БЛОК МНОГОФУНКЦИОНАЛЬНЫХ МИКРОКАМЕР ДЛЯ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЙ ОЦЕНКИ ОВИЦИДНОЙ ЭФФЕКТИВНОСТИ ДЕЗИНФИЦИРУЮЩИХ СРЕДСТВ ДЛЯ ДЕЗИНВАЗИИ РАЗЛИЧНЫХ ОБЪЕКТОВ, КОНТАМИНИРОВАННЫХ ЯЙЦАМИ ГЕЛЬМИНТОВ, ООЦИСТАМИ И ЦИСТАМИ ПРОСТЕЙШИХ Российский патент 2024 года по МПК G01N21/64 A61L2/16 

Изобретение относится к области медицины, ветеринарии, паразитологии, а именно к средствам и способам экспериментального отбора овицидных химических соединений для обеззараживания (дезинвазии) различных объектов, контаминированных яйцами гельминтов, ооцистами и цистами простейших - возбудителей паразитарных болезней.

Профилактика паразитозов – одна из основных задач санитарной гельминтологии. Ее важная составляющая – охрана окружающей среды от загрязнения инвазионным материалом. Из всех элементов окружающей среды почва, наряду с водоемами, наиболее часто подвергается обсеменению яйцами гельминтов, ооцистами и цистами простейших. Из загрязненной почвы они могут попадать на руки, зелень, овощи. Существует большая опасность передачи инвазионного материала через предметы обихода в детских и других общественных учреждениях. В связи с этим весьма важной и актуальной задачей является разработка новых эффективных антипаразитарных овицидов, а также экспериментальный отбор из уже известных дезинфектантов.

Известен способ испытания и отбора овицидных химических соединений для обеззараживания объектов с твердым покрытием (Симонов А.П. Методика испытания и отбора овицидных химических соединений для обеззараживания объектов с твердым покрытием (помещений, пола, клеток и др.) // Бюллетень Всесоюзного ордена Трудов. Красного Знамени института гельминтологии им. К.И. Скрябина, 1977, вып. 19, с.51-58). Способ осуществляют путем испытания яиц гельминтов в двух сериях. В первой – испытывают препарат на отмытых яйцах гельминтов. Яйца заливают тонким слоем дехлорированной воды и помещают в термостат при температуре 24°С для получения личинок различной зрелости. Степень развития последних контролируют периодически под микроскопом. Культуру личинок переносят в чашки Петри (по 600-800 в каждой) или в маленькие бюксы, удаляют излишки воды и затем заливают рабочими растворами (или эмульсиями) испытуемых веществ различных концентраций. После определенной экспозиции в растворе, яйца отмывают водой в чашках Петри не менее пяти раз или с помощью центрифугирования не менее двух раз. Затем культуру яиц помещают в термостат (24-26°С) для культивирования. Через 15-20 дней определяют жизнеспособность яиц в каждом варианте опыта методом культивирования в термостате, а также методами обычной и вторичной люминесцентной микроскопии. Если в яйцах нет личинок, то их считают погибшими.

У яиц, взятых в опыт на стадии инвазионной личинки, определяют жизнеспособность оптической микроскопией по деформации зародыша и скорлупы, а методом флуоресценции по характеру свечения при обработке акридиновым оранжевым в разведении 1:10-500000, с экспозицией 120 мин.

Для объективной оценки в каждом варианте опыта подсчитывают не менее 3200 яиц, в том числе живых и погибших, а затем высчитывают процент погибших. На основе выявленной жизнеспособности яиц определяют эффективность препарата.

Основными недостатками способа являются:

– высокая погрешность результатов оценки обеззараживающей (дезивазионной) эффективности исследуемых химических средств и дезинфектантов;

– трудоемкость способа, из-за многочисленных технически несовершенных стадий подготовки, отмывки и препарирования образцов яиц к термостатированию и исследованию в оптическом и люминесцентном микроскопах;

– отсутствие стадии нейтрализации остатков химических средств, дезинфектантов после воздействия ими на яйца гельминтов, часто является источником возникновения различных артефактов и искажений на стадии визуализации и определения в микроскопе количества живых и мертвых яиц в образцах;

– из-за отсутствия стадии нейтрализации химических средств, дезинфектантов после воздействия на яйца гельминтов, действие следов (молекул) химических реагентов на яйца не прерывается, что не позволяет объективно оценить овицидный эффект химических средств и дезинфектантов;

– высокие потери поврежденных, разрушенных и лизированных яиц (всплывших яиц с более низкой плотностью в водной суспензии образца) на стадиях центрифугирования и многократных отмывок биоматериала от химического реагента, нейтрализатора, красителя в чашке Петри, на предметном стекле, в маленькие бюксы путем сливания или отсасывания жидкости с поверхности осадка биообразца, что значительно искажают результаты определения числа живых и мертвых яиц после воздействия овицидами;

– высокие трудовые и материальные затраты при выполнении препаративных работ по известному способу;

– техническое несовершенство способа может являться источником нарушения требований биологической безопасности персоналом паразитологических лаборатории.

Наиболее близким техническим решением к предлагаемому изобретению является многофункциональная микрокамера для экспериментального отбора овицидных химических соединений для обеззараживания (дезинвазии) поверхностей и объектов, контаминированных яйцами гельминтов (Патент RU(54) 2699664 C1. Многофункциональная микрокамера и способ экспериментального отбора овицидных химических соединений для обеззараживания (дезинвазии) поверхностей и объектов, контаминированных яйцами гельминтов. Опубл. 09.09. 2019г. (57), авторы: Герасимов В.Н., Котов С.А., Асланян Е.М., Дятлов И.А., Храмов М.В.).

Основными недостатками многофункциональной микрокамеры и способа экспериментального отбора овицидных химических соединений для обеззараживания (дезинвазии) поверхностей и объектов, контаминированных яйцами гельминтов являются:

- многочисленные экономические и технические сложности при производстве микрокамер для лабораторных паразитологических исследований:

- экономически и технически сложно прикреплять к основанию каждой микрокамеры фильтрующую мембрану определенного диаметра пор (меньше диаметра яиц каждого вида гельминтов, меньше диаметра ооцист и цист простейших);

- часто между фильтрующей мембраной и тонкими стенками микрокамеры образуются щели, дефекты, приводящие к утечке опытного биоматериала;

- в заводских и лабораторных условиях экономически и технически сложно к тонким стенкам микрокамеры надежно прикреплять (приклеить) фильтрующую мембрану;

– одиночные микрокамеры не позволяют проводить без технических сложностей лабораторные многофакторные испытания овицидной эффективности химических средств и дезинфектантов;

- высокая трудоемкость при использовании большого числа отдельных

- микрокамер для испытания различных концентрационных и временных параметров (режимов) воздействия средства на биообъекты;

- из-за несменяемости фильтрующей мембраны одиночных микрокамер повторное или многократное их применение в экспериментальных испытаниях исключается.

Техническим результатом предлагаемого изобретения является повышение эффективности испытаний и отбора овицидных химических соединений для дезинвазии различных объектов, повышение достоверности результатов обеззараживания исследуемых средств и препаратов, снижение трудоемкости процесса путем уменьшения числа стадий выполнения испытаний, а также повышение уровня биологической безопасности при выполнении работ с яйцами гельминтов, ооцистами и цистами простейших.

Технический результат достигается за счет того, что предложен блок многофункциональных микрокамер для экспериментальной оценки овицидной эффективности дезинфицирующих средств для дезинвазии различных объектов, контаминированных яйцами гельминтов, ооцистами и цистами простейших, представляющий собой цельнолитое изделие, состоящее из девяти микрокамер с внешним диаметром d – 10 мм, каждая из которых в нижней части имеет расширение в виде кольца диаметром D – 14 мм, общая высота H составляет 8 мм, внутренняя поверхность каждой микрокамеры представляет собой усечённый конус диаметром d₁ – 8 мм в верхней части и диаметром d₂ – 6 мм в нижней, микрокамеры соединены друг с другом перемычками длиной l–10 мм и толщиной S – 1 мм, общие диагональные размеры составляют L – 82 мм, в основании блока предусмотрено бесщелевое крепление трековой улавливающей мембраны, представляющей собой тонкую полимерную фильтрующую пленку с порами диаметром от 3,0 мкм и до 65,0 мкм, нижняя часть блока микрокамер содержит адгезив с защитной плёнкой с остаточной липкостью в виде клея, чувствительного к давлению на основе акриловых полимеров.

На фиг. 1 изображен блок многофункциональных микрокамер для экспериментальной оценки овицидной эффективности дезинфицирующих средств для дезинвазии различных объектов, контаминированных яйцами гельминтов, ооцистами и цистами простейших.

В основании всего блока перед испытаниями предусмотрена установка улавливающей мембраны, с порами определенного диаметра, выбираемой в зависимости от диаметра яиц гельминтов, размеров цист и ооцист простейших. Мембрана необходима для исключения межоперационных потерь биоматериала, а также для удаления дезинфицирующего средства, нейтрализатора, красителей, при многократных отмывках биообразца. Перед началом работы достаточно снять защитную плёнку с клеевого слоя, а затем приклеить фильтрующую мембрану.

С целью повышения эффективности и биобезопасности испытаний, повышения достоверности результатов определения овицидных свойств средств и препаратов, снижения трудоемкости процесса, исключения потерь биоматерала на этапах испытаний, лабораторные испытания препаратов при различных концентрационных и временных параметрах на яйцах гельминтов или ооцистах и цистах простейших, при необходимом количестве повторностей все этапы опыта проводят одновременно в многофункциональных микрокамерах одного или нескольких блоках микрокамер.

Пример 1. В испытаниях блока многофункциональных микрокамер для оценки овицидной эффективности дезинфицирующих средств для дезинвазии различных объектов, контаминированных яйцами гельминтов, ооцистами и цистами простейших, использовали дезинфицирующее средство «Ника Хлор», а в качестве биоагента использовали яйца свиной аскариды (Askaris suum).

Испытания проводят в двух блоках многофункциональных микрокамер в трех повторностях: перед началом работы с основания блоков микрокамер, содержащих адгезив с защитной плёнкой с остаточной липкостью в виде клея, чувствительного к давлению на основе акриловых полимеров, снимают защитную плёнку с клеевого слоя, а затем приклеивают к основанию каждого блока трековую фильтрующую мембрану с диаметром пор 40-42 мкм (средние размеры яиц свиной аскариды - 43×60 мкм); блок микрокамер помещают в чашку Петри с небольшим количеством дехлорированной воды; во все микрокамеры блока вносят по 0,1-0,2 мл суспензии отмытых яиц аскариды свиной в количестве примерно 450-500 штук; в первые три микрокамеры (контроль) вносят по 0,1-0,2 мл стерильной дистиллированной воды; во вторую группу из трех микрокамер вносят по 0,1-0,2 мл 1,0% раствора дезинфицирующего средства «Ника Хлор» (по активному хлору) и выдерживают 120 мин; в третью группу микрокамер блока вносят по 0,1-0,2 мл 2,0% раствора дезинфицирующего средства «Ника Хлор» и выдерживают 120 мин. По истечении времени воздействия средство из микрокамер удаляют путем внесения в каждую микрокамеру 0,1-0,2 мл водопроводной воды, для более быстрого удаления воды из них. Каждый блок микрокамер ставят на полоску стерильной сухой фильтровальной бумаги или на стерильную сухую хлопчатобумажную салфетку; нейтрализацию остатков химического средства (дезинфектанта) в исследуемом образце проводят путем внесения в микрокамеры по 0,1-0,2 мл универсального нейтрализатора с выдержкой 1-3 мин; процедуру отмывки образца от нейтрализатора проводят также в микрокамерах блока трижды; для активации личинок в яйцах гельминтов в каждую микрокамеру блока вносят по 0,1-0,2 мл стерильной воды и термостатируют при температуре 24°С в течение 10 суток; ежедневно яйца гельминтов просматривают непосредственно в микрокамерах блока с помощью оптического или люминесцентного микроскопа для выявления активно двигающихся личинок в яйцах. Второй блок микрокамер используют для испытания овицидной эффективности дезинфицирующего средства «Ника Хлор» при более длительной экспозиции воздействия на яйца свиной аскариды. Во все микрокамеры блока вносят по 0,1-0,2 мл суспензии отмытых яиц аскариды свиной в количестве примерно 450-500 штук; в первые три микрокамеры (контроль) вносят по 0,1-0,2 мл стерильной дистиллированной воды; во вторую группу из трех микрокамер вносят по 0,1-0,2 мл 1,0% раствора дезинфицирующего средства «Ника Хлор» (по активному хлору) и выдерживают 24 ч; в третью группу микрокамер блока вносят по 0,1-0,2 мл 2,0% раствора дезинфицирующего средства «Ника Хлор» и выдерживают 24 ч, по истечении времени воздействия средство из микрокамер удаляют путем внесения в микрокамеру 0,1-0,2 мл стерильной водопроводной воды, для быстрого удаления жидкости и дезинфектанта каждый блок микрокамер ставят на полоску стерильной сухой фильтровальной бумаги или на стерильную сухую хлопчатобумажную салфетку.

После завершения термостатирования образцов в каждую микрокамеру вносят по 0,1-0,2 мл водного раствора акридинового оранжевого в разведении от 1:10000 и выдерживают 120 мин при комнатной температуре (19±2) С. После обработки флурохромом биообразцы также отмывают в микрокамере стерильной дистиллированной водой. Просмотр в люминесцентном микроскопе проводят непосредственно в многофункциональных микрокамерах блока.

Жизнеспособность яиц определяют по свечению зародыша. Живая личинка всегда излучает тусклый зеленый свет: от серо-зеленого до темно-зеленого, а погибшая светится яркими цветами: светло-зеленым, зеленым, желтым, оранжевым, красным. Скорлупа как живых, так и погибших яиц бывает окрашена одинаково в зеленый цвет.

Просмотр и подсчет живых и мертвых яиц гельминтов в образцах с помощью люминесцентного микроскопа показал, что в контрольных микрокамерах число живых яиц составляло не более 95 % от общего числа яиц в пробе. В микрокамерах блока, где обработку яиц проводили 1,0% и 2,0% растворами дезинфицирующего средства «Ника Хлор» в течение 24 ч, была установлена высокая овицидная эффективность средства от 93% до 100%. В микрокамерах блока, где испытания на яйца проводили 1,0% и 2,0% растворами дезинфицирующего средства «Ника Хлор» в течение 120 мин, овицидная эффективность составляла 47% и 63%, соответственно.

Проведенные испытания предлагаемого блока микрокамер при определении овицидной эффективности рабочих растворов дезинфицирующего средства Ника Хлор» на яйцах свиной аскариды показали, что предлагаемое техническое решение позволило повысить эффективность испытаний и отбора овицидных дезинфицирующих средств для дезинвазии различных поверхностей и объектов, увеличить уровень достоверности результатов определения овицидной активности дезинфицирующих средств, снизить трудоемкость процесса испытаний препаратов путем уменьшения числа стадий и их продолжительности при выполнении, уменьшить количество артефактов на стадии определения количества живых и мертвых яиц, сохранить в экспериментальных пробах биоматериала всех видов яиц, включая интактные, поврежденные, разрушенные и лизированные яйца гельминтов, повысить уровень биологической безопасности при выполнении работ с яйцами гельминтов, а также снизить трудовые и материальные затраты.

Пример 2. В испытаниях блока многофункциональных микрокамер для экспериментального отбора овицидных химических средств для обеззараживания (дезинвазии) поверхностей и объектов, контаминированых яйцами гельминтов, использовали хлорактивное дезинфицирующее средство «ДП-2Т», а в качестве биоагента использовали яйца Toxacara canis.

Все стадии испытаний проводят в двух блоках многофункциональных микрокамер, содержащих в основании блоков адгезив с защитной плёнкой с остаточной липкостью в виде клея, с основания каждого блока микрокамер снимают защитную плёнку с клеевого слоя, а затем к основанию блока приклеивают фильтрующую трековую мембрану с диаметром пор 60-62 мкм (средние размеры яиц Toxacara canis - 63×73 мкм); каждый блок микрокамер помещают в чашку Петри с небольшим количеством дехлорированной воды; в микрокамеры блока вносят по 0,1-0,2 мл суспензии отмытых яиц Toxacara canis в количестве примерно 450-500 штук; в первые три микрокамеры (контроль) вносят по 0,1-0,2 мл стерильной дистиллированной воды; в вторую группу микрокамер вносят по 0,1-0,2 мл 0,6% раствора дезинфицирующего средства «ДП-2Т» (по активному хлору) и выдерживают 120 мин; в третью группу микрокамер блока вносят по 0,1-0,2 мл 1,0% раствора дезинфицирующего средства «ДП-2Т» и выдерживают 120 мин. По истечении времени воздействия средство из микрокамер удаляли путем внесения в микрокамеру 0,1-0,2 мл стерильной водопроводной воды. Для более быстрого удаления воды блок микрокамер ставят на стерильную сухую хлопчатобумажную салфетку; нейтрализацию остатков химического средства (дезинфектанта) в исследуемом образце проводят путем внесения в каждую микрокамеру по 0,1-0,2 мл универсального нейтрализатора с выдержкой 1-3 мин; процедуру отмывки образца от нейтрализатора проводят также в микрокамерах блока трижды; для активации личинок в яйцах гельминтов в каждую микрокамеру вносят по 0,1-0,2 мл стерильной воды и термостатируют при температуре 24°С в течение 10 суток; ежедневно яйца гельминтов просматривают непосредственно в микрокамере с помощью оптического или люминесцентного микроскопа для выявления активно двигающихся личинок в яйцах.

Второй блок микрокамер используют для испытания овицидной эффективности дезинфицирующего средства «ДП-2Т» при более длительных сроках воздействия. Во все микрокамеры блока вносят по 0,1-0,2 мл суспензии отмытых яиц Toxacara canis в количестве примерно 450-500 штук; в первые три микрокамеры (контроль) вносят по 0,1-0,2 мл стерильной дистиллированной воды; во вторую группу из трех микрокамер вносят по 0,1-0,2 мл 0,6% раствора дезинфицирующего средства «ДП-2Т» (по активному хлору) и выдерживают 24 ч; в третью группу микрокамер блока вносят по 0,1-0,2 мл 1,0% раствора дезинфицирующего средства и выдерживают также 24 ч, по истечении времени воздействия средство из микрокамер удаляли путем внесения в микрокамеру 0,1-0,2 мл стерильной водопроводной воды, далее все этапы испытаний проводили также, как указано на примере 1.

После завершения термостатирования образцов в каждую микрокамеру блока вносят по 0,1-0,2 мл водного раствора акридинового оранжевого в разведении от 1:10000 и выдерживают 120 мин при комнатной температуре (19±2)°С. После обработки флурохромом биообразцы также отмывают в микрокамерах блока стерильной дистиллированной водой. Просмотр в люминесцентном микроскопе проводят непосредственно в многофункциональных микрокамерах блока.

Просмотр и подсчет живых и мертвых яиц гельминтов в образцах с помощью люминесцентного микроскопа показал, что в контрольных микрокамерах число живых яиц составляло не более 85 % от общего числа яиц в пробе. В микрокамерах, где обработку яиц проводили 0,6 % и 1,0 % растворами дезинфицирующего средства «ДП-2Т» в течение 24 ч была установлена высокая овицидная эффективность средства и составляла не менее 97-100%. При обработки яиц 0,6% и 1,0% растворами дезинфицирующего средства «ДП-2Т» в течение 120 мин овицидная эффективность средства составляла 39 % и 61 %, соответственно.

Полученные результаты аналогичны результатам, полученным по примеру 1.

Пример 3. В испытаниях блока многофункциональных микрокамер для экспериментального отбора протистоцидных химических средств для обеззараживания поверхностей и объектов, контаминированых цистами и ооцистами простейших, использовали хлорактивное дезинфицирующее средство «Фармахлор», а в качестве объекта исследования использовали ооцисты криптоспоридий Cryptosporidium parvum.

Все стадии способа проводят в двух блоках многофункциональных микрокамер, содержащих в основании блоков адгезив с защитной плёнкой с остаточной липкостью в виде клея, с основания каждого блока микрокамер снимают защитную плёнку с клеевого слоя, а затем к основанию блока приклеивают фильтрующую трековую мембрану с диаметром пор 3,0 мкм (средний диаметр ооцист криптоспоридий - 4 мкм); каждый блок микрокамер помещают в чашку Петри с небольшим количеством дехлорированной воды; в микрокамеры блока вносят по 0,1-0,2 мл суспензии отмытых ооцист криптоспоридий в количестве примерно 800-1000 штук; в первые три микрокамеры (контроль) вносят по 0,1-0,2 мл стерильной дистиллированной воды; в вторую группу микрокамер вносят по 0,1-0,2 мл 0,6% раствора дезинфицирующего средства «Фармахлор» (по активному хлору) и выдерживают 120 мин; в третью группу микрокамер блока вносят по 0,1-0,2 мл 1,0% раствора дезинфицирующего средства «Фармахлор» и выдерживают 120 мин. По истечении времени воздействия средство из микрокамер удаляли путем внесения в микрокамеру 0,1-0,2 мл стерильной водопроводной воды. Для более быстрого удаления воды и дезинфектанта блок микрокамер ставят на стерильную сухую хлопчатобумажную салфетку; нейтрализацию остатков химического средства (дезинфектанта) в исследуемом образце проводят путем внесения в каждую микрокамеру по 0,1-0,2 мл универсального нейтрализатора с выдержкой 1-3 мин; процедуру отмывки образца от нейтрализатора проводят также в микрокамерах блока трижды; для определения выживаемости цист простейших используют люминесцентную микроскопию. В каждую микрокамеру вносят по 0,1-0,2 мл водного раствора акридинового оранжевого в разведении 1:1000 на 120 мин, затем отмытые от красителя ооцисты простейших изучают непосредственно в микрокамере с помощью люминесцентного микроскопа. Жизнеспособность ооцист в микрокамерах, подвергшихся воздействию дезинфектанта, оценивают следующим образом. У погибших ооцист цитоплазма и оболочка имеют красный цвет, у ооцист с поврежденной структурой цитоплазма и ядра имеет темно-салатовый цвет. У жизнеспособных ооцист простейших оболочка слегка окрашивается, цитоплазма и ядра не окрашиваются. Установлено, что растворы дезинфицирующего средства «Фармахлор» в концентрациях 1 и 2% по активному хлору эффективно инактивируют ооцисты простейших.

Проведенные испытания блока многофункциональных микрокамер для экспериментального отбора эффективных протистоцидных рабочих растворов дезинфицирующего средства «Фармахлор» показали, что предлагаемое техническое решение позволило повысить эффективность испытаний и отбора овицидных химических соединений для обеззараживания различных объектов, увеличить уровень достоверности результатов определения протистоцидной активности дезинфицирующих средств, снизить трудоемкость процесса испытаний препаратов путем уменьшения числа стадий и их продолжительности при выполнении, уменьшить количество артефактов на стадии определения количества живых и мертвых ооцист, сохранить в экспериментальных пробах биоматериала всех видов ооцист, включая интактные, поврежденные, разрушенные и лизированные ооцисты, повысить уровень биологической безопасности при выполнении лабораторных работ с цистами и ооцистами патогенных простейших, а также снизить трудовые и материальные затраты при выполнении подобных экспериментальных работ.

Таким образом, полученные результаты различных испытаний блока многофункциональных микрокамер свидетельствуют о том, что предлагаемое техническое решение позволило повысить эффективность испытаний и отбора овицидных химических соединений для обеззараживания различных объектов, увеличить уровень достоверности результатов определения овицидной активности дезинфицирующих средств и препаратов, снизить трудоемкость процесса испытаний препаратов путем уменьшения числа стадий и их продолжительности при выполнении, уменьшить количество артефактов на стадии определения количества живых и мертвых яиц, сохранить в экспериментальных пробах биоматериала всех видов яиц, включая интактные, поврежденные, разрушенные и лизированные яйца гельминтов (цист и ооцист простейших), повысить уровень биологической безопасности при выполнении подобных экспериментальных работ.

Изобретение относится к области медицины, ветеринарии, паразитологии, а именно к средствам и способам экспериментального отбора овицидных химических соединений для обеззараживания поверхностей и объектов, контаминированных яйцами гельминтов, ооцистами и цистами простейших. Блок многофункциональных микрокамер представляет собой цельнолитое изделие, состоящее из девяти микрокамер с внешним диаметром d – 10 мм, каждая из которых в нижней части имеет расширение в виде кольца диаметром D – 14 мм, общая высота H составляет 8 мм, внутренняя поверхность каждой микрокамеры представляет собой усечённый конус с диаметром d₁ – 8 мм в верхней части и диаметром d₂ – 6 мм в нижней, микрокамеры соединены друг с другом в нижней части перемычками длиной l – 10 мм и толщиной S – 1 мм для обеспечения монолитности конструкции. В основании блока микрокамер установлена полимерная фильтрующая пленка с порами определенного диаметра для исключения межоперационных потерь биоматериала. Техническим результатом является повышение эффективности испытаний и отбора овицидных химических соединений для дезинвазии различных объектов, повышение достоверности результатов обеззараживания, снижение трудоемкости процесса, повышение уровня биологической безопасности при выполнении работ с яйцами гельминтов, ооцистами и цистами простейших. 1 ил.

Блок многофункциональных микрокамер для определения овицидной эффективности дезинфицирующих средств для дезинвазии различных объектов, контаминированных яйцами гельминтов, ооцистами и цистами простейших, представляющий собой цельнолитое изделие, состоящее из девяти микрокамер с внешним диаметром d – 10 мм, каждая из которых в нижней части имеет расширение в виде кольца диаметром D – 14 мм, общая высота H составляет 8 мм, внутренняя поверхность каждой микрокамеры представляет собой усечённый конус диаметром d₁ – 8 мм в верхней части и диаметром d₂ – 6 мм в нижней, микрокамеры соединены друг с другом перемычками длиной l – 10 мм и толщиной S – 1 мм, общие диагональные размеры составляют L – 82 мм, в основании блока предусмотрено бесщелевое крепление трековой улавливающей мембраны, представляющей собой тонкую полимерную фильтрующую пленку с порами диаметром от 3,0 мкм и до 65,0 мкм, нижняя часть блока микрокамер содержит адгезив с защитной плёнкой с остаточной липкостью в виде клея, чувствительного к давлению на основе акриловых полимеров.