденного с помощью клинико-лабораторных методов обследования.

Достоверность различий в распределении частот генотипов ДНК-маркера -2467T>delT гена CYP1A2 в обследованных группах определяли с помощью критерия χ2 Пирсона. В случаях малого числа наблюдений применяли точный критерий Фишера. Тесты на соблюдение равновесия Харди-Вайнберга проводили с помощью программы, доступной на сайте http://gen-exp.ru/calculator_or.php.

Обе группы соответствовали равновесию по Харди-Вайнбергу.

Ассоциации генотипов ДНК-маркера -2467T>delT с предрасположенностью к хроническому миелолейкозу определяли по величине отношения шансов (OR - odds ratio) с доверительным интервалом (CI) при уровне доверия 95%.

Установлено, что носительство, по крайней мере, одного делеционного аллеля -2467delT гена CYP1A2 является фактором, предрасполагающим к развитию ХМЛ (OR=1,54, 95%CI: 1,02-2,33; р=0,04) (таблица 3). Гомозиготное носительство же аллеля -2467Т играет протективную роль в отношении развития ХМЛ (OR=0,65, 95%CI: 0,43-0,98; р=0,05) (таблица 3).

Ниже приведены результаты апробации.

Пример 1.

Пациент П., 1982 года рождения. Диагностирована хроническая фаза хронического миелоидного лейкоза в декабре 2017 года в КНИИГиПК ФМБА России. Диагноз подтвержден анализом флуоресцентной in situ гибридизации (FISH): в 99,5% интерфазных клеток костного мозга выявлен химерный ген BCR/ABL1. На фоне приема ИТК I у больного развилась гематологическая токсичность 3 ст., согласно критериям ELN-2009 констатирована неудача терапии. Пациенту показана АллоТГСК.

Для проведения анализа полиморфизма -2467T>delT гена цитохрома Р450 CYP1A2 у больного было взято 3 мл периферической крови, из которой выделена ДНК методом фенольно-хлороформной экстракции. Исследование полиморфного ДНК-локуса -2467T>delT проводилось с помощью ПЦР с последующей обработкой эндонуклеазой рестрикции FauNDI и анализом продуктов указанной обработки с помощью электрофореза в ПААГ. В результате выявлено, что пациент П. является носителем генотипа CYP1A2-T/delT2467 - маркера повышенного риска развития ХМЛ. Проведенное обследование пациента подтвердило высокую точность прогноза с применением предложенного способа.

Пример 2.

Донор К., 1969 года рождения. На момент проведения исследования гематологических новообразований не обнаружено. Для проведения анализа полиморфизма -2467T>delT гена цитохрома Р450 CYP1A2 у донора было взято 3 мл периферической крови, из которой выделена ДНК методом фенольно-хлороформной экстракции. Исследование полиморфного ДНК-локуса -2467T>delT проводилось с помощью ПЦР с последующей обработкой эндонуклеазой рестрикции FauNDI и анализом продуктов указанной обработки с помощью электрофореза в ПААГ. В результате выявлено, что донор К. является носителем генотипа CYP1A2-T/delT2467 - маркера повышенного риска развития ХМЛ.

Донору К. рекомендовано воздержаться от курения, в том числе пассивного, ограничить воздействие генотоксических факторов и проводить регулярные исследования (не менее 1 раза в полгода) показателей крови.

Применение предложенного нами способа может стать основой для организации профилактических мероприятий по предупреждению развития хронического миелолейкоза у лиц, предрасположенных к заболеванию. Указанные мероприятия должны основываться на ограничении воздействия генотоксических факторов внешней среды, и прежде всего, воздействия полиароматических углеводородов и гетероциклических аминов, нитроароматических соединений, микотоксинов (в частности афлотоксин В1), кофеина, ацетаминофена.

Похожие патенты RU2726439C1

название год авторы номер документа
СПОСОБ ПРОГНОЗИРОВАНИЯ БЕСПЛОДИЯ У ЖЕНЩИН - РАБОТНИЦ НЕФТЕХИМИЧЕСКИХ ПРОИЗВОДСТВ 2008
  • Гайнуллина Махмуза Калимовна
  • Сафина Кадрия Флюровна
  • Викторова Татьяна Викторовна
  • Кочетова Ольга Владимировна
  • Валеева Эльвира Тимерьяновна
  • Якупова Айгюль Хамитовна
  • Мухаммадиева Гузель Фанисовна
RU2386133C1
СПОСОБ ПРОГНОЗИРОВАНИЯ РИСКА РАЗВИТИЯ БРОНХИАЛЬНОЙ АСТМЫ 2006
  • Карунас Александра Станиславовна
  • Шалухина Анита Ринатовна
  • Загидуллин Шамиль Зарифович
  • Исламгулов Денис Владимирович
  • Хуснутдинова Эльза Камилевна
RU2324937C1
СПОСОБ ПРОГНОЗИРОВАНИЯ РАННЕГО РАЗВИТИЯ ЯЗВЕННОЙ БОЛЕЗНИ ДВЕНАДЦАТИПЕРСТНОЙ КИШКИ 2016
  • Курамшина Ольга Анатольевна
  • Габбасова Лилия Вадимовна
  • Крюкова Антонина Яковлевна
  • Нургалиева Альфия Хаматьяновна
RU2652275C2
СПОСОБ ПРОГНОЗИРОВАНИЯ РИСКА РАЗВИТИЯ ПАРАНОИДНОЙ ШИЗОФРЕНИИ 2012
  • Гареева Анна Эмировна
  • Закиров Денис Филарисович
  • Хуснутдинова Эльза Камилевна
RU2506595C2
СПОСОБ ПРОГНОЗИРОВАНИЯ ЭФФЕКТИВНОСТИ ПРОФИЛАКТИКИ АЛЬБЕНДАЗОЛОМ ПОСЛЕОПЕРАЦИОННОГО РЕЦИДИВА ЦИСТНОГО ЭХИНОКОККОЗА 2015
  • Лукманов Мурад Ильгизович
  • Нартайлаков Мажит Ахметович
  • Лукманова Гульнур Ишмурзовна
RU2601902C1
СПОСОБ ПРОГНОЗИРОВАНИЯ РАЗВИТИЯ СИРИНГОМИЕЛИИ 2006
  • Мирсаев Тагир Рафаилович
  • Абулгатина Аниса Саматовна
  • Исламгулов Денис Владимирович
  • Хусаинова Рита Игоревна
  • Борисова Нинель Андреевна
  • Хуснутдинова Эльза Камилевна
RU2304774C1
СПОСОБ ПРОГНОЗИРОВАНИЯ РАЗВИТИЯ И ТЕЧЕНИЯ ХРОНИЧЕСКОГО ЛИМФОЛЕЙКОЗА 2003
  • Бакиров Б.А.
  • Бакиров А.Б.
  • Викторова Т.В.
  • Гринчук О.В.
RU2248574C1
СПОСОБ ПРОГНОЗИРОВАНИЯ РАЗВИТИЯ ПРОФЕССИОНАЛЬНЫХ ГИПЕРКЕРАТОЗОВ У РАБОТНИКОВ ПРОИЗВОДСТВА СТЕКЛОВОЛОКНА 2014
  • Мухаммадиева Гузель Фанисовна
  • Бакиров Ахат Бариевич
  • Каримов Денис Олегович
  • Валеева Эльвира Тимерьяновна
RU2558041C1
СПОСОБ ПРОГНОЗИРОВАНИЯ РАЗВИТИЯ САХАРНОГО ДИАБЕТА 2 ТИПА У НАСЕЛЕНИЯ БАШКОРТОСТАНА 2018
  • Авзалетдинова Диана Шамилевна
  • Кочетова Ольга Владимировна
  • Моругова Татьяна Вячеславовна
  • Шарипова Ляйсан Фаритовна
  • Мустафина Ольга Евгеньевна
RU2688208C1
СПОСОБ ПРОГНОЗИРОВАНИЯ РАЗВИТИЯ САХАРНОГО ДИАБЕТА ТИПА 1 В ПОПУЛЯЦИЯХ НАРОДОВ БАШКОРТОСТАНА 2008
  • Балхиярова Жанна Радиковна
  • Моругова Татьяна Вячеславовна
  • Авзалетдинова Диана Шамилевна
  • Мустафина Ольга Евгеньевна
RU2368325C1

Реферат патента 2020 года Способ прогнозирования риска развития хронического миелоидного лейкоза

Изобретение относится к биотехнологии, а именно к гематологии, и может быть использовано для определения риска развития хронического миелолейкоза. Указанный технический результат достигается тем, что проводят выделение ДНК из периферической крови методом фенол-хлороформной экстракции, затем определяют полиморфный статус гена цитохрома Р450 CYP1A2 (-2467T>delT) методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) с последующим анализом полиморфизма длин рестрикционных фрагментов (ПДРФ) у практически здоровых лиц. При наличии делеционного аллеля delT2467 гена CYP1A2 прогнозируют повышенный риск развития хронического миелолейкоза, а выявление носительства генотипа -2467Т/Т служит протективным фактором в отношении развития ХМЛ. 3 табл., 2 пр.

Формула изобретения RU 2 726 439 C1

Способ прогнозирования риска развития хронического миелоидного лейкоза, заключающийся в выделении ДНК из периферической крови методом фенол-хлороформной экстракции и отличающийся тем, что проводят генотипирование полиморфного маркера -2467T>delT гена CYP1A2 методом полимеразной цепной реакции с последующим анализом полиморфизма длин рестрикционных фрагментов и при выявлении генотипов, содержащих хотя бы один делеционный аллель delT2467 гена CYP1A2, прогнозируют высокий риск развития хронического миелоидного лейкоза, при выявлении же генотипа -2467Т/Т прогнозируют низкий риск развития заболевания.

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 2020 года RU2726439C1

Dong Hwan (Dennis)Kim et al, Clinical Relevance of a Pharmacogenetic Approach Using Multiple Candidate Genes to Predict Response and Resistance to Imatinib Therapy in Chronic Myeloid Leukemia, Clin Cancer Research, July 15 2009, (15), pp
ПРИСПОСОБЛЕНИЕ ДЛЯ ПЕРЕДАЧИ ПОКУПАЕМЫХ ПРЕДМЕТОВ И УПЛАЧИВАЕМЫХ ДЕНЕГ 1926
  • Гершун Ю.Б.В.
SU4750A1
Зельцер А.Н
И др., Молекулярно-генетическая характеристика хронического миелоидного лейкоза,

RU 2 726 439 C1

Авторы

Сарпова Мария Вадимовна

Овсепян Ваник Абрамович

Трегубова Екатерина Владимировна

Даты

2020-07-14Публикация

2019-10-16Подача