Способ стимуляции развития икры рыб Советский патент 1984 года по МПК A01K61/00 

о Изобретение относится к рыбной промыш ленности, а именно к способам стимуляции развития икры рыб, и может быть использовано в ихтиологии и прудовых рыбоводных хозяйствах при искусственном разведении рыб. Известен способ стимуляции икры рыб, по которому оплодотворенную икру с момента оплодотворения и до окончания инкубации выдерживают в воде повышенной солености 1. Данный способ не обеспечивает ускорения эмбрионального развития до стадии выклева предличинок и направлен, в основном, на снижение заболеваемости икры. Наиболее близким к предлагаемому по технической сущности является способ стимуляции развития икры рыб, предусматривающий однократную обработку ее биологически активными веществами. При осуществлении данного способа икру обрабатывают 10-60 мин смесью биологически активных веществ, состоящей из -каротина, d-токоферола, убихинона Q,o, пираголлола, пропилгаллата и аскорflГТТ1 ЛПТ -1ГТПЛ-1Т ОП1 ГТТ1ПГОПТ ОГОТЛОГ 1 / Г4 биновой кислоты 2. Этот способ для своего осуществления требует наличия сложной смеси, состоящей из дорогостоящих компонентов, что снижает его экономичность. Кроме того, не достиПоказатели концентрации ПАБК, вызывающие стимуляцию развития икры у вьюнов (мг/л) при температуры воды 17,0-17,5С

Т а б- л и ц а гается ускорения эмбрионального развития икры до стадии выклева предличинки, в результате протяженность выклева предличинок из икры одной кладки при инкубации при комнатной температуре (15-20°С) составляет 1-3 сут. Цель изобретения - повышение экономичности способа при одновременном ускорении эмбрионального развития. Поставленная цель достигается тем, что согласно способу стимуляции развития икры рыб в качестве биологически активного вещества используют парааминобензойную кислоту в концентрации 12-16 мг/л, при этом обработку икры осуществляют на стадии двух бластомеров и выдерживают ее, в этом растворе до выклева предличинок. Выбор времени обработки, начиная CQ. стадии двух бластомеров, а не с момента оплодотворения, обусловлен тем, что при обработке икры, начиная со стадии оплодотворения, наблюдаются несколько более низкие результаты ускорения эмбрионального развития (lO-lSVo) по сравнению с выбран V/11ной стадией двух бластомеров (14-15%). В табл. 1 и 2 приведены данные, показы вающие влияние концентрации парааминобензойной кислоты (ПАБК) на стимуляцию развития икры рыб при различной температуре.

СПОСОБ СТИМУЛЯЦИИ, РАЗВИТИЯ ИКРЫ РЫБ, преимущественно карповых пород, предусматривающий однократную обработку икры биологически активными веществами, отличающийся тем, что, с целью повыщения экономичности способа при одновременном ускорении эмбрионального развития, в качестве биологически активного вещества используют парааминобензойную кислоту в концентрации 12-16 мг/л, при этом обработку икры осуществляют на стадии двух бластомеров и выдерживают ее в этом растворе до выклева предличинок.

81-84

71-73 70-72 76-78 81-84

76-78

9-14 10-15 5-7

5-7

79-84

Показатели концентрации ПАБК, вызывающие стимуляцию развития икры у карпа (мг/л) при температуре воды

81-84 76-78 71-73 70-72 76-78 81-84

5-7

Из табл. 1 видно, что при концентрации ПАБК 12-16 мг/л время эмбрионального развития при 17°С равно 70-73 ч, т. е. ускорение эмбрионального развития икры до стадии выклева предличинок по сравнению с контрольной инкубацией просто в чистой отстойной воде или в смеси биологически , активных веществ по прототипу при той же температуре составляет 14- . В прототипе время эмбрионального развития до выклева не отличается от времени развития икры в чистой отстойной воде (контроль), предлагаемый способ ускоряет эмбрионаЛЬное развитие икры до стадии выклева предличинок по сравнению с инкубацией в чистой отстойной воде на 14-150/0.

Из табл. 2 видно, что ускорение эмбрионального развития икры у карпа составляет 14-IS /o при концентрации ПАБК 12- 16 мг/л, при концентрации ПАБК в 4 мг/л ускорения не наблюдается.

Пример 1. Берут оплодотворенную икру вьюна на стадии двух бластомеров и помещают в раствор ПАБК при концентрации 12 мг/л. Инкубацию проводят при 17°С в небольших емкостях (в танках емкостью 3 л), используя водопроводную отстойную речную воду при постоянной продувке возДухом с плотностью посадки 3500 мг/л в течение 72 ч. В контроле инкубируют икру в аналогичных условиях без добавления ПАБК или в растворе биологически активТаблица 2

20-22 С

78-84

9-14 10-15 5-7

ных веществ по прототипу. Через 72 ч

0 при данных условиях с добавлением ПАБК наблюдается массовый выклев жизнеспособных эмбрионов вьюна. В контроле или в растворе биологически активных веществ по прототипу массовый вь,1клев при тех же условиях наблюдается через 83 ч. При

5 добавлении ПАБК не найдено достоверных различий в количестве уродств, не выявлено образования специфических уродств, а также в проценте выклюнувшихся эмбрионов по сравнению с контролем в чистой воде или смеси биологически активных

0 веществ по прототипу. Выклюнувшихся эмбрионов также, как и в контроле, пересаживают в проточные ванны емкостью 200 л. После перехода на активное питание личинок рыб из ванн контроля и опы5та выпускают в пруды.

Пример 2. Берут оплодотворенную икру на стадии двух бластомерЬв вьюна и помещают в раствор ПАБК в концентрации 16 мг/л. Инкубацию проводят при 17,5°С в небольших емкостях (в танках емкостью

0 3 л), используя водопроводную отстойную речную воду при постоянной продувке воз духом с плотностью посадки 3000 мг/л в течение 70 ч. В контроле инкубируют икру в аналогичных условиях без добав5 ления ПАБК или в растворе биологически активных веществ по прототипу. Через 70 ч при данных условиях с добавлением ПАБК наблюдается массовый выклев жизнеспособных эмбрионов вьюна. В- контроле же массовый выклев при тех же условиях наблюдается через 81 ч. При добавлении ПАБК не найдено достоверных различий в количестве уродств, не выявлено образования специфичебких уродств, а также в проценте выклюнувшихся эмбрионов, пр, сравнению с, контрольной- инкубацией икры в чистой воде или в растворе ф|(догичв экц,чактивных..BeiijiecT B по протс гипу. ,Выклюнувших й эмб рйонов пересаживают в проточнью вдл-ны емкостью 200- л. После, переходана активное питание личинок рыб из в«нй контрЪл и опыта выпускают в пруды, Пример 3. Берут оплодотворенную обесклеенную известным способом икру карпа на стадии двух бластомеров и помещают в раствор ПАБК в концентрации 12 мг/л. Инкубацию проводят при 22°С в небольших емкостях (в танках емкостью 3 л), используя водопроводную отстойную речную воду при постоянной продувке воздухом с плотностью посадки 350 мг/л. В контроле инкубируют икру в аналогичных условиях без добавления ПАБК, или в растворе биологически активных веществ по прототипу. Через 72 ч при данных условиях с добавлением ПАБК наблюдается массовый выклев жизнеспособных эмбрионов карпа. В контроле выклев при тех же условиях наблюдается через 81 ч. При добавлении ПАБК не найдено достоверных различий в количестве уродств, не выявлено образования специфических уродств, а также в проценте выклюнувшихся эмбрионов по сравнению с контрольной инкубацией икры в чистой воде или в растворе биологически активных веществ по прототипу. Выклюнувшихся эмбрионов пересаживают в проточные ванны емкостью в 200 л. После перехода на активное питание личинок рыб из ванн контроля и опыта выпускают в 1иальковые пруды рыбоводного хозяйства. Пример. 4. Берут оплодотворенную и обесклеенную известным способом икру карпа на стадии двух бластомеров и помещают в раствор ПАБК в концентрации 16 мг/л. Инкубацию проводят при 20°С в небольших емкостях (в танках емкостью 3 л), используя водопроводную отстойную речную воду при постоянной продувке воздухом -С плотностью посадки 3000 мг/л. В контроле инкубируют икру в аналогичных условиях без добавления ПАБК или в раетворе биологически активных веществ по прототипу. Через 70 ч при данных условиях с добавлением ПАБК наблюдается массовый выклев жизнеспособных эмбрионов карпа. В контроле массовый выклев при тех же условиях наблюдается через 83 ч. При добавлении ПАБК не найдено достоверных различий в количестве уродств, не выявлено образования специфических уродств, а также в проценте выклюнувшихся эмбрионов по сравнению с контрольной инкубацией икры в чистой воде или в смеси биологически активных веществ по прототипу. Выклюнувшихся эмбрионов пересаживают в проточные ванны емкостью в 200 л. После перехода на активное питание личинок рыб выпускают в пруды. Применение предлагаемого способа позволяет повысить экономичность процесса стимуляции икры рыб и упростить его, а также ускорить эмбриональное развитие икры до стадии выклева предличинок на 14-15%. За счет ускорения развития икры и сокращения рабочего времени инкубации на 1 млн. личинок карпа полученная эког номия составит 32 руб.