Изобретение относится к сельскому хозяйству, сельскохозяйственной микробиологии и биотехнологии и предназначено для стимуляции роста растений, повышения урожайности и защиты от фитопатогенных грибов в аридной зоне.
Самые современные способы повышения урожайности и защиты растений от болезней основаны на использовании микроорганизмов: бактерий, микромицетов и микроводорослей. Микроводоросли и цианобактерии применяют в виде аксеничных или альгологически чистых культур.
Известен Штамм цианобактерий Nostoc muscorum f. linckia (Roth) Born et. Flash 28-1 106 - активный несимбиотический азотфиксатор из коллекции ВНИИ сельскохозяйственной микробиологии для повышения урожайности растений риса [патент РФ №1180366]. Семена риса инокулировались известным штаммом, выращивались в условиях микроделяночного опыта и определялась урожайность растений.
Недостатками известного метода являются:
- узкий спектр свойств цианобактерий - обладает только стимулирующими свойствами;
- использование одного вида растений - рис;
- низкая урожайность, составляющая 18%.
Наиболее близким, по сути, к заявленному изобретению (прототипом) является способ стимуляции развития, роста и продуктивности растений с применением альгологически чистой культуры Chlorella vulgaris [патент РФ №2448453].
Недостатками известного способа являются:
- отсутствие фунгицидной и антиоксидантной активности культуры;
- осложненный периодический пролив растений в течение всего цикла выращивания растений.
Основной задачей изобретения является создание эффективной технологии выращивания растений, обеспечивающей стимуляцию роста и развития, повышение урожайности и защиту от фитопатогенных грибов в аридных условиях.
Техническим результатом от использования изобретения является увеличение всхожести семян, повышение энергии роста, повышение урожайности растений, защита от фитопатогенов, оздоровление растений и почв, обусловленное наличием антиоксидантных свойств цианобактерий в условиях аридного климата.
Технический результат обеспечивается тем, что семена и растения перед высадкой в грунт обрабатывают суспензией цианобактерий Anabaena constricta IPPAS В-2020 с концентрацией 5 г сухой биомассы цианобактерий на 1 л воды в течение 1 ч и обеспечивают пролив под корень в фазу 2-4 настоящего листа и в фазу цветения и бутонизации растений. Альгологически чистая культура цианобактерий Anabaena constricta IPPAS В-2020 выделена с помощью метода накопительных культур из ризосферы древесного растения Ясеня пенсильванского L., произрастающего в аридной зоне на территории Астраханского региона. Культура цианобактерий хранится на среде BG-11. Состав среды: (г/л): K2HPO4 - 0,04; MgSO4⋅7H2O - 0,075; CaCl2⋅2Н2О - 0,036; Na2CO3 - 0,02; ЭДТА - 0,001; лимонная кислота - 0,006; железо лимонно-аммиачное-0,006; микроэлементы - 1 мл [Нетрусов, А.И. Практикум по микробиологии [Текст]: учеб. пособие для высших учеб. заведений / А.И. Нетрусов, М.А. Егорова, Л.М. Захарчук [и др.] / Под ред. А.И. Нетрусова. - М.: Академия, 2005. - 352 с.].
Сырую и сухую биомассу цианобактерий для приготовления суспензии получали следующим образом. Цианобактерии Anabaena constricta IPPAS В-2020 культивировали в вихревом биореакторе при температуре 28°С в течение 5 суток при 60 об/мин с люминесцентной лампой (4000 кельвин). Посевной материал вносили в количестве 20% от ее общего объема. За это время происходило максимальное наращивание биомассы - 47 мг/м2/ч сухого вещества. Затем биомассу высушивали в термостате при температуре 37°С до постоянного веса и измельчали.
Культура цианобактерий Anabaena constricta IPPAS В-2020 депонирована в Коллекции культур микроводорослей (IPPAS) Федерального государственного бюджетного учреждения науки Института физиологии растений им. К.А. Тимирязева РАН под номером IPPAS В-2020. Справка о депонировании прилагается.
Клетки цианобактерий сине-зеленые, цилиндрические, посередине обычно перешнурованные. Ширина клеток 5,0-6,5 мкм; длина клеток 3,0-4,4 мкм, встречается длина 5-7 мкм. Гетероцисты круглые шаровидные, 5-7 мкм в диаметре. Споры неизвестны.
Способ стимуляции роста и развития растений, повышения урожайности и защиты от фитопатогенных грибов с применением цианобактерий апробирован в лаборатории биотехнологий ФГБОУ ВПО «Астраханский государственный университет», полевых экспериментах на открытом грунте на территории технопарка ФГБОУ ВПО «Астраханский государственный университет» п. Начало Астраханской области и на территории Всероссийского научно-исследовательского института орошаемого овощеводства и бахчеводства ФГБНУ ВНИИОБ, г. Камызяк Астраханской области. Ниже приводятся результаты апробации.
Пример 1. Исследование фунгицидных свойств культуры цианобактерий Anabaena constricta IPPAS В-2020.
Фунгицидную активность культуры цианобактерий исследовали с помощью метода лунок на фитопатогенных грибах Fusarium graminearum, Fusarium sporotrichioides, Fusarium culmorum, Fusarium poae, Alternaria tenuissima, Pythium ultimum, предоставленных ГНУ ВНИИ сельскохозяйственной микробиологии Россельхозакадемии. В лунки помещали супензию цианобактерий в концентрации 5 г абсолютно сухой биомассы цианобактерий на 1 л стерильной дистиллированной воды, в качестве контроля вносили дистиллированную воду. Также в опыте использовали водно-спиртовый экстракт цианобактерий в концентрации 100 мг абсолютно сухой биомассы цианобактерий на 1 мл жидкости (разведение спирта с водой 1/1). В качестве контроля использовали разведение спирта с водой 1/1. Опыты проводили в четырех повторностях. В таблице 1 показан диаметр зоны задержки роста грибов цианобактериями.
Анализ полученных данных показал, что спектр зон подавления роста фитопатогенных грибов колеблется в пределах от 6,0 до 33,0 мм. Наибольший диаметр зоны задержки роста гриба отмечен при использовании суспензии цианобактерий по отношению к Fusarium culmorum - 33,0 мм и Fusarium poae - 28,2 мм. Водно-спиртовый экстракт в большей степени подавлял развитие Fusarium sporotrichioides с зоной 27,3 мм (при микроскопировании отмечен лизис мицелия).
Пример 2. Исследование антиоксидантных свойств цианобактерий Anabaena constricta IPPAS В-2020 фотометрическим методом.
Антиоксидантную активность (АОА) определяли методом оценки колориметрии свободных стабильных радикалов, основанном на реакции DPPH ДФПГ (2,2-дифенил-1-пикрилгидразил (C18H12N5O6, М=394,33), растворенного в этаноле, с образцом антиоксиданта (АН) по схеме:
DPPH*+АН→DPPH-Н+А*
DPPH (ДФПГ) - тест проводили фотометрическим методом с 0,5 мМ спиртовым раствором DPPH (Sigma-Aldrich) при длине волны 510 нм на спектрофотометре «ПромЭкоЛаб» ПЭ - 5300. Для приготовления рабочих растворов применяли 96% этиловый спирт. Измерения проводили через 60 минут. Для измерения готовили следующие растворы:
- в качестве контроля (без присутствия антиоксиданта): 1500 мкл 96% этилового спирта + 500 мкл 0,5 мМ раствора ДФПГ;
- с присутствием антиоксиданта (исследуемых жидкостей): 1480 мкл 96% этилового спирта + 500 мкл 0,5 мМ раствора ДФПГ + 20 мкл исследуемого вещества;
- с присутствием антиоксиданта (исследуемых жидкостей): 1400 мкл 96% этилового спирта + 500 мкл 0,5 мМ раствора ДФПГ + 100 мкл исследуемого вещества.
Для исследования антиоксидантных свойств цианобактерий готовили следующие растворы:
- культуральную жидкость цианобактерий;
- водный экстракт в концентрации 100 мг абсолютно сухой биомассы цианобактерий на 1 мл воды;
- водно-спиртовый экстракт в концентрации 100 мг абсолютно сухой биомассы цианобактерий на 1 мл жидкости (разведение спирта с водой 1/1). Антиоксидантную активность (I, %) вычисляли по формуле:
I(%)=(А0-А1)/А0×100,
где А0 - оптическая плотность в контроле,
A1 - оптическая плотность исследуемых жидкостей.
Данные исследования антиоксидантной активности представлены в таблице 2.
Выраженной антиоксидантной активностью обладает водный экстракт цианобактерий в объеме 20 мкл 39,34%, а также водный и водно-спиртовый экстракты в объеме 100 мкл. Приготовленные исходя из специфичности метода растворы (культуральная жидкость и экстракты) позволили выявить антиоксидантные свойства цианобактерий.
Пример 3. Исследование фитотоксичности и фитостимуляции цианобактерий Anabaena constricta IPPAS В-2020
Фитотоксичность и фитостимулирующие свойства цианобактерий исследовали с помощью теста на семенах кресс-салата согласно ГОСТ 12038-84. Семена кресс-салата помещали в чашки Петри с фильтровальной бумагой и ватой (влажные камеры) в трех повторностях. Предварительно проводили стерилизацию семян, обработав 70% этанолом в течение 3-5 мин, после чего отмывали 3 раза стерильной дистиллированной водой. В каждую камеру помещали 50 семян, которые увлажняли суспензией с концентрацией 5 г абсолютно сухой биомассы цианобактерий на 1 л стерильной дистиллированной воды. Контрольные семена замачивались в стерильной дистиллированной воде. Семена, обработанные суспензией и дистиллированной водой проращивали в течение трех суток в люминостате и температуре 25°С. Результаты представлены в таблице 3.
Всхожесть обработанных семян на 12% больше, чем в контроле. Длина корня при обработке цианобактериями превышает контроль в среднем на 1,4 см. Длина стебля при бактеризации цианобактериями выше на 0,5 см, чем в контроле.
Пример 4. Исследование фитостимулирующей активности цианобактерий Anabaena constricta IPPAS В-2020 в открытом грунте на перце болгарском
Опыты проводили в открытом грунте на территории технопарка ФГБОУ ВПО «Астраханский государственный университет», п. Начало Астраханской области на семенах перца сорта «Калифорнийское чудо». Растения высаживали на 3-рядовых делянках. Расстояние между растениями 40 см. В каждом варианте высаживали 50 растений в трехкратной повторности. Продолжительность опыта 4 месяца. Схема опыта включала варианты: двукратная обработка цианобактериями - бактеризация семян и пролив в фазу 2-4 настоящего листа (без внесения удобрений); контроль - без внесения удобрений. Значение температуры в течение опыта составило от 10 до 40°C.
Для обработки семян и растений перца использовали альгологически чистую культуру цианобактерий вида Anabaena constricta IPPAS В-2020 в виде суспензии (5 г абсолютно сухой биомассы цианобактерий на 1 л стерильной дистиллированной воды). Перед посевом проводили бактеризацию семян, которые выдерживали в течение 1 часа в суспензии с цианобактериями, а контрольные семена - в воде.
В течение опыта на стадии плодоношения замеряли длину корня, высоту растений, массу одного плода, количество плодов и урожайность.
Результаты представлены в таблице 4.
Растения, обработанные суспензий цианобактерий, значительно превышали контрольные по длине корня и высоте растений.
Отмечено ускоренное созревание плодов у обработанных растений на 5-8 дней по сравнению с контролем. Из таблицы 5 видно, что масса одного плода перца и количество плодов при обработке суспензией цианобактерий превышает контрольную массу. Урожайность перца в контроле составила 0,143±0,27 кг/куст, а при обработке суспензией составила 0,272±0,12 кг/куст.
Из таблицы 6 видно, что количество обработанных суспензией цианобактерий растений составило 0%, а в контроле 9%, что подтверждает высокую фунгицидную активность культуры цианобактерий.
Пример 5. Пример способа стимуляции роста и развития, повышения урожайности и защиты от фитопатогенных грибов растений томатов в открытом грунте.
Опыты проводили в открытом грунте на территории Всероссийского научно-исследовательского института орошаемого овощеводства и бахчеводства ФГБНУ ВНИИОБ г. Камызяк Астраханской области на семенах томатов сорта «Дар Заволжья». Растения высаживали в ряды - 10 растений/ряд, расстояние между рядками - 40 см. Расстояние между растениями 40 см. В каждом варианте высаживали 50 растений в трехкратной повторности. Продолжительность опыта 3 месяца. Схема опыта включала варианты: трехкратная обработка цианобактериями - бактеризация семян, пролив в фазу 2-4 настоящего листа, пролив в фазу цветения и бутонизации растений (без внесения удобрений); контроль - без внесения удобрений. Значение температуры в течение опыта составило от 10 до 40°C.
Перед посевом проводили бактеризацию семян томатов, которые выдерживали в течение 1 часа в суспензии с цианобактериями, а контрольные семена - в воде. Для получения суспензии 5 г абсолютно сухой биомассы альгологически чистой культуры цианобактерий вида Anabaena constricta IPPAS В-2020 вносили в 1 л стерильной дистиллированной воды, тщательно перемешивали. В фазу 2-4 настоящего листа и в фазу цветения и бутонизации растений осуществляли пролив под корень в количестве 10-15 мл суспензии на одно растение.
В течение опыта на стадии плодоношения определяли урожайность растений и количество урожайных кустов. Отмечено ускорение плодообразования обработанных растений на 5-8 дней раньше, чем без обработки.
В результате количество урожайных кустов в контроле составило 31,73%, в опыте составило 38,82% (табл. 7). Урожайность томатов в контроле составила 0,31 кг/куст, а при обработке суспензией составила 1,14 кг/куст.
Из таблицы 8 видно, что количество обработанных суспензией цианобактерий растений составило 0%, а в контроле 12%, что подтверждает высокую фунгицидную активность культуры цианобактерий.
Таким образом, заявленный способ обеспечивает стимулирование роста и развития растений, повышение урожайности, защиту от фитопатогенных грибов и оздоровление агрокультур.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Средство для стимуляции роста бобовых, масличных и овощных культур и угнетения сорных растений в агроценозах | 2019 |
|
RU2734987C1 |
СПОСОБ СТИМУЛИРОВАНИЯ РОСТА И ЗАЩИТЫ РАСТЕНИЙ ТАБАКА ОТ РАССАДНЫХ ГНИЛЕЙ | 2020 |
|
RU2740812C1 |
ШТАММ Bacillus atrophaeus ВКПМ-11474, ОБЛАДАЮЩИЙ ФУНГИЦИДНЫМИ СВОЙСТВАМИ И РОСТСТИМУЛИРУЮЩЕЙ АКТИВНОСТЬЮ | 2014 |
|
RU2570624C2 |
ШТАММ STREPTOMYCES CARPATICUS ДЛЯ ЗАЩИТЫ ОТ НАСЕКОМЫХ-ВРЕДИТЕЛЕЙ, ГРИБНЫХ, ВИРУСНЫХ БОЛЕЗНЕЙ И СТИМУЛЯЦИИ РОСТА ТОМАТОВ | 2018 |
|
RU2695157C1 |
ШТАММ БАКТЕРИЙ Serratia ficaria ДЛЯ СТИМУЛЯЦИИ РОСТА СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ РАСТЕНИЙ И ЗАЩИТЫ ОТ ФИТОПАТОГЕННЫХ ГРИБОВ | 2013 |
|
RU2545398C1 |
Способ предпосадочной обработки клубней картофеля | 2017 |
|
RU2663335C1 |
Средство для повышения урожайности и защиты растений семейства пасленовых от фитопатогенных грибов | 2016 |
|
RU2655848C1 |
СРЕДСТВО ДЛЯ ЗАЩИТЫ ОТ БОЛЕЗНЕЙ И СТИМУЛЯЦИИ РОСТА ТОМАТОВ И ОГУРЦОВ В УСЛОВИЯХ ЗАЩИЩЕННОГО ГРУНТА | 2022 |
|
RU2787586C1 |
ШТАММ БАКТЕРИЙ Brevibacillus laterosporus, ПРОДУЦИРУЮЩИЙ ШИРОКИЙ СПЕКТР БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫХ СОЕДИНЕНИЙ | 2010 |
|
RU2422511C1 |
ШТАММ BACILLUS AMYLOLIQUEFACIENS В КАЧЕСТВЕ СРЕДСТВА ДЛЯ БОРЬБЫ С РИЗОКТОНИОЗОМ КАРТОФЕЛЯ | 2022 |
|
RU2800426C1 |
Изобретение относится к биотехнологии и предназначено для стимуляции роста растений, повышения урожайности и защиты от фитопатогенных грибов. Способ предусматривает обработку семян и растений перед высадкой в грунт суспензией цианобактерий Anabaena constricta IPPAS В-2020 в течение 1 часа. Обработку также обеспечивают путем пролива под корень в фазу 2-4 настоящего листа и в фазу цветения и бутонизации. При этом суспензия содержит 5 г. сухой биомассы цианобактерий Anabaena constricta IPPAS В-2020 на 1 л воды. Изобретение позволяет повысить всхожесть семян и урожайность растений и их устойчивость к фитопатогенам. 8 табл., 4 пр.
Способ стимуляции роста растений, повышения урожайности и защиты от фитопатогенных грибов в аридной зоне, заключающийся в том, что семена и растения перед высадкой в грунт обрабатывают суспензией цианобактерий Anabaena constricta IPPAS В-2020 с концентрацией 5 г сухой биомассы цианобактерий на 1 л воды в течение 1 часа и обеспечивают пролив под корень в фазу 2-4 настоящего листа и в фазу цветения и бутонизации растений.
СПОСОБ СТИМУЛЯЦИИ РАЗВИТИЯ, РОСТА И ПРОДУКТИВНОСТИ РАСТЕНИЙ | 2010 |
|
RU2448453C1 |
СПОСОБ ПРЕДПОСЕВНОЙ ОБРАБОТКИ СЕМЯН СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ КУЛЬТУР | 2005 |
|
RU2277314C1 |
СПОСОБ СТИМУЛИРОВАНИЯ РАЗВИТИЯ РАСТЕНИЙ | 2004 |
|
RU2253965C1 |
БАТАЕВА Ю.В., ЕГОРОВ М.А., МАГЗАНОВА Д.К | |||
и др | |||
Стимуляция роста сельскохозяйственных культур семейства пасленовых (на примере томата сорта "Новый принц") цианобактериями | |||
Технологии пищевой и перерабатывающей промышленности | |||
АПК - продукты здорового питания, 2014, N1, с | |||
Паровоз для отопления неспекающейся каменноугольной мелочью | 1916 |
|
SU14A1 |
Авторы
Даты
2017-10-26—Публикация
2015-10-13—Подача