Набор олигодезоксирибонуклеотидных праймеров и флуоресцентно-меченых ДНК-зондов для идентификации РНК энтеровирусов, ротовирусов, вирусов гепатита А и Е, аденовирусов, норовирусов и астровирусов из водной среды методом мультиплексной ПЦР Российский патент 2017 года по МПК C12Q1/68 C12N15/11 

Описание патента на изобретение RU2610434C1

Изобретение относится к наборам олигодезоксирибонуклеотидных праймеров и флуоресцентно-меченых ДНК-зондов для идентификации генетического материала энтеровирусов, ротовирусов, вирусов гепатита А и Е, аденовирусов, норовирусов и астровирусов в образцах воды из окружающей среды методом мультиплексной полимеразной цепной реакции и может быть использовано в вирусологии и эпидемиологии для обеспечения эпидемической безопасности населения при различных видах водопользования.

Известно, что для индикации цитопатогенных вирусов, распространяющихся водным путем, в практической лабораторной службе используется метод их выделения на чувствительных культурах клеток. Однако данный метод имеет ряд недостатков, снижающих его практическую значимость: длительность процесса (3-4 недели), невозможность выделения нецитолитических и поврежденных вирусных агентов, не способных вызывать продуктивную цитолитическую инфекцию в системе in vitro, но, тем не менее, представляющих эпидемическую опасность для живого организма (Проблема лабораторной диагностики острых кишечных инфекций неустановленной этиологии у детей / Т.В. Амвросьева, Н.В. Поклонская, Е.П. Кишкурно, Н.Л. Клюйко, О.Н. Казинец, А.А. Безручко, О.И. Камяк // Перспективы сотрудничества государств-членов ШОС в противодействии угрозе инфекционных болезней: материалы междунар. науч.-практ. конф. / ФГУН «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Роспотребнадзора. – Новосибирск, 2009. – С. 52-55). Эти проблемы, возникающие при изучении вирусологического качества вод различных водных объектов, могут быть решены путем использования метода детекции, представляющего собой полимеразную цепную реакцию с этапом обратной транскрипции (ОТ-ПЦР), который позволяет в течение 3-6 часов обнаружить в исследуемом материале вирусную РНК.

Метод полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией (ОТ-ПЦР) является наиболее распространенным методом, используемым в лабораторной практике для дифференциальной диагностики инфекционных заболеваний. В основе метода лежат две реакции – обратная транскрипция и полимеразная цепная реакция. В реакции обратной транскрипции на матрице вирусной РНК строится комплиментарная ДНК (кДНК). В следующей за реакцией обратной транскрипции ПЦР происходит многократное избирательное удвоение целевого участка кДНК (амплификация). Амплифицируемый участок кДНК является маркерным, так как строго ограничен последовательностями ДНК-затравок (праймеров) без которых не возможно протекание ПЦР. Для детекции накопления продуктов амплификации в режиме реального времени помимо пары праймеров необходим также флуорисцентно-меченый ДНК-зонд. Сложность выбора праймеров и зонда обусловлена требованием их строгой видоспецифичности. В случае если выбранные олигонуклеотиды не обладают видовой специфичностью к целевому объекту, либо не обладают достаточной гомологией к целевой нуклеотидной последовательности, возможны ложноотрицательные результаты исследования. В случае если выбранные праймеры и зонды демонстрируют сродство к нецелевым последовательностям ДНК, то возможны ложноположительные результаты исследования. Правильный выбор сочетания пары праймеров и флуоресцентно-меченого ДНК-зонда позволяет осуществить строго специфическую амплификацию целевого фрагмента кДНК и провести детекцию накопления продуктов ПЦР в режиме реального времени.

В настоящее время на территории Российской Федерации существует единственный коммерческий набор для детекции кДНК ротовируса человека методом ПЦР "АмплиСенс®ОРВИ-скрин-FL" (ЦНИИ Эпидемиологии, г. Москва) - набор реагентов для выявления возбудителей острых респираторных вирусных инфекций человека (ОРВИ) (РНК респираторно-синцитиального вируса, метапневмовируса, вирусов парагриппа 1-4 типов, коронавирусов, ротовирусов, ДНК аденовирусов групп B, C и E и бокавируса в клиническом материале методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) с гибридизационно-флуоресцентной детекцией).

Для ПЦР диагностики энтеровирусов используются ПЦР-тест-системы с детекцией методом электрофореза таких компаний, как ЗАО «БиоХимМак» (http://www.biochemmack.ru/product/moleculardiagnostics/infectious/), ЗАО «Литех» и наборы реагентов для ПЦР производства "ИзоГен" (http://www.lytech.ru/ catalog_69.htm). Набор с гибридизационно-флуоресцентной детекцией производит компания «ИнтерЛабСервис» (http://www.interlabservice.ru/catalog/ reagents/index.php?sid=678).

Для диагностики вирусов гепатита А методом ПЦР используется набор реагентов для выявления РНК вируса гепатита A (HAV) в клиническом материале и объектах окружающей среды методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) с гибридизационно-флуоресцентной детекцией "АмплиСенс® HAV-FL.

Для диагностики вируса гепатита Е методом ПЦР используется набор реагентов для выявления РНК вируса гепатита E (HEV) в клиническом материале ООО «Лаборатория ИзоГен».

Наборы для диагностики аденовирусов, астро- и норовирусов методом ПЦР выпускаются компанией «ИнтерЛабСервис».

Наиболее близким аналогом (прототипом) является набор олигодезоксирибонуклеотидных праймеров и флуоресцентно-меченых ДНК-зондов для идентификации РНК энтеровирусов, риновирусов, вирусов гепатита А и Е из водной среды методом мультиплексной полимеразной цепной реакции (патент РФ №2542968, МПК С12Q1/68, опубл. 27.02.2015 г.).

Однако и такой набор для мультиплексной ПЦР не обеспечивает идентификацию проб из водной среды с целью диагностики энтеровирусов, ротовирусов, вирусов гепатита А и Е, аденовирусов, норовирусов и астровирусов.

Таким образом, из уровня техники не известны мультиплексные ПЦР тест-системы для идентификации проб из водной среды с целью диагностики энтеровирусов, ротовирусов, вирусов гепатита А и Е, аденовирусов, норовирусов и астровирусов.

Техническим результатом является создание набора для мультиплексной ПЦР, обеспечивающего исследование проб водной среды с целью одновременного выявления в них энтеровирусов, ротовирусов, вирусов гепатита А и Е, аденовирусов, норовирусов и астровирусов.

Указанный технический результат достигается созданием набора олигодезоксирибонуклеотидных праймеров и флуоресцентно-меченых ДНК-зондов для идентификации РНК ротовирусов, вирусов гепатита А и Е, энтеровирусов, аденовирусов, норовирусов и астровирусов из водной среды методом мультиплексной полимеразной цепной реакции, имеющих следующую структуру:

для выявления РНК ротовирусов:

- прямой (F1) и обратный (R1) праймеры:

F1: 5`- GATATTGGACCNTCTGATTCTGC -3`

R1: 5`- ATTGCTGTNGATGAATCCATAGACAC -3`

- флуоресцентно-меченый ДНК-зонд (Z1):

Z1: ROX-TTAGATCGAATGCAGTTAAGACAAACGC-BHQ2

для выявления РНК вируса гепатита А:

- прямой (F2) и обратный (R2) праймеры:

F2: 5`- GTAGGCTACGGGTGAAACCTCTT -3`

R2: 5`- CGGCGTTGAATGGTTTTTGT -3`

- флуоресцентно-меченый ДНК-зонд (Z2):

Z2: R6G-AGGGTAACAGCGGCGGATATTGGT-BHQ2

для выявления РНК вируса гепатита Е:

- прямой (F3) и обратный (R3) праймеры:

F3: 5`- CGGCRGTGGTTTCTGGGGT -3’

R3: 5`- GGTTGGTTGGATGAATATAGGG -3’

- флуоресцентно-меченый ДНК-зонд (Z3):

Z3: Cy5-TGATTCTCAGCCCTTCGCCCTCC-BHQ2

для выявления РНК энтеровирусов:

- прямой (F4) и обратный (R4) праймеры:

F4: 5`- AGTCTATTGAGCTARTTGGT -3’

R4: 5`- ACACGGACACCCAAAGTAGT -3’

- флуоресцентно-меченый ДНК-зонд (Z4):

Z4: FAM-CCTGAATGCGGCTAATCC-BHQ1

для выявления РНК аденовирусов:

- прямой (F5) и обратный (R5) праймеры:

F5: 5`- CCACGGTGGGGTTTCTAAACTT -3`

R5: 5`- CCCAGTGGTCTTACATGCACATC -3`

- флуоресцентно-меченый ДНК-зонд (Z1):

Z5: ROX-TGCACCAGACCCGGGCTCAG-BHQ2

для выявления РНК норовирусов:

- прямой (F6) и обратный (R6) праймеры:

F6: 5`- CAAGARACNATGTTCAGRTGGATGA -3`

R6: 5`- TCGACGCCATCTTCATTCACA -3`

- флуоресцентно-меченый ДНК-зонд (Z6):

Z6: R6G-TGGGAGGGCGATCGCAATCT-BHQ2

для выявления РНК астровирусов:

- прямой (F7) и обратный (R7) праймеры:

F7: 5`- AGTTGCTTGCTGCGTTCA -3’

R7: 5`- TTGCTAGCCATCACACTTCT -3’

- флуоресцентно-меченый ДНК-зонд (Z7):

Z7: Cy5-ACAGAAGAGCAACTCCATCGC-BHQ2,

где: присутствие в нуклеотидной последовательности пуринового основания R=A или G;

присутствие в нуклеотидной последовательности пиримидинового основания Y=T или C;

следующий альтернативный порядок следования нуклеотидов: N=A или C или G или T.

Олигодезоксирибонуклеотидные праймеры и флуоресцентно-меченые ДНК-зонды для идентификации ротовирусов, вирусов гепатита А и Е и энтеровирусов приготовлены в виде смеси в одной пробирке, а олигодезоксирибонуклеотидные праймеры и флуоресцентно-меченые ДНК-зонды для идентификации аденовирусов, норовирусов и астровирусов приготовлены в виде смеси в другой пробирке.

Перечень графических материалов. Фиг. 1. Результаты анализа энтеровирусов методом ПЦР в реальном времени с использованием патентуемых олигонуклеотидов (канал FAM). Фиг. 2. Результаты анализа вируса гепатита Е методом ПЦР в реальном времени с использованием патентуемых олигонуклеотидов (канал Cy5). Фиг. 3. Результаты анализа вируса гепатита А методом ПЦР в реальном времени с использованием патентуемых олигонуклеотидов (канал R6G). Фиг. 4. Результаты анализа ротовирусов методом ПЦР в реальном времени с использованием патентуемых олигонуклеотидов (канал ROX). Фиг. 5. Результаты анализа аденовирусов методом ПЦР в реальном времени с использованием патентуемых олигонуклеотидов (канал ROX). Фиг. 6. Результаты анализа астровирусов методом ПЦР в реальном времени с использованием патентуемых олигонуклеотидов (канал Cy5). Фиг. 7. Результаты анализа норовирусов методом ПЦР в реальном времени с использованием патентуемых олигонуклеотидов (канал R6G).

Апробация олигонуклеотидов была осуществлена с использованием лабораторной коллекции энтеровирусов, ротовирусов, вирусов гепатита А и Е, норовирусов, астровирусов и аденовирусов человека ФБУН ГНЦ ВБ «Вектор» (порядок проведения исследования одобрен этическим комитетом ФБУН ГНЦ ВБ «Вектор» (IRB 00001360)). Выбранные праймеры и ДНК-зонды обеспечивают надежный синтез целевых ДНК-фрагментов. Специфичность амплификации вирусной кДНК была подтверждена секвенированием.

Характеристика набора праймеров и участка амплифицируемой геномной РНК ротовирусов. Предлагаемые к патентованию праймеры фланкируют участок гена, кодирующего вирусный гликопротеин 1 (VP1-ген). В ПЦР амплифицируется фрагмент генома с 28117 по 28630 нуклеотид (513 п.н.). Использование в комплекте с диагностическими праймерами флуоресцентно-меченого ДНК-зонда позволяет производить детекцию накопления продуктов амплификации в режиме реального времени.

Характеристика набора праймеров и участка амплифицируемой геномной РНК энтеровирусов. Предлагаемые к патентованию праймеры комплементарны не кодирующей части геномной РНК (5”-UTR). В ПЦР амплифицируется фрагмент генома с 72 по 521 нуклеотид (449 п.н.). Использование в комплекте с диагностическими праймерами флуоресцентно-меченого ДНК-зонда позволяет производить детекцию накопления продуктов амплификации в режиме реального времени.

Характеристика набора праймеров и участка амплифицируемой геномной РНК вируса гепатита А. Предлагаемые к патентованию праймеры в ПЦР амплифицируют фрагмент генома с 311 по 421 нуклеотид (110 п.н.). Использование в комплекте с диагностическими праймерами флуоресцентно-меченого ДНК-зонда позволяет производить детекцию накопления продуктов амплификации в режиме реального времени.

Характеристика набора праймеров и участка амплифицируемой геномной РНК вируса гепатита Е. Предлагаемые к патентованию праймеры в ПЦР амплифицируют фрагмент генома с 5298 по 5370 нуклеотид (72 п.н.). Использование в комплекте с диагностическими праймерами флуоресцентно-меченого ДНК-зонда позволяет производить детекцию накопления продуктов амплификации в режиме реального времени.

Характеристика набора праймеров и участка амплифицируемой геномной РНК норовирусов. Предлагаемые к патентованию праймеры в ПЦР амплифицируют фрагмент генома с 4986 по 5084 нуклеотид (98 п.н.). Использование в комплекте с диагностическими праймерами флуоресцентно-меченого ДНК-зонда позволяет производить детекцию накопления продуктов амплификации в режиме реального времени.

Характеристика набора праймеров и участка амплифицируемой геномной РНК астровирусов. Предлагаемые к патентованию праймеры в ПЦР амплифицируют фрагмент генома с 4168 по 4349 нуклеотид (181 п.н.). Использование в комплекте с диагностическими праймерами флуоресцентно-меченого ДНК-зонда позволяет производить детекцию накопления продуктов амплификации в режиме реального времени.

Характеристика набора праймеров и участка амплифицируемой геномной РНК аденовирусов человека. Предлагаемые к патентованию праймеры в ПЦР амплифицируют фрагмент генома (hexon protein gene) с 21 по 152 нуклеотид (132 п.н.). Использование в комплекте с диагностическими праймерами флуоресцентно-меченого ДНК-зонда позволяет производить детекцию накопления продуктов амплификации в режиме реального времени.

В результате научных исследований достигнут следующий технический результат, а именно: разработан набор олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентно-меченых зондов, обеспечивающих надежную детекцию энтеровирусов, ротовирусов, вирусов гепатита А и Е, норовирусов, астровирусов и аденовирусов человека в образцах воды из окружающей среды методом мультиплексной полимеразной цепной реакцией (см. таблицу 1).

Таблица 1

Высокоспецифичные праймеры и зонды для детекции энтеровирусов человека, ротавирусов, вируса гепатита А, вируса гепатита Е, норовирусов, астровирусов и аденовирусов человека с помощью метода ПЦР в реальном времени.

Ротовирусы

Праймеры и зонд Последовательность (5` → 3`) Тm
(°С)
Размер ампликона, п.н.
F1 GATATTGGACCNTCTGATTCTGC 55 117 R1 ATTGCTGTNGATGAATCCATAGACAC 55 Z1 ROX-TTAGATCGAATGCAGTTAAGACAAACGC-BHQ2 61

Вирус гепатита А


Праймеры и зонд

Последовательность (5’ → 3’)
Тm
(°С)
Размер ампликона, п.н.
F2 GTAGGCTACGGGTGAAACCTCTT 54 162 R2 CGGCGTTGAATGGTTTTTGT 54 Z2 R6G-AGGGTAACAGCGGCGGATATTGGT-BHQ2 63

Вирус гепатита Е


Праймеры и зонд

Последовательность (5’ → 3’)
Тm
(°С)
Размер ампликона, п.н.
F3 CGGCRGTGGTTTCTGGGGT 57 200 R3 GGTTGGTTGGATGAATATAGGG 54 Z3 Cy5-TGATTCTCAGCCCTTCGCCCTCC-BHQ2 66

Энтеровирусы


Праймеры и зонд

Последовательность (5’ → 3’)
Тm
(°С)
Размер ампликона, п.н.
F4 AGTCTATTGAGCTARTTGGT 55 449 R4 ACACGGACACCCAAAGTAGT 55 Z4 FAM-CCTGAATGCGGCTAATCC-BHQ1 65

Аденовирусы

Праймеры и зонд Последовательность (5` → 3`) Тм,
(°С)
Размер ампликона, п.н.
F1 CCACGGTGGGGTTTCTAAACTT 55 117 R1 CCCAGTGGTCTTACATGCACATC 55 Z1 ROX-TGCACCAGACCCGGGCTCAG-BHQ2 61

Норовирусы


Праймеры и зонд

Последовательность (5’ → 3’)
Тm
(°С)
Размер ампликона, п.н.
F2 CAAGARACNATGTTCAGRTGGATGA 54 162 R2 TCGACGCCATCTTCATTCACA 54 Z2 R6G-TGGGAGGGCGATCGCAATCT-BHQ2 66

Астровирусы


Праймеры и зонд

Последовательность (5’ → 3’)
Тm
(°С)
Размер ампликона, п.н.
F3 AGTTGCTTGCTGCGTTCA 55 200 R3 TTGCTAGCCATCACACTTCT 55 Z3 Cy5-ACAGAAGAGCAACTCCATCGC-BHQ2 66

Примечание. Где:

присутствие в нуклеотидной последовательности пуринового основания R=A или G;

присутствие в нуклеотидной последовательности пиримидинового основания Y=T или C;

следующий альтернативный порядок следования нуклеотидов: N=A или C или G или T.

Конструирование внутреннего контрольного образца. В качестве внутреннего контрольного образца была использована защищенная двухцепочечная РНК фага MS-2. Псевдофаг получали клонированием под T5 фаговый промотер фрагмента 370 п.н. кДНК фага MS-2 в вектор pQE31. Синтез матричной РНК индуцировали IPTG. Фаговые частицы очищали центрифугированием.

Внутренний контрольный образец (ВКО), позволяет компенсировать ингибирование и контролировать процессы пробоподготовки и амплификации, что обеспечивает более точное определение РНК в каждом анализируемом образце. ВКО представляет собой неинфекционную защищенную РНК бактериофага MS2 (концентрация 105 копий РНК MS2/мл).

Выделение вируссодержащего материала из образцов воды.

Пробу воды готовили 1000-кратным разведением клинического образца, содержащего вирус, в дистилированной и автоклавированнной воде. Пробы подвергались фильтрации через подобранную оптимальную фильтрационную систему. Используемые в работе системы для фильтрации воды с целью дальнейшего исследования на наличие вирусного генетического материала:

1. Мембранный фильтрующий модуль МФМ-0142.

2. Фильтрационная система Midisart 2000 (Sartorius, Германия).

3. Система вакуумной фильтрации (Sartorius, Германия).

4. Система вакуумной фильтрации с приставкой предварительной фильтрации (Sartorius, Германия).

Для концентрирования вирусов с фильтрационными системами использовали мембраны марки ММПА+-020-142 (ООО НПП «Технофильтр», Россия). В качестве системы сравнения использовали адсорбирующее картриджи из набора для отбора проб и индикации вирусов в питьевой воде ГУ «Республиканский научно-практический центр эпидемиологии и микробиологии» (Республика Беларусь).

Фильтрацию воды проводили после предварительного добавления в нее 10-кратных разведений вируссодержащих образцов с известной концентрацией вируса, после чего проводили элюцию концентрированного вируссодержащего материала из мембраны и затем проводили выделение вирусной РНК (ДНК). Выделение РНК проводили методом фенол-хлороформной экстракции (Евроген, Россия), после чего в реакции обратной транскрипции (наборы для обратной транскрипции, Изоген, Россия) получали кДНК и проводили ПЦР в режиме реального времени, используя мультиплексный вариант тест-системы. Оптимальными считались те способы фильтрации воды и выделения вирусной РНК, при которых достигалась наибольшая чувствительность.

Пробу воды готовили 1000-кратным разведением клинического образца, содержащего ротавирус в дистилированной и автоклавированнной воде. Пробы подвергались фильтрации через подобранную оптимальную фильтрационную систему. После чего производилась элюция с мембраны, выделение РНК, обратная транскрипция и ПЦР в режиме реального времени с использованием мультиплексного варианта тест-систем. Наиболее удобной в работе оказалась система вакуумной фильтрации с приставкой предварительной фильтрации (Sartorius, Германия), поскольку одновременно позволяла проводить отсечку бактериального компонента из образцов воды (на первый 0.22 мкм фильтр) и сорбцию вирусного материала на мембрану марки ММПА+-020-142 (ООО НПП «Технофильтр», Россия). Мембраны обладают повышенной сорбционной способностью по отношению к вирусам, колифагам и пирогенам. Мембраны микропористые полиамидные с положительным дзета-потенциалом изготовленные на основе полиамида (Nylon-6 и Nylon-66). Мембраны ММПА+ имеют крупноячеистое строение с тонкими микропористыми перегородками, что предопределяет непрерывность структуры мембран и обеспечивает прочность и эластичность в сухом и смоченном виде. Благодаря высокой пористости и контролируемому размеру пор мембраны обладают высокой эффективностью удержания микрочастиц при большой скорости фильтрации.

Экстракция вирусной РНК

Предварительную инактивацию образцов и выделение вирусной РНК проводили в условиях, регламентированных МУ 1.3. 2569 -09 «Организация работы лабораторий, использующих методы амплификации нуклеиновых кислот при работе с материалом, содержащим микроорганизмы I-IV групп патогенности».

Вирусную РНК выделяли из 100 мкл вируссодержащей жидкости фенол-хлороформным реагентом, с использованием набора «Евроген» (г. Москва) согласно инструкции производителя.

Реакция обратной транскрипции

Синтез комплементарной ДНК (кДНК) проводили на матрице суммарной РНК с использованием набора реагентов «ИзоГен» (г. Москва) согласно инструкции производителя.

Проведение полимеразной цепной реакции

Условия проведения амплификации оптимизировали по концентрации ионов магния, концентрации праймеров и зондов в реакционной смеси, а также, по температуре отжига праймеров.

Реакцию амплификации проводили в 30 мкл смеси для ПЦР (таб. 1), содержащей 1×Taq буфер для амплификации, 2.5 мМ MgCl2, 0.17 мМ каждого из нуклеозидтрифосфатов, 1.5 активных единиц Smart Taq ДНК-полимеразы (все компоненты ООО «Лаборатория МЕДИГЕН»), 20 пМ прямого и обратного праймеров и 8 пМ флуоресцентного ДНК-зонда.

Таблица 2

ПЦР-смесь А (из расчета на одну пробирку)

Компонент Объем, мкл ПЦР-буфер×10 3 дНТФ (5 мМ) 1 MgCl2 (50 мМ) 1.5 Hot Start Taq ДНК-полимераза 0.3 Смесь прямых праймеров – F1 (по 10 нМ) 2 Смесь обратных праймеров – R1 (по 10 нМ) 2 Смесь ДНК-зондов – Z1 (по 15 нМ) 0.5 Образец (кДНК) 3 diH2O 16.7

ПЦР-смесь В (из расчета на одну пробирку)

Компонент Объем, мкл ПЦР-буфер×10 3 дНТФ (5 мМ) 1 MgCl2 (50 мМ) 1.5 Hot Start Taq ДНК-полимераза 0.3 Смесь прямых праймеров – F2 (по 10 нМ) 2 Смесь обратных праймеров – R3 (по 10 нМ) 2 Смесь ДНК-зондов – Z2 (по 15 нМ) 0.5 Образец (кДНК) 3 diH2O 16.7

ПЦР в режиме реального времени проводили согласно программе амплификации Таблицы 3. Детекцию интенсивности флуоресценции проводили по каналам – Green (FAM, 470 nm /510 nm), Yellow (R6G, 530 нм / 560 нм), Red (Cy5, 625 нм / 660 нм) и Orange (ROX, 585 нм / 605 нм), в двух пробирках:

Пробирка А: смесь олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентно-меченых зондов, обеспечивающих детекцию энтеровирусов, ротовирусов, вирусов гепатита А и Е.

Пробирка В: смесь олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентно-меченых зондов, обеспечивающих детекцию норовирусов, астровирусов, аденовирусов и ВКО (внутренний контольный образец).

Результаты оценивали по наличию флюоресценции до 30 цикла (фиг. 1-7).

Таблица 3

Программа амплификации

Операция T, °C T, мин:с 1 Hold/Активация HotStart-Taq-ДНК-полимеразы 95 05:00 2 Cycling 1/Циклирование 1 (10 циклов), без детекции флюоресценции. 95 00:10 55 00:30 72 00:20 3 Cycling 2/Циклирование 2 (40 циклов), с детекцией флюоресценции по каналам FAM, ROX, Cy5 и R6G. 95 00:10 55 00:30 детекция 72 00:20

На фиг. 1-7 представлены результаты анализа образцов методом ПЦР в реальном времени. В эксперименте методом ПЦР в реальном времени были проанализированы последовательные десятикратные разведения кДНК энтеровирусов, ротовирусов, вирусов гепатита А и Е, аденовирусов, норовирусов и астровирусов.

На фиг. 1 приведены результаты анализа энтеровирусов методом ПЦР в реальном времени с использованием патентуемых олигонуклеотидов (канал FAM).

Примечание:

1 - положительный контрольный образец (плазмидная конструкция, содержащая кДНК энтеровирусов);

2 - кДНК энтеровируса, (разведение 1:100);

3 - кДНК энтеровируса, (разведение 1:1000);

4 - кДНК энтеровируса, (разведение 1:10000);

5 - отрицательный контрольный образец (однократный ТЕ-буфер).

На фиг. 2 приведены результаты анализа вируса гепатита Е методом ПЦР в реальном времени с использованием патентуемых олигонуклеотидов (канал Cy5).

Примечание:

1. положительный контрольный образец (плазмидная конструкция, содержащая кДНК гепатита Е);

2. кДНК гепатита Е, (разведение 1:100);

3. кДНК гепатита Е, (разведение 1:1000);

4. кДНК гепатита Е, (разведение 1:10000);

5. отрицательный контрольный образец (однократный ТЕ-буфер)

На фиг. 3 представлены езультаты анализа вируса гепатита А методом ПЦР в реальном времени с использованием патентуемых олигонуклеотидов (канал R6G).

Примечание:

1 - положительный контрольный образец (плазмидная конструкция, содержащая кДНК вируса гепатита А);

2 - кДНК вируса гепатита А, (разведение 1:100);

3 - кДНК вируса гепатита А, (разведение 1:1000);

4 - кДНК вируса гепатита А, (разведение 1:10000);

5 - отрицательный контрольный образец (однократный ТЕ-буфер).

На фиг. 4 приведены результаты анализа ротовирусов методом ПЦР в реальном времени с использованием патентуемых олигонуклеотидов (канал ROX).

Примечание:

1. положительный контрольный образец (плазмидная конструкция, содержащая кДНК ротовируса);

2. кДНК ротовируса, (разведение 1:100);

3. кДНК ротовируса, (разведение 1:1000);

4. кДНК ротовируса, (разведение 1:10000);

5. отрицательный контрольный образец (однократный ТЕ-буфер).

На фиг. 5 представлены результаты анализа аденовирусов методом ПЦР в реальном времени с использованием патентуемых олигонуклеотидов (канал ROX).

Примечание:

1 - положительный контрольный образец (плазмидная конструкция, содержащая кДНК аденовирусов);

2 - кДНК аденовирусов, (разведение 1:102);

3 - кДНК аденовирусов, (разведение 1:103);

4 - кДНК аденовирусов, (разведение 1:104);

5 - кДНК аденовирусов, (разведение 1:105);

6 - кДНК аденовирусов, (разведение 1:106);

7 - кДНК аденовирусов, (разведение 1:107);

8 - кДНК аденовирусов, (разведение 1:108);

9 - отрицательный контрольный образец (однократный ТЕ-буфер).

На фиг. 6 представлены результаты анализа астровирусов методом ПЦР в реальном времени с использованием патентуемых олигонуклеотидов (канал Cy5).

Примечание:

1 - кДНК астровирусов, (разведение 1:101);

2 - кДНК астровирусов, (разведение 1:102);

3 - кДНК астровирусов, (разведение 1:103);

4 - кДНК астровирусов, (разведение 1:104);

5 - кДНК астровирусов, (разведение 1:106);

6 - кДНК астровирусов, (разведение 1:107);

7 - кДНК астровирусов, (разведение 1:108);

8 - отрицательный контрольный образец (однократный ТЕ-буфер).

На фиг. 7 приведены результаты анализа норовирусов методом ПЦР в реальном времени с использованием патентуемых олигонуклеотидов (канал R6G).

Примечание:

1 - положительный контрольный образец (плазмидная конструкция, содержащая кДНК норовирусов);

2 - кДНК норовирусов, (разведение 1:102);

3 - кДНК норовирусов, (разведение 1:103);

4 - кДНК норовирусов, (разведение 1:104);

5 - кДНК норовирусов, (разведение 1:105);

6 - кДНК норовирусов, (разведение 1:106);

7 - кДНК норовирусов, (разведение 1:107);

8 - отрицательный контрольный образец (однократный ТЕ-буфер).

Заявленная чувствительность известных наборов (аналогов и прототипа) не более 103 геномных эквивалентов (ГЭ) в образце. Разработанный авторами заявляемый набор реагентов для одновременного выявления энтеровирусов, ротовирусов, вирусов гепатита А и Е, аденовирусов, норовирусов и астровирусов методом ПЦР в реальном времени также имеет чувствительность – не более 103 геномных эквивалентов (ГЭ) в образце, но при этом позволяет реализовать большую мультиплексность – 7 инфекционных агентов (передающихся через воду) в одном образце, что подтверждает получение заявленного технического результата.

Похожие патенты RU2610434C1

название год авторы номер документа
СПОСОБ ВЫЯВЛЕНИЯ КИШЕЧНЫХ ВИРУСОВ В КЛИНИЧЕСКИХ ОБРАЗЦАХ И ВОДЕ МЕТОДОМ МУЛЬТИПЛЕКСНОЙ ПЦР С ДЕТЕКЦИЕЙ В РЕЖИМЕ РЕАЛЬНОГО ВРЕМЕНИ И ПЕРЕЧЕНЬ ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЕЙ ДЛЯ ЕГО ОСУЩЕСТВЛЕНИЯ 2012
  • Оксанич Алексей Сергеевич
  • Файзулоев Евгений Бахтиерович
  • Марова Анна Александровна
  • Никонова Александра Александровна
  • Зверев Виталий Васильевич
  • Егорова Ольга Валерьевна
  • Калинкина Марина Алексеевна
RU2506317C2
НАБОР ОЛИГОДЕЗОКСИРИБОНУКЛЕОТИДНЫХ ПРАЙМЕРОВ И ФЛУОРЕСЦЕНТНО-МЕЧЕНЫХ ДНК-ЗОНДОВ ДЛЯ ИДЕНТИФИКАЦИИ РНК ЭНТЕРОВИРУСОВ, РИНОВИРУСОВ, ВИРУСОВ ГЕПАТИТА А И Е ИЗ ВОДНОЙ СРЕДЫ МЕТОДОМ МУЛЬТИПЛЕКСНОЙ ПЦР 2013
  • Терновой Владимир Александрович
  • Сергеева Елена Игоревна
  • Чаусов Евгений Владимирович
  • Бондаренко Татьяна Юрьевна
  • Демина Анна Владимировна
  • Шиков Андрей Николаевич
  • Агафонов Александр Петрович
RU2542968C2
НАБОР ОЛИГОДЕЗОКСИРИБОНУКЛЕОТИДНЫХ ПРАЙМЕРОВ И ФЛУОРЕСЦЕНТНО-МЕЧЕНЫХ ЗОНДОВ ДЛЯ ИДЕНТИФИКАЦИИ РНК И ДИФФЕРЕНЦИАЦИИ ВИРУСА ПАРАГРИППА ЧЕЛОВЕКА 1, 2, 3 И 4 ТИПОВ 2012
  • Сергеева Елена Игоревна
  • Терновой Владимир Александрович
  • Агафонов Александр Петрович
  • Сергеев Александр Николаевич
RU2515911C1
СПОСОБ ДИФФЕРЕНЦИАЛЬНОЙ ДИАГНОСТИКИ РЕСПИРАТОРНЫХ ВИРУСНЫХ ИНФЕКЦИЙ МЕТОДОМ МУЛЬТИПЛЕКСНОЙ ПЦР С ДЕТЕКЦИЕЙ В РЕЖИМЕ РЕАЛЬНОГО ВРЕМЕНИ И ПЕРЕЧЕНЬ ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЕЙ ДЛЯ ЕГО ОСУЩЕСТВЛЕНИЯ 2010
  • Файзулоев Евгений Бахтиерович
  • Никонова Александра Александровна
  • Оксанич Алексей Сергеевич
  • Лободанов Сергей Александрович
  • Малахо Софья Гарифовна
  • Зверев Виталий Васильевич
RU2460803C2
Набор олигонуклеотидных праймеров и зондов для идентификации вируса клещевого энцефалита, вируса лихорадки Западного Нила, боррелий и риккетсий методом мультиплексной ПЦР в режиме реального времени 2016
  • Семенцова Александра Олеговна
  • Терновой Владимир Александрович
  • Чуб Елена Владимировна
  • Карташов Михаил Юрьевич
  • Локтев Валерий Борисович
RU2629604C1
НАБОР ОЛИГОДЕЗОКСИРИБОНУКЛЕОТИДНЫХ ПРАЙМЕРОВ И ФЛУОРЕСЦЕНТНО МЕЧЕНЫХ ЗОНДОВ ДЛЯ ИДЕНТИФИКАЦИИ РНК КОРОНАВИРУСОВ ВИДОВ 229Е, NL63, ОС43, HKU1 МЕТОДОМ ГИБРИДИЗАЦИОННО-ФЛУОРЕСЦЕНТНОЙ ОБРАТНО-ТРАНСКРИПТАЗНОЙ ПОЛИМЕРАЗНОЙ ЦЕПНОЙ РЕАКЦИИ 2011
  • Сергеева Елена Игоревна
  • Терновой Владимир Александрович
  • Агафонов Александр Петрович
  • Сергеев Александр Николаевич
RU2473702C1
НАБОР ОЛИГОДЕЗОКСИРИБОНУКЛЕОТИДНЫХ ПРАЙМЕРОВ И ФЛУОРЕСЦЕНТНО-МЕЧЕНЫХ ЗОНДОВ ДЛЯ ИДЕНТИФИКАЦИИ РНК МЕТАПНЕВМОВИРУСА ЧЕЛОВЕКА 2013
  • Сергеева Елена Игоревна
  • Терновой Владимир Александрович
  • Агафонов Александр Петрович
  • Сергеев Александр Николаевич
RU2543149C2
Способ выявления ДНК вируса гепатита В в биологическом материале при низкой вирусной нагрузке на основе двухэтапной ПЦР с детекцией по трем мишеням в режиме реального времени 2020
  • Серикова Елена Николаевна
  • Семенов Александр Владимирович
  • Останкова Юлия Владимировна
  • Тотолян Арег Артемович
RU2763173C1
Тест-система для обнаружения генома возбудителя ротовируса типа А у сельскохозяйственных животных с помощью мультиплексной полимеразной цепной реакции с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени 2018
  • Черных Олег Юрьевич
  • Баннов Василий Александрович
  • Малышев Денис Владиславович
  • Донник Ирина Михайловна
  • Джавадов Эдуард Джавадович
  • Макаров Юрий Анатольевич
  • Лысенко Александр Анатольевич
  • Кривонос Роман Анатольевич
  • Шевкопляс Владимир Николаевич
  • Кощаев Андрей Георгиевич
  • Морозов Виталий Юрьевич
  • Солдатенко Николай Александрович
  • Кулакова Анна Леонидовна
RU2694501C1
НАБОР ОЛИГОНУКЛЕОТИДНЫХ ПРАЙМЕРОВ И ФЛУОРЕСЦЕНТНО-МЕЧЕНЫХ ЗОНДОВ ДЛЯ СУБТИПОСПЕЦИФИЧНОЙ ИДЕНТИФИКАЦИИ РНК ВИРУСА ДЕНГЕ НА ОСНОВЕ МУЛЬТИПЛЕКСНОЙ ПЦР В РЕАЛЬНОМ ВРЕМЕНИ 2012
  • Берилло Сания Александровна
  • Терновой Владимир Александрович
  • Сергеева Елена Игоревна
  • Шиков Андрей Николаевич
  • Демина Ольга Константиновна
  • Агафонов Александр Петрович
  • Сергеев Александр Николаевич
RU2483115C1

Иллюстрации к изобретению RU 2 610 434 C1

Реферат патента 2017 года Набор олигодезоксирибонуклеотидных праймеров и флуоресцентно-меченых ДНК-зондов для идентификации РНК энтеровирусов, ротовирусов, вирусов гепатита А и Е, аденовирусов, норовирусов и астровирусов из водной среды методом мультиплексной ПЦР

Изобретение относится к наборам олигодезоксирибонуклеотидных праймеров и флуоресцентно-меченых ДНК-зондов для идентификации генетического материала методом мультиплексной ПЦР. Представленный набор содержит олигодезоксирибонуклеотидные праймеры и флуоресцентно-меченые ДНК-зонды для идентификации таких РНК вирусов, как энтеровирусы, ротовирусы, вирусы гепатита А и Е, аденовирусы, норовирусы и астровирусы. Изобретение может быть использовано в исследовании проб водной среды с целью выявления в них энтеровирусов, ротовирусов, вирусов гепатита А и Е, аденовирусов, норовирусов и астровирусов. 2 з.п. ф-лы, 3 табл., 7 ил.

Формула изобретения RU 2 610 434 C1

1. Набор олигодезоксирибонуклеотидных праймеров и флуоресцентно-меченых ДНК-зондов для идентификации РНК ротовирусов, вирусов гепатита А и Е, энтеровирусов, аденовирусов, норовирусов и астровирусов из водной среды методом мультиплексной полимеразной цепной реакциии, имеющих следующую структуру:

для выявления ротовирусов:

- прямой (F1) и обратный (R1) праймеры:

F1: 5`- GATATTGGACCNTCTGATTCTGC -3`

R1: 5`- ATTGCTGTNGATGAATCCATAGACAC -3`

- флуоресцентно-меченый ДНК-зонд (Z1):

Z1: ROX-TTAGATCGAATGCAGTTAAGACAAACGC-BHQ2

для выявления вируса гепатита А:

- прямой (F2) и обратный (R2) праймеры:

F2: 5`- GTAGGCTACGGGTGAAACCTCTT -3`

R2: 5`- CGGCGTTGAATGGTTTTTGT -3`

- флуоресцентно-меченый ДНК-зонд (Z2):

Z2: R6G-AGGGTAACAGCGGCGGATATTGGT-BHQ2

для выявления вируса гепатита Е:

- прямой (F3) и обратный (R3) праймеры:

F3: 5`- CGGCRGTGGTTTCTGGGGT -3`

R3: 5`- GGTTGGTTGGATGAATATAGGG -3`

- флуоресцентно-меченый ДНК-зонд (Z3):

Z3: Cy5-TGATTCTCAGCCCTTCGCCCTCC-BHQ2

для выявления энтеровирусов:

- прямой (F4) и обратный (R4) праймеры:

F4: 5`- AGTCTATTGAGCTARTTGGT -3`

R4: 5`- ACACGGACACCCAAAGTAGT -3`

- флуоресцентно-меченый ДНК-зонд (Z4):

Z4: FAM-CCTGAATGCGGCTAATCC-BHQ1

для выявления аденовирусов:

- прямой (F5) и обратный (R5) праймеры:

F5: 5`- CCACGGTGGGGTTTCTAAACTT -3`

R5: 5`- CCCAGTGGTCTTACATGCACATC -3`

- флуоресцентно-меченый ДНК-зонд (Z1):

Z5: ROX-TGCACCAGACCCGGGCTCAG-BHQ2

для выявления норовирусов:

- прямой (F6) и обратный (R6) праймеры:

F6: 5`- CAAGARACNATGTTCAGRTGGATGA -3`

R6: 5`- TCGACGCCATCTTCATTCACA -3`

- флуоресцентно-меченый ДНК-зонд (Z6):

Z6: R6G-TGGGAGGGCGATCGCAATCT-BHQ2

для выявления астровирусов:

- прямой (F7) и обратный (R7) праймеры:

F7: 5`- AGTTGCTTGCTGCGTTCA -3`

R7: 5`- TTGCTAGCCATCACACTTCT -3`

- флуоресцентно-меченый ДНК-зонд (Z7):

Z7: Cy5-ACAGAAGAGCAACTCCATCGC-BHQ2,

где: присутствие в нуклеотидной последовательности пуринового основания R=A или G;

присутствие в нуклеотидной последовательности пиримидинового основания Y=T или C;

следующий альтернативный порядок следования нуклеотидов: N=A или C или G или T.

2. Набор по п. 1, отличающийся тем, что олигодезоксирибонуклеотидные праймеры и флуоресцентно-меченые ДНК-зонды для идентификации ротовирусов, вирусов гепатита А и Е и энтеровирусов приготовлены в виде смеси реагентов в одной пробирке.

3. Набор по п. 1, отличающийся тем, что олигодезоксирибонуклеотидные праймеры и флуоресцентно-меченые ДНК-зонды для идентификации аденовирусов, норовирусов и астровирусов приготовлены в виде смеси реагентов в одной пробирке.

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 2017 года RU2610434C1

НАБОР ОЛИГОДЕЗОКСИРИБОНУКЛЕОТИДНЫХ ПРАЙМЕРОВ И ФЛУОРЕСЦЕНТНО-МЕЧЕНЫХ ДНК-ЗОНДОВ ДЛЯ ИДЕНТИФИКАЦИИ РНК ЭНТЕРОВИРУСОВ, РИНОВИРУСОВ, ВИРУСОВ ГЕПАТИТА А И Е ИЗ ВОДНОЙ СРЕДЫ МЕТОДОМ МУЛЬТИПЛЕКСНОЙ ПЦР 2013
  • Терновой Владимир Александрович
  • Сергеева Елена Игоревна
  • Чаусов Евгений Владимирович
  • Бондаренко Татьяна Юрьевна
  • Демина Анна Владимировна
  • Шиков Андрей Николаевич
  • Агафонов Александр Петрович
RU2542968C2
СПОСОБ ВЫЯВЛЕНИЯ КИШЕЧНЫХ ВИРУСОВ В КЛИНИЧЕСКИХ ОБРАЗЦАХ И ВОДЕ МЕТОДОМ МУЛЬТИПЛЕКСНОЙ ПЦР С ДЕТЕКЦИЕЙ В РЕЖИМЕ РЕАЛЬНОГО ВРЕМЕНИ И ПЕРЕЧЕНЬ ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЕЙ ДЛЯ ЕГО ОСУЩЕСТВЛЕНИЯ 2012
  • Оксанич Алексей Сергеевич
  • Файзулоев Евгений Бахтиерович
  • Марова Анна Александровна
  • Никонова Александра Александровна
  • Зверев Виталий Васильевич
  • Егорова Ольга Валерьевна
  • Калинкина Марина Алексеевна
RU2506317C2
CHANG SOO LEE et al., Occurrence of human enteric viruses at freshwater beaches during swimming season and its link to water inflow, Science of the Total Environment, 2014, Vol.472, pp.757-766.
JIE LIU et al., Multiplex Reverse Transcription PCR Luminex Assay for Detection and Quantitation of Viral Agents of Gastroenteritis, J Clin Virol
Способ приготовления лака 1924
  • Петров Г.С.
SU2011A1
US 7351819 B2, 01.04.2008.

RU 2 610 434 C1

Авторы

Терновой Владимир Александрович

Демина Анна Владимировна

Чаусов Евгений Владимирович

Бондаренко Татьяна Юрьевна

Чуб Елена Владимировна

Даты

2017-02-10Публикация

2015-11-05Подача