СПОСОБ СОРБЦИОННО-КОНТАКТНОГО ОБЕЗВОЖИВАНИЯ ВЫСОКОДИСПЕРСНЫХ БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫХ МАТЕРИАЛОВ Российский патент 2012 года по МПК C12N1/04 A23L3/00 

Изобретение относится к медицине и фармацевтической промышленности и касается способа получения сухих биологически активных материалов сорбционно-контактным обезвоживанием.

Известен способ контактно-сорбционного обезвоживания термолабильных материалов, предусматривающий сушку и стерилизацию наполнителя-сорбента и поступление его в бункер-накопитель, проверку его стерильности и влагосодержания, последующее смешение компонентов в камере при температуре окружающей среды путем одновременного диспергирования высушиваемого материала с наполнителем-сорбентом (RU, патент 1363918 A1, F26B 5/16, 3/12, 10.06.1996).

Основным недостатком известного аналога является невозможность получения сухих высокодисперсных порошков по причине сильной адгезии лабильных биологически активных материалов на носителе-сорбенте и соответствующей потери дисперсности.

Известна пробиотическая добавка и способ ее получения, предусматривающий смешивание биомассы спорообразующих бактерий Bucillus subtilis, носителя-сорбента - аэросилов гидрофильного марки А и гидрофобного марки AM, вспомогательных веществ - смолы-катиониты ионообменные марок КБ-4П-2 и КУ-2-8 и обезвоживание полученной смеси методом капилярно-сорбционного высушивания до содержания влаги в готовом продукте (8-25)% (RU, заявка 2002129938 A, C12N 1/20, A23K 1/165, A61K 35/66, F26B 5/16, 10.08.2004).

Известен сухой пробиотический препарат и способ его получения, предусматривающий получение жидкой биомассы путем смешения нативной культуры лактобактерий с белково-углеводным комплексом, контактное обезвоживание полученной жидкой биомассы влагоемкой ионообменной смолой КБ-4П-2 с размерами частиц от 1 до 800 мкм, предварительно обработанной смесью лактозы безводной и аэросила гидрофобного (RU, патент 2268926 C2, C12N 1/20, A23C 9/12, F26B 5/16, 10.03.2005).

Известен способ получения сухого пробиотического препарата, в соответствии с которым культуру бифидобактерий или стрептококка, выращенную в условиях глубинного культивирования, смешивают с защитной средой, проводят контактно-сорбционное обезвоживание целевого продукта охлажденным до минус 8-10°C сорбентом, например окисью алюминия с остаточной влажностью менее 1% при массовом соотношении 1:10-1:12, соответственно и осуществляют досушивание в течение 18-20 часов при температуре 0-5°C в замкнутом объеме (RU, патент 2067114 C1, C12N 1/20, A61K 35/74, C12N 1/04, 27.09.1996) (прототип).

Основным недостатком известных аналогов и прототипа в том числе, является большая потеря активности действующих веществ в процессе обезвоживания лабильных биологически активных материалов.

В основу заявляемого изобретения положена задача повышения активности действующих веществ в процессе обезвоживания лабильных биологически активных материалов.

Задача решена тем, что жидкую фазу обезвоживают из микрокапельного состояния, стабилизированного сухим высокодисперсным гидрофобным разобщителем с наноразмерами частиц.

В результате проведенных исследований нами впервые показано, что сорбционно-контактное обезвоживание материалов, в которых жидкая фаза находится в микрокапельном состоянии, стабилизированном сухим высокодисперсным гидрофобным разобщителем с наноразмерами частиц, осуществляемое в реакторе, сопровождается различными процессами: гидромеханическими, тепло- и массообменными, биофизическими. В результате контакта частиц сорбента с обезвоживаемым материалом сорбент начинает поглощать влагу, а материал - терять ее. Увеличение продолжительности контакта приводит к диффузионному влагопереносу в отдельной частице и в объеме сорбента, что сопровождается выделением некоторого количества тепла. С течением времени образуется однородная смесь увлажненного сорбента и сухого порошка, в системе наступает термодинамическое равновесие.

Механизм контактно-сорбционного массообмена определяется динамикой сорбции, которая в свою очередь является функцией ряда параметров: влагоемкости сорбента, длительности контакта с сорбентом, поверхности сорбции и других [Тутова Э.Г., Куц П.С. Сушка продуктов микробиологического производства. - М.: Агропромиздат, 1987. - 303 с.].

Преимущество обезвоживания жидкостей, содержащих биологически активные вещества, из микрокапельного состояния, стабилизированного сухим высокодисперсным гидрофобным разобщителем с наноразмерами частиц, заключается в том, что такое состояние формирует развернутую поверхность жидкости в порошке, составляющую по нашим данным 0,04-0,09 м² в 1 см³ порошка, что обеспечивает большую площадь контакта с сорбентом и, соответственно, малую продолжительность переноса основной массы свободной влаги к сорбенту (до 2 минут).

Это в свою очередь позволяет быстро проходить отрезок относительной влажности микрокапельного порошка в смеси в диапазоне «критической влажности» 7-8%, соответствующей 22-28% относительной влажности биологически активных веществ (например, микроорганизмов) и обусловливающей их массовую инактивацию [Monk G.W., McCaffrey P.A., Davies M.S. Studies on the mechanism of sorbed water killing of bacteria // J. Bacteriol. - 1957. - V.73. - P.661-672], что приводит к повышению активности действующих веществ в процессе обезвоживания лабильных биологически активных материалов.

Согласно изобретению повышение активности действующих веществ в процессе обезвоживания лабильных биологически активных материалов обеспечивается тем, что жидкую фазу обезвоживают из микрокапельного состояния, стабилизированного сухим высокодисперсным гидрофобным разобщителем с наноразмерами частиц.

Заявляемый способ сорбционно-контактного обезвоживания высокодисперсных биологически активных материалов является новым и в литературе не описан.

Техническим результатом заявляемого изобретения является повышение активности действующих веществ в процессе обезвоживания лабильных биологически активных материалов. Технический результат достигается при использовании сорбента с температурой минус 10-20°C.

Сущность изобретения поясняется на следующих примерах, показывающих повышение активности действующих веществ в процессе обезвоживания лабильных биологически активных материалов при реализации способа.

Содержание в препаратах жизнеспособных аэробных микроорганизмов: Francisella tularensis, Yersinia pestis, Serratia marcescens, Entherococcus faecium определяли методом Пастера-Коха на твердых питательных средах. Содержание жизнеспособных анаэробных микроорганизмов Bifidobacterium bifidum определяли в жидких питательных средах методом предельных разведений. Биологическую активность препаратов иммуноглобулинов характеризовали противосальмонеллезной активностью (в титрах РПГА) [ФС 42-3347-97]. Концентрацию вируса вакцинного штамма La-Sota болезни Ньюкасла определяли культивированием в аллантоисной жидкости куриных эмбрионов [Сюрин В.Н., Белоусов Р.В., Фомина Н.В. Ветеринарная вирусология. - М.: Колос, 1986]. Стерилизацию сорбентов с одновременным обезвоживанием проводили в сухо-жаровом шкафу SUP-4 при температуре 120°C с выдержкой в установившемся тепловом режиме не менее 2 часов.

В качестве высокодисперсного гидрофобного разобщителя с наноразмерами частиц использовали высокодисперсный гидрофобный диоксид кремния - аэросил [Кинетика измельчения биопрепаратов в аппарате на базе плоского двухстороннего индуктора / Давыдкин И.Ю., Давыдкин В.Ю., Давыдкин Ю.П., Синицын Л.Е., Гаврин А.Г. // Медицинская промышленность и биотехнология. Наука-производство-маркетинг. - 1992. - Вып.5-6. - С.51-58; Разновидности наночастиц и их применение в биологии и медицине. - http://prostonauka.com/nano/nanotehnologii-v-biologii-i-medicine/nanomaterialy/nanochasticy].

Пример 1. Объект обезвоживания готовили смешением суспензии микроорганизмов Francisella tularensis штамма №33 НИИЭГ с лактозной защитной средой в соотношении 2:1. Микрокапельный порошок туляремийной вакцины получали, диспергируя суспензию Francisella tularensis штамма №33 НИИЭГ с pH=7,0 и содержанием жизнеспособных микроорганизмов 530×10⁹ КОЕ/мл в присутствии гидрофобного аэросила AM-1-300 при их соотношении 10:3, в электромагнитном диспергаторе в течение 20 с.

Затем микрокапельный порошок туляремийной вакцины с жидкой фазой в микрокапельном состоянии, стабилизированном сухим высокодисперсным гидрофобным разобщителем с наноразмерами частиц, с концентрацией жизнеспособных микроорганизмов 485×10⁹ KOE/г смешивали с сорбентом КБ-4П-2 с остаточной влажностью менее 1% и температурой минус 10-15°C в течение 5 мин при соотношении жидкой фазы и сорбента 1:8 в барабанном смесителе. Смесь перегружали в металлические пеналы и помещали для равномерного распределения влаги по всему объему сорбента при температуре 2-8°C в течение 6-12 часов.

Биологическая активность сухого туляремийного вакцинного препарата и его влагосодержание представлены в таблице.

Пример 2. Объект обезвоживания готовили смешением суспензии микроорганизмов Yersinia pestis штамма EV НИИЭГ с лактозной защитной средой в соотношении 2:1. Микрокапельный порошок чумной вакцины получали, диспергируя суспензию Yersinia pestis штамма EV НИИЭГ с pH=7,1 и содержанием жизнеспособных микроорганизмов 360×10⁹ KOE/мл в присутствии гидрофобного аэросила AM-1-300 при их соотношении 10:2,5, в электромагнитном диспергаторе в течение 25 с.

Затем микрокапельный порошок чумной вакцины с жидкой фазой в микрокапельном состоянии, стабилизированном сухим высокодисперсным гидрофобным разобщителем с наноразмерами частиц, с концентрацией жизнеспособных микроорганизмов 320×10⁹ KOE/г смешивали с сорбентом КБ-4П-2 с остаточной влажностью менее 1% и температурой минус 10-15°C в течение 5 мин при соотношении жидкой фазы и сорбента 1:6 в шнековом смесителе. Смесь перегружали в металлические пеналы и помещали для равномерного распределения влаги по всему объему сорбента при температуре 2-8°C в течение 6-12 часов.

Биологическая активность сухого чумного вакцинного препарата и его влагосодержание представлены в таблице.

Пример 3. Объект обезвоживания готовили смешением суспензии микроорганизмов Serratia marcescens шт. ВКМ-851 с лактозной защитной средой в соотношении 2:1. Микрокапельный порошок тест-культуры для проверки фильтров очистки воздуха получали, диспергируя суспензию Serratia marcescens шт. ВКМ-851 с pH=6,9 и содержанием жизнеспособных микроорганизмов 130×10⁹ KOE/мл в присутствии гидрофобного аэросила АМ-1-300 при их соотношении 10:4, в электромагнитном диспергаторе в течение 30 с.

Затем микрокапельный порошок тест-культуры для проверки фильтров очистки воздуха с жидкой фазой в микрокапельном состоянии, стабилизированном сухим высокодисперсным гидрофобным разобщителем с наноразмерами частиц, с концентрацией жизнеспособных микроорганизмов 126×10⁹ KOE/г смешивали с сорбентом КБ-4П-2 с остаточной влажностью менее 1% и температурой минус 10-15°C в течение 5 мин при соотношении жидкой фазы и сорбента 1:4 в шнековом смесителе. Смесь перегружали в металлические пеналы и помещали для равномерного распределения влаги по всему объему сорбента при температуре 2-8°C в течение 6-12 часов.

Биологическая активность тест-культуры для проверки фильтров очистки воздуха и ее влагосодержание представлены в таблице.

Пример 4. Объект обезвоживания готовили смешением суспензии микроорганизмов Bifidobacterium bifidum шт. 1C с сахарозо-молочной защитной средой в соотношении 2:1. Микрокапельный порошок пробиотического препарата получали, диспергируя суспензию Bifidobacterium bifidum шт. 1С с pH=7,0 и содержанием жизнеспособных микроорганизмов 1,4×10⁹ KOE/мл в присутствии гидрофобного аэросила AM-1-300 при их соотношении 10:3, в дисковом диспергаторе в течение 15 с.

Затем микрокапельный порошок пробиотического препарата с жидкой фазой в микрокапельном состоянии, стабилизированном сухим высокодисперсным гидрофобным разобщителем с наноразмерами частиц, с концентрацией жизнеспособных микроорганизмов 1,4×10⁹ KOE/г смешивали с сорбентом - дисперсной окисью алюминия с остаточной влажностью менее 1% и температурой минус 10-15°C в течение 5 мин при соотношении жидкой фазы и сорбента 1:6 в барабанном смесителе. Смесь перегружали в металлические пеналы и помещали для равномерного распределения влаги по всему объему сорбента при температуре 2-8°C в течение 6-12 часов.

Биологическая активность сухого пробиотического препарата и его влагосодержание представлены в таблице.

Пример 5. Объект обезвоживания готовили смешением суспензии микроорганизмов Entherococcus faecium с лактозной защитной средой в соотношении 2:1. Микрокапельный порошок пробиотического препарата получали, диспергируя суспензию Entherococcus faecium с pH=7,2 и содержанием жизнеспособных микроорганизмов 1,8×10⁹ KOE/мл в присутствии гидрофобного аэросила AM-1-300 при их соотношении 10:3, в электромагнитном диспергаторе в течение 20 с.

Затем микрокапельный порошок пробиотического препарата с жидкой фазой в микрокапельном состоянии, стабилизированном сухим высокодисперсным гидрофобным разобщителем с наноразмерами частиц, с концентрацией жизнеспособных микроорганизмов 1,4×10⁹ KOE/г смешивали с сорбентом - дисперсной окисью алюминия с остаточной влажностью менее 1% и температурой минус 10-15°C в течение 5 мин при соотношении жидкой фазы и сорбента 1:5 в шнековом смесителе. Смесь перегружали в металлические пеналы и помещали для равномерного распределения влаги по всему объему сорбента при температуре 2-8°C в течение 6-12 часов.

Биологическая активность сухого пробиотического препарата и его влагосодержание представлены в таблице.

Пример 6. Объект обезвоживания готовили смешением раствора иммуноглобулинов IgG, IgA, IgM с глицином (2%) в качестве защитной среды. Микрокапельный порошок иммунобиологического препарата получали, диспергируя раствор иммуноглобулинов IgG, IgA, IgM с pH=7,0 и противо-сальмонеллезной активностью 1:640 в титрах РПГА в присутствии гидрофобного аэросила R 972 при их соотношении 10:2, в дисковом диспергаторе в течение 20 с.

Затем микрокапельный порошок иммунобиологического препарата с жидкой фазой в микрокапельном состоянии, стабилизированном сухим высокодисперсным гидрофобным разобщителем с наноразмерами частиц, с противосальмонеллезной активностью 1:640 в титрах РПГА смешивали с сорбентом КБ-4П-2 с остаточной влажностью менее 1% и температурой минус 15-20°C в течение 5 мин при соотношении жидкой фазы и сорбента 1:6 в барабанном смесителе. Смесь перегружали в металлические пеналы и помещали для равномерного распределения влаги по всему объему сорбента при температуре 2-8°C в течение 6-12 часов.

Биологическая активность сухого иммунобиологического препарата и его влагосодержание представлены в таблице.

Пример 7. Объект обезвоживания готовили смешением суспензии микроорганизмов Bifidobacterium bifidum шт. 1C с лактозной защитной средой в соотношении 2:1 с раствором иммуноглобулинов IgG, IgA, IgM с глицином (2%) в качестве защитной среды. Микрокапельный порошок комплексного иммунобиологического препарата получали, диспергируя суспензию микроорганизмов Bifidobacterium bifidum шт. 1C в смеси с раствором иммуноглобулинов IgG, IgA, IgM с pH=7,0, противосальмонеллезной активностью 1:640 в титрах РПГА, содержанием жизнеспособных микроорганизмов 1,3×10⁹ KOE/мл в присутствии гидрофобного аэросила AM-1-300 при соотношении суспензия: аэросил 10:3, в дисковом диспергаторе в течение 15 с.

Затем микрокапельный порошок комплексного иммунобиологического препарата с жидкой фазой в микрокапельном состоянии, стабилизированном сухим высокодисперсным гидрофобным разобщителем с наноразмерами частиц, с концентрацией жизнеспособных микроорганизмов 1,3×10⁹ KOE/г и с противосальмонеллезной активностью 1:640 в титрах РПГА смешивали с сорбентом - дисперсной окисью алюминия с остаточной влажностью менее 1% и температурой минус 10-15°C в течение 5 мин при соотношении жидкой фазы и сорбента 1:6 в шнековом смесителе. Смесь перегружали в металлические пеналы и помещали для равномерного распределения влаги по всему объему сорбента при температуре 2-8°C в течение 6-12 часов.

Биологическая активность сухого комплексного иммунобиологического препарата, состоящего из сухих частиц (смеси иммуноглобулинов и бактериальных клеток с компонентами защитной среды), стабилизированных сухим высокодисперсным гидрофобным разобщителем с наноразмерами частиц, и сорбента, составила 1×10⁸ KOE/г и 1:160 в тирах РПГА, а его влагосодержание 10,6% (препарата по прототипу не существует).

Пример 8. Объект обезвоживания готовили смешением суспензии микроорганизмов Bifidobacterium bifidum шт. 1C с лактозной защитной средой в соотношении 2:1 и с суспензией офлоксацина с концентрацией антибиотика 65 мг/мл. Микрокапельный порошок комбинированного иммунобиологическо-антимикробного препарата получали, диспергируя суспензию микроорганизмов Bifidobacterium bifidum шт. 1C в смеси с антибиотиком офлоксацином с pH=6,0, содержанием жизнеспособных микроорганизмов 2,0×10⁹ KOE/мл и концентрацией антибиотика 65 мг/мл в присутствии гидрофобного аэросила АМ-1-300 при соотношении суспензия: аэросил 10:3, в дисковом диспергаторе в течение 20 с.

Затем микрокапельный порошок комбинированного иммунобиологическо-антимикробного препарата с жидкой фазой в микрокапельном состоянии, стабилизированном сухим высокодисперсным гидрофобным разобщителем с наноразмерами частиц, с концентрацией жизнеспособных микроорганизмов 2,0×10⁹ KOE/г и концентрацией антибиотика 50 мг/г смешивали с сорбентом - дисперсной окисью алюминия с остаточной влажностью менее 1% и температурой минус 10-20°C в течение 5 мин при соотношении жидкой фазы и сорбента 1:6 в шнековом смесителе. Смесь перегружали в металлические пеналы и помещали для равномерного распределения влаги по всему объему сорбента при температуре 2-8°C в течение 6-12 часов.

Биологическая активность сухого комбинированного иммунобиологическо-антимикробного препарата, состоящего из сухих частиц (смеси антибиотика и бактериальных клеток с компонентами защитной среды), стабилизированных сухим высокодисперсным гидрофобным разобщителем с наноразмерами частиц, и сорбента, составила 2,1×10⁸ KOE/г при концентрации антибиотика 6,8 мг/г, а его влагосодержание 10,2% (препарата по прототипу не существует).

Пример 9. Объект обезвоживания готовили смешением суспензии вируса болезни Ньюкасла вакцинного штамма La-Sota с защитной средой из обезжиренного молока в соотношении 2:1. Микрокапельный порошок вирусной вакцины получали, диспергируя суспензию вакцинного штамма La-Sota вируса болезни Ньюкасла с pH=7,0 и содержанием жизнеспособных вирусов 10,5 lg ЭИД₅₀/мл, в присутствии гидрофобного аэросила AM-1-300 при их соотношении 10:3, в электромагнитном диспергаторе в течение 20 с.

Затем микрокапельный порошок вирусной вакцины с жидкой фазой в микрокапельном состоянии, стабилизированном сухим высокодисперсным гидрофобным разобщителем с наноразмерами частиц, с содержанием жизнеспособных вирусов 10,4 lg ЭИД₅₀/г смешивали с сорбентом КБ-4П-2 с остаточной влажностью менее 1% и температурой минус 10-15°C в течение 5 мин при соотношении жидкой фазы и сорбента 1:8 в вибрационном смесителе. Смесь перегружали в металлические пеналы и помещали для равномерного распределения влаги по всему объему сорбента при температуре 2-8°C в течение 6-12 часов.

Биологическая активность сухого вирусного вакцинного препарата и его влагосодержание представлены в таблице.

Сухой препарат на основе Биологическая активность препарата Влагосодержание препарата, % до обезвоживания после обезвоживания Francisella tularensis по прототипу 630×10⁹ KOE/мл 8,5×10⁹ KOE/г 8,7 заявляемый 485×10⁹ KOE/г 33×10⁹ KOE/г 8,0 Yersinia pestis по прототипу 400×10⁹ KOE/мл 11×10⁹ KOE/г 11,4 заявляемый 320×10⁹ KOE/г 17×10⁹ KOE/г 11,2 Serratia marcescens по прототипу 210×10⁹ KOE/мл 3,8×10⁹ KOE/г 16,2 заявляемый 126×10⁹ KOE/г 8,6×10⁹ KOE/г 15,9 Bifidobacterium bifidum по прототипу 2×10⁹ KOE/мл 0,7×10⁸ KOE/г 11,1 заявляемый 1,4×10⁹ KOE/г 1,5×10⁸ KOE/г 11,2 Entherococcus faecium по прототипу 1,8×10⁹ KOE/мл 0,4×10⁸ KOE/г 12,7 заявляемый 1,4×10⁹ KOE/г 0,8×10⁸ KOE/г 12,5 иммуноглобулинов IgG, IgA, IgM по прототипу 1:640 1:80 11,0 заявляемый 1:640 1:160 10,8 вируса болезни Ньюкасла по прототипу 10,5 lg ЭИД₅₀/мл 9.5 lg ЭИД₅₀/г 16,0 заявляемый 10,4 lg ЭИД₅₀/г 10,0 lg ЭИД₅₀/г 15,5

Как следует из анализа данных, представленных в таблице, материалы, полученные при реализации заявленного способа сорбционно-контактного обезвоживания, при одинаковом влагосодержании обладают в 1,5-4 раза большей активностью по сравнению с препаратами, приготовленными в соответствии с прототипом, что обеспечивается обезвоживаем жидкой фазы из микрокапельного состояния, стабилизированного сухим высокодисперсным гидрофобным разобщителем с наноразмерами частиц.

В представленных выше примерах приведены одинаковые условия проведения процесса сорбционно-контактного обезвоживания микрокапельных порошков различной природы. Нашими исследованиями было показано, что изменение этих условий в определенных интервалах не оказывает существенного влияния на технический результат изобретения, о чем свидетельствуют данные, представленные в таблицах, характеризующие выживаемость микроорганизмов (на примере Serratia marcescens шт. ВКМ-851) при сорбционно-контактном обезвоживании микрокапельных порошков при различной продолжительности смешения порошка с сорбентом, разном соотношении жидкой фазы и сорбента, при изменении температуры выдерживания после смешения и продолжительности выдерживания после смешения.

Продолжительность смешения порошка с сорбентом, мин Биологическая активность препарата Выживаемость, % до обезвоживания после обезвоживания 1 72×10⁹ KOE/мл 10,1×10⁹ ЛЩУ/г 70,1 5 72×10⁹ KOE/мл 11,1×10⁹ KOE/г 76,4 15 72×10⁹ KOE/мл 10,2×10⁹ KOE/г 70,8 30 72×10⁹ KOE/мл 10,5×10⁹ KOE/г 72,9

Соотношение жидкой фазы и сорбента Биологическая активность препарата Выживаемость, % до обезвоживания после обезвоживания 1:8 87×10⁹ KOE/мл 5,7×10⁹ KOE/г 59,0 1:4 87×10⁹ KOE/мл 10,8×10⁹ KOE/г 62,0 4:1 87×10⁹ KOE/мл 42,1×10⁹ KOE/г 60,5 8:1 87×10⁹ KOE/мл 47,2×10⁹ KOE/г 61,0

Температура выдерживания после смешения, °C Биологическая активность препарата Выживаемость, % до обезвоживания после обезвоживания -10 103х10⁹ КОЕ/мл 8,6×10⁹ KOE/г 50,1 0 103х10⁹ КОЕ/мл 9,4×10⁹ KOE/г 55,0 +15 103х10⁹ КОЕ/мл 9,0×10⁹ KOE/г 52,6 +30 103х10⁹ КОЕ/мл 8,4×10⁹ KOE/г 48,7

Продолжительность выдерживания после смешения, час Биологическая активность препарата Выживаемость, % до обезвоживания после обезвоживания 1 87×10⁹ KOE/мл 11,1×10⁹ KOE/г 63,8 12 87×10⁹ KOE/мл 10,8×10⁹ KOE/г 62,0 24 87×10⁹ KOE/мл 10,0×10⁹ KOE/г 58,5 48 87×10⁹ KOE/мл 10,6×10⁹ KOE/г 60,9

Изобретение относится к медицине и фармацевтической промышленности и касается способа получения сухих биологически активных материалов сорбционно-контактным обезвоживанием. Материалы, содержащие биологически активные вещества, в жидкой фазе переводят в микрокапельное состояние, стабилизированное сухим высокодисперсным гидрофобным разобщителем с наноразмерами частиц с последующим обезвоживанием с помощью сорбента с температурой минус 10-20°C. Изобретение позволяет повысить активность действующих веществ в процессе обезвоживания лабильных биологически активных материалов. 5 табл., 9 пр.

Способ сорбционно-контактного обезвоживания влагоемкими сорбентами материалов, содержащих биологически активные действующие вещества, в жидкой фазе, отличающийся тем, что предварительно материалы, содержащие биологически активные вещества, в жидкой фазе переводят в микрокапельное состояние, стабилизированное сухим высокодисперсным гидрофобным разобщителем с наноразмерами частиц, причем при обезвоживании используют сорбент с температурой минус 10-20°C.