БАКТЕРИЯ, ПРИНАДЛЕЖАЩАЯ К РОДУ Escherichia, В КОТОРОЙ ИНАКТИВИРОВАН ГЕН pnp, - ПРОДУЦЕНТ L-ТРЕОНИНА, И СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ L-ТРЕОНИНА Российский патент 2008 года по МПК C12N1/21 C12P13/08 C12R1/19 

Область техники

Настоящее изобретение относится к микробиологической промышленности, в частности к способу получения L-аминокислоты с использованием бактерии семейства Enterobacteriaceae, модифицированной таким образом, что экспрессия гена pnp в указанной бактерии ослаблена.

Описание предшествующего уровня техники

Полинуклеотидфосфорилаза (ПНФаза), 3′-5′-экзонуклеаза, кодируемая геном pnp, играет основную роль в распаде РНК бактерии Escherichia coli. Данный фермент, состоящий из трех одинаковых субъединиц из 711 аминокислот каждая, может также входить в состав РНК-деградосомы, гетеромультимерного комплекса, участвующего в деградации РНК,

ПНФаза способна к саморегуляции экспрессии путем инициации распада мРНК pnp при помощи связывания с нетранслируемым 5′-концевым лидерным участком данного транскрипта после его процессинга при помощи РНКазы III. В узнавании мРНК pnp участвуют РНК-связывающие домены КН и S1, расположенные на С-конце данного белка (Regonesi, M.E. et al. A mutation in polynucleotide phosphorylase from Escherichia coli impairing RNA binding and degradosome stability. (Nucleic Acids Res., 2004, 32 (3): 1006-1017).

Было установлено, что одновременная инактивация ПНФазы и РНКазы II (оба фермента являются 3′-5′-экзонуклеазами) в бактерии Escherichia coli приводит к потери жизнеспособности клетки и накоплению частично деградированных мРНК. В экспоненциальной фазе клеточного роста инактивация ПНФазы приводит к увеличению уровня мРНК (17,3%) в большей степени, чем инактивация РНКазы II (7.3%) (Mohanly, B.K. and Kushner, S.R.Genomic analysis in Escherichia coli demonstrates differential roles for polynucleotide phosphorylase and RNase II in mRNA abundance and decay. Mol. Microbiol., 2003, 50 (2): 645-658).

Также было показано, что возрастание уровня poly(А) внутри клетки стабилизирует транскрипты гена pnp, что приводит к повышению уровня ПНФазы. Период полураспада транскриптов гена pnp в бактерии Escherichia coli зависит от внутриклеточного уровня полиаденилированных транскриптов (Mohanly, B.K. and Kushner, S.R. Polyadenylation of Escherichia coli transcripts plays an integral role in regulating intracellular levels ofpolynucleotide phosphorylase and RNase E. Mol. Microbiol., 2002, 45 (5): 1315-1324).

Синтез ПНФазы является самоконтролируемым на пост-транскрипционном уровне при помощи механизма с участием РНКазы III. РНКаза III расщепляет структуру типа "стебель-петля", расположенную в лидерном участке мРНК pnp, что вызывает нестабильность мРНК pnp и, следовательно, уменьшение синтеза ПНФазы (Jarrige, А.С., Mathy, N., and Portier, С. PNPase autocontrols its expression by degrading a double-stranded structure in the pnp mRNA leader. EMBO J., 2001, 20 (23): 6845-6855).

Экспрессия гена pnp возрастает при пониженной температуре. В клетках E.coli, выращенных при 18°С, содержание ПНФазы в два раза больше, чем в клетках, выращенных при 30°С (Mathy, N., Jarrige, A.C., Robert-be Meur, М., and Portier, С. Increased expression of Escherichia coli polynucleotide phosphorylase at low temperatures is linked to a decrease in the efficiency of autocontrol. J. Bacteriol., 2001, 183 (13): 3848-3854). Было установлено, что ПНФаза играет критическую роль в адаптации к шоку, вызванному холодом, подавляя синтез белков холодового шока на заключительном этапе стадии акклиматизации (Yamanaka, К. and Inouye, M. Selective mRNA degradation by polynucleotide phosphorylase in cold shock adaptation in Escherichia coli. J. Bacteriol., 2001, 183(9): 2808-2816).

Но в настоящее время нет сообщений, описывающих использование инактивации гена. pnp для получения L-аминокислот.

Описание изобретения

Целями настоящего изобретения являются повышение продуктивности штаммов - продуцентов L-аминокислоты и предоставление способа получения L-аминокислоты с использованием этих штаммов.

Вышеупомянутые цели были достигнуты путем установления того факта, что инактивация гена pnp может привести к повышению продукции L-аминокислот, таких как L-треонин, L-лизин, L-цистеин, L-лейцин, L-гистидин, L-глутаминовая кислота, L-фенилаланин, L-триптофан, L-пролин и L-аргинин.

Настоящее изобретение предоставляет бактерию семейства Enterobacteriaceae, обладающую способностью к повышенной продукции аминокислот, таких как L-треонин, L-лизин, L-цистеин, L-лейцин, L-гистидин, L-глутаминовая кислота, L-фенилаланин, L-триптофан, L-пролин и L-аргинин.

Целью настоящего изобретения является предоставление бактерии-продуцента L-аминокислоты семейства Enterobacteriaceae, модифицированной таким образом, что экспрессия гена pnp в указанной бактерии ослаблена.

Также целью настоящего изобретения является предоставление описанной выше бактерии, в которой ослабление экспрессии указанного гена pnp осуществлено путем инактивации указанного гена pnp.

Также целью настоящего изобретения является предоставление описанной выше бактерии, при этом указанная бактерия принадлежит к роду Escherichia.

Также целью настоящего изобретения является предоставление описанной выше бактерии, при этом указанная бактерия принадлежит к роду Pantoea.

Также целью настоящего изобретения является предоставление описанной выше бактерии, при этом указанная L-аминокислота выбрана из группы, состоящей из ароматической L-аминокислоты и неароматической L-аминокислоты.

Также целью настоящего изобретения является предоставление описанной выше бактерии, при этом ароматическая L-аминокислота выбрана из группы, состоящей из L-фенилаланина, L-тирозина и L-триптофана.

Также целью настоящего изобретения является предоставление описанной выше бактерии, при этом неароматическая L-аминокислота выбрана из группы, состоящей из L-треонина, L-лизина, L-цистеина, L-метионина, L-лейцина, L-изолейцина, L-валина, L-гистидина, L-глицина, L-серина, L-аланина, L-аспарагина, L-аспартата, L-глутамина, L-глутаминовой кислоты, L-пролина и L-аргинина.

Также целью настоящего изобретения является предоставление способа получения L-аминокислоты, который включает в себя:

- выращивание описанной выше бактерии в питательной среде с целью продукции и накопления L-аминокислоты в питательной среде и

- выделение указанной L-аминокислоты из культуральной жидкости.

Также целью настоящего изобретения является предоставление описанного выше способа, при этом указанная L-аминокислота выбрана из группы, состоящей из ароматической L-аминокислоты и неароматической L-аминокислоты.

Также целью настоящего изобретения является предоставление описанного выше способа, при этом указанная ароматическая L-аминокислота выбрана из группы, состоящей из L-фенилаланина, L-тирозина и L-триптофана.

Также целью настоящего изобретения является предоставление описанного выше способа, при этом указанная неароматическая L-аминокислота выбрана из группы, состоящей из L-треонина, L-лизина, L-цистеина, L-метионина, L-лейцина, L-изолейцина, L-валина, L-гистидина, L-глицина, L-серина, L-аланина, L-аспарагина, L-аспартата, L-глутамина, L- глутаминовой кислоты, L-пролина и L-аргинина.

Более детально настоящее изобретение описано ниже.

Подробное описание наилучшего способа осуществления изобретения

1. Бактерия согласно настоящему изобретению

Бактерия согласно настоящему изобретению - это бактерия-продуцент L-аминокислоты семейства Enterobacteriaceae, модифицированная таким образом, что экспрессия гена pnp в указанной бактерии ослаблена.

Согласно настоящему изобретению "бактерия-продуцент L-аминокислоты" означает бактерию, обладающую способностью к продукции и выделению L-аминокислоты в питательную среду, когда бактерия согласно настоящему изобретению выращивается в указанной питательной среде.

Используемый здесь термин "бактерия-продуцент L-аминокислоты" также означает бактерию, которая способна к продукции L-аминокислоты и вызывает накопление L-аминокислоты в ферментационной среде в больших количествах по сравнению с природным или родительским штаммом Е.coli, таким, как штамм Е.coli К-12, и предпочтительно означает, что указанный микроорганизм способен накапливать в среде целевую L-аминокислоту в количестве не менее чем 0.5 г/л, более предпочтительно, не менее чем 1.0 г/л. Термин "L-аминокислота" включает в себя L-аланин, L-аргинин, L-аспарагин, L-аспарагиновую кислоту, L-цистеин, L-глутаминовую кислоту, L-глутамин, L-глицин, L-гистидин, L-изолейцин, L-лейцин, L-лизин, L-метионин, L-фенилаланин, L-пролин, L-серин, L-треонин, L-триптофан, L-тирозин и L-валин.

Термин "ароматическая L-аминокислота" включает в себя L-фенилаланин, L-тирозин и L-триптофан. Термин "неароматическая L-аминокислота" включает в себя L-треонин, L-лизин, L-цистеин, L-метионин, L-лейцин, L-изолейцин, L-валин, L-гистидин, L-глицин, L-серин, L-аланин, L-аспарагин, L-аспартат, L-глутамин, L-глутаминовую кислоту, L-пролин и L-аргинин. Наиболее предпочтительны L-треонин, L-лизин, L-цистеин, L-лейцин, L-гистидин, L-глутаминовая кислота, L-фенилаланин, L-триптофан, L-пролин и L-аргинин.

Семейство Enterobacteriaceae включает в себя бактерии, принадлежащие к родам Escherichia, Enterobacter, Erwinia, Klebsiella, Pantoea, Photorhabdus, Providencia, Salmonella, Serratia, Shigella, Morganella, Yersinia и т.д. Более конкретно могут быть использованы бактерии, классифицируемые как принадлежащие к семейству Enterobacteriaceae в соответствии с таксономией, используемой в базе данных NCBI (National Center for Biotechnology Information)

(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/htbinpost/Taxonomy/wgetorg?mode=Tree&id=1236&1v1=3&k eep=1&srchmode=1&unlock). Бактерия, принадлежащая к родам Escherichia или Pantoea, предпочтительна.

Термин "бактерия, принадлежащая к роду Escherichia" означает, что бактерия относится к роду Escherichia в соответствии с классификацией, известной специалисту в области микробиологии. В качестве примера микроорганизма, принадлежащего к роду Escherichia, использованного в настоящем изобретении, может быть упомянута бактерия Escherichia coli (E. coli).

Круг бактерий, принадлежащих к роду Escherichia, которые могут быть использованы в настоящем изобретении, не ограничен каким-либо образом, однако, например, бактерии, описанные в книге Neidhardt, F.C. et al. (Escherichia coli and Salmonella typhimurium, American Society for Microbiology, Washington D.C., 1208, Таблица 1), могут быть включены в число бактерий согласно настоящему изобретению.

Термин "бактерия, принадлежащая к роду Pantoea" означает, что бактерия относится к роду Pantoea в соответствии с классификацией, известной специалисту в области микробиологии. Недавно несколько видов Enterobacter agglomerans были классифицированы как Pantoea agglomerans, Pantoea ananatis, Pantoea stewartii или подобные им, на основе анализа нуклеотидной последовательности 16S рРНК и т.д. (Int. J.Syst. BacterioL, 1993, 43: 162-173).

Термин "бактерия модифицирована таким образом, что экспрессия гена pnp ослаблена" означает, что указанная бактерия была модифицирована таким образом, что в результате модификации такая бактерия содержит пониженное количество ПНФазы по сравнению с немодифицированной бактерией, или указанная бактерия не способна синтезировать ПНФазу.

Термин "бактерия модифицирована таким образом, что экспрессия гена pnp ослаблена" также означает, что целевой ген модифицирован таким образом, что кодирует мутантный белок (белки), обладающие пониженной активностью.

Термин "инактивация гена pnp" означает, что указанный ген модифицирован таким образом, что такой модифицированный ген кодирует полностью неактивный белок. Также возможно, что естественная экспрессия модифицированного участка ДНК невозможна из-за делеции целевого гена или его части, сдвига рамки считывания данного гена, введения missense/nonsense мутации (мутаций) или модификации прилегающих к гену областей, которые включают последовательности, контролирующие экспрессию гена, такие как промотор(ы), энхансер(ы), аттенуатор(ы), сайт(ы) связывания рибосомы, и т.д.

Ген pnp кодирует полинуклеотидфосфорилазу (ПНФазу, синонимы - В3164, Bfl). Ген pnp (номера нуклеотидов с 3309259 по 3307055 в нуклеотидной последовательности с инвентарным номером NC_000913.2 в базе данных GenBank; gi: 49175990; SEQ ID NO: 1) расположен на хромосоме штамма Е. coli К-12 между генами nlpI и rpsO. Нуклеотидная последовательность гена pnp и соответствующая ей аминокислотная последовательность ПНФазы, кодируемой геном pnp, приведены в Списке последовательностей под номерами 1 (SEQ ID NO: 1) и 2 (SEQ ID NO: 2) соответственно.

Поскольку у представителей различных родов и штаммов семейства Enterobacteriaceae возможны некоторые вариации в нуклеотидных последовательностях, понятие инактивируемого гена pnp не ограничивается геном, последовательность которого приведена в Списке последовательностей под номером 1 (SEQ ID No: 1), но также может включать и гены, гомологичные последовательности, приведенной в Списке последовательностей под номером 1 (SEQ ID No: 1). Таким образом, вариант белка, кодируемого геном pnp, может быть представлен белком с гомологией не менее 80%, предпочтительно не менее 90% и наиболее предпочтительно не менее 95%, по отношению к полной аминокислотной последовательности, приведенной в Списке последовательностей под номером 2 (SEQ ID NO. 2), при условии что до инактивации сохраняется способность ПНФазы участвовать в деградации РНК.

Кроме того, ген pnp может быть представлен вариантом, который гибридизуется в жестких условиях с нуклеотидной последовательностью, приведенной в Списке последовательностей под номером 1 (SEQ ID NO: 1), или с зондом, который может быть синтезирован на основе указанной нуклеотидной последовательности, при условии что указанный вариант до инактивации кодирует функциональную ПНФазу. "Жесткие условия" включают такие условия, при которых специфические гибриды образуются, а неспецифические гибриды - не образуются. Практическим примером жестких условий является однократная отмывка, предпочтительно двух- или трехкратная, при концентрации солей, соответствующей стандартным условиям отмывки при гибридизации по Саузерну, например, 1×SSC, 0.1% SDS, предпочтительно 0.1×SSC, 0.1% SDS, при 60°С. Длина зонда может быть выбрана в зависимости от условий гибридизации, обычно она составляет от 100 п.н. до 1 т.п.н.

Инактивация указанного гена может быть произведена традиционными методами, такими как мутагенез с использованием УФ излучения или обработка нитрозогуанидином (N-метил-N′-нитро-N-нитрозогуанидин), сайт-направленный мутагенез, инактивация гена с помощью гомологичной рекомбинации, или/и инсерционно-делеционного мутагенеза (Yu, D. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2000, 97:12: 5978-83 и Datsenko K.A. and Wanner B.L., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2000, 97:12: 6640-45), также называемого "Red-зависимой интеграцией".

Наличие активности ПНФазы может быть определено путем комплементации мутации pnp, к примеру, с помощью метода, описанного Fontanella, L. et al. Photometric assay for polynucleotide phosphorylase. Anal. Biochem., 1999, 269 (2): 353-358. Таким образом, снижение или отсутствие активности ПНФазы в бактерии согласно настоящему изобретению может быть определено путем сравнения указанной бактерии с родительской немодифицированной бактерией. Кроме того, уровень экспрессии гена можно оценить путем измерения количества мРНК, транскрибируемой с целевого гена, с использованием различных известных методик, включая гибридизацию по Нозерну (Northern blotting), количественный метод ОТ-ПЦР (RT-PCR) и подобные им. Количество белка, кодируемого данным геном, может быть измерено с помощью известных методов, включающих метод SDS-PAGE с последующим иммуноблотингом (Western blotting) и подобные им.

Методами получения плазмидной ДНК, разрезания и лидирования ДНК, трансформации, выбора олигонуклеотидов в качестве праймеров и подобными им могут являться обычные методы, хорошо известные специалисту в данной области. Эти методы описаны, например, в книге Sambrook, J., Fritsch, E.F., and Maniatis, Т., "Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Second Edition", Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989).

Бактерия-продуцент L-аминокислоты

В качестве бактерии согласно настоящему изобретению, модифицированной таким образом, что экспрессия гена pnp ослаблена, может быть использована бактерия, способная к продукции ароматической или неароматической L-аминокислоты.

Бактерия согласно настоящему изобретению может быть получена путем инактивации гена pnp в бактерии, уже обладающей способностью к продукции L-аминокислот. С другой стороны, бактерия согласно настоящему изобретению может быть получена путем придания бактерии, в которой ген pnp уже инактивирован, способности к продукции L-аминокислот.

Бактерия-продуцент L-треонина

Примеры родительского штамма для получения бактерии-продуцента L-треонина согласно настоящему изобретению включают, но не ограничиваются штаммами, принадлежащими к роду Escherichia, такими как штамм Е. coli TDH-6/pVIC40 (ВКПМ В-3996) (патенты США 5175107 и 5705371), штамм Е. coli NRRL-21593 (патент США 5939307), штамм Е. coli FERM ВР-3756 (патент США 5474918), штаммы Е. coli FERM ВР-3519 и FERM BP-3520 (патент США 5376538), штамм Е. coli MG442 (Гусятинер и др. Генетика, 14, 947-956 (1978)), штаммы Е. coli VL643 и VL2055 (Европейская патентная заявка ЕР 1149911 А) и подобные им.

Штамм TDH-6 является дефектным по гену thrC, способен ассимилировать сахарозу и содержит ген ilvA с мутацией типа "leaky". Указанный штамм содержит мутацию в гене rhtA, которая обуславливает устойчивость к высоким концентрациям треонина и гомосерина. Штамм В-3996 содержит плазмиду pVIC40, которая была получена путем введения в вектор, производный от вектора RSF1010, оперона thrA*BC, включающего мутантный ген thrA, кодирующий аспартокиназа-гомосериндегидрогеназу I, у которой существенно снижена чувствительность к ингибированию треонином по типу обратной связи. Штамм В-3996 был депонирован 19 ноября 1987 года во Всесоюзном научном центре антибиотиков (РФ, 117105 Москва, Нагатинская ул., 3-А) с инвентарным номером РИА 1867. Указанный штамм также был депонирован во Всероссийской коллекции промышленных микроорганизмов (ВКПМ) (РФ, 117545 Москва, 1-й Дорожный проезд, 1) с инвентарным номером В-3996.

Предпочтительно, чтобы бактерия согласно настоящему изобретению была далее модифицирована таким образом, чтобы иметь повышенную экспрессию одного или нескольких следующих генов:

- мутантного гена thrA, кодирующего аспартокиназа-гомосериндегидрогеназу I, устойчивую к ингибированию треонином по типу обратной связи;

- гена thrB, кодирующего гомосеринкиназу;

- гена thrC, кодирующего треонинсинтазу;

- гена rhtA, предположительно кодирующего трансмембранный белок;

- гена asd, кодирующего аспартат-р-семиальдегиддегидрогеназу, и

- гена aspC, кодирующего аспартатаминотрансферазу (аспартаттрансаминазу).

Нуклеотидная последовательность гена thrA, кодирующего аспартокиназа-гомосериндегидрогеназу I из Escherichia coli, известна (номера нуклеотидов с 337 по 2799 в последовательности с инвентарным номером NC_000913.2 в базе данных GenBank, gi: 49175990). Ген thrA расположен на хромосоме штамма Е. coli K-12 между генами thrL и thrB. Нуклеотидная последовательность гена thrB, кодирующего гомосеринкиназу из Escherichia coli., известна (номера нуклеотидов с 2801 по 3733 в последовательности с инвентарным номером NC_000913.2 в базе данных GenBank, gi: 49175990). Ген thrB расположен на хромосоме штамма Е. coli K-12 между генами thrA и thrC. Нуклеотидная последовательность гена thrC, кодирующего треонинсинтазу из Escherichia coli, известна (номера нуклеотидов с 3734 по 5020 в последовательности с инвентарньм номером NC_000913.2 в базе данных GenBank, gi: 49175990). Ген thrC расположен на хромосоме штамма Е. coli K-12 между геном thrB и открытой рамкой считывания уааХ. Все три указанных гена функционируют как один треониновый оперон.

Мутантный ген thrA, кодирующий аспартокиназу-гомосериндегидрогеназу I, устойчивую к ингибированию треонином по типу обратной связи, так же, как и гены thrB и thrC, могут быть получены в виде единого оперона из хорошо известной плазмиды pVIC40, которая представлена в штамме-продуценте Е. coli ВКПМ В-3996. Плазмида pVIC40 подробно описана в патенте США 5705371.

Ген rhtA расположен на 18 минуте хромосомы Е. coli около оперона glnHPQ, который кодирует компоненты транспортной системы глутамина, ген rhtA идентичен ORF1 (ген ybiF, номера нуклеотидов с 764 по 1651 в последовательности с инвентарным номером ААА218541 в базе данных GenBank, gi:440181), расположен между генами рехВ и ompX. Участок ДНК, экспрессирующийся с образованием белка, кодируемого рамкой считывания ORF1, был назван геном rhtA (rht: resistance to homoserine and threonine). Также было показано, что мутация rhtA23 представляет собой замену А-на-G в положении -1 по отношению к старт кодону ATG (ABSTRACTS of 17^th International Congress of Biochemistry and Molecular Biology in conjugation with 1997 Annual Meeting of the American Society for Biochemistry and Molecular Biology, San Francisco, California August 24-29,1997, abstract No.457, EP 1013765 A).

Нуклеотидная последовательность гена asd из E.coli известна (номера нуклеотидов с 3572511 по 3571408 в последовательности с инвентарным номером NC_000913.1 в базе данных GenBank, gi: 161313 07) и может быть получена с помощью ПЦР (полимеразная цепная реакция; ссылка на White, T.J. et al., Trends Genet., 5,185 (1989)) с использованием праймеров, синтезированных на основе нуклеотидной последовательности указанного гена. Гены asd из других микроорганизмов могут быть получены сходным образом.

Также нуклеотидная последовательность гена aspC из E.coli известна (номера нуклеотидов с 983742 по 984932 в последовательности с инвентарным номером NC_000913.1 в базе данных GenBank, gi: 16128895) и может быть получена с помощью ПЦР. Гены aspC из других микроорганизмов могут быть получены сходным образом.

Бактерия-продуцент L-лизина

Примеры бактерий-продуцентов L-лизина, принадлежащих к роду Escherichia, включают мутанты, обладающие устойчивостью к аналогу L-лизина. Аналог L-лизина ингибирует рост бактерий, принадлежащих к роду Escherichia, но это ингибирование полностью или частично снимается, когда в среде также присутствует L-лизин. Примеры аналога L-лизина включают, но не ограничиваются оксализином, лизингидроксаматом, S-(2-аминоэтил)-L-цистеином (AEC), γ-метиллизном, α-хлорокапролактамом и так далее. Мутанты, обладающие устойчивостью к указанным аналогам лизина, могут быть получены путем обработки бактерий, принадлежащих к роду Escherichia, традиционными мутагенами. Конкретные примеры бактериальных штаммов, используемых для получения L-лизина, включают штамм Escherichia coli АJ11442 (FERM BP-1543, NRRL В-12185; смотри патент США 4346170) и штамм Escherichia coli VL611. В этих микроорганизмах аспартокиназа устойчива к ингибированию L-лизином по принципу обратной связи.

Штамм WC196 может быть использован в качестве бактерии-продуцента L-лизина Escherichia coli. Данный бактериальный штамм был получен путем селекции фенотипа устойчивости к AEC у штамма W3110, производного от штамма Escherichia coli K-12. Полученный штамм был назван Escherichia coli AJ13069 и был депонирован в Национальном Институте Биологических Наук и Человеческих Технологий, Агенство Промышленной Науки и Технологии (National Institute of Bioscience and Human-Technology, Agency of Industrial Science and Technology), в настоящее время называющийся Национальный Институт Прогрессивной Промышленной Науки и Технологии, Международный Депозитарий Организмов для Целей Патентования, Централ 6, 1-1, Хигаши 1-Чоме, Тсукуба-ши, Ибараки-кен, 305-8566, Япония (National Institute of Advanced Industrial Science and Technology, International Patent Organism Depositary, Central 6,1-1, Higashi 1-Chome, Tsukuba-shi, Ibaraki-ken, 305-8566, Japan), 6 декабря 1994 года и получил инвентарный номер PERM P-14690. Затем было произведено международное депонирование этого штамма согласно условиям Будапештского Договора 29 сентября 1995 года, и штамм получил инвентарный номер PERM BP-5252 (смотри патент США 5827698).

Бактерия-продуцент L-цистеина

Примеры родительских штаммов, используемых для получения бактерии-продуцента L-цистеина согласно настоящему изобретению, включают в себя, но не ограничиваются штаммами, принадлежащими к роду Escherichia, такими как штамм Е. coli JM15, трансформированный различными аллелями гена cysE, кодирующими устойчивые к ингибированию по типу обратной связи серинацетилтрансферазы (патент США 6218168, патентная заявка РФ 2003121601); штамм Е. coli W3110, содержащий гены с повышенной экспрессией, кодирующие белок, способный к секреции соединений, токсичных для клетки (патент США 5972663); штаммы Е. coli, содержащие цистеиндесульфогидразу со сниженной активностью (патент Японии JP 11155571 А2); штамм Е. coli W 3110 с повышенной активностью позитивного транскрипционного регулятора цистеинового регулона, кодируемого геном cysB (международная заявка РСТ WO 0127307 A1) и подобные им.

Бактерия-продуцент L-лейцина

Примеры родительских штаммов, используемых для получения бактерии-продуцента L-лейцина согласно настоящему изобретению, включают в себя, но не ограничиваются штаммами, принадлежащими к роду Escherichia, такими как штаммы Е. coli, устойчивые к аналогам лейцина, включающие, например, β-2-тиенилаланин, 3-гидроксилейцин, 4-азалейцин и 5,5,5-трифлуоролейцин (выложенные патентные заявки Японии 62-34397 и 8-70879), штаммы Е. coli, полученные с помощью генно-инженерных методов, описанных в заявке РСТ 96/06926; Е. coli штамм Н-9068 (JP 08-70879А), и подобные им.

Бактерия согласно настоящему изобретению может быть улучшена путем усиления экспрессии одного или нескольких генов, вовлеченных в биосинтез L-лейцина. Примеры таких генов включают в себя гены оперона leuABCD и предпочтительно представлены мутантным геном leuA, кодирующим изопропилмалатсинтазу со снятым ингибированием L-лейцином по типу обратной связи (патент США 6403342). Кроме того, бактерия согласно настоящему изобретению может быть улучшена путем усиления экспрессии одного или нескольких генов, кодирующих белки, которые экспортируют L-аминокислоту из бактериальной клетки. Примеры таких генов включают в себя гены b2682 и b2683 (гены ygaZH) (патентная заявка РФ 2001117632).

Бактерия-продуцент L-гистидина

Примеры родительских штаммов, используемых для получения бактерии-продуцента L-гистидина согласно настоящему изобретению, включают в себя, но не ограничиваются бактериями-продуцентами L-гистидина, принадлежащими к роду Escherichia, такими как штамм Е. coli 24 (ВКПМ В-5945, патент РФ 2003677); штамм Е. coli 80 (ВКПМ В-7270, патент РФ 2119536); штаммы Е. coli NRRL В-12116 - В12121 (патент США 4388405); штаммы Е. coli H-9342 (FERM ВР-6675) и Н-9343 (PERM ВР-6676) (патент США 6344347); штамм Е. coli H-9341 (FERM BP-6674) (Европейский патент 1085087); штамм Е. coli AI80/pFM201 (патент США 6258554) и подобные им.

Бактерия-продуцент L-глутаминовой кислоты

Примеры родительских штаммов, используемых для получения бактерии-продуцента L-глутаминовой кислоты согласно настоящему изобретению, включают в себя, но не ограничиваются штаммами, принадлежащими к роду Escherichia, такими как штамм Е. coli VL334thrC⁺(Европейский патент ЕР 1172433). Штамм Е. coli VL334 (ВКПМ В-1641) является ауксотрофом по L-изолейцину и L-треонину с мутациями в генах thrC и ilvA (патент США 4278765). В этот штамм была перенесена природная аллель гена thrC методом общей трансдукции с использованием бактериофага Р1, выращенного на клетках природного штамма Е. coli К 12 (ВКПМ В-7). В результате был получен штамм, ауксотроф по L-изолейцину, VL334thrC⁺(ВКПМ В-8961). Этот штамм обладает способностью к продукции L-глутаминовой кислоты.

Примеры родительских штаммов, используемых для получения бактерии-продуцента L-глутаминовой кислоты согласно настоящему изобретению, включают в себя мутантные штаммы, лишенные активности α-кетоглутаратдегидрогеназы или обладающие сниженной активностью α-кетоглутаратдегидрогеназы. Бактерии, принадлежащие к роду Escherichia, лишенные активности α-кетоглутаратдегидрогеназы или обладающие сниженной активностью α-кетоглутаратдегидрогеназы, и способы их получения описаны в патентах США 5378616 и 5573945. Конкретно примеры таких штаммов включают в себя следующие штаммы:

E. coli W3110 sucA::Kmr

Е. coli АJ12624 (FERM ВР-3853)

Е. coli AJ12628 (FERM BP-3854)

Е. coli AJ12949 (FERM BP-4881)

Штамм Е. coli W3110sucA::Kmr был получен в результате разрушения гена α-кетоглутаратдегидрогеназы (далее называемого "ген sucA") в штамме Е. coli W3110. У этого штамма активность α-кетоглутаратдегидрогеназы отсутствует полностью.

Другие примеры бактерии-продуцента L-глутаминовой кислоты включают в себя бактерии, принадлежащие к роду Pantoea, которые лишенны активности α-кетоглутаратдегидрогеназы или имеют сниженную активность α-кетоглутаратдегидрогеназы, и могут быть получены описанным выше способом. Примерами таких штаммов являются штамм Pantoea ananatis AJ1335 6 (патент США 6331419), штамм Pantoea ananatis AJ13356, депонированный в Национальном Институте Биологических Наук и Человеческих Технологий, Агенство Промышленной Науки и Технологии, Министерство Международной Торговли и Промышленности (National Institute of Bioscience and Human-Technology, Agency of Industrial Science and Technology, Ministry of International Trade and Industry), в настоящее время называющийся Национальный Институт Прогрессивной Промышленной Науки и Технологии, Международный Депозитарий Организмов для Целей Патентования, Централ 6,1-1, Хигаши 1-Чоме, Тсукуба-ши, Ибараки-кен, 305-8566, Япония (National Institute of Advanced Industrial Science and Technology, International Patent Organism Depositary, Central 6,1-1, Higashi 1-Chome, Tsukuba-shi, Ibaraki-ken, 305-8566, Japan), 19 февраля 1998 года и получивший инвентарный номер PERM P-16645. Затем было произведено международное депонирование этого штамма согласно условиям Будапештского Договора от 11 января 1999 года, и штамм получил инвентарный номер FERM BP-6615. В штамме Pantoea ananatis AJ13356 отсутствует активность α-KGDH в результате разрушения гена субъединицы αKGDH-E1 (sucA). Вышеупомянутый штамм при выделении был идентифицирован как Enterobacter agglomerans и депонирован как штамм Enterobacter agglomerans АJ13355. Тем не менее, позднее он был классифицирован как Pantoea ananatis на основе нуклеотидной последовательности 16S рРНК и других доказательств (смотри раздел Примеры). Несмотря на то что оба штамма - AJ13355 и полученный из него штамм АJ13356 - были депонированы в указанный выше депозитарий как Enterobacter agglomerans, для целей данного описания они будут упоминаться как Pantoea ananatis.

Бактерия-продуцент L-фенилаланина

Примеры родительских штаммов, используемых для получения бактерии-продуцента L-фенилаланина согласно настоящему изобретению, включают в себя, но не ограничиваются штаммами, принадлежащими к роду Escherichia, такими как штамм E. coli АJ12739 (tyrA::Tn10, tyrR) (ВКМП В-8197); штамм E. coli HW1089 (АТСС-55371), содержащий ген рhеА34 (патент США 5354672); мутантный штамм E. coli MWEC101-b (KR8903681); штаммы E. coli NRRL B-12141, NRRL B-12145, NRRL В-12146 и NRRL В-12147 (патент США 4407952) и подобные им. Также в качестве родительских штаммов могут быть использованы бактерии, принадлежащие к роду Escherichia, - продуценты L-фенилаланина, такие как штамм E.coli K-12[W3110(tyrA)/pPHAB] (FERM BP-3566), штамм E. coli K-12[W3110(tyrA)/pPHAD] (FERM BP-12659), штамм E. coli K-12[W3110(tyrA)/pPHATerm] (FERM BP-12662) и штамм E. coli K-12[W3110(tyrA)/pBR-аrоG4, рАСМАВ], названный как АJ12604 (FERM BP-3579) (Европейский патент ЕР 488424 В1). Кроме того, также могут быть использованы бактерии-продуценты L-фенилаланина, принадлежащие к роду Escherichia с повышенной активностью белков, кодируемых геном yedA или геном yddG (патентные заявки США 2003/0148473 А1 и 2003/0157667 А1).

Бактерия-продуцент L-триптофана

Примеры родительских штаммов, используемых для получения бактерии-продуцента L-триптофана согласно настоящему изобретению, включают в себя, но не ограничиваются бактериями-продуцентами L-триптофана, принадлежащими к роду Escherichia, такими как штаммы E. coli JP 4735/pMU3028 (DSM 10122) и JP 6015/pMU91 (DSM 10123), лишенные активности триптофанил-тРНК синтетазы, кодируемой мутантным геном trpS (патент США 5756345); штамм Е. coli SV 164 (pGH5), содержащий аллель гена serA, кодирующего фермент, не ингибируемый серином по типу обратной связи (патент США 6180373); штаммы Е. coli AGX 17 (pGX 44) (NRRL В-12263) и AGX 6(pGX 50) aroP (NRRL В-12264), лишенные активности триптофаназы (патент США 4371614); штамм Е. coli AGX 17/pGX 50, pACKG4-pps, в котором усилена способность к синтезу фосфоенолпирувата (международная заявка 9708333, патент США 6319696), и подобные им.

Ранее было показано, что природная аллель гена yddG, кодирующего мембранный белок, не участвующий в путях биосинтеза ни одной из L-аминокислот, амплифицированная на многокопийном векторе в микроорганизме, придает этому микроорганизму устойчивость к L-фенилаланину и нескольким аналогам этой аминокислоты. Кроме того, введение в клетки бактерий-продуцентов L-фенилаланина или L-триптофана дополнительных копий гена yddG может положительно влиять на продукцию соответствующих аминокислот (международная заявка РСТ WO 03044192). Таким образом, желательно, чтобы бактерия-продуцент L-триптофана была далее модифицирована таким образом, что в этой бактерии усилена экспрессия открытой рамки считывания yddG.

Бактерия-продуцент L-пролина

Примеры бактерий-продуцентов L-пролина, используемых в качестве родительского штамма согласно настоящему изобретению, включают в себя, но не ограничиваются штаммами, принадлежащими к роду Escherichia, такими как штамм Е. coli 702 ilνA (ВКПМ В-8012), дефицитного по гену ilνA и способного к продукции L-пролина (Европейский патент ЕР 1172433). Бактерия согласно настоящему изобретению может быть улучшена путем усиления экспрессии одного или нескольких генов, вовлеченных в биосинтез L-пролина. Предпочтительно примеры таких генов для бактерий-продуцентов L-пролина, включают ген proB, кодирующий глутаматкиназу с десенсибилизированной регуляцией L-пролином по типу обратной связи (патент Германии 3127361). Кроме того, бактерия согласно настоящему изобретению может быть улучшена путем усиления экспрессии одного или нескольких генов, кодирующих белки, экскретирующие L-аминокислоту из бактериальной клетки. Примерами таких генов являются гены b2682 и b2683 (ygaZH гены) (Европейская патентная заявка ЕР 1239041 А2).

Примеры бактерий, принадлежащих к роду Escherichia и обладающих способностью к продукции L-пролина, включают следующие штаммы Е. coli: NRRL В-12403 и NRRL В-12404 (патент Великобритании GB 2075056), ВКПМ В-8012 (патентная заявка РФ 2000124295), плазмидные мутанты, описанные в патенте Германии DE 3127361, плазмидные мутанты, описанные у Bloom F.R. et al (The 15^th Miami winter symposium, 1983, p.34), и подобные им.

Бактерия-продуцент L-аргинина

Примеры родительских штаммов, используемых для получения бактерии-продуцента L-аргинина согласно настоящему изобретению, включают в себя, но не ограничиваются штаммами, принадлежащими к роду Escherichia, такими как штамм Е. coli 237 (ВКПМ В-7925) (патентная заявка США US 2002058315) и его производные, содержащие мутантную N-ацетилглутаматсинтазу (патентная заявка РФ 2001112869), штамм Е. coli 382 (ВКПМ В-7926) (Европейская патентная заявка ЕР 1170358), штамм-продуцент аргинина, в который введен ген argA, кодирующий N-ацетилглутаматсинтетазу (выложенная патентная заявка Японии 57-5693 А), и подобные им.

2. Способ согласно настоящему изобретению.

Способом согласно настоящему изобретению является способ получения L-аминокислоты, включающий стадии выращивания бактерии согласно настоящему изобретению в питательной среде с целью продукции и накопления L-аминокислоты в питательной среде, и выделения L-аминокислоты из культуральной жидкости.

Согласно настоящему изобретению выращивание, выделение и очистка L-аминокислоты из культуральной или подобной ей жидкости может быть осуществлена способом, подобным традиционным способам ферментации, в которых аминокислота продуцируется с использованием бактерии.

Питательная среда, используемая для выращивания, может быть как синтетической, так и натуральной, при условии, что указанная среда содержит источники углерода, азота, минеральные добавки и, если необходимо, соответствующее количество питательных добавок, необходимых для роста микроорганизмов. К источникам углерода относятся различные углеводы, такие как глюкоза и сахароза, а также различные органические кислоты. В зависимости от характера ассимиляции используемого микроорганизма могут использоваться спирты, такие как этанол и глицерин. В качестве источника азота могут использоваться различные неорганические соли аммония, такие как аммиак и сульфат аммония, другие соединения азота, такие как амины, природные источники азота, такие как пептон, гидролизат соевых бобов, ферментолизат микроорганизмов. В качестве минеральных добавок могут использоваться фосфат калия, сульфат магния, хлорид натрия, сульфат железа, сульфат марганца, хлорид кальция и подобные им соединения. В качестве витаминов могут использоваться тиамин, дрожжевой экстракт и подобные им соединения.

Выращивание осуществляется предпочтительно в аэробных условиях, таких как перемешивание культуральной жидкости на качалке, взбалтывание с аэрацией, при температуре в пределах от 20 до 40°С, предпочтительно в пределах от 30 до 38°С. рН среды поддерживают в пределах от 5 до 9, предпочтительно от 6.5 до 7.2. рН среды может регулироваться аммиаком, карбонатом кальция, различными кислотами, основаниями и буферными растворами. Обычно выращивание в течение от 1 до 5 дней приводит к накоплению целевой L-аминокислоты в культуральной жидкости.

После выращивания твердые остатки, такие как клетки, могут быть удалены из культуральной жидкости методом центрифугирования или фильтрацией через мембрану, а затем L-аминокислота может быть выделена и очищена методами ионообменной хроматографии, концентрирования и/или кристаллизации.

Краткое описание чертежей

На Фиг.1 изображено конструирование плазмиды pMW 118-attL-Cm-attR, используемой в качестве матрицы для ПЦР.

На Фиг.2 изображены относительные положения праймеров Р17 и Р18 на плазмиде pMW 118-attL-Cm-attR, используемой для ПЦР-амплификации гена cat.

На Фиг.3 изображено конструирование фрагмента хромосомной ДНК, содержащего инактивированный ген pnp.

Примеры

Настоящее изобретение будет более подробно описано ниже со ссылкой на следующие неограничивающие настоящее изобретение Примеры.

Пример 1. Конструирование ПЦР-матрицы и хелперных плазмид

Плазмида pMW 118-attL-Cm-attR, используемая в качестве матрицы для ПЦР, и хелперная плазмида pMW-intxis-ts были получены, как описано ниже. (1) pMW 118-attL-Cm-attR

Плазмида pMWl 18-attL-Cm-attR была сконструирована на основе плазмиды pMW 118-attL-Tc-attR, полученной путем сшивки следующих четырех фрагментов ДНК:

1) фрагмента BglII-EcoRl (114 п.н.), несущего attL (SEQ ID NO: 3), который был получен путем ПЦР-амплификации соответствующего участка хромосомы штамма Е. coli W 3350 (содержащего профаг λ,) с использованием олигонуклеотидов Р1 и Р2 (SEQ ID NOS: 4 и 5) в качестве праймеров (данные праймеры содержали дополнительные сайты узнавания для рестриктаз BglII и EcoRI);

2) фрагмента PstI-HindIII (182 п.н.), несущего attR (SEQ ID NO: 6), который был получен путем ПЦР-амплификации соответствующего участка хромосомы штамма Е. coli W 3350 (содержащего профаг λ) с использованием олигонуклеотидов Р3 и Р4 (SEQ ID NOS: 7 и 8) в качестве праймеров (данные праймеры содержали дополнительные сайты узнавания для рестриктаз PstI и HindIII);

3) большого фрагмента BglII-HindIII (3916 п.н.) плазмиды pMW 118-ter_rrnB. Плазмида pMW 118-ter_rrnB была получена путем сшивки следующих трех фрагментов ДНК:

- большого ДНК-фрагмента (2359 п.н.), несущего фрагмент AatII-EcoRI плазмиды pMW 118, полученный следующим способом: pMW 118 расщепляли с помощью рестриктазы EcoRI, обрабатывали с помощью фрагмента Кленова ДНК-полимеразы I (Klenow fragment of DNA polymerase I), а затем расщепляли с помощью рестриктазы AatII;

- малого фрагмента AatII-BglII (1194 п.н.) плазмиды pUC 19, несущего ген устойчивости к ампициллину bla (Ар^R), который был получен путем ПЦР-амплификации соответствующего участка плазмиды pUC 19 с использованием олигонуклеотидов Р5 и Р6 (SEQ ID NOS: 9 и 10) в качестве праймеров (данные праймеры содержали дополнительные сайты узнавания для рестриктаз AatII и BglII);

- малого фрагмента BglII-PstIpol (363 п.н.) терминатора транскрипции ter_rrnB, полученного ПЦР-амплификацией соответствующего участка хромосомы штамма Е. coli MG 1655, используя олигонуклеотиды Р7 и Р8 (SEQ ID NOS: 11 и 12) в качестве праймеров (данные праймеры содержали дополнительные сайты узнавания для рестриктаз BglII и PstI);

4) малого фрагмента EcoRI-PstI (1388 п.н.) (SEQ ID NO: 13) плазмиды pML-Тс-ter_thrL, несущей ген устойчивости к тетрациклину и терминатор транскрипции ter_thrL; плазмида pML-Tc-ter_thrL была получена в два этапа:

- плазмида pML-ter_thrL была получена путем расщепления плазмиды pML-MCS (Mashko, S.V. et al., Biotekhnologiya (in Russian), 2001, no.5,3-20) с помощью рестриктаз XbaI and BamHI и последующей сшивки большого фрагмента (3342 п.н.) и фрагмента XbaI-BamHI (68 п.н.), несущего терминатор ter_thrL и полученного путем ПЦР-амплификации соответствующего участка хромосомы штамма Е. coli MG 1655 с использованием олигонуклеотидов Р9 и Р10 (SEQ ID NOS: 14 и 15) в качестве праймеров (данные праймеры содержали дополнительные сайты узнавания для рестриктаз XbaI и BamHI);

- плазмида pML-Tc-ter_thrL была получена путем расщепления плазмиды pML-ter_thrL с помощью рестриктаз KpnI и XbaI и последующей обработки с помощью фрагмента Кленова ДНК-полимеразы I (Klenow fragment of DNA polymerase I) и сшивки с малым фрагментом EcoRI-Van91I (1317 п.н.) плазмиды pBR322, несущей ген устойчивости к тетрациклину (pBR322 расщепляли с помощью рестриктаз EcoRI и Van9lI и затем обрабатывали с помощью фрагмента Кленова ДНК-полимеразы I);

Плазмида pMW118-attL-Cm-attR была сконструирована путем сшивки большого фрагмента BamHI-XbaI (4413 п.н.) плазмиды pMW118-attL-Tc-attR и синтетического DNA-фрагмента BglII-XbaI (1162 п.н.), содержащего промотор Р_А2 (ранний промотор фага Т7), ген устойчивости к хлорамфениколу cat (Cm^R), терминатор транскрипции ter_thrL и участок attR. Синтетический DNA-фрагмент (SEQ ID NO: 16) был получен следующим образом:

1. Плазмиду pML-MCS расщепляли при помощи рестриктаз KpnI и XbaI и сшивали с малым фрагментом KpnI-XbaI (120 п.н.), содержащим промотор Р_A2 (ранний промотор фага Т7) и полученным путем ПЦР-амплификации соответствующего участка ДНК фага Т7 с использованием олигонуклеотидов Р11 и Р12 (SEQ ID NOS: 17 и 18 соответственно) в качестве праймеров (данные праймеры содержали дополнительные сайты узнавания для рестриктаз KpnI и XbaI). В результате была получена плазмида pML-Р_A2-MCS.

2. Сайт XbaI был удален из плазмиды pML-Р_A2-MCS, в результате чего была получена плазмида pML-P_A2-MCS(XbaI^-).

3. Малый фрагмент BglII-HindIII (928 п.н.) плазмиды pML-P_A2-MCS(Xbal^-), содержащий промотор Р_А2 (ранний промотор фага Т7) и ген устойчивости к хлорамфениколу cat (Cm^R), был сшит с малым фрагментом HindIII-HindIII (234 п.н.) плазмиды pMW118-attL-Tc-attR, содержащим терминатор транскрипции ter_thrL и участок attR.

4. Синтетический DNA-фрагмент (1156 п.н.) был получен путем ПЦР-амплификации лигированной смеси с использованием олигонуклеотидов Р9 и Р4 (SEQ ID NOS: 14 и 8) в качестве праймеров (данные праймеры содержали дополнительные сайты узнавания для рестриктаз HindIII и XbaI).

(2) pMW-intxis-ts

Рекомбинантная плазмида pMW-intxis-ts, содержащая ген-репрессор cI и гены int-xis фага λ под контролем промотора P_R, была сконструирована на основе вектора pMWP_laclacI-ts. Вектор pMWP_laclacI-ts был получен путем замещения фрагмента AatII-EcoRV плазмиды pMWP_laclacI (Skorokhodova, A. Yu. et al., Biotekhnologiya (in Russian), 2004, no.5, 3-21) на фрагмент AatII-EcoRV плазмиды pMAN997 (Tanaka, К. et al., J. Bacteriol., 2001, 183 (22): 6538-6542), несущий локусы par и ori, а также ген repA^ts репликона pSC101.

Два ДНК-фрагмента были амплифицированы с использованием ДНК фага λ ("Fermentas") в качестве матрицы. Первый ДНК-фрагмент содержал последовательность ДНК с 37168 по 38046 нуклеотид, ген-репрессор cI, промоторы Р_RM и P_R и лидерную последовательность гена cro. Данный ДНК-фрагмент был амплифицирован с помощью ПЦР с использованием олигонуклеотидов Р13 и Р14 (SEQ ID NOS: 19 и 20) в качестве праймеров. Второй ДНК-фрагмент, содержащий гены xis-int фага λ. и последовательность DNA с 27801 по 29100 нуклеотид, был амплифицирован с помощью ПЦР с использованием олигонуклеотидов Р15 и Р16 (SEQ ID NOS: 21 и 22) в качестве праймеров. Все праймеры содержали соответствующие рестрикционные сайты.

Первый ДНК-фрагмент, полученный с помощью ПЦР-амплификации и несущий ген-репрессор cI, был расщеплен с помощью рестриктазы ClaI, обработан с помощью фрагмента Кленова ДНК-полимеразы I (Klenow fragment of DNA polymerase I) и затем расщеплен с помощью рестриктазы EcoRI. Второй ДНК-фрагмент, полученный с помощью ПЦР-амплификации, был расщеплен с помощью EcotRI и PstI. Плазмида pMWP_laclacI-ts была расщеплена с помощью рестриктазы BglII, обработана с помощью фрагмента Кленова ДНК-полимеразы I (Klenow fragment of DNA polymerase I) и затем расщеплена с помощью рестриктазы PstI. Векторный фрагмент плазмиды pMWP_laclacI-ts был элюирован из агарозного геля и сшит с двумя вышеупомянутыми ДНК-фрагментами, в результате чего была получена рекомбинантная плазмида pMW-intxis-ts.

Пример 2. Конструирование штамма с инактивированным геном pnp

1. Делеция гена pnp

Штамм, содержащий делецию гена pnp, был сконструирован с использованием методики, разработанной Datsenko, K.A. и Wanner, B.L. (Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2000, 97 (12), 6640-6645), известной как "Red-зависимая интеграция". Фрагмент ДНК, содержащий маркер Cm^R, кодируемый геном cat, был получен при помощи ПЦР с использованием праймеров Р17 (SEQ ID NO: 23) и P18 (SEQ ID NO: 24) и плазмиды pMW118-attL-Cm-attR в качестве матрицы (конструирование плазмиды описано в Примере 1). Праймер Р17 содержит участок ДНК размером в 36 н., комплементарный участку ДНК, расположенному на 5′-конце гена pnp, а также участок ДНК, комплементарный участку attL. Праймер Р18 содержит участок ДНК размером в 35 н., комплементарный участку ДНК, расположенному на 3′-конце гена pnp, а также участок ДНК, комплементарный участку attR. Использовали следующий температурный профиль для ПЦР: денатурация при 95°С в течение 3 мин; два первых цикла: 1 мин при 95°С, 30 сек при 50°С, 40 сек при 72°С; последующие 25 циклов: 30 сек при 95°С, 30 сек при 54°С, 40 сек при 72°С; и заключительная полимеризация: 5 мин при 72°С.

Полученный ПЦР-продукт длиной 1699 п.н. (Фиг.2), очищенный в агарозном геле, был использован для электропорапии в штамм Е. coli MG1655 (АТСС 700926), содержащий плазмиду pKD46 с термочувствительным репликоном. Плазмида pKD46 (Datsenko, K.A. and Wanner, B.L., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2000, 97 (12): 6640-6645) содержит ДНК-фрагмент фага λ длиной 2154 п.н. (позиции с 31088 по 33241 нуклеотидной последовательности с инвентарным номером J 02459 в базе данных GenBank), а также содержит гены λ Red-гомологичной системы рекомбинации (гены γ, β, ехо) под контролем промотора Р_araB, индуцируемого арабинозой. Плазмида pKD46 необходима для интеграции продукта ПЦР в хромосому штамма MG1655.

Электрокомпетентные клетки были получены следующим образом: ночную культуру штамма Е. coli MG1655 выращивали при 30°С в среде LB с добавкой ампициллина (100 мг/л), разводили в 100 раз, добавив 5 мл среды SOB (Sambrook et al, "Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Second Edition", Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989), содержащей ампициллин и L-арабинозу (1 мМ). Полученную культуру растили с перемешиванием при 30°С до достижения OD₆₀₀≈0.6, после чего делали клетки электрокомпетентными, путем концентрирования в 100 раз и трехкратного отмывания ледяной деионизированной H₂O. Электропорацию проводили с использованием 70 мкл клеток и ≈100 нг ПЦР-продукта. После электропорации клетки инкубировали в 1 мл среды SOC (Sambrook et al, "Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Second Edition", Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989) при 37°С в течение 2.5 часов, после чего высевали на чашки с L-агаром и выращивали при 37°С для отбора Cm^R-рекомбинантов. Затем для удаления плазмиды pKD46 проводили 2 пассажа на L-агаре с Cm при 42°С, и полученные колонии проверяли на чувствительность к ампициллину.

2. Подтверждение делеции гена pnp с помощью ПЦР.

Мутанты с делетированным геном pnp, содержащие ген устойчивости Cm, были проверены с помощью ПЦР. Локус-специфичные праймеры Р19 (SEQ ID NO: 25) и Р20 (SEQ ID NO: 26) были использованы для проверки делеции с помощью ПЦР. Использовался следующий температурный профиль для ПЦР-проверки: денатурация при 94°С в течение 3 мин; профиль для 30 циклов: 30 сек при 94°С, 30 сек при 54°С, 1 мин при 72°С; заключительный шаг: 7 мин при 72°С. Длина продукта ПЦР, полученного в результате реакции с использованием в качестве матрицы клеток родительского штамма pnp⁺ MG1655, составляет 2301 п.н. Длина продукта ПЦР, полученного в результате реакции с использованием в качестве матрицы клеток мутантного штамма MG1655 Δpnp::cat, составляет 1796 п.н. (Фиг.3).

Пример 3. Продукция L-треонина штаммом Е. coli В-3996-Δpnp.

Для оценки влияния инактивации гена pnp на продукцию треонина ДНК-фрагменты хромосомы описанного выше штамма Е. coli MG1655 Δpnp::cat были перенесены в штамм-продуцент L-треонина Е. coli В-3996 (ВКПМ В-3996) с помощью P1-трансдукции (Miller, J.H. (1972) Experiments in Molecular Genetics, Cold Spring Harbor Lab. Press, Plainview, NY).

Оба штамма Е. Coli, B-3996 и В-3996-Δpnp, были выращены в течение 18-24 часов при температуре 37°С на чашках с L-агаром, содержащим хлорамфеникол (30 мкг/мл). Для получения посевной культуры указанные штаммы были выращены при 32°С в течение 18 часов на роторной качалке (250 об/мин) в пробирках размером 20×200 мм, содержащих 2 мл L-бульона с 4% сахарозой. Затем в ферментационную среду было внесено по 0.21 мл (10%) посевной культуры. Ферментация была проведена в 2 мл минимальной ферментационной среды в пробирках размером 20×200 мм. Клетки были выращены в течение 65 часов при 32°С с перемешиванием (250 об/мин).

После выращивания количество накопленного в среде L-треонина было определено с помощью бумажной хроматографии с использованием подвижной фазы следующего состава: бутанол : уксусная кислота : вода=4:1:1 (v/v). Раствор (2%) нингидрина в ацетоне был использован для визуализации. Пятно, содержащее L-треонин, было вырезано; L-треонин был элюирован 0.5% водным раствором CdCl₂, после чего количество L-треонина было оценено спектрофотометрическим методом при длине волны 540 нм. Результаты десяти независимых пробирочных ферментации приведены в Таблице 1. Как следует из Таблицы 1, штамм В-3996-Δpnp накапливал большее количество L-треонина по сравнению со штаммом В-3996.

Была использована ферментационная среда следующего состава (г/л):

Глюкоза80.0(NH₄)₂SO₄22.0NaCl0.8КН₂PO₄2.0MgSO₄x7H₂O0.8FeSCO₄x7H₂O0.02MnSO₄x5Н₂O0.02Тиамин гидрохлорид0.0002Дрожжевой экстракт1.0СаСО₃30.0

Глюкозу и сульфат магния стерилизовали отдельно. СаСО₃ стерилизовали сухим жаром при 180°С в течение 2 часов. рН доводили до 7.0. Антибиотик добавляли в среду после стерилизации.

Пример 4. Продукция L-лизина штаммом Е. coli АJ11442-Δpnp.

Для оценки влияния инактивации гена pnp на продукцию лизина ДНК-фрагменты хромосомы описанного выше штамма Е. coli MG1655 Δpnp::cat могут быть перенесены в штамм-продуцент L-лизина Е. coli WC196 (pCABD2) с помощью P1-трансдукции (Miller, J.H. (1972) Experiments in Molecular Genetics, Cold Spring Harbor Lab. Press, Plainview, NY). pCABD2 - это плазмида, содержащая ген dapA, кодирующий мутантную дигидропиколинатсинтазу, устойчивую к ингибированию L-лизином по типу обратной связи, ген lysC, кодирующий мутантную аспартокиназу III, устойчивую к ингибированию L-лизином по типу обратной связи, ген dapB, кодирующий дигидропиколинатредуктазу, и ген ddh, кодирующий диаминопимелатдегидрогеназу (патент США 6040160).

Оба штамма Е. coli, WC196(pCABD2) и WC196(pCABD2)-Δpnp, могут быть выращены в L-среде, содержащей 50 мг/л хлорамфеникола и 20 мг/л стрептомицина, при 37°С; и 0.3 мл полученных культур может быть внесено в 20 мл ферментационной среды, содержащей необходимые антибиотики, в колбы объемом 500 мл. Культивирование может производиться при 37°С в течение 16 часов с использованием возвратно-поступательной качалки со скоростью перемешивания 115 об/мин. После выращивания количество L-лизина и остаточной глюкозы в среде может быть измерено известным способом (Biotech-analyzer AS210, производитель- Sakura Seiki Co.). Затем для каждого из штаммов может быть рассчитан выход L-лизина в пересчете на потребленную глюкозу.

Может быть использована ферментационная среда следующего состава (г/л):

Глюкоза40(NH₄)₂SO₄24К₂HPO₄1.0MgSO₄×7H₂O1.0FeSO₄×7Н₂О0.01MnSO₄×5H₂O0.01Дрожжевой экстракт2.0

рН доводят до 7.0 с помощью КОН, и среду автоклавируют при 115°С в течение 10 мин. Глюкозу и MgSO₄×7H₂O стерилизуют отдельно. Также добавляют СаСО₃ до концентрации 30 г/л, предварительно простерилизованного сухим жаром при 180°С в течение 2 часов.

Пример 5. Продукция L-цистеина штаммом Е. coli JM15(ydeD)-Δpnp.

Для оценки влияния инактивации гена pnp на продукцию L-цистеина ДНК-фрагменты хромосомы описанного выше штамма Е. coli MG1655 Δpnp::cat могут быть перенесены в штамм-продуцент L-цистеина Е. coli JM15(ydeD) с помощью Р1-трансдукции (Miller, J.H. (1972) Experiments in Molecular Genetics, Cold Spring Harbor Lab. Press, Plainview, NY), в результате чего может быть получен штамм JM15(ydeD)-Δpnp.

Штамм Е. coli JM15(ydeD) является производным штамма Е. coli JM15 (патент США 6218168), который может быть трансформирован ДНК, содержащей ген ydeD, кодирующий мембранный белок, не вовлеченный в пути биосинтеза ни одной из L-аминокислот (патент США 5972663).

Условия ферментации для оценки продукции L-цистеина детально описаны в Примере 6 патента США 6218168.

Пример 6. Продукция L-лейцина штаммом Е. coli 57-Δpnp.

Для оценки влияния инактивации гена pnp на продукцию L-лейцина ДНК-фрагменты хромосомы описанного выше штамма Е. coli MG1655 Δpnp::cat могут быть перенесены в штамм-продуцент L-лейцина Е. coli 57 (ВКПМ В-7386, патент США 6124121) с помощью P1-трансдукции (Miller, J.H. (1972) Experiments in Molecular Genetics, Cold Spring Harbor Lab. Press, Plainview, NY), в результате чего может быть получен штамм 57-pMW-Δpnp.

Оба штамма Е. coli, 57 и 57-Δpnp, могут быть выращены в течение 18-24 часов при температуре 37°С на чашках с L-агаром, содержащим хлорамфеникол (30 мкг/мл). Для получения посевной культуры указанные штаммы могут быть выращены на роторной качалке (250 об/мин) при 32°С в течение 18 часов в пробирках размером 20×200 мм, содержащих 2 мл L-бульона с 4% сахарозы. Затем в ферментационную среду может быть внесено по 0.21 мл (10%) посевной культуры. Ферментацию можно проводить в 2 мл минимальной ферментационной среды в пробирках размером 20×200 мм. Клетки могут быть выращены в течение 48-72 часов при 32°С с перемешиванием (250 об/мин). Количество L-лейцина может быть измерено с помощью бумажной хроматографии (состав подвижной фазы: бутанол - уксусная кислота - вода =4:1:1).

Может быть использована ферментационная среда (рН 7.2) следующего состава (г/л):

Глюкоза60.0(NH₄)₂SO₄25.0К₂HPO₄2.0MgSO₄×7H₂O1.0Тиамин0.01СаСО₃25.0

Глюкозу и мел стерилизуют отдельно.

Пример 7. Продукция L-гистидина штаммом Е. coli 80-Δpnp.

Для оценки влияния инактивации гена pnp на продукцию L-гистидина ДНК-фрагменты хромосомы описанного выше штамма Е. coli MG 1655 Δpnp::cat могут быть перенесены в штамм-продуцент L-гистидина Е. coli 80 с помощью P1-трансдукции (Miller, J.H. (1972) Experiments in Molecular Genetics, Cold Spring Harbor Lab. Press, Plainview, NY). Штамм 80 описан в патенте РФ 2119536 и депонирован во Всероссийской коллекции промышленных микроорганизмов (Россия, 117545 Москва, 1-ый Дорожный проезд, 1) с инвентарным номером ВКПМ В-7270.

Оба штамма Е. coli, 80 и 80-Δpnp, могут быть выращены в L-бульоне, содержащем хлорамфеникол (30 мг/мл), при 29°С в течение 6 часов. Затем 0.1 мл полученных культур может быть внесено в 2 мл ферментационной среды в пробирки размером 20×200 мм, и культуры могут быть выращены при 29°С в течение 65 часов на роторной качалке (350 об/мин). После выращивания количество накопленного в среде гистидина может быть определено с помощью бумажной хроматографии. Может быть использована подвижная фаза следующего состава: n-бутанол - уксусная кислота - вода=4:1:1 (v/v). Раствор нингидрина (0.5%) в ацетоне может быть использован для визуализации.

Может быть использована ферментационная среда (рН 6.0) следующего состава (г/л):

Глюкоза100.0Мамено0.2 общего азотаL-пролин1.0(NH₄)₂SO₄25.0КН₂PO₄2.0MgSO₄×7H₂O1.0FeSO₄×7H₂O0.01MnSO₄0.01Тиамин0.001Бетаин2.0СаСО₃60.0

Глюкозу, пролин, бетаин и СаСО₃ стерилизуют отдельно. рН доводят до 6.0 перед стерилизацией.

Пример 8. Продукция L-глутаминовой кислоты штаммом Е. coli VL334thrC⁺-Δpnp.

Для оценки влияния инактивации гена pnp на продукцию L-глутаминовой кислоты ДНК-фрагменты хромосомы описанного выше штамма Е. coli MG1655 Δpnp::cat могут быть перенесены в штамм-продуцент L-глутаминовой кислоты Е. VL334thгC⁺ (ЕР 1172433) с помощью P1-трансдукции (Miller, J.H. (1972) Experiments in Molecular Genetics, Cold Spring Harbor Lab. Press, Plainview, NY), в результате чего может быть получен штамм VL334thrC⁺-Δpnp.

Оба штамма, VL334thrC⁺ и VL334thrC⁺-Δpnp, могут быть выращены на чашках с L-агаром, содержащим хлорамфеникол (30 мкг/мл), при 37°С в течение 18-24 часов. Далее одна петля клеток может быть перенесена в пробирки, содержащие 2 мл ферментационной среды. Ферментационная среда может содержать глюкозу - 60 г/л, сульфат аммония - 25 г/л, КН₂PO₄ - 2 г/л, MgSO₄ -1 г/л, тиамин - 0.1 мг/мл, L-изолейцин - 70 мкг/мл и мел - 25 г/л (рН 7.2). Глюкозу и мел стерилизуют отдельно. Выращивание может производиться при 30°С в течение 3 дней с перемешиванием. После выращивания количество полученной L-глутаминовой кислоты может быть определено с помощью бумажной хроматографии (состав подвижной фазы: бутанол-уксусная кислота-вода =4:1:1) с последующим окрашиванием нингидрином (1% раствор в ацетоне) и дальнейшим элюированием полученных соединений в 50% этаноле с 0.5% CdCl₂.

Пример 9. Продукция L-фенилаланина штаммом Е. coli AJ12739-Δpnp.

Для оценки влияния инактивации гена pnp на продукцию L-фенилаланина_ДНК-фрагменты хромосомы описанного выше штамма Е. coli MG1655 Δpnp::cat могут быть перенесены в штамм-продуцент L-фенилаланина Е. coli AJ1273 9 с помощью Р1-трансдукции (Miller, J.H. (1972) Experiments in Molecular Genetics, Cold Spring Harbor Lab. Press, Plainview, NY). Штамм АJ12739 депонирован во Всероссийской коллекции промышленных микроорганизмов (ВКПМ) (Россия, 117545 Москва, 1^ый Дорожный проезд, 1) 6 ноября 2001 года с инвентарным номером ВКПМ В-8197.

Оба штамма, AJ12739 и АJ12739-Δpnp, могут быть выращены при 37°С в течение 18 часов в питательном бульоне, содержащем хлорамфеникол (30 мкг/мл); 0.3 мл полученных культур может быть внесено в 3 мл ферментационной среды в пробирки размером 20×200 мм, и культуры могут быть выращены при 37°С в течение 48 часов на роторной качалке. По окончании ферментации количество накопленного в среде фенилаланина может быть определено с помощью тонкослойной хроматографии (TLC). Для этой цели могут быть использованы TLC-пластинки размером 10×15 см, покрытые 0.11 мм - слоем силикагеля Сорбфил без флуоресцентного индикатора (Акционерное Общество Сорбполимер, Краснодар, Россия). Пластинки Сорбфил могут быть экспонированы в подвижной фазе следующего состава: пропан-2-ол: этилацетат: 25% водного аммиака: вода =40:40:7:16 (v/v). Раствор (2%) нингидрина в ацетоне может быть использован для визуализации.

Может быть использована ферментационная среда следующего состава (г/л):

Глюкоза40.0(NH₄)₂SO₄16.0К₂HPO₄0.1MgSO₄×7H₂O1.0FeSO₄×7H₂O0.01MnSO₄×5H₂O0.01Тиамин HCl0.0002Дрожжевой экстракт2.0Тирозин0.125СаСО₃20.0

Глюкозу и сульфат магния стерилизуют отдельно. СаСО₃ стерилизуют сухим жаром при 180°С в течение 2 часов. рН доводят до 7.0.

Пример 10. Продукция L-триптофана штаммом Е. coli SV164 (pGH5)-Δpnp.

Для оценки влияния инактивации гена pnp на продукцию L-триптофана ДНК-фрагменты хромосомы описанного выше штамма Е. coli MG1655 Δpnp::cat могут быть перенесены в штамм-продуцент L-триптофана Е. coli SV164 (pGH5) с помощью Р1-трансдукции (Miller, J.H. (1972) Experiments in Molecular Genetics, Cold Spring Harbor Lab. Press, Plainview, NY). Штамм SV164 (pGH5) подробно описан в патенте США 6180373 или Европейском патенте 0662143.

Оба штамма, SV164(pGH5) и SV164(pGH5)-Δpnp, могут быть выращены с перемешиванием при 37°С в течение 18 часов в 3 мл питательного бульона с добавлением тетрациклина (маркера плазмиды pGH5, 20 мг/мл) и хлорамфеникола (30 мкг/мл). По 0.3 мл полученных культур может быть внесено в 3 мл ферментационной среды, содержащей тетрациклин (20 мг/мл), в пробирках размером 20×200 мм; и культуры могут быть выращены при 37°С в течение 48 часов на роторной качалке при 250 об/мин. После выращивания количество накопленного в среде триптофана может быть определено с помощью TLC, как описано в Примере 8. Компоненты ферментационной среды, которая может быть использована, представлены в Таблице 2; группы компонентов А, В, С, D, Е, F и Н стерилизуют отдельно, как и показано в Таблице 2, чтобы избежать нежелательных взаимодействий во время стерилизации.

Пример 11. Продукция L-пролина штаммом Е. coli 702ilvA-Δpnp.

Для оценки влияния инактивации гена pnp на продукцию L-пролина ДНК-фрагменты из хромосомы описанного выше штамма Е. coli MG1655 Δpnp::cat могут быть перенесены в штамм-продуцент L-пролина Е. coli 702ilvA с помощью Р1-трансдукции (Miller, J.H. (1972) Experiments in Molecular Genetics, Cold Spring Harbor Lab. Press, Plainview, NY). Штамм 702ilvA депонирован во Всероссийской коллекции промышленных микроорганизмов (ВКПМ) (Россия, 117545 Москва, 1^ый Дорожный проезд, 1) с инвентарным номером ВКПМ В-8012.

Оба штамма Е. Coli, 702ilvA и 702ilvA-Δpnp, могут быть выращены в течение 18-24 часов при температуре 37°С на чашках с L-агаром, содержащим хлорамфеникол (30 мкг/мл). Затем ферментация с использованием этих штаммов может производиться в тех же условиях, как описано в Примере 8.

Пример 12. Продукция L-аргинина штаммом Е. coli 382-Δpnp.

Для оценки влияния инактивации гена pnp на продукцию L-аргинина ДНК-фрагменты хромосомы описанного выше штамма Е. coli MG1655 Δpnp::cat могут быть перенесены в штамм-продуцент L-аргинина Е. coli 382 с помощью P1-трансдукции (Miller, J.H. (1972) Experiments in Molecular Genetics, Cold Spring Harbor Lab. Press, Plainview, NY). Штамм 382 депонирован во Всероссийской коллекции промышленных микроорганизмов (ВКПМ) (Россия, 117545 Москва, 1^ый Дорожный проезд, 1) 10 апреля 2000 года с инвентарным номером ВКПМ В-7926.

Оба штамма, 382 и 382-Δpnp, могут быть выращены с перемешиванием при 37°С в течение 18 часов в 3 мл питательного бульона, содержащего хлорамфеникол (30 мг/мл); по 0.3 мл полученных культур может быть внесено в 3 мл ферментационной среды в пробирки размером 20×200 мм, и культуры могут быть выращены при 32°С в течение 48 часов на роторной качалке.

После выращивания количество накопленного в среде L-аргинина может быть определено с помощью бумажной хроматографии, при этом может быть использован следующий состав подвижной фазы : бутанол : уксусная кислота: вода =4:1:1 (v/v). Раствор нингидрина (2%) в ацетоне может быть использован для визуализации. Пятно, содержащее L-аргинин, может быть вырезано; L-аргинин может быть элюирован 0.5% водным раствором CdCl₂, после чего количество L-аргинина может быть определено спектрофотометрическим методом при длине волны 540 нм.

Может быть использована ферментационная среда следующего состава (г/л):

Глюкоза48.0(NH₄)₂SO₄35.0КН₂PO₄2.0MgSO₄×7H₂O1.0Тиамин HCl0.0002Дрожжевой экстракт1.0L-изолейцин0.1СаСО₃5.0

Глюкозу и сульфат магния стерилизуют раздельно. СаСО₃ стерилизуют сухим жаром при 180°С в течение 2 часов. рН доводят до 7.0.

Пример 13. Удаление гена устойчивости Cm (гена cat) из хромосомы штаммов-продуцентов L-аминокислот бактерии Е. coli.

Ген устойчивости Cm (ген cat) может быть удален из хромосомы штаммов-продуцентов L-аминокислот путем использования системы int-xis. С этой целью штамм-продуцент L-аминокислоты, в который были перенесены ДНК-фрагменты из вышеописанного штамма Е. coli MG1655 Δpnp::cat при помощи P1-трансдукции (см. Примеры 3-12), может быть трансформирован плазмидой pMWts-Int/Xis. Селекция трансформированных клонов может быть произведена с использованием среды LB, содержащей ампициллин (100 мкг/мл). Клетки могут быть инкубированы при 30°С в течение ночи. Ген cat может быть удален из трансформированных клонов путем выращивания отдельных колоний при 37°С (при этой температуре репрессор CIts в некоторой мере инактивируется, тогда как гены int/xis активируются) с последующей селекцией вариантов Cm^SАр^R. Удаление гена cat из хромосомы штаммов может быть подтверждено при помощи ПЦР. Локус-специфичные праймеры Р21 (SEQ ID NO: 27) и Р22 (SEQ ID NO: 28) могут быть использованы для такого подтверждения путем ПЦР. Условия проведения ПЦР могут быть такими же, как описано выше. Продукт ПЦР, полученный в случае клеток с удаленным геном cat, должен быть длиной в 0,2 т.п.н. Таким образом, может быть получен штамм-продуцент L-аминокислот, в котором инактивирован ген pnp и из которого удален ген cat.

Хотя указанное изобретение описано в деталях со ссылкой на Наилучший способ осуществления изобретения, для специалиста в указанной области техники очевидно, что могут быть совершены различные изменения и произведены эквивалентные замены, и такие изменения и замены не выходят за рамки настоящего изобретения.

Каждому из упомянутых выше документов соответствует ссылка, и все цитируемые документы являются частью описания настоящего изобретения.

Таблица 1ШтаммOD₅₄₀L-треонин, г/лВ-399632.1±0.621.3±0.2B-3996-Δpnp45.8±0.921.7±0.4

Таблица 2РастворыКомпонентКонечная концентрация, г/лАКН₂PO₄1.5 NaCl0.5 (NH₄)₂SO₄1.5 L-метионин0.05 L-фенилаланин0.1 L-тирозин0.1 Mameno (общий N)0.07ВГлюкоза40.0 MgSO₄×7H₂O0.3СCaCl₂0.011DFeSO₄×7H₂O0.075 Цитрат натрия1.0ЕNa₂MoO₄×2H₂O0.00015 Н₃ВО₃0.0025 CoCl₂×6H₂O0.00007 CuSO₄×5H₂O0.00025 MnCl₂×4H₂O0.0016 ZnSO₄×7Н₂O0.0003FТиамин HCl0.005GСаСО₃30.0HПиридоксин0.03pH раствор А доводят до значения 7.1 при помощи NH₄OH.

Изобретение относится к биотехнологии и представляет собой способ получения L-треонина с использованием бактерии, принадлежащей к роду Escherichia, которая модифицирована таким образом, что в указанной бактерии инактивирован ген pnp. Изобретение позволяет получать L-треонин с высокой степенью эффективности. 2 н. и 1 з.п. ф-лы, 3 ил., 2 табл.

1. Бактерия, принадлежащая к роду Escherichia, -продуцент L-треонина, модифицированная таким образом, что в указанной бактерии инактивирован ген pnp.2. Бактерия по п.1, отличающаяся тем, что указанный ген pnp инактивирован за счет делеции гена pnp в хромосоме бактерии.3. Способ получения L-треонина, включающий:

выращивание бактерии по любому из пп.1 и 2 в питательной среде, вызывающее продукцию и накопление L-треонина в культуральной жидкости; и

выделение L-треонина из культуральной жидкости.