Способ одновременной детекции лимфотропных герпесвирусов ВГЧ6А, ВГЧ6В, ВЭБ и его основных генотипов ВЭБ-1 и ВЭБ-2 Российский патент 2023 года по МПК C12Q1/68 C12Q1/686 C12Q1/6876 C12Q1/6888 

Описание патента на изобретение RU2805956C1

Способ одновременной детекции лимфотропных герпесвирусов ВГЧ6А, ВГЧ6 В, ВЭБ и его основных генотипов ВЭБ-1 и ВЭБ-2

Изобретение относится к области молекулярной биологии, лабораторной диагностики, вирусологии и эпидемиологии, касается способа одновременной детекции лимфотропных герпесвирусов ВГЧ6А, ВГЧ6 В, ВЭБ и его основных генотипов ВЭБ-1 и ВЭБ-2 в образцах клинического материала методом однораундовой мультиплексной ПЦР с электрофоретической детекцией результатов амплификации для перспективного развития методологии молекулярно-биологических исследований в клинической практике и эпидемиологическом надзоре за герпесвирусными инфекциями.

Характеристика генетических особенностей циркулирующих вирусов лежит в основе изучения патогенеза, целевой разработки методов лабораторной диагностики, средств специфической профилактики и лечения, а также совершенствования системы эпидемиологического надзора за инфекциями.

Вирус Эпштейна-Барр (ВЭБ) и вирусы герпеса человека 6А и 6В (ВГЧ6А и ВГЧ6В) убиквитарны, инфицируют представителей всех социальных групп, начиная с раннего детского возраста. Они характеризуются выраженной лимфотропностью, способностью к хромосомной интеграции генома, модуляции иммунного ответа организма хозяина, онкогенным потенциалом.

ВЭБ общеизвестен как самый частый возбудитель инфекционного мононуклеоза (ИМ) (76,6% случаев) [Демина О.И., Тихомиров Д.С., Чеботарева Т.А., Мазанкова Л.Н., Туполева Т.А. Клиническая значимость вирусологических методов верификации этиологии инфекционного мононуклеоза//Детские инфекции - 2020 - Т. 19, №2 - С.29-37.], ВГЧ6 В является этиологическим агентом внезапной экзантемы, реже ИМ, в то время как специфическая форма ВГЧ6А инфекции еще не определена [Попкова М.И., Уткин О.В., Брызгалова Д.А. Сравнительная характеристика бета-герпес-вирусов человека 6А и 6В. Современный взгляд на проблему// Журнал инфектологии. - 2021. - Т. 13, №3- С.5-18.]. Спектр ВЭБ- и ВГЧбА/В-ассоциированных заболеваний у детей и взрослых постоянно расширяется и уточняется.

ВЭБ характеризуется генетической гетерогенностью. Первой и общепринятой классификацией генетического разнообразия ВЭБ является деление на два основных типа - ВЭБ-1 и ВЭБ-2 по уровню различий в длине открытой рамки считывания домена U2 и белка EBNA-2 между штаммами В95-8 (тип 1) и AG876 (тип 2) [Dambaugh Т., Hennessy К., Chamnankit L., Kieff Е. U2 region of Epstein-Barr virus DNA may encode Epstein-Barr nuclear antigen 2//Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 1984, vol. 81, P. 7632-7636.]. Известно, что в гене EBNA-2 степень идентичности между двумя типами вируса по нуклео-тидным и аминокислотным последовательностям составляет 70 и 54% соответственно [Knipe D.M., Howley P.M. Fields virology. 6th ed. Philadelphia: Wolters Kluwer Health/Lippincott Williams & Wilkins; 2013.]. При этом ВЭБ-2 характеризуется меньшей степенью разнообразия по сравнению с ВЭБ-1. Внутри каждого типа наибольшая дивергенция отмечается для генов EBNA-1 и LMP-1 [Kaymaz Y., Oduor СЛ., Aydemir О., Luftig М.А., Otieno J.A., Ong'echa J.M., et al. Epstein-Barr virus genomes reveal pulation structure and type 1 association with endemic Burkitt lymphoma//J. Virol - 2020; 94(17).]. Основное фенотипическое различие между двумя типами вируса заключается в том, что ВЭБ-1 трансформирует В-лимфоциты человека более эффективно, чем ВЭБ-2 [Rickinson А.В., Young L.S., Rowe М. Influence of the Epstein-Barr virus nuclear antigen EBNA 2 on the growth phenotype of virus-transformed В cells//J.Virol- 1987. 61(5): 1310-7.]. В экспериментах in vitro установлено, что разные штаммы одного типа (ВЭБ-1) обладают выраженными отличиями в трансформирующем потенциале и клеточном тропизме, что может предопределять развитие разных типов опухолей [Tsai М.Н., Lin X., Shumilov А., Bernhardt К., Feederle R., Poirey R., et al. The biological properties of different Epstein-Barr virus strains explain their association with various types of can-cers//Oncotarget - 2017. 8(6).- 10238-54.]. А недавние сообщения о том, что ВЭБ-2 инфицирует Т-клетки как в культуре, так и in vivo (например, у кенийских детей), определяют необходимость дальнейшего развития представлений о биологическом значении основных типов ВЭБ, в том числе с позиций оценки геномных вариаций вируса [Correia S., Palser A., Elgueta Karstegl С, Middeldorp J.M., Ramayanti О., Cohen J.I., et al. Natural variation of Epstein-Barr virus genes, proteins, and primary MicroRNA//J.Virol- 2017. 91(15): e00375-17.]. Оба типа ВЭБ встречаются повсеместно, при этом их распределение имеет географические особенности. ВЭБ-1 является основным типом, распространенным во всем мире, преобладает в популяции жителей Европы, Америки, Китая и Южной Азии. Темпы изучения ВЭБ-2 отстают, поскольку инфицированные этим типом вируса люди встречаются реже, в основном в регионе Африки к югу от Сахары и в Папуа - Новой Гвинее [Smatti М.К., Al-Sadeq D.W., Ali N.H., Pintus G., AbouSaleh H., Nasrallah G.K. Epstein-Barr virus epidemiology, serology, and genetic variability of LMP-1 oncogene among healthy population: an update// Front. Oncol. 2018; 8: 211.]. Небольшой процент представителей европеоидной расы также инфицированы ВЭБ-2 [Correia S., Palser A., Elgueta Karstegl С, Middeldorp J.M., RamayantiO., Cohen J.I., et al. Natural variation of Epstein-Barr virus genes, proteins, and primary MicroRNA// J. Virol- 2017. 91(15): e00375-17.]. В России только начинают появляться первые публикации по изучению распространенности основных типов ВЭБ [Смирнова К.В., Сенюта Н.Б., Лубенская А.К., Душенькина Т.Е., Гурцевич В.Э. Древние варианты вируса Эпштей- на-Барр (Herpesviridae, Lymphocryptovirus, HHV-4): гипотезы и факты// Вопросы вирусологии. -2020. - Т.65, №2. - С.77-86.; Попкова М.И., Уткин О.В., Соболева Е.А., Сахарнов Н.А., Брызгалова Д.А., Сенатская А.О. и соавт.Методические основы дифференциальной детекции ВЭБ1/ВЭБ2 и ВГЧ6А/ВГЧ6 В//Инфекция и иммунитет.- 2021. - Т.11, №6 - С.1057-1066.]. Различия отмечаются не только в географическом распространении типов вируса, но также и среди отдельных социальных групп. Так, в когорте гомосексуальных мужчин в западных странах по сравнению с общей популяцией наблюдается более высокая частота инфицирования ВЭБ-2, в частности, в группах ВИЧ-инфицированных индивидов. Считается, что пациенты с иммунодефицитными состояниями более восприимчивы к инфицированию обоими типами ВЭБ [Traore L., Nikiema О., Ouattara А.К., Compaore T.R., Soubeiga S.T., Diarra В., et al. EBV and HHV-6 circulating subtypes in people living with HIV in Burkina Faso, impact on CD4 T cell count and HIV viral load//Mediterr. J. Hematol. Infect. Dis-2017. 9(1): e2017049.]. Патогенетическая роль каждого из них до конца не изучена, доказательств связи генотипов с развитием различных заболеваний недостаточно.

Согласно новой международной классификации, принятой в 2012 г., вирусы ВГЧ6А и ВГЧ6 В являются самостоятельными таксономическими единицами [Adams M.J., Carstens Е.В. Ratification vote on taxonomic proposals to the International Committee on Taxonomy of Viruses//Arch. Virol-2012.157(7).: 1411-22.]. Оба герпесвируса относят к роду Roseolovirus. Их генетический материал представлен двуцепочечной ДНК. ВГЧ6А и ВГЧ6 В различаются особенностями культивирования, последовательностям нуклеотидов и клинико-эпидемиологическими показателями. В зависимости от сравниваемого гена последовательность ДНК двух вариантов вируса совпадает на 75-95% [Isegawa Y., Mukai Т., Nakano К., et al. Comparison of the complete DNA sequences of human herpesvirus 6 variants A and B//J Virol. -1999. 73 (10): 8053-63.; Dominguez G., Dambaugh T.R., Stamey F.R., Dewhurst S., Inoue N., Pellett P.E. Human herpesvirus 6B genome sequence: coding content and comparison with human herpesvirus 6A//J. Virol. -1999.73 (10): 8040-52.; Achour A., Malet I., Le Gal F., et al. Variability of gB and gH genes of human herpesvirus-6 among clinical specimens//.!. Med. Virol. - 2008.80 (7): 1211-21.]. ВГЧ6А описан как более нейровирулентный по сравнению с ВГЧ6 В и часто выявляется у пациентов с демиелинизирующими заболеваниями такими, как рассеянный склероз [Nitsche A., Muller C.W., Radonic A., et al. Human herpesvirus 6A DNA is detected frequently in plasma but rarely in peripheral blood leukocytes of patients after bone marrow transplantation//.!. Infect. Dis.-2001.183(1): 130-3.; Cone R.W., Huang M.L., Hackman R.C., Corey L. Coinfection with human herpesvirus 6 variants A and В in lung tissue//J. Clin. Microbiol. -1996. 34 (4): 877-81.; Hall C.B., Caserta M.T., Schnabel K.C., et al. Persistence of human herpesvirus 6 according to site and variant: possible greater neurotropism of variant A//Clin. Infect. Dis.- 1998. 26(1): 132-7.; Alvarez-Lafuente R., De Las Heras V., Bartolome M., Picazo J.J., Arroyo R. Relapsing-remitting multiple sclerosis and human herpesvirus 6 active infection//Arch. Neurol.- 2004. 61 (10): 1523-7.; Crawford J.R., Kadom N., Santi M.R., Mariani В., Lavenstein B.L. Human herpesvirus 6 rhombencephalitis in immunocompetent children//J. Child. Neurol.- 2007. 22 (11): 1260.]. ВГЧ6 В при первичном заражении вызывает распространенную детскую болезнь - розеолу, известную как внезапная экзантема (exanthema subitum) или «шестая болезнь» [Yamanishi К., Okuno Т., Shiraki К. et al. Identification of human herpesvirus-6 as a causal agent for exanthem subitum//Lancet.- 1988.1 (8594): 1065.].

Известны серологические способы определения маркеров ВЭБ и ВГЧ6 как иммунофлюоресцентный метод, иммуноферментный анализ (ИФА), иммуноблоттинг, иммунопреципитация. Доступные в настоящий момент серологические тест-системы не позволяют дифференцировать ВЭБ и ВГЧ6А и ВГЧ6В.

Известны способы дифференциации ВГЧ6А и ВГЧ6 В методом ПЦР с последующей электрофоретической детекцией продуктов амплификации фрагмента гена U89/90 ВГЧ6, различающихся по молекулярной массе у ВГЧ6А и ВГЧ6В за счет присутствия инсерций размерами 228 пар нуклеотидов (п.н.) и 108 п. н. соответственно [JP 2003135100 А,2003-05-13.] и методом ПЦР в режиме реального времени с использованием специфических праймеров HHV6F 5'-CGGATACAGTAAGACGGGATAT-3' и HHV6R 5'-ACGTAAGCTTGCACAATGC-3' для амплификации участка гена U67; зондов, меченных флуорофорами (F1 и F2), и соответствующими им гасителями (Q1 и Q2) - HHV6AZ F1-GC AATAGATTTGGAAACGCGGCAT-Q1 и HHV6BZ F2-GCAATAGATTCGGAAATGCGGCAT-Q2, для выявления ВГЧ6А и ВГЧ6В соответственно [патент РФ №2627607 от 09.08.2017.]. Известные способы не обеспечивают одновременной детекции основных генотипов ВЭБ, а также вирусов ВГЧ6А и ВГЧ6В.

Известен способ диагностики герпесвирусной инфекции, включающий детекцию вирусной ДНК в исследуемом материале путем проведения двухраундовой ПЦР с использованием в первом раунде двух внешних праймеров и матрицы в виде участка вирусной ДНК с получением амплификата, а во втором раунде - двух внутренних праймеров и матрицы в виде полученного в первом раунде амплификата с последующим определением образовавшихся во втором раунде продуктов амплификации методом горизонтального электрофореза в агарозном геле [С.А. Клинчева и др. Использование метода nested-полимеразой цепной реакции для быстрого выявления цитомегаловируса в лейкоцитах периферической крови пациентов после трансплантации костного мозга // Вопр. вирусологии. - 1996, Т. 41. №4. С.147-149.]. Однако известным способом определяется только один тип герпесвируса - цитомегаловирус (ЦМВ). Для определения других типов герпесвирусов необходимо проведение ПЦР с использованием других, дополнительных праймеров, что делает определение длительным, дорогостоящим и трудоемким.

Известен также способ диагностики герпесвирусной инфекции путем проведения двухэтапной ПЦР с использованием на первом этапе двух внешних праймеров I и II, а на втором - двух внутренних праймера I и III. Два этапа ПЦР включают три стадии: первая стадия в один цикл включает денатурацию и отжиг, вторая стадия - в 30 циклов включает элонгацию, денатурацию и отжиг, а третья стадия в один цикл включает элонгацию. Продукты амплификации дифференцируют путем рестрикционного анализа, например, электрофорезом в горизонтальном агарозном геле [патент РФ №2192473С1, 10.11-2002.]. Способ позволяет одновременно определять ДНК ВПГ 1, ВПГ 2, ЦМВ и ВЭБ.

В настоящее время в России дифференциация вариантов (генотипирование) ВГЧ6А, ВГЧ6 В и ВЭБ-1 и ВЭБ-2 в диагностических целях не проводится. Работы зарубежных и отечественных авторов, изучающих распространенность ВЭБ-1, ВЭБ-2, ВГЧ6А, ВГЧ6В, а также их ассоциацию с различными заболеваниями, базируются на использовании серии индивидуальных «вложенных» ПЦР-тестов [Mendes, Т.М. Epstein-Barr virus nuclear antigen-2 detection and typing in immunocompromised children correlated with lymphoproliferative disorder biopsy findings// Braz. J. Infect Dis. -2008. - Vol.12, №3. - P. 186-191.4.; Sushruth, R. Quantitative detection and differentiation of human herpesvirus 6 subtypes in bone marrow transplant patients by using a single real-time polymerase chain reaction assay//Biology of Blood and Marrow Transplantation. - 2005. - Vol.11, №7. - P. 530-541.]. Это делает процесс детекции вирусов и их генотипирование многооперационным, трудоемким и малодоступным для использования в рутинной клинической практике.

Задачей, на решение которой направлено заявляемое изобретение, является разработка способа одновременной детекции лимфотропных герпесвирусов ВГЧ6А, ВГЧ6В, ВЭБ и его основных генотипов ВЭБ-1 и ВЭБ-2 методом однораундовой мультиплексной ПЦР с электрофоретической детекцией результатов амплификации.

Технический результат, достигаемый настоящим изобретением, заключается в одновременном определении ВГЧ6А, ВГЧ6В, а также основных генотипов ВЭБ (ВЭБ-1 и ВЭБ-2) в одной пробе, сокращении времени и упрощении процедуры исследования. Способ осуществляется следующим образом.

ПЦР проводят в один раунд по единому протоколу амплификации с соблюдением следующих режимов: инициация 95°С - 1 мин 30 сек, 45 циклов: 95°С - 30 сек, 60,5°С - 40 сек, 72°С - 1 мин 30 сек, финальная элонгация 72°С - 8 мин.

Сущность заявленного изобретения поясняется чертежами, где Фиг. 1 представляет электрофореграмму результатов однораундного варианта мультиплексной ПЦР для раздельной детекции ВЭБ-1, ВЭБ-2, ВГЧ6А и ВГЧ6В, где М - маркер молекулярных масс; 1,2,3 - образцы с мультиплексным вариантом ПЦР: ВЭБ-1 (497 п. н.), ВГЧ6В (431 п. н.), ВГЧ6А (206 п. н.), ВЭБ-2 (162 п. н.), K+1 - положительный контроль ВЭБ-1 (497.п.н.), K+2 - положительный контроль ВЭБ-2 (162 п. н.), K+3 - положительный контроль ВГЧ6 В (431 п. н.), ВГЧ6А (206 п. н.), K-1 - отрицательный контроль ВЭБ-1, К-2 - отрицательный контроль ВЭБ-2, К-3 - отрицательный контроль ВГЧ6В, ВГЧ6А;

Фиг. 2 представляет результаты электрофоретической детекции в агарозном геле, где в первом клиническом образце идентифицировали ВЭБ-1 (497 п. н.) и ВГЧ6 В (431 п. н.), во втором образце - ВЭБ-1 (497 п. н.) и ВГЧ6А (206 п. н.), в третьем образце - ВГЧ6 В (431 п. н.) и ВЭБ-2 (162 п. н.) - обозначены цифрами 1, 2 и 3, соответственно, М - маркер молекулярных масс, К- отрицательный контроль, K+mix - положительный контроль на ВЭБ-1, ВЭБ-2, ВГЧ6А, ВГЧ6 В.

Сущность способа поясняется примерами.

Пример 1. Осуществление способа

Подготовительный этап.

Экстракция ДНК ВЭБ из образцов биологического материала.

Ход анализа

Раздельную детекцию ВЭБ-1, ВЭБ-2, ВГЧ6А, ВГЧ6В методом мультиплексной ПЦР проводили в один раунд. При этом использовали специфические пары праймеров EBV1F 5'-TCTTGATAGGGATCCGCTAGGATA-3', EBV1R 5'-ACCGTGGTTCTGGACTATCTGGATC-3' амплифицирующие фрагмент ВЭБ-1 размером 497 п.н., EBV2F 5 '-CATGGTAGCCTTAGGACATA-3', EBV2R 5' - AG ACTTAGTTGATGCCCT AG-3' амплифицирующие фрагмент ВЭБ-2 размером 162 п.н., HHV-6F 5'-CTCATAAGGTGCTGAGTGATCAGTT-3', HHV-6R 5 '-ССТС AGTGACAGATCTGGGC-3', амплифицирующие фрагменты ВГЧ6А размером 206 п. н. и ВГЧ6 В размером 431 п. н., соответственно. Состав реакционной смеси общим объемом 25 мкл на реакцию включал: праймеры (5 пМ в реакцию), 5-кратный Taq Red буфер 12,5 мМ Mg2+, 5 е.a. HS Taq ДНК-полимеразы, смесь дезоксинуклеозидтрифосфатов до конечной концентрации 0,1 мМ; деионизированную воду I типа. В качестве матрицы использовали выделенную ДНК в объеме 5 мкл на реакцию. Применяли оптимизированный единый лабораторный протокол амплификации. Условия амплификации: инициация 95°С - 1 мин 30 сек, 45 циклов: 95°С - 30 сек, 60,5°С - 40 сек, 72°С - 1 мин 30 сек, финальная элонгация 72°С - 8 мин. Продукты ПЦР амплификации визуализировали с помощью горизонтального электрофореза в агарозном геле, содержащем бромид этидия. Результаты детектировали на трансиллюминаторе с использованием прилагающегося к нему программного обеспечения.

Оценка результатов.

По результатам электрофореза в агарозном геле продуктов амплификации специфические фрагменты размером 497 п. н. соответствуют ВЭБ-1, 431 п. н. - ВГЧ6 В, 206 п. н. - ВГЧ6А, 162 п. н. - ВЭБ-2. В качестве стандарта для определения длины двуцепочечных молекул ДНК применяли маркер длин ДНК и положительные контроли данных фрагментов, специфичность которых была подтверждена секвенированием по Сэнгеру. Полученные данные выражали в качественном формате - обнаружено или не обнаружено.

Пример 2. Применение мультиплексного варианта ПЦР для идентификации ВЭБ-1, ВЭБ-2, ВГЧ6А, ВГЧ6 В.

Три пробы положительные на ДНК ВЭБ, ВГЧ6А, ВГЧ6 В (по результатам предварительно проведенной ПЦР в реальном времени) исследовали с помощью мультиплексного варианта ПЦР по заявляемому способу. По результатам электрофоретической детекции в агарозном геле в первом образце идентифицировались ВЭБ-1 (497 п. н.) и ВГЧ6 В (431 п. н.), во втором образце - ВЭБ-1 (497 п. н.) и ВГЧ6А (206 п. н.), в третьем образце -ВГЧ6 В (431 п. н.) и ВЭБ-2 (162 п. н.).

Заявляемый вариант мультиплексной ПЦР, ориентированный на детекцию ВЭБ-1 и ВЭБ-2, ВГЧ6А, ВГЧ6 В, отличается проведением амплификации в один раунд по единому протоколу ПЦР, что обеспечивает мультиплексность, сокращение времени анализа (один раунд) и количества используемых реагентов. Исследования могут проводиться в одной пробирке.

--->

<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>

<!DOCTYPE ST26SequenceListing PUBLIC "-//WIPO//DTD Sequence Listing

1.3//EN" "ST26SequenceListing_V1_3.dtd">

<ST26SequenceListing originalFreeTextLanguageCode="ru"

dtdVersion="V1_3" fileName="детекция ВГЧ6А, ВГЧ6В, ВЭБ, ВЭБ-1,

ВЭБ-2.xml" softwareName="WIPO Sequence" softwareVersion="2.2.0"

productionDate="2023-04-05">

<ApplicationIdentification>

<IPOfficeCode>RU</IPOfficeCode>

<ApplicationNumberText>2023103931</ApplicationNumberText>

<FilingDate>2023-02-20</FilingDate>

</ApplicationIdentification>

<ApplicantName languageCode="ru">Федеральное бюджетное учреждение

науки «Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии

и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной» Федеральной службы по

надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека

(ФБУН ННИИЭМ им. академика И.Н. Блохиной

Роспотребнадзора)</ApplicantName>

<ApplicantNameLatin>Blokhina Scientific Research Institute of

Epidemiology and Microbiology of Nizhny Novgorod</ApplicantNameLatin>

<InventionTitle languageCode="ru">Способ одновременной детекции

лимфотропных герпесвирусов ВГЧ6А, ВГЧ6В, ВЭБ и его основных генотипов

ВЭБ-1 и ВЭБ-2</InventionTitle>

<SequenceTotalQuantity>6</SequenceTotalQuantity>

<SequenceData sequenceIDNumber="1">

<INSDSeq>

<INSDSeq_length>24</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..24</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>other DNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

<INSDQualifier id="q15">

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>Human gammaherpesvirus

4</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

</INSDFeature_quals>

</INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>tcttgatagggatccgctaggata</INSDSeq_sequence>

</INSDSeq>

</SequenceData>

<SequenceData sequenceIDNumber="2">

<INSDSeq>

<INSDSeq_length>25</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..25</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>other DNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

<INSDQualifier id="q16">

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>Human gammaherpesvirus

4</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

</INSDFeature_quals>

</INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>accgtggttctggactatctggatc</INSDSeq_sequence>

</INSDSeq>

</SequenceData>

<SequenceData sequenceIDNumber="3">

<INSDSeq>

<INSDSeq_length>20</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..20</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>other DNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

<INSDQualifier id="q17">

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>Human gammaherpesvirus

4</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

</INSDFeature_quals>

</INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>catggtagccttaggacata</INSDSeq_sequence>

</INSDSeq>

</SequenceData>

<SequenceData sequenceIDNumber="4">

<INSDSeq>

<INSDSeq_length>20</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..20</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>other DNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

<INSDQualifier id="q18">

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>Human gammaherpesvirus

4</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

</INSDFeature_quals>

</INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>agacttagttgatgccctag</INSDSeq_sequence>

</INSDSeq>

</SequenceData>

<SequenceData sequenceIDNumber="5">

<INSDSeq>

<INSDSeq_length>25</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..25</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>other DNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

<INSDQualifier id="q19">

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>Human betaherpesvirus

6A</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

</INSDFeature_quals>

</INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>ctcataaggtgctgagtgatcagtt</INSDSeq_sequence>

</INSDSeq>

</SequenceData>

<SequenceData sequenceIDNumber="6">

<INSDSeq>

<INSDSeq_length>20</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..20</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>other DNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

<INSDQualifier id="q21">

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>Human betaherpesvirus

6B</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

</INSDFeature_quals>

</INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>cctcagtgacagatctgggc</INSDSeq_sequence>

</INSDSeq>

</SequenceData>

</ST26SequenceListing>

<---

Похожие патенты RU2805956C1

название год авторы номер документа
Способ детекции генотипов 1 и 2 вируса Эпштейна-Барр 2022
  • Уткин Олег Владимирович
  • Попкова Мария Игоревна
  • Сенатская Анна Олеговна
  • Брызгалова Дарья Алексеевна
  • Сахарнов Николай Александрович
RU2789353C1
Тест-система и способ обнаружения специфических фрагментов нуклеиновых кислот 16 патогенов с использованием изотермической реакции амплификации 2023
  • Кошель Елена Ивановна
  • Рубель Мария Сергеевна
  • Березовская Мария Юрьевна
  • Бобков Глеб Алексеевич
  • Юдин Сергей Михайлович
  • Кескинов Антон Артурович
  • Макаров Валентин Владимирович
  • Бочкаева Занда Владимировна
RU2810751C1
Способ диагностики тяжёлой формы течения ВЭБ-ассоциированного инфекционного мононуклеоза 2020
  • Уткин Олег Владимирович
  • Филатова Елена Николаевна
  • Сахарнов Николай Александрович
RU2732012C1
Способ прогнозирования тяжести течения ВЭБ-ассоциированного инфекционного мононуклеоза 2020
  • Уткин Олег Владимирович
  • Филатова Елена Николаевна
  • Сахарнов Николай Александрович
RU2732010C1
НАБОР СИНТЕТИЧЕСКИХ ОЛИГОНУКЛЕОТИДНЫХ ПРАЙМЕРОВ ДЛЯ ВЫЯВЛЕНИЯ РНК ВИРУСА БЕШЕНСТВА И СПОСОБ ВЫЯВЛЕНИЯ РНК ВИРУСА БЕШЕНСТВА С ПОМОЩЬЮ СИНТЕТИЧЕСКИХ ОЛИГОНУКЛЕОТИДНЫХ ПРАЙМЕРОВ В ПОЛИМЕРАЗНОЙ ЦЕПНОЙ РЕАКЦИИ С ОБРАТНОЙ ТРАНСКРИПЦИЕЙ (ОТ-ПЦР) 2014
  • Иванов Аркадий Васильевич
  • Хисматуллина Наиля Анваровна
  • Усольцев Константин Валерьевич
  • Гулюкин Алексей Михайлович
  • Александрова Наталья Михайловна
  • Южаков Антон Геннадьевич
  • Сабирова Валентина Васильевна
  • Чернов Альберт Николаевич
  • Иванов Александр Аркадьевич
  • Забережный Алексей Дмитриевич
  • Самерханов Ильнур Иршатович
  • Паршикова Анна Владимировна
  • Фаизов Тагир Хадиевич
RU2575088C1
СПОСОБ ДИФФЕРЕНЦИАЛЬНОЙ ДИАГНОСТИКИ ИНФЕКЦИОННОГО МОНОНУКЛЕОЗА РАЗЛИЧНОЙ ЭТИОЛОГИИ 2019
  • Филатова Елена Николаевна
  • Сахарнов Николай Александрович
  • Князев Дмитрий Игоревич
  • Уткин Олег Владимирович
RU2707077C1
Способ дифференциальной диагностики герпесвирусной микст-инфекции 2020
  • Уткин Олег Владимирович
  • Филатова Елена Николаевна
  • Князев Дмитрий Игоревич
  • Сахарнов Николай Александрович
  • Преснякова Наталия Борисовна
RU2739854C1
Способ диагностики лейкоза крупного рогатого скота с использованием ПЦР в режиме реального времени 2018
  • Абакин Сергей Стефанович
  • Красовская Татьяна Леонидовна
RU2722137C1
Способ идентификации вариантов А и В вируса герпеса человека 6-го типа 2016
  • Ведерников Виталий Евгеньевич
  • Никольский Михаил Андреевич
  • Вязовая Анна Александровна
  • Лиознов Дмитрий Анатольевич
  • Нарвская Ольга Викторовна
RU2627607C1
Способ лечения неходжкинских лимфом орбиты 2015
  • Саакян Светлана Ваговна
  • Мякошина Елена Борисовна
  • Кричевская Галина Исааковна
  • Андреева Татьяна Анатольевна
  • Андрюшин Александр Евгеньевич
  • Хорошилова Инна Петровна
  • Захарова Галина Петровна
  • Трухина Александра Валерьевна
RU2612006C1

Иллюстрации к изобретению RU 2 805 956 C1

Реферат патента 2023 года Способ одновременной детекции лимфотропных герпесвирусов ВГЧ6А, ВГЧ6В, ВЭБ и его основных генотипов ВЭБ-1 и ВЭБ-2

Изобретение относится к области молекулярной биологии. Описан способ одновременной детекции лимфотропных герпесвирусов ВГЧ6А, ВГЧ6В, ВЭБ и его основных генотипов ВЭБ-1 и ВЭБ-2 в образцах клинического материала методом однораундовой мультиплексной ПЦР с электрофоретической детекцией. ПЦР проводят в один раунд по единому протоколу амплификации: инициация 95°С - 1 мин 30 с, 45 циклов: 95°С - 30 с, 60,5°С - 40 с, 72°С - 1 мин 30 с, финальная элонгация 72°С - 8 мин, при этом используют пары специфических праймеров: амплифицирующие фрагмент ВЭБ-1 размером 497 п.н., амплифицирующие фрагмент ВЭБ-2 размером 162 п.н., амплифицирующие фрагменты ВГЧ6А размером 206 п.н. и ВГЧ6В размером 431 п.н. соответственно. Технический результат заключается одновременном определении ВГЧ6А, ВГЧ6В, а также основных генотипов ВЭБ (ВЭБ-1 и ВЭБ-2) в одной пробе, сокращении времени и упрощении процедуры исследования. 2 ил., 2 пр.

Формула изобретения RU 2 805 956 C1

Способ одновременной детекции лимфотропных герпесвирусов ВГЧ6А, ВГЧ6В, ВЭБ и его основных генотипов ВЭБ-1 и ВЭБ-2 методом мультиплексной ПЦР с электрофоретической визуализацией продуктов амплификации в агарозном геле, отличающийся тем, что ПЦР проводят в один раунд по единому протоколу амплификации: инициация 95°С - 1 мин 30 с, 45 циклов: 95°С - 30 с, 60,5°С - 40 с, 72°С - 1 мин 30 с, финальная элонгация 72°С - 8 мин, при этом используют пары специфических праймеров:

EBV1F 5'-TCTTGATAGGGATCCGCTAGGATA-3',

EBV1R 5'-ACCGTGGTTCTGGACTATCTGGATC-3',

амплифицирующие фрагмент ВЭБ-1 размером 497 п.н.,

EBV2F 5'-CATGGTAGCCTTAGGACATA-3',

EBV2R 5'-AGACTTAGTTGATGCCCTAG-3',

амплифицирующие фрагмент ВЭБ-2 размером 162 п.н.,

HHV-6F 5'-CTCATAAGGTGCTGAGTGATCAGTT-3',

HHV-6R 5'-CCTCAGTGACAGATCTGGGC-3',

амплифицирующие фрагменты ВГЧ6А размером 206 п.н. и ВГЧ6В размером 431 п.н. соответственно.

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 2023 года RU2805956C1

Попкова Мария Игоревна, Уткин Олег Владимирович, Брызгалова Дарья Алексеевна, Сенатская Анна Олеговна, Соболева Евгения Андреевна, Сахарнов Николай Александрович, Филатова Елена Николаевна, Кулова Екатерина Александровна МЕТОДИЧЕСКИЕ ПОДХОДЫ К ДИФФЕРЕНЦИАЛЬНОЙ ДЕТЕКЦИИ ВЭБ-1/ВЭБ-2 И ВГЧ-6A/ВГЧ-6B В СЛЮНЕ // Инфекция и иммунитет
Способ получения продуктов конденсации фенолов с формальдегидом 1924
  • Петров Г.С.
  • Тарасов К.И.
SU2022A1
Переносная печь для варки пищи и отопления в окопах, походных помещениях и т.п. 1921
  • Богач Б.И.
SU3A1
RU

RU 2 805 956 C1

Авторы

Уткин Олег Владимирович

Попкова Мария Игоревна

Сахарнов Николай Александрович

Брызгалова Дарья Алексеевна

Даты

2023-10-24Публикация

2023-02-20Подача