СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ УНИВЕРСАЛЬНОГО ИНАКТИВИРОВАННОГО АНТИГЕНА ВИРУСА БЛЮТАНГА ДЛЯ СЕРОДИАГНОСТИКИ Российский патент 2009 года по МПК A61K39/12 G01N33/569 

Описание патента на изобретение RU2352357C1

Изобретение относится к области ветеринарии, а именно к серодиагностике блютанга. По определению МЭБ, вирус блютанга отнесен к особо опасным болезням животных списка А. Согласно классификации Государственного Комитета по эпидемиологическому надзору, возбудитель блютанга относится ко 2-й группе патогенности для человека.

В XX столетии блютанг нанес овцеводству многих стран мира огромный экономический ущерб, больше, чем все другие инфекционные заболевания овец вместе взятые. Особенно проблема блютанга стала актуальной для России после эпизоотии болезни в Республике Бурятия в 1993 году. Учитывая, что в последние годы в странах, имеющих тесные экономические контакты с Россией (Турция, Болгария, Югославия, Голландия и др.) отмечали обширные эпизоотии, вызванные вирусом блютанга, одним из наиболее достоверных способов прижизненного выявления этого возбудителя является серодиагностика, основывающаяся на определении наличия специфических антител в сыворотках крови при их взаимодействии с антигеном вируса блютанга в реакциях связывания комплемента (РСК), реакции диффузионной приципитации (РДП) и при постановке иммуноферментного анализа (ИФА).

Ранее для постановки РСК антиген готовили из ткани мозга хомячков и мышей (Clark D. and Casals J.,1958, B.H.Сюрин, 1966 г.). Впоследствии был разработан способ получения культурального антигена (А.А.Стрижаков, 1997 г.). Культуру клеток ПСГК заражали вирусом блютанга и культивировали в течение 60-62 ч. Затем культуральную жидкость сливали, а инфицированные клетки дважды замораживали-оттаивали, центрифугировали при 3000 об/мин 30 мин и надосадочную жидкость использовали в качестве антигена.

Главным недостатком такого антигена является то, что он содержит инфекционный вирус и использовать его можно только при получении разрешения на работу с микроорганизмами 2 группы патогенности и требует наличия специальных средств защиты, оборудования и соблюдения особой осторожности.

Поэтому целью изобретения является получение инактивированного универсального антигена для серодиагностики, не уступающего по антигенной активности и пригодного к использованию в любых диагностических лабораториях.

Указанная цель достигается тем, что способ получения универсального инактивированного антигена вируса блютанга включает заражение перевиваемой культуры клеток, культивирование инфицированной культуры, осаждение клеток и клеточного дебриса центрифугированием, приготовление лизата клеток, замораживание-оттаивание, при этом лизат клеток обрабатывают 2 раза ультразвуком по 12 мкм в течение 1 мин с интервалом 1 мин, а оставшиеся после центрифугирования осадок дебриса повторно заливают дистиллированной водой, обрабатывают ультразвуком в том же режиме, надосадочные жидкости с антигеном объединяют, затем антиген дважды инактивируют β-пропиолактоном в соотношении 1:1000, при этом сначала при 37° при постоянном перемешивании, затем снова вносят β-пропиолактон в том же соотношении при экспозиции 18 часов +4°С.

Предлагаемый способ приготовления антигена отличается тем, что:

1) для большей деструкции клеток используют ультразвуковую обработку, позволяющую увеличить выход вирусного антигена, связанного с дебрисом клеток;

2) повторная обработка клеточного дебриса, оставшегося в осадке после центрифугирования, позволяет увеличить в 2 раза выход получаемого антигена при использовании того же количества вирусного сырья;

3) применение инактиванта β-пропиолактона позволяет получить инактивированный экологически безопасный антиген, который может широко использоваться в ветеринарной практике для серодиагностики блютанга.

Примеры конкретного выполнения.

Пример 1. Суспензионную культуру клеток ПСГК-60 в количестве 10 л с концентрацией клеток 0,7-1,0 млн кл/мл заражали вирусом блютанга с множественностью заражения 0, 01 ТЦД50/кл. Поддерживающая среда - 0,25% ФГМ с 2% сыворотки крупного рогатого скота (КРС). Вирус культивировали при 37°С, поддерживая рН среды в пределах 7,0-7,4 в течение 40-60 часов до появления в суспензии 30% мертвых клеток. После этого клетки осаждали центрифугированием при 4000 об/мин 30 мин и готовили лизат инфицированных клеток. С этой целью к осадку добавляли дистиллированную воду до 100 мл, ресуспендировали и замораживали при минус 20°С. После оттаивания обрабатывали ультразвуком 2 раза по 12 мкм в течение 1 минуты с интервалом 1 мин и снова суспензию с клеточным дебрисом замораживали и оттаивали, затем центрифугировали при 4000 об/мин 30 мин. Надосадочную жидкость, содержащую антиген блютанга, отбирали, а к осадку добавляли такое же количество дистиллированной воды, ресуспедировали его и с ним проводили те же операции. Полученный вторичный осветленный лизат объединяли с первым и инактивировали β-пропиолактоном. С этой целью к 200 мл объединенного надосадка лизированных клеток, содержащего антиген вируса блютанга, прогретого до 37°С, вносили 0,2 мл β-пропиолактона и выдерживали при этой температуре 2 ч при постоянном перемешивании. Затем снова вносили β-пропиолактон в том же количестве и выдерживали 18 часов при +4°С. Полноту инактивации антигена проверяли в 3-х последовательных пассажах в чувствительной культуре клеток ПСГК. Полученный антиген не содержал остаточной инфекционности, обладал высокой специфичностью и активностью в реакциях РСК (1:32-1:64), РДП (1:2-1:4), ИФА (1:729-1:2187, табл.).

Пример 2. Суспензионную культуру клеток ВНК-21/13 в количестве 12 л с концентрацией клеток 0,7-1,0 млн кл/мл заражали вирусом блютанга с множественностью заражения 0, 001 ТЦД50/кл. Поддерживающая среда - 0,25% ФГМ с 2% сыворотки КРС. Вирус культивировали в биореакторе емкостью 30 л при 37°С, поддерживая рН среды в пределах 7,0-7,4 в течение 45-55 часов до появления в суспензии 40% мертвых клеток. После чего клетки осаждали центрифугированием при 4000 об/мин 30 мин и готовили лизат инфицированных клеток. С этой целью к осадку добавляли дистиллированную воду до 120 мл, ресуспендировали и замораживали при минус 20°С. После оттаивания обрабатывали ультразвуком 2 раза по 12 мкм в течение 1 минуты с интервалом 1 мин и снова суспензию с клеточным дебрисом замораживали и оттаивали, затем центрифугировали при 4000 об/ мин 30 мин. Надосадочную жидкость, содержащую антиген блютанга, отбирали, а к осадку добавляли такое же количество дистиллированной воды, ресуспедировали его и с ним проводили те же операции. Полученный вторичный осветленный лизат объединяли с первым и инактивировали β-пропиолактоном. С этой целью к 240 мл объединенного надосадка лизированных клеток, содержащего антиген вируса блютанга, прогретого до 37°С, вносили 0,24 мл р-пропиолактона и выдерживали при этой температуре 2 ч при постоянном перемешивании. Затем снова вносили β-пропиолактон в том же количестве и выдерживали 18 часов при +4°С. Полноту инактивации антигена проверяли в 3-х последовательных пассажах в элективной культуре клеток ПСГК. Полученный антиген не содержал остаточной инфекционности, обладал высокой специфичностью и активностью в реакциях РСК (1:64-1:128), РДП (1:2-1:4), ИФА (1:2187-1:6561, табл.).

Пример 3. Монослойную культуру клеток CV-1, выращенную в круговом монослое в 20 культуральных сосудах емкостью 3 л, объем заполнения 0,5 л заражали вирусом блютанга с множественностью заражения 0,004 ТЦД50/кл. Поддерживающая среда - Игла (MEM) с 2% КРС. Вирус культивировали при 37°С и 8-12 об/час, поддерживая рН среды в пределах 7,0-7,4 в течение 60 часов до развития 30-35% ЦПД вируса. Затем культуральную среду сливали, монослой клеток замораживали с последующим оттаиванием и после этого из всех бутылей собирали лизат с разрушенными инфицированными клетками. Затем добавляли дистиллированную воду до 100 мл, ресуспендировали и обрабатывали ультразвуком 2 раза по 12 мкм в течение 1 минуты с интервалом 1 мин и снова суспензию с клеточным дебрисом замораживали и оттаивали, затем центрифугировали при 4000 об/мин 30 мин. Надосадочную жидкость, содержащую антиген блютанга, отбирали, а к осадку добавляли такое же количество дистиллированной воды, ресуспендировали его и с ним проводили те же операции. Полученный вторичный осветленный лизат объединяли с первым и инактивировали β-пропиолактоном. С этой целью к 200 мл объединенного надосадка лизированных клеток, содержащего антиген вируса блютанга, прогретого до 37°С, вносили 0,2 мл β-пропиолактона и выдерживали при этой температуре 2 ч при постоянном перемешивании. Затем снова вносили β-пропиолактон в том же количестве и выдерживали 18 ч при +4°С. Полноту инактивации антигена проверяли в 3-х последовательных пассажах в элективной культуре клеток ПСГК. Полученный антиген не содержал остаточной инфекционности, обладал высокой специфичностью и активностью в реакциях РСК (1:64-1:128), РДП (1:2-1:4), ИФА (1:2187-1:6561, табл.).

Таблица Биологическая активность культурального инактивированного антигена № п/п Культура клеток Полнота инактивации в 3 пассаже в культуре клеток Активность антигена в реакциях РДП РСК ИФА 1 ПСГК-60 -* 1:2-1:4 1:32-1:64 1:729-1:2187 ВНК-21 - 1:2-1:4 1:64-1:128 1:2187-1:6561 CV-1 - 1:2-1:4 1:64-1:128 1:2187-1:6561 Примечание: *- - инфекционность не выявлена

Похожие патенты RU2352357C1

название год авторы номер документа
ШТАММ "Г 244/11" ВИРУСА БЛЮТАНГА 14 СЕРОТИПА ДЛЯ ВИРУСОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ, ИЗГОТОВЛЕНИЯ ВАКЦИННЫХ И ДИАГНОСТИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ 2013
  • Новикова Марина Борисовна
  • Вялых Иван Владимирович
  • Балышева Вера Ивановна
  • Куриннов Виктор Васильевич
  • Сидлик Марина Валерьевна
  • Горшкова Татьяна Федоровна
  • Живодеров Сергей Петрович
RU2528057C1
ШТАММ "ТАПХАР" ВИРУСА БЛЮТАНГА FEBRIS INFECTHIOSA CATARHALISS OVIUM, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ИЗГОТОВЛЕНИЯ ВАКЦИНЫ 1995
  • Вишняков И.Ф.
  • Стрижаков А.А.
  • Новикова М.Б.
  • Луницын А.В.
  • Куриннов В.В.
  • Карпов Г.М.
  • Балышева В.И.
  • Волокитина К.С.
RU2077583C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЯЩУРНОГО АНТИГЕНА ТИПА О ДЛЯ ИММУНОХИМИЧЕСКИХ РЕАКЦИЙ 2002
  • Захаров В.М.
  • Фомина Т.А.
  • Спирин В.К.
  • Гусев А.А.
  • Караулов А.К.
  • Камалова Н.Е.
RU2218398C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЯЩУРНОГО АНТИГЕНА ТИПА А ДЛЯ ИММУНОХИМИЧЕСКИХ РЕАКЦИЙ 1999
  • Захаров В.М.
  • Спирин В.К.
  • Гриценко А.И.
  • Маслова Н.С.
  • Кошецян Т.Ф.
RU2141116C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ АНТИРАБИЧЕСКОЙ ДИАГНОСТИЧЕСКОЙ СЫВОРОТКИ 2015
  • Клюкина Валентина Ивановна
  • Анисина Ольга Владимировна
  • Богомолова Олеся Анатольевна
  • Романенко Михаил Николаевич
  • Федоров Юрий Николаевич
RU2609766C1
ИНАКТИВИРОВАННАЯ ЭМУЛЬГИРОВАННАЯ ВАКЦИНА ПРОТИВ БЛЮТАНГА 2008
  • Балышева Вера Ивановна
  • Жестерев Виктор Иванович
  • Колбасов Денис Владимирович
  • Луницин Андрей Владимирович
  • Новикова Марина Борисовна
RU2378012C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ СЫВОРОТКИ ДЛЯ СЕРОДИАГНОСТИКИ ЯЩУРА ТИПА О 2002
  • Захаров В.М.
  • Фомина Т.А.
  • Спирин В.К.
  • Гусев А.А.
  • Караулов А.К.
  • Камалова Н.Е.
RU2217167C1
ШТАММ ВИРУСА ЯЩУРА Aphtae epizooticae ТИПА А ДЛЯ КОНТРОЛЯ АНТИГЕННОЙ И ИММУНОГЕННОЙ АКТИВНОСТИ И ДЛЯ ИЗГОТОВЛЕНИЯ БИОПРЕПАРАТОВ ДЛЯ ДИАГНОСТИКИ И СПЕЦИФИЧЕСКОЙ ПРОФИЛАКТИКИ ЯЩУРА ТИПА А 2014
  • Мищенко Алексей Владимирович
  • Майорова Тамара Константиновна
  • Румянцева Ольга Сергеевна
  • Кременчугская Светлана Ревдитовна
  • Щербаков Алексей Владимирович
  • Лозовой Дмитрий Анатольевич
  • Михалишин Дмитрий Валерьевич
RU2553219C1
ШТАММ № 1734 "ПРИМОРСКИЙ-2000" ВИРУСА ЯЩУРА ТИПА О ДЛЯ ИЗГОТОВЛЕНИЯ ДИАГНОСТИЧЕСКИХ И ВАКЦИННЫХ ПРЕПАРАТОВ 2001
  • Захаров В.М.
  • Фомина Т.А.
  • Спирин В.К.
  • Гусев А.А.
  • Кругликов Б.А.
  • Камалова Н.Е.
  • Михалишин Д.В.
  • Караулов А.К.
  • Андреев В.Г.
  • Щербаков А.В.
RU2204599C1
ВАКЦИНА ИНАКТИВИРОВАННАЯ СОРБИРОВАННАЯ ПРОТИВ ЯЩУРА ТИПА А 2014
  • Лозовой Дмитрий Анатольевич
  • Михалишин Дмитрий Валерьевич
  • Борисов Алексей Валерьевич
  • Стариков Вячеслав Алексеевич
  • Балашов Андрей Николаевич
  • Мищенко Алексей Владимирович
RU2563345C1

Реферат патента 2009 года СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ УНИВЕРСАЛЬНОГО ИНАКТИВИРОВАННОГО АНТИГЕНА ВИРУСА БЛЮТАНГА ДЛЯ СЕРОДИАГНОСТИКИ

Изобретение относится к области ветеринарии. Способ включает заражение перевиваемой культуры клеток, культивирование инфицированной культуры, осаждение клеток и клеточного детрита центрифугированием, приготовление лизата клеток, замораживание-оттаивание. При этом лизат клеток обрабатывают 2 раза ультразвуком по 12 мкм в течение 1 мин с интервалом 1 мин. Оставшиеся после центрифугирования осадки дебриса повторно заливают дистиллированной водой, обрабатывают ультразвуком в том же режиме. Надосадочные жидкости, содержащие антиген, объединяют. Затем антиген дважды инактивируют β-пропиолактоном в соотношении 1:1000, при этом сначала при 37° при постоянном перемешивании, затем снова вносят β-пропиолактон в том же соотношении при экспозиции 18 часов и температуре +4°С. Полученный инактивированный антиген блютанга обладает высокой специфичностью и активностью (табл.) и может быть использован для серодиагностики в реакциях РСК, РДП и ИФА. 1 табл.

Формула изобретения RU 2 352 357 C1

Способ получения универсального инактивированного антигена вируса блютанга, включающий заражение перевиваемой культуры клеток, культивирование инфицированной культуры, осаждение клеток и клеточного дебриса центрифугированием, приготовление лизата клеток, замораживание-оттаивание, отличающийся тем, что лизат клеток обрабатывают 2 раза ультразвуком по 12 мкм в течение 1 мин с интервалом 1 мин, а оставшиеся после центрифугирования осадки дебриса повторно заливают дистиллированной водой, обрабатывают ультразвуком в том же режиме, надосадочные жидкости, содержащие антиген, объединяют, затем антиген дважды инактивируют β-пропиолактоном в соотношении 1:1000, при этом сначала при 37° при постоянном перемешивании, затем снова вносят β-пропиолактон в том же соотношении при экспозиции 18 ч и температуре +4°С.

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 2009 года RU2352357C1

STOTT J.L
et al
Simple procedure for preparation of bluetongue virus and epizootic haemorrhagic disease virus antigens for agar gel immunodiffusion
- J
Clinical Vicrobibl, 1983, 18, 6, 1310-1313
СТРИЖАКОВ A.A
и др
Сэндвич-метод твердофазного иммуноферментного анализа на основе моноклональных антител для обнаружения антигенов вируса блютанга.

RU 2 352 357 C1

Авторы

Балышева Вера Ивановна

Новикова Марина Борисовна

Даты

2009-04-20Публикация

2007-08-28Подача