Способ стимуляции физиологических процессов у рыб на ранних стадиях развития Советский патент 1987 года по МПК A01K61/00 

Изобретение относится к рыбоводству, а г-шенно к способам ст ж:улядии физиологических процессов у рыб на ранних стадиях развития при искусственном рыборазведении, и может быть использован в основном при разведв НИИ лососевых рыб.

Целью изобретения является повышение выживаемости, сокращение продолжительности эмбрионального развития и повьдиение темпа роста молоди.

В указанном способе в качестве биологически активного соединения использугот синтетический суперактивный анапог лей энкефалина(П-Ала) (D-Apr) -лей-энкефалин, которьШ .способствует измепенш-о нейроэргдокрин- ной рег;«1яп 1и процессов ясиэпедея™ тельиости.

Хатособ ос ути( 2етЕ 1 яют следующим образом

ИкрУр предличинок или личинок рыб,помещают в любые емкости с во-/ дои5 куд-а для стимуляции фияиологи- ческях проп.ессов добавляют раствор (D -Ала) (D-Apr)-лей-энкефалина до концентрации в среде от 1 до 10 мкг/л. Икру, предличинок и ли:чИ нок выдерживают в этой среде от 1 д

4 ч для ое тцествления полного контак- 30 чие инкубаторь с сетным дном и опуспо одному инкубатору в растворы ()2 (D--Apr)

та с вевдег2твом По.сле промьгвки под протоком икра, пред,;и- чинки и личинки пос. 1 уп ают в рыбоводньш процесс„..

(В--Ала)2 (1)Арг) -лей энкефалин - порошок белого цвета, легко раство- 35 Р1ФП.1Й в воде. Механизм действия этого вещества изучен очень слабо Спо- соб основан на том, что опиоидные пептиды, к которым относится препарат, посредством холиггэргических их 40 (или г-елтидэргическнх) механизмов могут увеличивать с;екроцяю .г ипофизар-- ньпх антистрессояьв: гормонов, а также гормонов3 отБетственньгх за рост орга™ низка-тнреотропкого и самототропного 45 гормонов 5 пролактина. Возможен путь и опосредованного влияния опиодньк пептидов на секрецию гипофизарных гормонов через гипоталамус,, Взаимодействие нейроэндокри1гной и нейро- 50 пептидных систем организма,, в частности энкефалинов ,1 обеспечивает регу- ляи;ию адаптационных процессов в организме, с чем связано ко.выиение жиз- . нестойкости икры и личинок. 55

П р и м е р t о Оплод.отвореннз ю ик- ;РУ СИМЫ по -1еи;ают на плавучие инкубаторы с сетным дном 4 инкубатора опз с

сают

-лей-энкефалина кон- центрахщей 0,01, 1 и 10 мкг/л, а 1 в чистую воду для выдер;«ивания в течение 1 ч, По истечении этого времени инкубаторы с икрой переносят в чистую воду для промывки и последующей инкубации. После завершения эмбрионального развития оказалось, что наименьшая гибель икрь- произошла в среде с концентрацией раствора 1 и 10 мкг/л (табл 2). В среде с концентрацией раствора 0,01 мкг/л уменьшения гибели икры по сравнению с контролем не отмечено. Использование концентрации свьше 10 мкг/л является нецелесообразным, так как увеачичение концентрации не приводит к дополнительному эффекту„ Таким образом, рекомендуется использовать раствор с концентрацией 1-10 мкг/л, при оптимальной концентрации 1 мкг/л., Выбор опытных концентрап й ос лцсствлен исходя из удобства их 11олуче1 :ия в производственных условия -: путем разбавления растворов, П р и м е р 3, Оплодотворенную икру радужной форел - обрабатывают

кают в раствор (D-Ала) (П-Арг)-лей- -знкефалина концентрацией 1 мкг/л на О 5 5., 1, 4, 16ч, а 4 - -в чис тую воду. По истечении каждой из йкспознщи инкубаторы с икрой переносят в чистую воду для про.мьшки и последую- 1цего продолжения инкубации. После завершения эмбрионального развития оказалось что обработка оплодотворенной

икры (D-Ana)2 (D-Apr) -лей-энкефапи- ном приводит к снижению ее гибели на 11,6 37j4% по сравнению с контролем (табл. 1). Наибольшее снижение гибели икры наблюдается при экспозиции 16 ч,

сходные результаты получены при 1-часовой экспозиции. Выдерживание объек- тов в течение 0.5 ч также приводит к ениженн О гибели, но в меньшей степени, чем гфи 1-часовой экспозищ-ш,

по-видимому вследствие недостаточно полного контакта вещества с объектом. Использование экспозиции в 16 ч представляется нецелесообразньм, так как за это врег-ет препарат монет быть частично или полностью разрушен о Таким образом, оптимальным интервалом экспозиций следует считать ч,

П р-и м е р 2, Оплодотвореннз/то икру балтийского лосося помещают на плаву-

по одному инкубатору в растворы ()2 (D--Apr)

сают

-лей-энкефалина кон центрахщей 0,01, 1 и 10 мкг/л, а 1 в чистую воду для выдер;«ивания в течение 1 ч, По истечении этого времен инкубаторы с икрой переносят в чистую воду для промывки и последующей инкубации. После завершения эмбрионального развития оказалось, что наименьшая гибель икрь- произошла в среде с концентрацией раствора 1 и 10 мкг/л (табл 2). В среде с концентрацией раствора 0,01 мкг/л уменьшения гибели икры по сравнению с контролем не отмечено. Использование концентрации свьше 10 мкг/л является нецелесообразным, так как увеачичение концентрации не приводит к дополнительному эффекту„ Таким образом, рекомендуется использовать раствор с концентрацией 1-10 мкг/л, при оптимальной концентрации 1 мкг/л., Выбор опытных концентрап й ос лцсствлен исходя из удобства их 11олуче1 :ия в производственных условия -: путем разбавления растворов, П р и м е р 3, Оплодотворенную икру радужной форел - обрабатывают

312

() (В-Арг)-лей-энкефалииом при оптимальной концентрации 1 мкг/л и экспозиции 1 ч аналогично примерам 1 и 2, После вылупления опытных и контрольных предличинок рассадили по 450 шт. для подращивания. В течение 20 дней гибель личинок в опыте составила 136 шт. (30,2%), а в контроле - 284 шт. (63,1%), т.е. в опыте гибель была ниже на 32,9%.

П р и м е р 4. Предличинок карпа обрабатьгоают (О-Ала) (D-Apr) -лей- -энкефалином, как в примере 3. После окончания обработки их рассаживают в аппараты системы ВНИИПРХ для подращивания. В течение 9 дней вьфа- ш;ивания выживаемость личинок в опы- ,те составила в среднем 88% (80-100%), а в контроле - 74% /70-85%), т.е. была выше в среднем на 14%- (табл. 3).

П р и м е р 5. Оплодотворенную икру лососевых рыб обрабатывают, как в примере 3. После завершения эмбриогенеза оказалось, что обработка оплодотворенной икры (D-Ала) (П-Арг) - -лей-энкефалином сокращает продолжительность эмбриогенеза на 1-5 сут (табл. 4). Имеется видоспецифичность влияния препарата на продолжитель-t

ность эмбрионального развития.

П р и м е р 6. Предличинок балтийского лосося сразу после вылупления обрабатывают раствором (D-Ала) (D-Apr) -лей-энкефалина как в примере 3 (I эксперимент), а личинок при переходе на активное питание по той же схеме (II эксперимент). После 99 сут наблюдений масса опытных личинок в I эксперименте превышает массу контрольных на 19%, а длина - на 6,8% (табл. 5). После 69 сут наблюдения за мальками (II эксперимент их масса превьшгает контрольных на 22,8%, а длина - на 7,6% (табл. 5).

0,5

1800

1156

61

5

0

5

0

5

0

38.4

Таким образом, для повьшзения жизнестойкости икры, предличинок и личинок, сокращения продолжительности эмбрионального развития и стимуляции роста молоди рекомендуется использовать раствор (D-Ana) (D- -Apr) -лей-энкефалина при концентрациях от 1 до 10 мкг/л и экспозиции 1-4 ч; оптимальная концентрация 1 мкг/л, экспозиция - 1 ч.

В табл. 6 приведены данные, иллюстрирующие пpeи ryщecтвa предлага- :емого способа по сравнению d прототипом.

Из табл. 6 видно, что при использовании предлагаемого способа достигается увеличения массы молоди, ее выживаемости, а также уменьшается продолжительность эмбрионального развития.

Формула изобрет.ения

Способ стимуляции физиологических процессов у рыб на ранних стадиях развития, преимущественно у лососевых, путем добавления в воду биологически активного соединения и выдерживания икры и личинок в этой среде,о тличающийся тем, что, с целью повьш1ения выживаемости, сокращения продолжительности эмбрионального развития н повьш1ения темпа роста молоди, в качестве биологически активного соединения используют синтетический суперактивный аналог лей-энкефалина-(D-Ала) (D-Apr)- -лей-энкефалин, при этом добавление проводят до концентрации его в воде от 1 до 10 мкг/л, а выдерживание объектов осуществляют в течение от 1 до 4 ч.

Таблица 1

64,2

1800

952 ,

47,3

Таблица 2,;

Таблица 3

Динамика массы и длины молоди балтийского лосося, обработанных (D-Ana). (1)-Арг)-лей-энкефалина на этапе вьтупления (1) и при переходе на активное питание (II)

Таблица

1Таблица 6