СПОСОБЫ И ФАРМАКОЛОГИЧЕСКИЕ КОМПОЗИЦИИ ДЛЯ ЗАЖИВЛЕНИЯ РАН Российский патент 2009 года по МПК A61K38/07 A61P17/02 

Область и предпосылки изобретения

Настоящее изобретение относится к способу и фармацевтической композиции для индукции и ускорения клеточной пролиферации и/или дифференцировки клеток и, таким образом, ускорения процесса заживления ран. Более подробно настоящее изобретение относится к применению модулируемой экспрессии и/или активации, т.е. инициированной посредством мембранной транслокации и активации серин-треониновых протеинкиназ, также известных как PKC, для индуцирования и/или ускорения пролиферации клеток и/или дифференцировки клеток, и/или миграции клеток, таким образом ускоряя процесс заживления ран. Такую модулированную экспрессию можно выполнять в соответствии с указаниями по настоящему изобретению посредством (i) трансформации клеток ран экспрессирующей PKC конструкцией; (ii) трансформации клеток ран действующим в цис-положении элементом, интегрированным в участок, прилегающий к гену и расположенный перед геном эндогенной PKC в клетках раны; (iii) введения инсулина для индуцирования экспрессии и/или активации PKC в клетках ран; (iv) трансформации клеток ран экспрессирующей инсулин конструкцией, когда после экспрессии и секреции продуцируемый с нее инсулин служит в качестве активатора экспрессии и/или активации PKC; (v) трансформации клеток ран действующим в цис-положении элементом, интегрированным в участок, прилегающий к гену и расположенный перед геном эндогенного инсулина в клетках ран, когда экспрессируемый и секретируемый инсулин служит активатором для экспрессии и/или активации PKC; (vi) имплантации секретирующих инсулин клеток в рану; (vii) трансформации клеток ран транс-действующим фактором, т.е. PDX1, для индукции продуцирования и секреции эндогенного инсулина, где инсулин служит активатором для экспрессии и/или активации PKC; и (viii) введения в рану модулятора PKC.

Настоящее изобретение, выполненное посредством любого из указанных выше способов, также можно применять ex vivo для получения кожных трансплантатов.

Выполнение закрытия раны представляет собой первичную задачу в обработке ран. Открытые кожные раны представляют главную категорию ран и включают ожоговые раны, нейротрофические язвы, пролежни, трофические язвы и диабетические язвы. Открытые кожные раны обычно заживают в результате процесса, включающего в себя шесть основных компонентов: (i) воспаление; (ii) пролиферация фибробластов; (iii) пролиферация кровеносных сосудов; (iv) синтез соединительной ткани; (v) эпителизация; и (vi) стягивание ран. Раневое заживление ухудшено, когда эти компоненты либо по отдельности или все вместе не функционируют должным образом. Ряд факторов могут влиять на заживление ран, включая недостаточное питание, инфицирование, фармакологические средства (т.е. актиномицин и стероиды), пожилой возраст и диабет [см. Hunt and Goodson in Current Surgical Diagnosis & Treatment (Way; Appleton & Lange), стр.86-98 (1988)].

В отношении диабета, сахарный диабет характеризуется нарушенной передачей сигнала инсулина, повышенным уровнем глюкозы в плазме и предрасположенностью к развитию хронических осложнений, вовлекающих несколько различных тканей. Нарушенное заживление ран, приводящее к изъязвлению нижних конечностей, находится среди наименее хорошо изученных в ряду всех хронических осложнений сахарного диабета. Кроме того, изъязвление кожи у диабетических пациентов требует огромных персональных усилий и финансовых затрат [29, 30]. Кроме того, язвы нижних конечностей и последующая ампутация нижней конечности представляют собой наиболее частые причины госпитализации среди диабетических пациентов [30-33]. При диабете процесс заживления ран нарушен, и зажившие раны характеризуются пониженной прочностью ран. Дефект в заживлении ткани связан с несколькими факторами, включая нейропатию, сосудистое заболевание и инфекцию. Тем не менее, другие механизмы, в результате которых диабетическое состояние, ассоциированное с анормальной передачей сигнала инсулина, нарушает заживление ран и меняет физиологию кожи, не выявлены.

Также существует общая проблема заживления ран после хирургических вмешательств в разных частях организма, где операция успешна, но раневой разрез не заживает.

Кожа представляет собой многослойный плоский эпителий, в котором клетки, претерпевающие рост и дифференцировку, строго пространственно разделены. В физиологическом состоянии пролиферация ограничена базальными клетками, прикрепленными к базальной мембране. Дифференцировка представляет собой пространственный процесс, где базальные клетки теряют их адгезию к базальной мембране, прекращают синтез ДНК и претерпевают ряд морфологических и биохимических изменений. Конечным этапом созревания является образование ороговевшего слоя, формирующего защитный барьер кожи [1, 2]. Самые ранние изменения, наблюдаемые, когда базальные клетки входят в дифференцировку, связаны со способностью базальных клеток отделяться и мигрировать от базальной мембраны [3]. Сходные изменения связаны с процессом заживления ран, когда повышены миграция в раневую область и пролиферативная способность клеток. Эти процессы обязательны для перестройки слоев кожи и индукции правильной дифференцировки эпидермальных слоев.

Анализ механизмов, регулирующих рост и дифференцировку эпидермальных клеток, был значительно упрощен благодаря развитию культуральных систем для мышиных и человеческих кератиноцитов [2, 4]. Кератиноциты in vitro можно поддерживать в качестве базальных пролиферирующих клеток с высокой скоростью роста. Кроме того, дифференцировку можно индуцировать in vitro, следую последовательности созревания клеток in vivo. Ранние события включают в себя потерю компонентов гемидесмосом [3, 5] и селективную потерю α6β4 интегрина, и прикрепление клеток к матриксным белкам. Это предполагает, что изменения в экспрессии интегринов являются ранними событиями в дифференцировке кератиноцитов. Ранняя потеря гемидесмосомного контакта приводит к супрабазальной миграции кератиноцитов и связана с индукцией кератина 1 (K1) в культивируемых кератиноцитах и в коже [1, 3, 6]. Дальнейшая дифференцировка в фенотип гранулярного слоя связана со снижением экспрессии β1 и β4 интегринов, потерей адгезионного потенциала ко всем матриксным белкам с последующим формированием ороговевающей оболочки и смертью клеток. Дифференцирующиеся клетки окончательно отшелушиваются от культуральной посуды как зрелые чешуйки [2, 7]. Эта программа дифференцировки in vitro точно придерживается профиля зрелого эпидермиса in vivo.

Недавние исследования в биологии кератиноцитов подчеркивают участие путей протеинкиназы C, регулирующих пролиферацию и дифференцировку кожи. Семейство серин/треониновых киназ, семейство протеинкиназ C (PKC), играет важную регуляторную роль в ряде биологических явлений [8, 9]. Семейство PKC состоит, по меньшей мере, из 12 отдельных изоформ, принадлежащих к 3 различным категориям: (i) обычные изоформы (α, β1, β2, γ), активируемые посредством Ca²⁺, форболовых эфиров и диацилглицерола, выделяемые внутриклеточно при помощи фосфолипазы С; (ii) необычные изоформы (δ, ε, η, θ), которые также активируются форболовыми эфирами и диацилглицеролом, но не посредством Ca²⁺; и (iii) нетипичные (ς, λ, τ) члены семейства, которые не активируются посредством Ca²⁺, форболовыми эфирами или диацилглицеролом.

Предполагают, что при активации большинство, но не все изоформы перемещаются в плазматическую мембрану из цитоплазмы. Тип изоформы и профиль распределения варьирует среди различных тканей и может меняться как функция фенотипа. В ряде исследований охарактеризованы структура и функция PKC вследствие ее важности в широком ряду конечных точек действия гормонов в клетках. В коже in vivo и в культуре идентифицировали пять изоформ PKC - α, δ, ε, η и ζ. В недавних исследованиях показано, что путь передачи сигнала PKC представляет собой важный внутриклеточный медиатор дифференцировочного ответа [10, 11]. Кроме того, фармакологические активаторы PKC являются мощным индукторами дифференцировки кератиноцитов in vivo и in vitro [4, 12], и ингибиторы PKC препятствуют экспрессии маркеров дифференцировки [10].

При разработке настоящего изобретения предположили, что повышенная экспрессия и/или активация изоформ PKC могут быть полезными для ускорения процессов заживления ран. Вследствие сложности эффективного введения чужеродных генов в первичные клетки посредством традиционных способов исследование роли различных изоформ PKC в пролиферации и/или дифференцировке клеток кожи было затруднено. Короткое время жизни, дифференцировочный потенциал и невозможность выделения стабильных трансформантов делают невозможной эффективную передачу чужеродных генов в первичные клетки кожи.

Предыдущая часть описывает возможное применение инсулина в качестве терапевтического средства для заживления ран. Так, в патентах США №№5591709, 5461030 и 5145679 описано местное применение инсулина в ране для ускорения заживления ран. Однако в этих патентах описывают применение инсулина в сочетании с глюкозой, так как функцией инсулина является улучшение усвоения глюкозы и, таким образом, ускорение заживления ран.

В патентной заявке США №09/748466 и международной патентной заявке № PCT/US 98/21794 описаны композиции, содержащие инсулин, для местного применения на коже с целью улучшения здорового состояния кожи или обработки неглубоких повреждений кожи. Однако ни в одной из этих патентных заявок не указано на применение инсулина для обработки хронических, II степени или глубоких ран.

В международной патентной заявке № PCT/US 01/10245 описано применение цианоакрилового полимерного наполнителя в комбинации с инсулином или серебром для заживления ран. Однако применение инсулина в сочетании с другим биологически активным средством, способным модулировать экспрессию и/или активацию PKC, не указано и не предлагается в этой заявке.

В международной патентной заявке № PCT/US 85/00695 описано местное применение инсулина для лечения диабета. Однако в этой патентной заявке нет указаний по применению инсулина с целью обработки не имеющих отношения к диабету ран.

В международной патентной заявке № PCT/US 92/03086 описаны терапевтические микроэмульсионные композиции, которые могут содержать инсулин. Однако в этой заявке нет указаний по применению инсулина в композиции с целью заживления ран.

В патентах США №№4673649 и 4940660 описаны композиции для клонального роста кератиноцитов человека и эпидермальных клеток in vitro, включающие эпидермальный фактор роста и инсулин. В этих патентах описано применение инсулина для роста культивируемых клеток кожи, которые можно применять для трансплантации. Однако применение инсулина на ранах in vivo не указано в этих патентах.

Ни в одной из процитированных выше ссылок из уровня техники не указано и не предполагается применение инсулина для модулирования экспрессии и/или активации PKC для ускорения процесса заживления ран. Кроме того, в предшествующем уровне техники не указано или не предполагается использование конструкций нуклеиновых кислот или способов генетической трансформации для доставки инсулина в раны для ускорения процесса заживления ран.

Существует широко признанная необходимость, и было бы очень выгодно иметь новые подходы для ускорения процессов, связанных с заживлением ран. Кроме того, существует широко признанная необходимость, и было бы крайне полезно иметь эффективный способ вставки в клетки кожи рекомбинантных генов, которые будут ускорять процессы пролиферации и/или дифференцировки клеток и заживление ран.

Раскрытие изобретения

В практическом воплощении настоящего изобретения авторы изобретения обнаружили, что введение в раны только инсулина может служить причиной неблагоприятных побочных эффектов, таких как повышенный ангиогенез, воспаление, гиперплазия эпидермальных клеток и рубцевание (см. пример 23 в следующем ниже разделе "Примеры"). Также авторы настоящего изобретения обнаружили, что индуцированные инсулином побочные эффекты можно эффективно обойти посредством сочетания инсулина с одним или несколькими средствами, способными модулировать экспрессию и/или активацию PKC в колонизирующих раневую область клетках, значительно ускоряя процесс заживления ран.

Настоящее изобретение относится к новым способам и композициям для эффективного лечения ран без неблагоприятных побочных эффектов посредством доставки в раневую область эффективного количества инсулина и/или других средств, способных модулировать экспрессию и/или активацию PKC в клетках, колонизирующих раневую область и обладающих синергическим действием с инсулином, для ускорения процесса заживления ран.

Таким образом, согласно одному из аспектов настоящего изобретения разработан способ индукции или ускорения процесса заживления поврежденной кожи или кожной раны, где способ включает стадию введения в поврежденную кожу или кожную рану терапевтически эффективного количества средства для модуляции продуцирования и/или активации PKC.

Согласно еще одному из аспектов настоящего изобретения предоставлена фармацевтическая композиция для индукции или ускорения процесса заживления поврежденной кожи или кожной раны, где фармацевтическая композиция содержит в качестве активного ингредиента терапевтически эффективное количество, по меньшей мере, одного средства для модуляции продуцирования и/или активности PKC; и фармацевтически приемлемый носитель.

Согласно следующему аспекту настоящего изобретения разработан способ индукции или ускорения процесса заживления поврежденной кожи или кожной раны, где способ включает стадию введения в поврежденную кожу или кожную рану терапевтически эффективного количества инсулина и, по меньшей мере, одного дополнительного средства, обладающего синергическим действием с инсулином, для индукции или ускорения процесса заживления поврежденной кожи или кожной раны.

Согласно еще одному из аспектов настоящего изобретения предоставлена фармацевтическая композиция для индукции или ускорения процесса заживления поврежденной кожи или кожной раны, где фармацевтическая композиция содержит в качестве активного ингредиента терапевтически эффективное количество инсулина, по меньшей мере, одно дополнительное средство, обладающее синергическим действием с инсулином, и фармацевтически приемлемый носитель, предназначенный для местного применения фармакологической композиции.

Согласно следующему аспекту настоящего изобретения разработан способ индукции или ускорения процесса заживления поврежденной кожи или кожной раны, где способ включает стадию введения в поврежденную кожу или кожную рану однократной дозы терапевтически эффективного количества инсулина, таким образом индуцируя или ускоряя процесс заживления поврежденной кожи или кожной раны.

Согласно следующему аспекту настоящего изобретения предоставлена фармацевтическая композиция для индукции или ускорения процесса заживления поврежденной кожи или кожной раны, где фармацевтическая композиция содержит в качестве активного ингредиента подобранную однократную стандартную дозу инсулина, способную индуцировать или ускорять процесс заживления поврежденной кожи или кожной раны, и фармацевтически приемлемый носитель, предназначенный для местного применения фармакологической композиции.

Согласно следующему аспекту настоящего изобретения разработан способ индукции или ускорения процесса заживления застарелых кожных ран, где способ включает стадию введения в застарелые кожные раны однократной дозы терапевтически эффективного количества инсулина, таким образом индуцируя или ускоряя процесс заживления застарелых кожных ран.

Согласно еще одному из аспектов настоящего изобретения разработан способ индукции или ускорения процесса заживления поврежденной кожи или кожной раны, где способ включает стадию имплантации в поврежденную кожу или кожную рану терапевтически эффективного количества клеток, секретирующих инсулин, с тем чтобы индуцировать или ускорить процесс заживления поврежденной кожи или застарелой кожной раны.

Согласно еще одному из аспектов настоящего изобретения предоставлена фармацевтическая композиция для индукции или ускорения процесса заживления поврежденной кожи или кожной раны, где фармацевтическая композиция содержит в качестве активного ингредиента секретирующие инсулин клетки и фармацевтически приемлемый носитель, предназначенный для местного применения фармакологической композиции.

Согласно еще одному из аспектов настоящего изобретения разработан способ индукции или ускорения процесса заживления поврежденной кожи или кожной раны, где способ включает стадию трансформации клеток поврежденной кожи или кожной раны для продукции и секреции инсулина, с тем чтобы индуцировать или ускорить процесс заживления поврежденной кожи или кожной раны.

Согласно следующему аспекту настоящего изобретения предоставлена фармацевтическая композиция для индукции или ускорения процесса заживления поврежденной кожи или кожной раны, где фармацевтическая композиция содержит в качестве активного ингредиента конструкцию нуклеиновой кислоты, предназначенную для трансформации клеток поврежденной кожи или кожной раны для продукции и секреции инсулина, и фармацевтически приемлемый носитель, предназначенный для местного применения фармакологической композиции.

Согласно еще одному из аспектов настоящего изобретения разработан способ индукции или ускорения процесса заживления поврежденной кожи или кожной раны, где способ включает стадию трансформации клеток поврежденной кожи или кожной раны для продукции протеинкиназы C, с тем чтобы индуцировать или ускорить процесс заживления поврежденной кожи или кожной раны.

Согласно следующему аспекту настоящего изобретения предоставлена фармацевтическая композиция для индукции или ускорения процесса заживления поврежденной кожи или кожной раны, где фармацевтическая композиция содержит в качестве активного ингредиента конструкцию нуклеиновой кислоты, предназначенную для трансформации клеток поврежденной кожи или кожной раны для продукции протеинкиназы C, и фармацевтически приемлемый носитель, предназначенный для местного применения фармакологической композиции.

Согласно еще одному из аспектов настоящего изобретения разработан способ индукции или ускорения процесса заживления поврежденной кожи или кожной раны, где способ включает стадию введения в поврежденную кожу или кожную рану терапевтически эффективного количества активатора PKC, с тем чтобы индуцировать или ускорить процесс заживления поврежденной кожи или кожной раны.

Согласно еще одному из аспектов настоящего изобретения предоставлена фармацевтическая композиция для индукции или ускорения процесса заживления поврежденной кожи или кожной раны, где фармацевтическая композиция содержит в качестве активного ингредиента терапевтически эффективное количество активатора PKC для индукции или ускорения процесса заживления поврежденной кожи или кожной раны и фармацевтически приемлемый носитель.

Согласно еще одному из аспектов настоящего изобретения разработан способ индукции или ускорения процесса заживления поврежденной кожи или кожной раны, где способ включает стадию введения в поврежденную кожу или кожную рану терапевтически эффективного количества сополимера-1.

Согласно еще одному из аспектов настоящего изобретения предоставлена фармацевтическая композиция для индукции или ускорения процесса заживления поврежденной кожи или кожной раны, где фармацевтическая композиция содержит в качестве активного ингредиента терапевтически эффективное количество сополимера-1 и фармацевтически приемлемый носитель, предназначенный для местного применения фармакологической композиции.

Согласно следующему аспекту настоящего изобретения разработан способ индукции или ускорения процесса заживления поврежденной кожи или кожной раны, где способ включает модулирование экспрессии и/или активации, по меньшей мере, одной изоформы PKC в дермальных клетках, колонизирующих поврежденную кожу или кожную рану; и введение в дермальные клетки терапевтически эффективного количества, по меньшей мере, одного дополнительного средства, выбранного из группы, состоящей из гормона, фактора роста, адипокина, PKCδ RACK и GW9662 с модулированием экспрессии и/или активности изоформы PKC, с тем чтобы индуцировать или ускорить процесс заживления поврежденной кожи или кожной раны.

Согласно еще одному из аспектов настоящего изобретения предоставлена фармацевтическая композиция для индукции или ускорения процесса заживления поврежденной кожи или кожной раны, где фармацевтическая композиция содержит в качестве активного ингредиента терапевтически эффективное количество вещества для модулирования экспрессии или активации, по меньшей мере, одной изоформы PKC и, по меньшей мере, одно дополнительное средство, выбранное из группы, состоящей из гормона, фактора роста, адипокина, PKCδ RACK и GW9662, и фармацевтически приемлемый носитель.

В соответствии с описанными ниже дополнительными особенностями предпочтительных вариантов осуществления изобретения рана выбрана из группы, состоящей из язвы, раны, связанной с диабетом, ожога, солнечного ожога, застарелой раны кожи, изъязвленной раны роговицы, раны при воспалительном заболевании желудочно-кишечного тракта, раны при воспалительном заболевании кишечника, раны при болезни Крона, язвенном колите, геморрое, раны при буллезном эпидермолизе, кожно-нарывной раны, псориатической раны, раны при дерматите, раны кожи животного, дибетической раны животного, раны при ретинопатии, раны полости рта (мукозит), раны вагинальной слизистой оболочки, раны при заболевании десны, рваной раны, раны хирургического разреза и послеоперационной спаечной раны.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления язва представляет собой диабетическую язву, пролежень, венозную язву, язву желудка и язву, связанную с ВИЧ.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления инсулин является рекомбинантным.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления инсулин имеет природное происхождение.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления дополнительное средство представляет собой фактор роста тромбоцитов.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления дополнительное средство представляет собой ингибитор PKCα.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления введение выполняют посредством однократного применения.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления застарелой ране кожи по меньшей мере 2 суток.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления инсулин имеет инсулиновую концентрацию в интервале от 0,1 до 10 мкМ. В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления стандартная доза инсулина составляет от 0,001 до 5 нМ в 0,01-0,2 мл фармацевтической композиции.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления доза инсулина находится в интервале от 0,01 до 0,5 нМ в 0,01-0,2 мл фармацевтической композиции.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления фармацевтическая композиция выбрана из группы, состоящей из водного раствора, геля, крема, пасты, примочки, аэрозоля, суспензии, порошка, коллоидного раствора, бальзама и мази.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления фармацевтическая композиция включает твердую основу.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления клетки трансформированы для продукции и секреции инсулина.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления клетки трансформированы при помощи рекомбинантного гена PDX1, и поэтому клетки продуцируют и секретируют природный инсулин.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления клетки трансформированы при помощи последовательности действующего в цис-положении элемента, интегрированного перед геном эндогенного инсулина клеток, и поэтому клетки продуцируют и секретируют природный инсулин.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления секретирующие инсулин клетки способны к формированию секреторных гранул.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления секретирующие инсулин клетки представляют собой эндокринные клетки.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления секретирующие инсулин клетки являются человеческими.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления секретирующие инсулин клетки представляют собой гуманизированные по гистосовместимости клетки из животного источника.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления секретирующие инсулин клетки секретируют человеческий инсулин.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления секретирующие инсулин клетки представляют собой аутологичные клетки.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления клетки выделены из группы, состоящей из фибробластов, эпителиальных клеток и кератиноцитов.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления клетки трансформированы для продукции активатора транскрипции протеинкиназы C, и поэтому клетки продуцируют природную протеинкиназу С.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления клетки трансформированы при помощи последовательности действующего в цис-положении элемента, интегрируемой перед геном эндогенной протеинкиназы C клеток, и поэтому клетки продуцируют природную протеинкиназу С.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления клетки трансформированы при помощи рекомбинантного гена протеинкиназы C, и поэтому клетки продуцируют рекомбинантную протеинкиназу С.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления протеинкиназа C выбрана из группы, состоящей из PKC-β1, PKC-β2, PKC-γ, PKC-θ, PKC-λ и PKC-τ.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления протеинкиназа C выбрана из группы, состоящей из PKC-α, PKC-δ, PKC-ε, PKC-η и PKC-ζ.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления сополимер-1 содержится в фармацевтической композиции, адаптированной для местного применения.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления изоформа PKC выбрана из группы, состоящей из PKCα, PKC-β, PKC-δ и PKC-ζ.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления гормон представляет собой инсулин.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления фактор роста выбран из группы, состоящей из IL-6, KFG и TNFα.

В соответствии с дополнительными особенностями в описанных предпочтительных вариантах осуществления адипокин представляет собой адипсин или адипонектин.

Настоящее изобретение успешно преодолевает недостатки известных в настоящее время форм, предоставляя новые терапевтические средства для борьбы с повреждениями кожи или кожными ранами.

Краткое описание фигур

Изобретение далее описано только посредством примера со ссылкой на сопровождающие фигуры. С конкретной ссылкой на подробные описания фигур подчеркивают, что подробности показаны в виде примера и с целью иллюстративного обсуждения предпочтительных вариантов осуществления только настоящего изобретения и представлены с целью предоставления того, что, как полагают, является наиболее пригодным и легко понятным описанием принципов и концептуальных аспектов изобретения. В этом отношении не проводили попыток показать структурные детали изобретения более подробно, чем это необходимо для принципиального понимания изобретения, описание, рассматриваемое во взаимосвязи с фигурами, делает очевидным для специалистов в этой области, как некоторые формы изобретения можно осуществлять на практике.

На фигурах:

На фиг.1 показано эффективное повышение экспрессии изоформ PKC с применением рекомбинантных аденовирусных векторов: левая панель: четырехсуточные первичные кератиноциты инфицировали в течение 1 часа с применением β-gal аденовируса. Через 48 часов после инфекции клетки фиксировали и активацию белка β-галактозидазы измеряли посредством индукции голубого цвета реакции по сравнению с неинфицированными кератиноцитами. Правая панель: четырехсуточные первичные кератиноциты инфицировали в течение 1 часа с применением рекомбинантных аденовирусов с конкретной изоформой PKC. Через двадцать четыре часа белки инфицированных (Ad) и неинфицированных контрольных (C) культур выделяли для "вестерн-блот" анализа, образцы анализировали с применением антител к конкретной изоформе PKC, как описано ниже в разделе "Примеры".

На фиг.2 показано, что активация PKC посредством бриостатина 1 индуцирует транслокацию изоформ PKC с повышенной экспрессией. Четырехсуточные первичные кератиноциты инфицировали в течение 1 часа рекомбинантными аденовирусами с конкретной изоформой PKC. Через двадцать четыре часа после инфицирования клетки либо не обрабатывали (С), либо стимулировали бриостатином 1 (В) в течение 30 минут и фракционировали. Образцы белков подвергали "вестерн-блоттингу" и анализировали с применением антител к конкретной изоформе PKC.

На фиг.3 показано, что изоформы PKC с повышенной экспрессией активны в своей нативной форме. Четырехсуточные первичные кератиноциты инфицировали в течение 1 часа аденовирусами с рекомбинантной конкретной изоформой PKC. Через восемнадцать часов после инфекции клеточные лизаты из неинфицированных контрольных клеток (С) и клеток с повышенной экспрессией изоформ PKC (ОЕ) иммунопреципитировали с применением антител к конкретной изоформе PKC. Иммунопреципитаты подвергали исследованию активности PKC, как описано ниже в разделе "Примеры".

На фиг.4 показано, что повышенная экспрессия конкретных изоформ PKC индуцирует различные морфологические изменения в первичных кератиноцитах. Первичные кератиноциты оставляли необработанными (С) или инфицировали аденовирусами с рекомбинантными PKCα, δ, η или ζ. Через двадцать четыре часа культуры наблюдали посредством микроскопии в светлом поле и фотографировали (×20).

На фиг.5 показана различная локализация изоформ PKC с повышенной экспрессией в инфицированных первичных кератиноцитах. Первичные кератиноциты наносили на покрытые ламинином 5 предметные стекла. Культуры либо не обрабатывали или инфицировали аденовирусами с различными рекомбинантными PKC. Через двадцать четыре часа после инфекции клетки фиксировали, отмывали и высушивали на воздухе. Культуры анализировали посредством иммунофлуоресценции с применением антител к конкретным изоформам PKC, затем посредством конъюгированных с FITC вторых антител. Клетки сканировали посредством конфокальной микроскопии и фотографировали характерные поля зрения.

На фиг.6 показано, что изоформы PKC специфически регулируют α6β4 интегриновую экспрессию. Пятисуточные первичные кератиноциты мышиной кожи не обрабатывали или инфицировали рекомбинантными аденовирусами с PKCα, PKCδ, PKCη или PKCζ. Через сорок восемь часов после инфекции мембранные клеточные фракции подвергали SDS-PAGE электрофорезу, переносили на нитроцеллюлозные фильтры, выполняли иммуноблоттинг с антителами к α6 и β4 и анализировали с помощью ECL.

На фиг.7 показано, что повышенная экспрессия PKCη и PKCδ индуцирует пролиферацию кератиноцитов. Пятисуточные первичные кератиноциты мышиной кожи не обрабатывали или инфицировали рекомбинантными аденовирусами с PKCδ, PKCα, PKCη или PKCζ. Через сорок восемь часов после инфекции анализировали пролиферацию клеток при помощи включения ³Н-тимидина в течение 1 часа, как описано в экспериментальных процедурах. Результаты представлены как имп./мин на кювету по сравнению с инфицированными β-галактозидазой кератиноцитами. Величины представлены в виде среднее ± стандартное отклонение повторенных три раза определений в 3 независимых экспериментах.

На фиг.8 показано, что повышенная экспрессия изоформ PKC действует на гемидесмосомальную локализацию α6β4 интегрина. Первичные кератиноциты помещали на покрытые ламинином 5 предметные стекла и культуры кератиноцитов содержали в МЕМ с низким содержанием Ca²⁺ в течение 48 часов. После этого культуры оставляли необработанными (А) или инфицировали рекомбинантными аденовирусами с PKCα, PKCδ, PKCη или PKCζ (В-Е соответственно). Через двадцать четыре часа после инфекции кератиноциты фиксировали в 4% параформальдегиде с последующей мягкой экстракцией в 0,2% Triton-X-100, отмывали в PBS и высушивали на воздухе, как описано в экспериментальных процедурах. Культуры подвергали иммунофлуоресцентному анализу с применением антител к конкретной изоформе α6, затем посредством конъюгированных с FITC вторых антител, как описано в экспериментальных процедурах.

На фиг.9А-В показано, что повышенная экспрессия PKCδ и PKCζ индуцирует in vitro открепление кератиноцитов. (А) - Первичные кератиноциты оставляли либо необработанными (С) или инфицировали аденовирусами с рекомбинантными PKCα, δ, η или ζ. Прикрепление клеток анализировали через 24 и 48 часов после инфекции, снимая клетки и повторно нанося их на покрытые матриксом кюветы. Количество клеток представлено как концентрация белка (мг/кювету) прикрепленных клеток. (В) - Первичные кератиноциты не обрабатывали (С) или инфицировали аденовирусами с рекомбинантными PKCα, δ, η или ζ. Открепление клеток анализировали через 24 часа после инфекции, собирая в культуральной среде открепленные плавающие клетки. Количество клеток представлено в виде концентрации белка (мг/кювету) открепленных клеток.

На фиг.10 показано, что PKCη экспрессирована в активно пролиферирующих кератиноцитах. Первичные кератиноциты помещали на покрытые ламинином 5 предметные стекла. Через сорок восемь часов после этого кератиноциты инкубировали с раствором BrdU в течение 1 часа с последующим иммунофлуоресцентным анализом с применением антител к PKCη (красные) и BrdU (зеленые), как описано ниже в разделе "Примеры". Клетки сканировали посредством конфокальной микроскопии и фотографировали характерные поля зрения.

На фиг.11 показано, что PKCη индуцирует, в то время как мутант по PKCη снижает пролиферацию кератиноцитов. Первичные кератиноциты кожи инфицировали в течение 1 часа аденовирусами с рекомбинантной PKCη или доминантно негативным мутантом по PKCη (DNPKCη или PKC DNη). Через сорок восемь часов после инфекции анализировали пролиферацию клеток посредством 1-часового включения ³Н-тимидина, как описано ниже в разделе "Примеры". Результаты представлены как имп./мин на кювету. Контролем являются неинфицированные клетки.

На фиг.12А-В показано, что повышенная экспрессия PKCη и DNPKCη специфически регулируют локализацию PKC и клеточную морфологию. Первичные кератиноциты кожи инфицировали в течение 1 часа аденовирусами с рекомбинантной PKCη или доминантно негативным мутантом по PKCη (PKC DNη). Через сорок восемь часов после инфекции кератиноциты фиксировали и подвергали (А) фотографированию в светлом поле (×20) и (B) иммунофлуоресцентному анализу с применением специфичных к PKCη антител, затем посредством конъюгированных с FITC вторых антител, как описано в экспериментальных процедурах. Контролем являются неинфицированные клетки.

На фиг.13А-В показано, что ингибирование экспрессии PKCη индуцирует дифференцировку кератиноцитов в пролиферирующих кератиноцитах. Первичные кератиноциты кожи поддерживали пролиферирующими в среде с низким содержанием Ca²⁺, или клетки дифференцировались в течение 24 часов в среде с 0,12 мМ Ca²⁺. После этого кератиноциты инфицировали в течение 1 часа аденовирусами с рекомбинантной PKCη или доминантно негативным мутантом по PKCη (PKC DNη). Через двадцать четыре часа после инфекции кератиноциты содержали в среде с низким содержанием Ca²⁺ или переносили в содержащую 0,12 мМ Ca²⁺ среду для дифференцировки дополнительно еще на 24 часа. Через сорок восемь часов после инфекции кератиноциты выделяли и подвергали SDS-PAGE. Экспрессию PKCη (А) и кератина 1 (В) анализировали посредством "вестерн-блоттинга".

На фиг.14 показано, что местная экспрессия PKCη in vivo улучшает формирование грануляционной ткани и ускоряет заживление ран в мышиных резаных ранах. На спине голых мышей делали полнослойный разрез кожи длиной 7 мм. На 1 и 4 сутки после нанесения раны местно применяли аденовирусную суспензию с контрольной β-gal, PKCη и PKCα. Раны фиксировали в 4% параформальдегиде и разрезы кожи гистологически анализировали с помощью окрашивания H&E и микроскопии в светлом поле. E - эпидермис, D - дерма.

На фиг.15 показано, что инсулин, но не IGF1 специфически индуцирует транслокацию PKCδ в пролиферирующих кератиноцитах. Выделяли первичные кератиноциты и помещали в планшеты, как описано ниже в разделе "Примеры". Пролиферирующие кератиноциты содержали в течение 5 суток в среде с низким содержанием Ca²⁺ (0,05 мМ) до тех пор, пока они достигали 80% конфлуэнтности. Клетки стимулировали 10^-7 М инсулина (Ins) или 10^-8 М IGF1 (IGF) в течение 15 минут. Клетки лизировали, как описано, и 20 мкг мембранных или цитозольных экстрактов стимулированных или контрольных нестимулированных (Cont) клеток подвергали SDS-PAGE и переносу. Блоты исследовали при помощи специфических поликлональных антител к каждой изоформе PKC.

На фиг.16 показано, что инсулин, но не IGF1 индуцирует активность PKCδ, культуры пятисуточных кератиноцитов стимулировали 10^-7 М инсулина (Ins) или 10^-8 М IGF1 (IGF) в течение указанного времени (1, 15 или 30 минут). PKCδ иммунопреципитирована из мембранных (голубые столбики, mem) и цитозольных (пурпурные столбики, cyto) фракций с применением специфических к PKCδ антител. Иммунопреципитаты PKCδ анализировали на активность PKC с применением киназного исследования in vitro, как описано в экспериментальных процедурах. Каждая полоса представляет собой среднее ± СО повторенных три раза определений в 3 независимых экспериментах. Величины выражены как пМ АТФ/кювету/минуту.

На фиг.17А-В показано, что инсулин и IGF1 обладают аддитивным эффектом на пролиферацию кератиноцитов. Пролиферирующие кератиноциты поддерживали в течение пяти суток в среде с низким содержанием Ca²⁺ (0,05 мМ) до тех пор, пока они достигали 80% конфлуэнтности. (А) Культуры пятисуточных кератиноцитов стимулировали в течение 24 часов инсулином или IGF1 в указанных концентрациях. (В) Параллельно кератиноциты стимулировали 10^-7 М инсулина (Ins) и возрастающими дозами IGF1 (IGF). При каждой концентрации правая колонка (полосатый столбик) представляет пролиферацию, наблюдаемую при одновременном добавлении обоих гормонов. Левая линия демонстрирует отдельное действие 10^-7 М инсулина (красные столбики) и возрастающих концентраций IGF1 (серые столбики). Включение тимидина измеряли, как описано в экспериментальных процедурах. Показанные результаты представляют собой характерные результаты 6 экспериментов. Каждая линия представляет собой среднее ± СО повторенных три раза определений, выраженных как процент, превышающий контрольные нестимулированные кератиноциты.

На фиг.18А-В показана повышенная экспрессия рекобинантных PKC аденовирусных конструкций. Культуры кератиноцитов инфицировали с применением рекомбинантных аденовирусных конструкций, содержащих дикий тип PKCδ (WTPKCδ), дикий тип PKCα (WTPKCα) или доминантно негативный мутант по PKCδ (DNPKCδ). (А) После инфицирования клетки культивировали в течение 24 часов, собирали и 20 мкг белковых экстрактов анализировали посредством "вестерн-блоттинга" с применением специфических антител к PKCα или PKCδ. Представленные блоты являются типичными из 5 независимых экспериментов. (В) Через двадцать четыре часа после инфицирования клетки собирали и иммунопреципитаты PKCα или PKCδ оценивали in vitro посредством киназного анализа.

На фиг.19 показано действие повышенной экспрессии PKC на индуцированную инсулином или IGF1 пролиферацию. Неинфицированные клетки (светло-голубые столбики) или клетки с повышенной экспрессией WTPKCδ (темно-голубые столбики), или DNPKCδ (косые голубые столбики) обрабатывали в течение 24 часов 10^-7 М инсулина (Ins), 10^-8 М IGF1 (IGF) или тем и другим вместе (Ins+IGF). Включение тимидина измеряли, как описано в экспериментальных процедурах. Каждая линия представляет собой среднее ± СО повторенных три раза определений, сделанных на отдельных культурах. Значения представлены как процент от контроля - нестимулированных клеток из той же культуры в каждом эксперименте.

На фиг.20 показано, что ингибирование активности PKCδ специфически отменяет индуцированную инсулином пролиферацию кератиноцитов. Первичные кератиноциты культивировали, как описано ниже в разделе "Примеры". Неинфицированные клетки или инфицированные DNPKCδ кератиноциты стимулировали в течение 24 часов следующими концентрациями фактора роста: 10^-7 М инсулина (Ins), 10^-8 М IGF1 (IGF), 10 нг/мл EGF, 10 нг/мл PDGF, 1 нг/мл KGF или 5 нг/мл ECGF. Включение тимидина измеряли, как описано ниже в разделе "Примеры". Каждая линия представляет собой среднее ± СО повторенных три раза определений, сделанных на отдельных культурах. Значения представлены как процент от контроля - нестимулированных клеток из той же культуры в каждом эксперименте.

На фиг.21 показано, что повышенная экспрессия PKCδ специфически опосредует индуцированную инсулином пролиферацию кератиноцитов. Первичные кератиноциты культивировали, как описано согласно фиг.1. Неинфицированные клетки или инфицированные кератиноциты с повышенной экспрессией WTPKCδ стимулировали в течение 24 часов следующими концентрациями фактора роста: 10^-7 М инсулина (Ins), 10^-8 М IGF1 (IGF), 10 нг/мл EGF, 10 нг/мл PDGF, 1 нг/мл KGF или 5 нг/мл ECGF. Включение тимидина измеряли, как описано ниже в разделе "Примеры". Каждая линия представляет собой среднее ± СО повторенных три раза определений, сделанных на отдельных культурах. Значения представлены как процент от контроля - нестимулированных клеток из той же культуры в каждом эксперименте.

На фиг.22А-В доказана значимость PKCδ и PKCζ в процессе заживления ран кожи in vivo. Применяя in vivo мышиную модель вновь разработанных конкретных изоформ PKC у мышей с отсутствием PKCα PKCδ и PKCζ, которых вместе с животными дикого типа одного с ними помета подвергали изучению заживления ран. Мышей анестезировали и на спине мышей выполняли сквозную пункционную биопсию кожи диаметром 4 мм. Через неделю кожу мышей снимали и заживление ран кожи оценивали, подвергая кожные трансплантаты испытанию на разрыв раны с применением способа разрывной камеры. Значения представлены в виде давления разрыва, представляющее собой измеренное камерой максимальное давление до совершения разрыва. Результаты представляют определения, полученные в разных группах из 12-20 мышей. Эксперименты повторяли, по меньшей мере, 3 раза.

На фиг.23 обозначено специфическое взаимодействие между STAT3 и PKCδ в первичных кератиноцитах кожи. Первичные кератиноциты не обрабатывали (верхняя панель) или инфицировали в течение 1 часа аденовирусами с рекомбинантной специфической изоформой PKC (нижняя панель). Клетки выделяли и иммунопреципитировали (IP) антителами к конкретной изоформе PKC. Иммунопреципитаты подвергали анализу "вестерн-блот" с применением антител к PKC или STAT3.

На фиг.24 продемонстрирована важность активации PKCδ для индуцированной инсулином транскрипционной активации STAT3. Первичные кератиноциты наносили на предметные стекла и содержали в течение 5 суток в среде с низким содержанием

Ca²⁺ (0,05 мМ/л) до тех пор, пока они достигали 80% конфлуэнтности. Клетки не обрабатывали (Cont, верхняя панель) или предварительно обрабатывали 5 мкМ роттлерина в течение 7 минут (R, нижняя панель), затем 10^-7 М инсулина в течение 5 минут (Ins). Клетки фиксировали метанолом, отмывали и высушивали на воздухе. Культуры анализировали посредством иммунофлуоресценции с применением антитела antiphospho-Tyr-705-STAT3, за которым следует конъюгированное с FITC антитело. Клетки сканировали посредством конфокальной микроскопии.

На фиг.25 показано, что повышенная экспрессия DN PKCδ ингибирует пролиферацию кератиноцитов, индуцированную посредством повышенной экспрессии PKCδ и STAT3. Первичные кератиноциты инфицировали в течение 1 часа рекомбинантными аденовирусными конструкциями, содержащими β-Gal (для контроля), PKCδ, WT STAT3, DN STAT3, или дважды инфицировали DN PKCδ, а затем STAT3. Через 24 часа после инфекции пролиферацию клеток анализировали посредством включения ³Н-тимидина в течение 1 часа. Результаты представлены как DPM/мг белка. Каждая линия представляет собой среднее из трех определений в планшете из той же культуры.

На фиг.26 продемонстрирована важность концентраций инсулина и частоты применений для заживления ран in vivo. На спине 8-10 недельных C57BL мышей выполняли раневые разрезы и обрабатывали PBS (контроль) или применяли инсулин в различных концентрациях и с разной частотой (т.е. семь ежедневных повторных применений по сравнению с однократным применением). Через семь суток после ранения мышей умерщвляли и измеряли области обработанных ран. Результаты представлены как мм² раневой области, и каждая линия представляет собой среднее из шести повторов ± стандартное отклонение (p<0,005).

На фиг.27 продемонстрированы гистологические эффекты концентраций и частоты применений инсулина на заживление ран in vivo. На спине 8-10 недельных C57BL мышей выполняли раневые разрезы и обрабатывали различными концентрациями инсулина и с различной чатотой применений (т.е. семь ежедневных повторных применений по сравнению с однократным применением). Гистологические срезы ран выполняли через семь суток после ранения и анализировали эпидермальное и дермальное закрытие (раневое стягивание). Эпидермальное закрытие определяли посредством окрашивания антителами к кератину 14 (К14) (левая панель) и считали положительным, если рана положительно окрашивалась на протяжении всей щели. Дермальное закрытие считали положительным, если оба дермальных края раны можно было наблюдать в световом микроскопе в одном поле зрения при ×100 увеличении (правая панель). Результаты представлены как процент закрытия раны относительно контроля, и каждая линия представляет собой среднее шести повторений.

На фиг.28 продемонстрировано синергическое действие сочетания инсулина и выделенного из тромбоцитов фактора роста (PDGF-BB) на заживление ран in vivo. На спине 8-10 недельных C57BL мышей выполняли раневые разрезы и обрабатывали однократным применением инсулина, PDGF-BB или комбинированными инсулином и PDGF-BB. Через семь суток после ранения обработанных мышей умерщвляли, и забирали биоптаты для гистологических анализов эпидермального и дермального закрытия (раневого стягивания). Эпидермальное закрытие определяли посредством окрашивания антителами к кератину 14 (К14) (левая панель) и считали положительным, если рана положительно окрашивалась на протяжении всей щели. Дермальное закрытие считали положительным, если оба дермальных края раны можно было наблюдать в световом микроскопе в одном поле зрения при ×100 увеличении (правая панель). Результаты представляли как суммарные на гистограмме в виде процента закрытия раны относительно контроля, и каждая линия представляет собой среднее шести повторений.

Фиг.29A-D представляют собой фотографии, иллюстрирующие морфологический эффект комбинированных инсулина и ингибитора PKCα на заживление ран in vivo. На спине 8-10-недельных C57BL мышей выполняли раневые разрезы и либо не обрабатывали (контроль), или обрабатывали инсулином (HO/01), комбинированным с ингибитором PKCα (HO/02). Через 7 суток после ранения забирали биопсии кожи для морфологических наблюдений. На фиг.29А-В показаны контрольные раны, тогда как на фиг.29C-D показаны обработанные раны.

Фиг.30 представляет собой гистологическую микрофотографию, иллюстрирующую комбинированное воздействие инсулина и ингибитора PKCα на дермальное закрытие (раневое стягивание). На спине 8-10-недельных C57BL мышей выполняли раневые разрезы и либо не обрабатывали (контроль), или ежедневно обрабатывали инсулином (HO/01), комбинированным с ингибитором PKCα (HO/02). Через семь суток после ранения обработанных мышей умерщвляли. Выполняли гистологические срезы ран и наблюдали в световом микроскопе. Дермальное закрытие считали положительным, если оба дермальных края раны можно было наблюдать в световом микроскопе в одном поле зрения при ×100 увеличении. Область открытых ран в необработанном контрольном срезе (левая панель) была слишком большой, чтобы поместиться в одно поле зрения при ×100 увеличении, тогда как срез обработанной раны (правая панель) показывает положительное дермальное закрытие. Желтые пятнистые линии обозначают края дермы.

Фиг.31 представляет собой гистологическую микрофотографию, иллюстрирующую комбинированное воздействие инсулина и ингибитора PKCα на эпидермальное закрытие. На спине 8-10-недельных C57BL мышей выполняли раневые разрезы и либо не обрабатывали, или ежедневно обрабатывали инсулином (HO/01), комбинированным с ингибитором PKCα (HO/02). Через семь суток после ранения обработанных мышей умерщвляли. Выполняли гистологические срезы ран, окрашивали антителами к кератину 14 (указывающими на базальные кератиноциты) и наблюдали в световом микроскопе. Область открытых ран (обозначена стрелкой) в необработанном контрольном срезе (левая панель) была слишком большой, чтобы поместиться в одно поле зрения при ×100 увеличении, тогда как срез обработанной раны (правая панель) показывает эпидермальное закрытие на всем протяжении раневой щели.

Фиг.32 представляет собой гистологическую микрофотографию, иллюстрирующую комбинированное воздействие инсулина и ингибитора PKCα на пространственную дифференцировку эпидермальных клеток. Раненных мышей (C57BL, 8-10 недель) ежедневно обрабатывали местными аппликациями инсулина (HO/01), комбинированного с ингибитором PKCα (HO/02). Через семь суток после ранения обработанных мышей умерщвляли. Выполняли гистологические срезы ран и окрашивали антителом к кератину 1 (K1), выделяющему начальную стадию пространственной дифференцировки клеток. Необработанный контрольный срез (левая панель) показывает крупную недифференцированную раневую область (обозначена стрелкой), тогда как в обработанном раневом срезе (правая панель) можно наблюдать массовое эпидермальное восстановление.

На фиг.33 продемонстрирован количественное действие инсулина, комбинированного с ингибитором PKCα, на заживление ран in vivo. Раненных мышей (C57BL, 8-10 недель) ежедневно обрабатывали местными аппликациями инсулина (HO/01), комбинированного с ингибитором PKCα (HO/02). Через семь суток после ранения обработанных мышей умерщвляли. Выполняли гистологические срезы ран и анализировали дермальное сжатие, эпидермальное закрытие и пространственную дифференцировку, как описано выше в фиг.30-32. На гистограмме показана доля (процентная) от полностью заживших ран, что определяли посредством гистологического анализа в каждой обработанной группе.

Фиг.34A-G представляют собой фотографии, иллюстрирующие комбинированный эффект ингибирования экспрессии и/или активности PKCα и модулирования экспрессии и/или активности другой изоформы PKC в дермальных клетках, или введения гормона в дермальные клетки на закрытие ран кожи in vitro. Культивируемые первичные фибробласты кожи инфицировали доминантно-негативной (DN) неактивной киназой PKCα. Через двадцать четыре часа выполняли царапины и культуры оставляли необработанными (фиг.34А) или инфицировали дикого типа (WT) PKCδ (фиг.34В), PKCη (фиг.34С), WT PKCζ (фиг.34D) или WT PKCε (фиг.34E). Наоборот, PKCα-ингибированные культуры обрабатывали адипсином (2 мкг/мл; фиг.34F) или инсулином (6,7×10^-7 M; фиг.34G). Через 24 часа после обработки получали фотографии.

Фиг.35A-H представляют собой фотографии, иллюстрирующие комбинированный эффект ингибирования экспрессии и/или активности PKCα и модулирования экспрессии и/или активности другой изоформы PKC в дермальных клетках или введения гормона в дермальные клетки на закрытие ран кожи in vitro. Культивируемые первичные кератиноциты кожи инфицировали доминантно-негативной (DN) неактивной киназой PKCα. Через двадцать четыре часа выполняли царапины и культуры оставляли необработанными (фиг.35А) или инфицировали дикого типа (WT) PKCε (фиг.35D), WT PKCζ (фиг.35E) или WT PKCη (фиг.35F). Наоборот, PKCα-ингибированные культуры обрабатывали IL-6 (1 мкг на планшет; фиг.35B), KGF (1 мкг на планшет; фиг.35С), PKCδ RACK (10^-7 M; фиг.35Н) или TNFα (12 мкг/мл; фиг.35G). Через 24 часа после обработки получали фотографии.

Фиг.36A-B представляют собой фотографии, иллюстрирующие комбинированное воздействие ингибирования экспрессии и/или активности PKCζ в дермальных клетках и введения фактора роста в дермальные клетки на закрытие ран кожи in vitro. Культивируемые первичные фибробласты кожи инфицировали доминантно-негативной (DN) неактивной киназной формой PKCζ (DNζ). Через двадцать четыре часа выполняли царапины, и культуры оставляли необработанными (фиг.36А) или обрабатывали KGF (1 мкг на планшет; фиг.36B). Через 24 часа после обработки получали фотографии.

Фиг.37А-D представляют собой фотографии, иллюстрирующие комбинированое воздействие ингибирования экспрессии и/или активности PKCζ в дермальных клетках и введения фактора роста или гормона в дермальные клетки на закрытие ран кожи in vitro. Культивируемые первичные кератиноциты кожи инфицировали доминантно-негативной (DN) неактивной киназной формой PKCζ (DNζ). Через двадцать четыре часа выполняли царапины и культуры оставляли необработанными (фиг.37А) или обрабатывали IL-6 (1 мкг на планшет; фиг.37B), TNFα (12 мкг/мл; фиг.37С) или адипонектином (1 мкг на планшет; фиг.37D). Через 24 часа после обработки получали фотографии.

Фиг.38А-Е представляют собой фотографии, иллюстрирующие комбинированныое воздйствие ингибирования экспрессии и/или активности PKCβ в дермальных клетках и введения фактора роста, инсулина или GW9662 в дермальные клетки на закрытие ран кожи in vitro. Культивируемые первичные фибробласты кожи инфицировали доминантно-негативной (DN) неактивной киназной формой PKCβ (DNβ). Через двадцать четыре часа выполняли царапины и культуры оставляли необработанными (фиг.38А) или обрабатывали KFG (1 мкг на планшет; фиг.38В), IL-6 (1 мкг на планшет; фиг.38С), инсулином (6,7×10^-7 M; фиг.38D) или GW9662 (1 мкг на планшет; фиг.38E). Через 24 часа после обработки получали фотографии.

Фиг.39А-Е представляют собой фотографии, иллюстрирующие комбинированное воздействие стимуляции экспрессии и/или активации PKCδ и модулирования экспрессии и/или активности другой изоформы PKC в дермальных клетках или введения гормона в дермальные клетки на закрытие ран кожи in vitro. Культивируемые первичные кератиноциты кожи инфицировали формой киназы PKCδ (DNδ) дикого типа (WT). Через двадцать четыре часа выполняли царапины и культуры оставляли необработанными (фиг.39А) или инфицировали WT PKCζ (PKCζ; фиг.39B), WT PKCε (PKCε; фиг.39C) или DN PKCα (PKCα; фиг.39D). Наоборот, PKCδ-стимулированные культуры обрабатывали адипсином (2 мкг/мл; фиг.39E). Через 48 часов после обработки получали фотографии.

Фиг.40A-F представляют собой фотографии, иллюстрирующие воздействие введения сополимера-1, инсулина, псевдосубстрата PKCα или их сочетаний на закрытие ран кожи in vitro. Культивируемые первичные кератиноциты оставляли необработанными (фиг.40А) или обрабатывали только инсулином (6,7×10^-7 M; фиг.40В), только сополимером-1 (55 мкг/планшет; фиг.40С), смесью инсулина и псевдосубстрата PKCα (6,7×10^-7 M и 10⁷ М соответственно; фиг.40D), смесью сополимера-1 и инсулина (55 мкг/планшет и 6,7×10^-7 M соответственно; фиг.40Е) или смесью сополимера-1, инсулина и псевдосубстрата PKCα (55 мкг/планшет, 6,7×10^-7 M и 10⁷ М соответственно; фиг.40F). Через 48 часов после обработки получали Фотографии.

Фиг.41A-D представляют собой фотографии, иллюстрирующие воздействие сополимера-1, инсулина, псевдосубстрата PKCα или их комбинаций на заживление ран in vivo. Раненных мышей оставляли необработанными (фиг.41А) или обрабатывали ежедневно в течение 4 суток местными аппликациями сополимера-1 (55 мкг/мл; фиг.41В), смесью сополимера-1 и инсулина (55 мкг/мл и 1 мкМ соответственно; фиг.41С) или смесью сополимера-1, инсулина и псевдосубстрата PKCα (55 мкг/мл, 1 мкМ и 1 мкМ соответственно; фиг.41D). Фотографии получали через 4 суток после ранения.

Фиг.42A-H представляют собой гистологические микрофотографии, иллюстрирующие воздействие близости тимуса к раневой щели на процесс заживления ран. На фиг.42A-B показан тимус нормального взрослого грызуна при ×200 увеличении. На фиг.42C показана увеличенная ×40 7-суточная застарелая рана, тимус наблюдали в непосредственной близости от раневой щели (в красном квадрате; увеличено при ×200, фиг.42D). Рана реэпителизирована, формируется грануляционная ткань и развивается дермальное стягивание. На фиг.42E-F показана 9-суточная застарелая рана мыши с STZ диабетом, увеличенная ×40 (фиг.42E) и ×200 (фиг.42F), в непосредственной близости от раневой щели тимус не наблюдали и не наблюдали реэпителизации, грануляционной ткани или дермального стягивания. На фиг.42G показана 9-суточная застарелая рана мыши с STZ диабетом, увеличенная ×40. Рану обрабатывали смесью инсулина и псевдосубстрата PKCα. Тимус наблюдали в непосредственной близости от раневой щели (в красном квадрате; увеличение ×20, фиг.42H). Рана реэпителизирована, формируется грануляционная ткань, и развивается дермальное стягивание.

Фиг.43 представляет собой фотографию, иллюстрирующую эффект инсулина, комбинированного с ингибитором PKCα, на заживление ран и поврежденной кожи. На спине Large Whites & Landrace домашних свиней выполняли продольные раневые разрезы и ежедневно обрабатывали в течение 15 суток PBS (контроль) или смесью из 1 мкМ инсулина и 1 мкМ псевдосубстрата PKCα (HO/03/03). Через 30 суток после ранения раны фотографировали. Обработанные HO/03/03 раны полностью зажили без образования рубца и демонстрируют значительно лучшую эстетику кожи по сравнению с буферным контролем.

Описание предпочтительных вариантов осуществления

Настоящее изобретение представляет собой способы и фармацевтические композиции, предназначенные для модулирования экспрессии и/или активации серин-треониновых протеинкиназ, также известных как PKC, для индукции и/или ускорения пролиферации клеток и/или дифференцировки клеток, и, таким образом, ускорения процесса заживления ран. Такую модулированную экспрессию можно выполнять в соответствии с указаниями по настоящему изобретению посредством (i) трансформации клеток ран экспрессирующей PKC конструкцией; (ii) трансформации клеток ран действующим в цис-положении элементом, вставляемым в участок, прилегающий и расположенный перед геном эндогенной PKC в клетках раны; (iii) введения инсулина и других средств, обладающих синергическим действием с инсулином, для модулирования экспрессии и/или активации PKC в клетках ран; (iv) трансформации клеток ран экспрессирующей инсулин конструкцией, когда после экспрессии и секреции продуцируемый с нее инсулин служит в качестве активатора экспрессии и/или активации PKC; (v) трансформации клеток ран действующим в цис-положении элементом, вставляемым в участок, прилегающий и расположенный перед геном эндогенного инсулина в клетках раны, когда экспрессируемый и секретируемый инсулин служит активатором для экспрессии и/или активации PKC; (vi) имплантации секретирующих инсулин клеток в рану; (vii) трансформации клеток ран транс-действующим фактором, т.е. PDX1, для индукции продукции и секреции эндогенного инсулина, инсулин служит активатором для экспрессии и/или активации PKC; и (viii) введения в рану модулятора PKC. Принципы и действие способов и фармацевтических композиций по настоящему изобретению можно лучше понять со ссылкой на фигуры и сопровождающие описания.

До подробного объяснения, по меньшей мере, одного варианта осуществления изобретения необходимо понять, что изобретение не ограничено в его применении подробностями структуры и классификацией компонентов, указанных в следующем ниже описании, или проиллюстрированных примерами в разделе "Примеры". По изобретению возможны другие варианты осуществления или практического применения или исполнение его различными путями. Также необходимо понять, что фразеология и терминология использована здесь с целью описания, и ее не следует рассматривать в качестве ограничения.

Взрослая кожа включает в себя два слоя: ороговевший многослойный эпидермис и подлежащий толстый слой богатой коллагеном дермальной соединительной ткани, обеспечивающей опору и питание. Кожа служит защитным барьером против внешнего мира. Следовательно, любое повреждение или разрушение в коже необходимо быстро и эффективно устранять. Как описано здесь выше в разделе "Предпосылки", первая стадия заживления достигается посредством образования тромба, закрывающего исходную рану. После этого воспалительные клетки, фибробласты и капилляры проникают в тромб, формируя грануляционную ткань. Следующие стадии включают в себя реэпителизацию раны, где базальные кератиноциты вынуждены утрачивать свои гемидесмосомные контакты, кератиноциты мигрируют на грануляционную ткань, покрывая рану. После миграции кератиноциты вступают в пролиферативный рост, позволяющий заменить клетки, потерянные при повреждении. После покрытия раны монослоем кератиноцитов формируется новый многослойный эпидермис и вновь образовывается новая базальная мембрана [20-23]. Показано, что в этом процессе принимают участие некоторые факторы роста, включающие EGF семейство факторов роста, KGF, PDGF и TGFβ1 [22-24]. Полагали, что среди этих факторов роста EGF и KGF тесно вовлечены в регуляцию пролиферации и миграции эпидермальных кератиноцитов [25, 26]. Знание сигналов, запускающих миграцию клеток в раны, пролиферацию и формирование нового матрикса в раневой щели, является фундаментальным в понимании биологии заживления ран.

Чтобы облегчить понимание изобретения, далее в описании изобретения формулируют ряд терминов, определенных ниже.

Термин "рана" широко относится к повреждениям кожи и подкожной ткани, инициированным в любом одном из множества способов (т.е. пролежни при продолжительном постельном режиме, раны в результате травм, рубцы, язвы, ожоги и тому подобное) и с варьирующими характеристиками. Обычно раны относят к одной из четырех степеней, зависящих от глубины раны: (i) Степень 1: раны, ограниченные эпителием; (ii) Степень II: раны, распространяющиеся в дерму; (iii) Степень III: раны, распространяющиеся в подкожную ткань; и (iv) Степень IV (или полнослойные раны): раны с обнаженными костями (т.е. костная точка давления, такая как большой вертел или крестец).

Термин "рана с неполной глубиной" относится к ранам, охватывающим Степени I-III; примеры ран частичной толщины включают в себя ожоговые раны, пролежни, трофические язвы и диабетические язвы.

Термин "глубокая рана" включает в себя раны Степени III и Степени IV.

Термин "заживление" в отношении к ране относится к процессу восстановления раны при помощи образования рубца.

Фраза "индуцирующий или ускоряющий процесс заживления ран" относится либо к индукции формирования грануляционной ткани стягивания ран и/или индукции эпителизации (т.е. образование новых клеток эпителия). Заживление ран удобно измеряют по уменьшению раневой области.

В настоящем изобретении рассмотрена обработка всех типов ран, включая глубокие раны и хронические раны.

Термин "хроническая рана" относится к ране, не зажившей в течение тридцати суток.

Фраза "трансформируя клетки" относится к временному или постоянному изменению содержания нуклеиновой кислоты клетки посредством введения экзогенной нуклеиновой кислоты, которая либо интегрирует в геном клетки и генетически модифицирует клетку, или остается неинтегрированной.

Термин "действующий в цис-положении элемент" использован здесь для описания генетической области, служащей сайтом прикрепления для ДНК-связывающих белков (например, энхансеры, операторы и промоторы), влияя, таким образом, на активность одного или нескольких генов на той же хромосоме.

Фраза "транс-действующий фактор" применен здесь для описания фактора, связывающего действующий в цис-положении элемент, и посредством этого модулирует его активность по отношению к экспрессии гена. Так, PDX1 представляет собой транс-действующий фактор, связывающий промотор гена инсулина и модулирующий его активность.

Фраза "активатор транскрипции" применен здесь для описания фактора, повышающего экспрессию гена. Транс-действующий фактор представляет собой пример непосредственного активатора транскрипции.

Термин "активатор" применен здесь для описания повышающей активность молекулы.

Используемая здесь фраза "модулированная экспрессия и/или активация" относится к повышенной или ингибированной экспрессии и/или активации.

PKC представляет собой важный сигнальный путь, опосредующий пролиферацию и дифференцировку кератиноцитов. Изоформы PKC α, δ, ε, η и ζ экспрессированы в коже [4, 10]. Во время разработки настоящего изобретения предполагали, что модулированная экспрессия и/или активация PKC может индуцировать пролиферацию и/или дифференцировку клеток и, таким образом, ускорять процесс заживления ран. Во время приведения настоящего изобретения к практическому применению эту теорию подтвердили рядом экспериментов, показывающих, что модулированная экспрессия и/или активация PKC действительно индуцирует пролиферацию клеток и клеточную дифференцировку и ускоряет процесс заживления ран. Как указано здесь далее более подробно, предпринимали множество различных подходов к модулированию экспрессии и/или активации PKC, чтобы таким образом ускорить процесс заживления ран. Основываясь на экспериментальных данных, разработали другие подходы. Во время приведения настоящего изобретения к практическому применению открыли поразительный и новый феномен, что инсулин служит модулятором экспрессии и/или активации PKC. По существу, инсулин может служить терапевтическим средством для модулирования экспрессии и/или активации PKC для того, чтобы ускорять процесс заживления ран.

Большую важность для биологии заживления ран кожи представляют свойства различных изоформ PKC и их специфические эффекты на пролиферацию и/или дифференцировку клеток. Применение аденовирусных конструкций PKC дает возможность идентифицировать особые роли множества изоформ PKC в процессе заживления ран in vitro и in vivo. Все изоформы способны специфически затрагивать различные аспекты роста и дифференцировки кератиноцитов. Две изоформы PKCδ и PKCζ могут специфически регулировать интегриновую регуляцию (см. ниже пример 6), адгезию к базальной мембране (см. ниже пример 9) и формирование гемидесмосом (см. ниже пример 8). Обнаружили, что две изоформы - PKCδ и PKCη - регулируют потенциал пролиферации эпидермальных кератиноцитов (см. примеры 7 и 11). Дополнительно доминантно негативная изоформа PKCη (DNPKCη) способна специфически индуцировать дифференцировку в активно пролиферирующих кератиноцитах (см. ниже пример 12). В заключение, важность различных изоформ PKC в процессе заживления ран в коже также подтвердили в системе in vivo. Применение мышей с отсутствием собственной PKC, где отсутствовала экспрессия различных изоформ PKC, показало, что PKCδ и PKCζ, которые, как было найдено, необходимы для процессов адгезии и подвижности в кератиноцитах кожи, также важны в процессе заживления ран in vivo в модели на животных (см. пример 19). Чрескожные полнослойные биопсии в PKC "нулевой" коже позволили предположить, что PKCδ и PKCζ, но не PKCα необходимы для надлежащего заживления ран. Кроме того, ниже на примере 22 показано, что ингибитор PKCα эффективно способствует заживлению ран in vivo, показывая, таким образом, что изоформа PKCα может являться антагонистом заживления ран.

PKCη обладает уникальным тканевым распределением. Она преимущественно экспрессирована в эпителиальных тканях [27, 28]. Исследования гибридизации in situ, так же как и иммуногистохимические исследования? демонстрировали, что PKCη высоко экспрессирована в дифференцирующихся и дифференцированных слоях [27]. Представленные здесь результаты предполагают роль PKCη как функционального регулятора пролиферации и дифференцировки кожи, зависимого от клеточной физиологии. Когда кератиноциты поддерживали в пролиферативном состоянии в условиях с низким содержанием Ca²⁺, PKCη индуцировала коэффициент пролиферации в пять-семь раз выше по сравнению с контрольными кератиноцитами. Однако когда индуцировали дифференцировку клеток, повышая концентрацию Ca²⁺, дифференцировка повышалась с более быстрым и высоким коэффициентом по сравнению с контрольными клетками (см. пример 12). Это может объяснить способность PKCη резко индуцировать заживление ран и формирование грануляционной ткани так, что достигали пролиферативную способность и формирование слоев дифференцировки. Интересно, что результаты заживления ран in vivo и экспрессия PKCη в эмбриональной ткани, уровень экспрессии которой обычно невысок у взрослых, предполагают возможную роль PKCη в пролиферации и тканевой организации также и других тканей. Они включают в себя нервную ткань, так же как и кожу, и мышечную ткань, эффективно заживавшие в грануляционной ткани ран. Кроме того, способность специфически регулировать дифференцировку кератиноцитов и индуцировать нормальную дифференцировку в активно пролиферирующих клетках посредством применения доминантно негативного мутанта позволяет специфически манипулировать дифференцировкой и контролировать гиперпролиферативные нарушения, вовлеченные в заживление ран.

Здесь приведен пример, показывающий, что заживляющая способность PKCη, проявленная in vivo, на раны, выполненные на спине голых мышей. Ниже на примере 14 показано, что введение экспрессирующих PKC конструкций в раны приводило к формированию грануляционной ткани через четверо суток после местной инфекции.

Суммарно, представленные здесь результаты демонстрируют, что модулирование экспрессии и/или активации (активации мембран) различных изоформ PKC является эффективным средством борьбы с ранами. Таким образом, стимулировать заживление ран можно при помощи повышения экспрессии и/или активности изоформ PKCδ, PKCη и PKCζ, или ингибируя экспрессию и/или активность изоформы PKCα.

Таким образом, согласно одному аспекту настоящего изобретения разработан способ индукции или ускорения процесса заживления повреждений или кожной раны, осуществляемый посредством введения в кожную рану терапевтически эффективного количества, по меньшей мере, одного средства для модулирования экспрессии и/или активации PKC. Следовательно, фармацевтическая композиция для осуществления способа согласно данному аспекту настоящего изобретения содержит в качестве активного ингредиента терапевтически эффективное количество, по меньшей мере, одного средства для модулирования экспрессии и/или активации PKC; и фармацевтически приемлемый носитель.

Используемая здесь фраза "кожная рана" относится к любому типу ран эпителия, включающих в качестве неограничивающих примеров язвы, такие как диабетическая язва, пролежень, венозная язва, язва желудка и язва, рана, связанная с ВИЧ, рана, связанная с диабетом, ожог, солнечный ожог, застарелая рана кожи, изъязвленная рана роговицы, рана при воспалительном заболевании желудочно-кишечного тракта, рана при воспалительном заболевании кишечника, рана при болезни Крона, рана при язвенном колите, геморрое, рана при буллезном эпидермолизе, кожно-нарывная рана, псориатическая рана, рана кожи животного, дибетическая рана животного, рана при ретинопатии, рана полости рта (мукозит), рана вагинальной слизистой оболочки, рана при заболевании десны, рваная рана, рана хирургического разреза и послеоперационная спаечная рана.

Используемая здесь фраза "повреждение кожи" относится к любому типу повреждений кожи или условий, таких как, например, морщины (например, индуцированные ультрафиолетовым излучением морщины), складки кожи, трещины, шишки, крупные поры (например, ассоциированные с придаточными структурами, такими как протоки потовых желез, сальных желез или волосяные фолликулы) или неровности или шероховатости, потеря эластичности кожи (потеря и/или инактивация функционального эластина кожи), провисание (включая отечность в области глаз и челюстей), потеря плотности кожи, потеря упругости кожи, потеря упругого возврата кожи после деформации, изменение цвета (включая круги под глазами), прыщи, желтизна, гиперпигментированные области кожи, такие как старческие пятна и лентиго, кератозы, ненормальная дифференцировка, гиперкератинизация, эластоз, распад коллагена и другие гистологические изменения в роговом слое, дерме, эпидермисе, сосудистой системе кожи (например, телеангиэктазия или паукообразные сосуды) и подлежащих тканях, особенно ближайших к коже.

Кожу не рассматривают как классическую ткань, отвечающую на инсулин. Поэтому эффекты инсулина в коже, по большей части, объясняют его способностью активировать близкородственный IGFR. Показали, что в кератиноцитах инсулин и IGF1 могут стимулировать оба рецептора и активировать сходные расположенные ниже эффекторы [34]. Однако в настоящем изобретении демонстрируют, что несмотря на то что оба фактора роста индуцируют пролиферацию кератиноцитов в доза-зависимых условиях, каждый гормон осуществляет свои эффекты через различные сигнальные пути. Исходное свидетельство о различной регуляции пролиферации кератиноцитов посредством инсулина и IGF1 подтвердили данные, что эти гормоны оказывают аддитивное воздействие на пролиферацию кератиноцитов при добавлении их вместе в максимальной индуцирующей пролиферацию концентрации каждого гормона (см. пример 15). Чтобы идентифицировать точку расхождения сигнальных путей инсулина и IGF1 в регуляции пролиферации кератиноцитов, проверяли элементы, известные как регулирующие пролиферацию кератиноцитов и действующие как находящиеся ниже эффекторы сигнального пути инсулина. Эти исследования показали, что передачу сигнала инсулина в пролиферации кератиноцитов специфически опосредует PKCδ (см. пример 17). PKCδ является единственной изоформой в семействе белков PKC, специфически вовлеченной в рост и созревание различных типов клеток [35]. Однако показали, что тогда как PKCδ специфически регулируется при помощи нескольких факторов роста, включающих в себя EGF, фактор роста тромбоцитов и нейротрансмиттеры, показано, что ее физиологические эффекты принимают участие в ингибировании факторов роста клеточного роста, в том числе апоптоза, дифференцировки и задержки или остановки клеточного цикла [36-41]. Недавно показали, что в течение 12-24 часов после повышения Ca²⁺ в культивируемых мышиных кератиноцитах селективная потеря интегринового комплекса α6β4 связана с индукцией К1 [6]. Потеря экспрессии белка α6β4 является результатом транскрипционных и пост-транскрипционных событий, включающих в себя усиленный процессинг α6 и β4 цепей. В предварительных исследованиях установили связь между активацией PKC, процессингом и регуляцией интегрина α6β4. Эти результаты совпадают с предшествующими результатами о роли PKCδ, а также PKCζ в потере экспрессии α6β4 и формировании гемидесмосом, индуцирующих открепление кератиноцитов. Однако в настоящем изобретении идентифицирована еще одна роль PKCδ как мишени для индуцированной инсулином пролиферации кератиноцитов. Примеры ниже показывают, что только стимуляция инсулином, но не множеством факторов роста, включающих в себя в качестве неограничивающих примеров EGF, KGF, PDGF, ECGF и IGF1, может транслоцировать и активировать PKCδ, но не любую другую из экспрессированных в коже изоформ PKC. Значимость PKCδ для стимуляции инсулином подтвердили позднее, когда митогенная стимуляция с помощью EGF, KGF, PDGF, ECGF и IGF1 не отменялась посредством доминантно-негативной PKCδ мутанта, и инсулин оказался основным активатором этой изоформы PKC в регуляции пролиферации кератиноцитов (см. пример 17). Однако когда кератиноциты инфицировали WT PKCδ, митогенная стимуляция кератиноцитов посредством EGF и KGF повышалась. Это позволяет предположить, что активация PKCδ также необходима для пролиферативной стимуляции других факторов роста посредством находящихся выше сигнальных путей. Кроме того, охарактеризовали находящиеся ниже элементы, опосредующие индуцированную инсулином активацию PKCδ, пролиферацию кератиноцитов и участие STAT3, активатора транскрипции в этом процессе. Белки STAT (сигнальные трансдукторы и активаторы транскрипции) представляют собой семейство транскрипционных факторов, привлекаемых множеством цитокинов и факторов роста. Среди семи известных членов STAT семейства STAT3 является уникальным. Прицельное разрушение STAT3, но не других членов семейства STAT приводит к ранней эмбриональной летальности. Особенно когда STAT3 условно удаляли в коже, восстановление кожи сильно нарушалось. При активации белки STAT формируют гомо- или гетеродимеры, перемещаются в ядро и связываются с отвечающими элементами ДНК генов-мишеней для индукции транскрипции. Обнаружили, что в кератиноцитах PKCδ, но не другие изоформы PKC, экспрессированные в коже (PKCα, ζ, η и ε), конститутивно ассоциированы со STAT3 (см. пример 18). Кроме того, инсулин регулирует фосфорилирование, активацию и ядерную транслокацию STAT3 посредством специфической активации PKCδ. Ингибирование активности PKCδ посредством фармакологического ингибитора роттлерина или посредством повышенной экспрессии доминантно негативного PKCδ мутанта отменяло индуцированную инсулином активацию и ядерную транслокацию STAT3. Наконец, повышенная экспрессия доминантно негативного PKCδ мутанта ингибировала индуцированную посредством повышенной экспрессии STAT3 пролиферацию кератиноцитов (см. пример 18). Эти результаты говорят о роли индуцированной инсулином активности PKCδ в транскрипционной активации посредством STAT3 в пролиферации кератиноцитов кожи. Так как STAT3 важен для восстановления кожи и является находящимся ниже эффектором, привлекаемым множеством цитокинов и факторов роста, все эти результаты говорят об активации PKCδ как основного находящегося ниже элемента, опосредующего пролиферацию кератиноцитов посредством множества факторов роста кожи. Особенно PKCδ может быть первостепенным кандидатом в патогенезе дефектного заживления ран, как это оказалось у больных диабетом. Связь между PKCδ и заживлением ран также можно подтвердить in vivo. Применяя вновь сконструированных PKCδ "нулевых" мышей, здесь показано, что отсутствие PKCδ задерживает заживление ран в коже мышей (см. пример 19). Связь между PKCδ и передачей сигнала установили в нескольких других системах. Например, недавно показано, что в культурах мышечных клеток PKCδ опосредует индуцированный инсулином транспорт глюкозы [42, 43]. Сходно, в клетках с повышенной экспрессией рецептора инсулина, показано, что стимуляция инсулином ассоциирована с активацией PKCδ [44-46]. Однако тогда как в этих исследованиях опосредованная инсулином активация PKCδ связана с метаболическими эффектами инсулина, это первое сообщение, связывающее PKCδ с опосредованной инсулином пролиферации клеток. Идентифицировали двойственную роль PKCδ в регуляции пролиферации кератиноцитов и контроле ранних этапов дифференцировки, где показали, что клетки теряют свое прикрепление к подлежащей базальной мембране. Это может говорить об индуцированной инсулином PKCδ как об основном кандидате регуляции физиологического баланса между пролиферацией и дифференцировкой в коже.

Таким образом, по указаниям настоящего изобретения модулирование экспрессии и/или активации является результатом влияния инсулина на клетки ран. Это можно осуществить посредством одного из множества альтернативных способов, как показано здесь ниже.

Одним способом является направленное введение инсулина в рану. Как описано в примерах 21 и 22 здесь ниже, местное применение инсулина в ранах в диапазоне концентраций от 0, до 10 мкМ эффективно активировало эпидермальное и дермальное закрытие и, следовательно, заживление ран. Кроме того, необычно и неожиданно, применение инсулина, комбинированного с фактором роста PDGF-BB или с ингибитором PKCα, приводило к значительному и синергическому улучшению процесса заживления ран по сравнению с одним инсулином.

Таким образом, согласно еще одному аспекту настоящего изобретения предоставлен способ индукции или ускорения процесса заживления ран или повреждений кожи. Способ является результатом введения в раны кожи терапевтически эффективного количества инсулина и, по меньшей мере, одного дополнительного средства, обладающего синергическим действием с инсулином, для того чтобы индуцировать или ускорить процесс заживления ран или повреждений кожи. Предпочтительно средство представляет собой ингибитор PKCα. Более предпочтительно средство представляет собой фактор роста, такой как PDGF, EGF, TGFβ, KGF, ECGF или IGF1, и наиболее предпочтительно средство представляет собой PDGF-BB.

Направленное введение инсулина, одного или комбинированного с еще одним средством, может быть результатом однократного или повторных применений. Во время приведения настоящего изобретения к практическому применению авторы неожиданно обнаружили, что обработка однократным применением инсулина в концентрации 1 мкМ существенно более эффективна в заживлении ран, чем семь повторных ежедневных применений инсулина подобной концентрации (см. пример 20 ниже).

Таким образом, согласно еще одному аспекту настоящего изобретения предоставлен способ индукции или ускорения процесса заживления ран или повреждений кожи посредством введения в раны кожи однократной стандартной дозы терапевтически эффективного количества инсулина. Предпочтительно однократная стандартная доза содержит от 0,001 до 5 нМ, предпочтительно от 0,01 до 0,5 нМ инсулина, например, в водном растворе, геле, креме, пасте, примочке, аэрозоле, суспензии, порошке, коллоидном растворе, бальзаме или препарате мази в количестве, необходимом для того, чтобы закрыть участок ран кожи в 1 см, например, 0,01-0,2 мл.

Срок введения инсулина в раны может быть критичным, как проиллюстрировано в примере 20 в следующем ниже разделе "Примеры". Например, однократное применение инсулина в 4-суточные раны приводит к эффективному заживлению ран. Таким образом, согласно еще одному аспекту настоящего изобретения предоставлен способ индукции или ускорения процесса заживления застарелых ран кожи посредством введения в раны однократной дозы терапевтически эффективного количества инсулина.

Используемая здесь фраза "застарелая рана кожи" относится к ране кожи, которой, по меньшей мере, одни сутки, двое суток, трое суток, предпочтительно четверо суток.

Фармацевтическая композиция для индукции или ускорения процесса заживления ран или повреждений кожи согласно еще одному аспекту настоящего изобретения содержит в качестве активного ингредиента терапевтически эффективное количество инсулина, по меньшей мере, одно дополнительное средство, обладающее синергическим действием с инсулином, и фармацевтически приемлемый носитель, предназначенный для местного применения фармацевтической композиции.

Предпочтительно средство представляет собой ингибитор PKCα или фактор роста, такой как PDGF, EGF, TGFβ, KGF, ECGF или IGF1, и наиболее предпочтительно средство представляет собой PDGF-BB. Фармацевтически приемлемый носитель может представлять собой в качестве неограничивающих примеров гель, крем, пасту, примочку, аэрозоль, суспензию, порошок, коллоидный раствор, бальзам или мазь, как подробно указано ниже. Твердые основы также можно применять для пролонгированного высвобождения инсулина в раны. Следует понимать, что инсулин может быть природным или предпочтительно рекомбинантным, человеческим или из любого другого пригодного источника.

Согласно еще одному аспекту настоящего изобретения фармацевтическая композиция для индукции или ускорения процесса заживления ран или повреждений кожи может содержать однократную стандартную дозу, способную индуцировать или ускорять процесс заживления повреждений или ран кожи, и фармацевтически приемлемый носитель, предназначенный для местного применения фармацевтической композиции. Предпочтительно однократная стандартная доза инсулина находится в диапазоне от 0,001 до 5 нМ, предпочтительно от 0,01 до 0,5 нМ, в 0,01-0,2 мл препарата стандартной дозы.

Согласно альтернативному варианту осуществления настоящего изобретения экспрессирующие и секретирующие инсулин клетки имплантируют в раны, чтобы индуцировать или ускорить процесс заживления ран или повреждений кожи. Такими инсулин-продуцирующими клетками могут быть естественно продуцирующие инсулин клетки, или альтернативно, такие клетки трансформируют, чтобы продуцировать и секретировать инсулин. Клетки можно трансформировать посредством, например, рекомбинантного гена PDX1 (см. инвентарные №№ GeneBank AH 005712, AF 035260, AF 035259), представляющий собой транс-действующий фактор для продукции и секреции инсулина. Альтернативно клетки можно трансформировать посредством последовательности действующего в цис-положении элемента, такого как активный и конститутивный или индуцибельный промотор, интегрируемый перед геном эндогенного инсулина клетки с целью нокаута/вставки с изменением функции гена, чтобы трансформировать клетки и повысить продукцию и секрецию естественного инсулина. Это можно получить, так как области, расположенные перед геном инсулина, клонированы (см. инвентарные №№ E 00011, NM 000207). Альтернативно клетки трансформируют рекомбинантным геном инсулина (например, инвентарные № J 02547), и поэтому клетки продуцируют и секретируют рекомбинантный инсулин.

Фармацевтическая композиция для индукции или ускорения процесса заживления ран или повреждений кожи по этому аспекту настоящего изобретения, следовательно, содержит в качестве активного ингредиента секретирующие инсулин клетки и фармацевтически приемлемый носитель, предназначенный для местного применения фармацевтической композиции. Преимущественно вводимые в раны секретирующие инсулин клетки способны к формированию секреторных гранул, чтобы секретировать таким образом продуцированный инсулин. Секретирующими инсулин клетками могут быть эндокринные клетки. Они могут быть из человеческого источника или из гуманизированного по гистосовместимости животного источника. Наиболее предпочтительно секретирующие инсулин клетки, трансформированные или нет, принадлежат аутологичному источнику. Инсулин, секретированный посредством секретирующих инсулин клеток, предпочтительно является человеческим инсулином или имеет аминокислотную последовательность человеческого инсулина. Секретирующими инсулин клетками могут быть фибробласты, эпителиальные клетки или кератиноциты при условии трансформации, как описано выше, применяемой, с тем чтобы сделать такие клетки способными к продукции и секреции инсулина.

По еще одному альтернативному варианту осуществления клетки ран кожи трансформируют для продукции и секреции инсулина, чтобы индуцировать или ускорить процесс заживления кожной раны.

Фармацевтическая композиция для индукции или ускорения процесса заживления ран кожи по этому аспекту настоящего изобретения, следовательно, содержит в качестве активного ингредиента конструкцию нуклеиновой кислоты, предназначенную для трансформации клеток кожной раны, чтобы продуцировать и секретировать инсулин, и фармацевтически приемлемый носитель, предназначенный для местного применения фармацевтической композиции.

Любой из описанных выше способов трансформации, например трансформация кодирующей инсулин конструкцией, трансформация конструкцией, содержащей действующий в цис-положении элемент, для вставки ниже гена эндогенного инсулина посредством способа нокаут/вставки с изменением функции гена и трансформация конструкцией, кодирующей транс-действующий фактор, для активации продукции и секреции эндогенного инсулина, можно применять в контексте этого варианта осуществления настоящего изобретения.

Предшествующие исследования об эффектах различных изоформ PKC в коже были затруднены из-за трудности эффективного введения чужеродных генов в первичные клетки посредством традиционных способов вследствие короткого времени жизни, потенциала дифференцировки и невозможности выделить стабильные трансформанты. Чтобы преодолеть эти препятствия, использовали вирусные векторы для введения интересующих генов. Вирусные векторы конструировали посредством модификации вирусного генома в форме вирусов с дефектом по репликации. Наиболее широко применяли вирусные векторы, представляющие собой ретровирусы и аденовирусы, применяемые как в экспериментальных, так и в целях генной терапии [13]. Особенно аденовирусная инфекция высокоэффективна в нереплицирующихся клетках, высокий титр вируса и высокая экспрессия трансдуцированного белка делает эту систему крайне выгодной для первичных культур, по сравнению с ретровирусными векторами. Так как аденовирусы не интегрируют в геном хозяина и стабильные вирусные титры можно интерпретировать дефицитом репликации, эти вирусные конструкции связаны с минимальным риском злокачественных новообразований как у человека, так и на животных моделях 14. До настоящего времени в коже аденовирусные конструкции успешно применяли с высокой эффективностью инфекции в подходах ex vivo и in vivo [15, 16]. В настоящем исследовании применяли аденовирусный вектор, сконструированный I. Saito и его коллегами [17]. Длина космидной кассеты (pAxCAwt) составляет почти полную длину генома аденовируса-5, но у нее отсутствуют области E1A, E1B и E3, приводящие к дефектной репликации вируса. Она содержит составной промотор CAG, состоящий из непосредственно-раннего энхансера цитомегаловируса, куриного промотора β-актина и сигнала полиаденилирования β-глобина кролика, сильно индуцирующих экспрессию вставленных ДНК [13, 17]. Представляющий интерес ген вставляли в космидную кассету, которую затем ко-трансфецировали в клетки эмбриональной селезенки человека 293 одновременно с концевым белковым комплексом (TPC) на аденовирусной ДНК. В экспрессирующих области E1A и E1B клетках 293 происходит рекомбинация между космидной кассетой и аденовирусной DNA-TPC, производя желаемый рекомбинантный вирус эффективнее в сто раз по сравнению с традиционными способами. Такой высокой эффективности достигают преимущественно благодаря применению аденовирусной DNA-TPC вместо протеинизированной ДНК. Кроме того, присутствие более длинных гомологичных областей повышает эффективность гомологичной рекомбинации. Восстановления репликации компетентных вирусов избегают благодаря присутствию множества сайтов EcoT221. В отношении этого следует заметить, что кератиноциты, инфицированные различными аденовирусными рекомбинантными PKC, через 24 часа демонстрировали эффективную повышенную экспрессию изоформ PKC (см. пример 1).

Таким образом, еще одним способом, посредством которого выполняли модулирование экспрессии и/или активации PKC по настоящему изобретению, является индукция повышенной экспрессии PKC в клетках кожной раны. Этого можно достичь посредством трансформации клеток последовательностью действующего в цис-положении элемента, интегрированного посредством способа гомологичной рекомбинации, расположенного перед эндогенной протеинкиназой C клеток, и заставляя, таким образом, клетки продуцировать природную протеинкиназу C. Кроме того, альтернативно этого можно достичь посредством трансформации клеток геном рекомбинантной протеинкиназы C, такими как, но не ограниченных примерами, PKC-β1 ген (инвентарные №№ X06318, NM002738), PKC-β2 ген (инвентарный № X07109), PKC-γ ген (инвентарный № L28035), PKC-θ ген (инвентарный № L07032), PKC-λ ген (инвентарный № D28577), PKC-τ ген (инвентарный № L18964), PKCα ген (инвентарный № X52479), PKC-δ ген (инвентарные №№ L07860, L07861), PKC-ε ген (инвентарный № X72974), PKC-η ген (инвентарный № Z15108) и PKC-ζ ген (инвентарные №№ Z15108, X72973, NM002744) и, таким образом, заставляя клетки продуцировать рекомбинантную протеинкиназу C.

Следовательно, фармацевтическая композиция для индукции или ускорения процесса заживления кожной раны по этому аспекту настоящего изобретения содержит в качестве активного ингредиента конструкцию нуклеиновой кислоты, предназначенную для трансформации клеток ран кожи, с тем чтобы продуцировать протеинкиназу C, и фармацевтически приемлемый носитель, предназначенный для местного применения фармацевтической композиции.

Кроме того, еще один способ, посредством которого выполняли модулирование экспрессии и/или активации PKC по настоящему изобретению, представляет собой активатор PKC, такой как, но не ограниченный данными примерами Ca²⁺, инсулин или бриостатин-1, с тем чтобы индуцировать или ускорить процесс заживления ран кожи.

Следовательно, фармацевтическая композиция для индукции или ускорения процесса заживления ран или повреждений кожи согласно этому аспекту настоящего изобретения содержит в качестве активного ингредиента терапевтически эффективное количество активатора PKC, с тем чтобы индуцировать или ускорить процесс заживления ран или повреждений кожи, и фармацевтически приемлемый носитель.

Кроме того, еще одним способом, посредством которого выполняли модулирование экспрессии и/или активации PKC по настоящему изобретению, является способ со снижением экспрессии и/или активности изоформы PKC.

Снижение активности изоформ PKC можно выполнять посредством ингибитора изоформ псевдосубстрата PKC, такими как, например, PKCα, PKCζ или PKCη псевдосубстратными ингибиторами (CalbioChem, Калифорния, США), или еще одним ингибитором изоформ PKC, таким как, например, фармацевтический пептид LY379196 (Elly Lilly, США).

Альтернативно снижение активности изоформ PKC можно выполнять посредством доминантно негативной (DN) PKC аденовирусной конструкцией, такой как описано здесь в разделе "Примеры" ниже.

Снижение экспрессии изоформ PKC можно выполнять посредством небольшой интерферирующей молекулы РНК (миРНК). Интерференция РНК представляет собой двустадийный процесс. На первой стадии, называемой стадией инициации, вводимые дцРНК расщепляются на малые интерферирующие РНК (миРНК) длиной 21-23 нуклеотида (nt), возможно, под действием Dicer, представителя семейства РНКаз III, семейства дцРНК-специфических рибонуклеаз, процессирующего дцРНК (введенные направленно или посредством трансгена или вируса) АТФ-зависимым образом. При успешном расщеплении РНК расщепляется на дуплексы длиной 19-21 п.о. (миРНК), каждый с двухнуклеотидными 3'-выступающими концами [Hutvagner and Zamore Curr. Opin. Genetics and Development 12: 225-232 (2002); and Bernstein Nature 409: 363-366

(2001)].

В эффекторной стадии дуплексы миРНК связываются с нуклеазными комплексами, формируя индуцированный РНК молчащий комплекс (RISC). Для активации RISC необходимо АТФ-зависимое расплетание дуплекса миРНК. Затем активный RISC метит гомологичный транскрипт посредством взаимодействий пар оснований и расщепляет их РНК до 12-нуклеотидных фрагментов от 3' конца миРНК [Hutvagner and Zamore Curr. Opin. Genetics and Development 12: 225-232 (2002); Hammond et al. (2001) Nat. Rev. Gen. 2: 110-119 (2001); and Sharp Genes. Dev. 15: 485-90 (2001)]. Хотя механизм расщепления еще не определен окончательно, исследование показывает, что каждый RISC содержит одну миРНК и РНКазу [Hutvagner and Zamore Curr. Opin. Genetics and Development 12: 225-232 (2002)].

Из-за исключительной эффективности иРНК предложили стадию амплификации каскадом реакций иРНК. Амплификацию можно осуществлять посредством копирования введенных дцРНК, которые будут синтезировать большее количество миРНК, или посредством репликации образованных миРНК. Альтернативно или дополнительно, амплификацию можно выполнять посредством множества циклов RISC [Hammond et al. Nat. Rev. Gen. 2: 110-119 (2001), Sharp Genes. Dev. 15: 485-90 (2001); Hutvagner and Zamore Curr. Opin. Genetics and Development 12: 225-232 (2002)]. Более полную информацию о иРНК см. в следующих обзорах Tuschl ChemBiochem. 2: 239-245 (2001); Cullen Nat. Immunol. 3: 597-599 (2002); and Brantl Biochem. Biophys. Act. 1575: 15-25 (2002).

Синтез молекул иРНК, пригодный для применения по настоящему изобретению, можно выполнять, как указано далее. Во-первых, изученная последовательность мРНК изоформ PKC расположена ниже старт-кодона для AA 2-нуклеотидных последовательностей. Появление каждых AA и 3'-прилегающих 19 нуклеотидов отмечают как потенциальные сайты-мишени миРНК. Предпочтительно сайты-мишени миРНК выбирают из открытой рамки считывания, так как в сайтах связывания регуляторных белков нетранслируемых областей (UTRs) больше. UTR-связывающие белки и/или комплексы инициации трансляции могут интерферировать со связывающим эндонуклеазным комплексом миРНК [Tuschl ChemBiochem. 2: 239-245]. Однако следует понимать, что направленные в нетранслируемые области миРНК также могут быть эффективны, как продемонстрировано для GAPDH, где миРНК, направленная в 5'UTR, опосредовала около 90% снижения клеточной мРНК GAPDH, и полному отсутствию на уровне белка (www.ambion.com/techlib/tn/91/912.html).

Во-вторых, потенциальные сайты-мишени сравнивали с соответствующей геномной базой данных (например, человеческая, мышиная, крысиная и т.д.) с применением любого выравнивающего последовательности программного обеспечения, такого как программное обеспечение BLAST, доступное на сервере NCBI (www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/). Предполагаемые сайты-мишени, обнаружившие значительную гомологию с другими кодирующими последовательностями, отфильтровывали.

Определив последовательности-мишени, для синтеза миРНК выбрали матричную последовательность. Предпочтительные последовательности включают в себя низкое содержание G/C, так как доказали, что они более эффективны в опосредовании молчания генов по сравнению с теми, в которых содержание G/C выше чем 55%. Для определения некоторые сайты-мишени предпочтительно выбирали вдоль по всей длине гена-мишени. Для лучшей оценки выбранных миРНК отрицательный контроль предпочтительно применяли в участках соединения. Предпочтительно отрицательный контроль миРНК включает в себя ту же нуклеотидную композицию, что и миРНК, но недостаточной гомологии с геномом. Таким образом, предпочтительно применяют кодируемую нуклеотидную последовательность миРНК, при условии что она не обнаруживает какой-либо значительной гомологии с любым другим геном. По настоящему изобретению миРНК может быть удобной, например способная ингибировать экспрессию PKCα миРНК, такая как любая из последовательностей нуклеиновых кислот, описанных в SEQ ID №№: 1-16.

Еще одним средством, способным понижать экспрессию изоформ PKC, является молекула ДНКзим, способная к специфическому расщеплению мРНК транскрипта или последовательности ДНК изоформ PKC. ДНКзимы представляют собой одноцепочечные полинуклеотиды, способные к расщеплению одно- и двухцепочечных последовательностей-мишеней (Breaker, R.R. and Joyce, G. Chemistry and Biology 1995; 2: 655; Santoro, S.W. & Joyce, G.F. Proc. Natl, Acad. Sci. USA 1997; 943: 4262). Для ДНКзимов предложили общую модель ("10-23" модель). "10-23" ДНКзимы имеют каталитический домен из 15 дезоксирибонуклеотидов, фланкированных посредством двух распознающих субстрат доменов, каждый от семи до девяти дезоксирибонуклеотидов. Этот тип ДНКзима может эффективно расщеплять свои субстраты РНК до соединений пурин:пиримидин (Santoro, S.W. & Joyce, G.F. Proc. Natl, Acad. Sci. USA 199; обзор ДНКзимов см. в LM [Curr Opin Mol Ther 4: 119-21 (2002)].

В патентной заявке США №6326174 Joyce et al. сообщали примеры конструкций и амплификации синтетических сконструированных распознающих сайты расщепления одно- и двухцепочечных мишеней ДНКзимов. Недавно наблюдали ингибирование экспрессии рецептора урокиназы ДНКзимами сходной конструкции, направленными против рецептора урокиназы человека, и удачное ингибирование in vivo метастазов раковых клеток толстой кишки (Itoh et al, 2002, Abstract 409, Ann Meeting Am Soc Gen Ther www.asgt.org). В еще одной заявке комплементарные к bcr-abl онкогенам ДНКзимы успешно ингибировали экспрессию онкогенов в лейкемических клетках и снижали частоту рецидивов в случаях CML и ALL при трансплантации аутологичного костного мозга.

Снижение экспрессии изоформ PKC можно также выполнять посредством применения антисмыслового полинуклеотида, способного к специфической гибридизации с транскриптом мРНК, кодирующим изоформу PKC.

Конструирование антисмысловых молекул, которые можно применять для эффективного снижения экспрессии изоформ PKC, нужно выполнять с учетом двух аспектов, важных в подходе с применением антисмысловых молекул. Первый аспект представляет собой доставку олигонуклеотида в цитоплазму соответствующей клетки, тогда как вторым аспектом является конструирование олигонуклеотида, специфически связывающего указанную мРНК в клетках, в известной мере ингибируя их трансляцию.

В предшествующей области указаны ряд стратегий доставки, которые можно применять для эффективной доставки олионуклеотидов в широком диапазоне типов клеток [см., например, Luft J Mol Med 76: 75-6(1998); Kronenwett et al. Blood 91: 852-62 (1998); Rajur et al. Bioconjug Chem 8: 935-40 (1997); Lavigne et al. Biochem Biophys Res Commun 237: 566-71 (1997) and Aoki et al. (1997) Biochem Biophys Res Commun 231: 540-5 (1997)].

Кроме того, также доступны алгоритмы для идентификации этих последовательностей с наивысшей рассчитанной аффинностью связывания для их мРНК-мишеней, основанные на термодинамическом цикле, принимающем в расчет энергетику структурных изменений мРНК-мишени и олигонуклеотида [см., например, Walton et al. Biotechnol Bioeng 65: 1-9 (1999)].

Такие алгоритмы успешно применяли для осуществления антисмыслового способа в клетках. Например, разработанный Walton et al. алгоритм, дал возможность ученым успешно сконструировать антисмысловые олигонуклеотиды для транскриптов бета-глобина кролика (RBG) и мышиного фактора некроза опухоли-альфа (TNF-альфа). Позднее та же исследовательская группа сообщала, что доказано, что активность разумно выбранных антисмысловых олигонуклеотидов в модели с тремя мРНК-мишенями (лактатдегидрогеназы A и B человека и gpl30 крысы) в культуре клеток, как определяли посредством способа кинетической ПЦР, эффективна почти во всех случаях, включая тесты к трем разным мишеням в двух типах клеток с применением олигонуклеотидов с фосфодиэфирными и фосфоротиоатными химическими связями.

Дополнительно, некоторые способы конструирования и прогнозирования эффективности специфических олигонуклеотидов с применением систем in vitro также публиковали (Matveeva et al., Nature Biotechnology 16: 1374-1375 (1998)].

В некоторых клинических исследованиях демонстрировали безопасность, целесообразность и активность антисмысловых олигонуклеотидов. Например, успешно применяли предназначенные для лечения рака антисмысловые олигонуклеотиды [Holmund et al., Curr Opin Mol Ther 1: 372-85 (1999)], тогда как в проведенных клинических исследованиях лечения злокачественных опухолей гематологического происхождения посредством антисмысловых олигонуклеотидов, направленных на гены c-myb, p53 и Bcl-2, показана толерантность к ним у пациентов [Gerwitz Curr Opin Mol Ther 1: 297-306 (1999)].

Позднее сообщали, что опосредованная антисмысловыми олигонуклеотидами супрессия экспрессии гена гепараназы человека ингибирует плевральную диссеминацию раковых клеток человека в мышиной модели [Uno et al., Cancer Res 61: 7855-60 (2001)].

Таким образом, существует общепринятое мнение, что современные разработки в области технологий с применением антисмысловых олигонуклеотидов, которые, как описано выше, приводят к образованию высокоточных алгоритмов конструирования антисмысловых олигонуклеотидов и широкому диапазону систем их доставки, как правило, дают возможность специалистам в данной области конструировать и выполнять соответствующие подходы с применением антисмысловых олигонуклеотидов для снижения экспрессии известных последовательностей без вынужденных обращений к неуместным исследованиям и ошибочным экспериментам.

Еще одно средство, способное снижать экспрессию изоформ PKC, представляет собой молекулу рибозима, способную специфически расщеплять кодирующий изоформу PKC транскрипт мРНК. Рибозимы все больше применяют для сиквенс-специфического ингибирования экспрессии генов посредством расщепления кодирующей интересующие белки мРНК [Welch et al., Curr Opin Biotechnol. 9: 486-96 (1998)]. Возможность конструирования рибозимов, с тем чтобы расщеплять любую специфическую мишень РНК, делает их ценными инструментами в фундаментальных исследованиях и терапевтических применениях. В области клинической медицины рибозимы применяли для выявления вирусных РНК при инфекционных заболеваниях, основных онкогенов при раке и конкретных соматических мутаций при наследственных расстройствах [Welch et al., Clin Diagn Virol. 10: 163-71 (1998)]. Наиболее значительно то, что некоторые протоколы терапии с использованием рибозимных генов для пациентов с ВИЧ уже находятся на 1 стадии клинических испытаний. Позднее рибозимы применяли для исследований на трансгенных животных, для валидации генов-мишеней и выяснения каскадов реакций. Некоторые рибозимы находятся на разных стадиях клинических испытаний. ANGIOZYME является первым химически синтезированным исследованным в человеческих клинических испытаниях рибозимом. ANGIOZYME специфически ингибирует формирвание VEGF-r (рецептор фактора роста эндотелия сосудов), ключевого компонента в пути ангиогенеза. Ribozyme Pharmaceuticals, Inc., а также другие компании продемонстрировали важность подавляющих ангиогенез лекарственных средств в моделях на животных. HEPTAZYM представляет собой рибозим, сконструированный для селективного разрушения вирусной РНК гепатита C (HCV), в исследованиях на культурах клеток эффективно снижал вирусную РНК гепатита C (Ribozyme Pharmaceuticals, Incorporated - WEB home page).

Предпочтительно фармацевтическая композиция для индукции или ускорения процесса заживления ран или повреждений кожи дополнительно содержит, по меньшей мере, дополнительное средство, выбранное из группы, состоящей из гормона, фактора роста, адипокина, PKCδ RACK и GW9662. Пригодным гормоном может быть, но не ограничен примерами, интерлейкин-6 (IL-6), фактор роста кератиноцитов (KFG) или фактор некроза опухоли альфа(TNFα). Пригодным адипокином может быть, но не ограничен примерами, адипсин или адипонектин.

Во время приведения настоящего изобретения к практическому применению авторы настоящего изобретения необычно и неожиданно обнаружили, что сополимер-1 (глатирамера ацетат) способен к значительной активации заживления ран in vitro и in vivo (см. пример 26 ниже в разделе "Примеры"). Тогда как ранее сополимер-1 был известен как иммуномодулирующее средство, применяемое при лечении рассеянного склероза и расстройств центральной нервной системы (патенты США №№6620847, 6362161, 6342476, 6054430, 6046898, 5981589 и 5800808; патентные заявки США с регистрационными №№10/615865, 10/666857 и 10/014477), в предшествующем уровне техники не описывают и не предлагают применение сополимера-1 для ускорения процесса заживления ран.

Таким образом, согласно еще одному аспекту настоящего изобретения предоставлен способ индукции или ускорения процесса заживления ран или повреждений кожи, где способ выполняют посредством введения в раны или повреждения кожи терапевтически эффективного количества сополимера-1 предпочтительно в диапазоне концентраций от 1 до 500 мкг/мл. Следовательно, фармацевтическая композиция для осуществления способа согласно этому аспекту настоящего изобретения содержит в качестве активного ингредиента терапевтически эффективное количество сополимера-1 и фармацевтически приемлемый носитель.

Терапевтически/фармацевтически активные ингредиенты по настоящему изобретению можно вводить в рану per se или в фармацевтической композиции, смешанной с пригодными носителями и/или наполнителями. Пригодные для применения фармацевтические композиции в контексте настоящего изобретения включают в себя те композиции, в которых активные ингредиенты содержатся в эффективном для достижения желаемого терапевтического эффекта количестве.

Используемые здесь "фармацевтические композиции" относятся к приготовлению одного или более описанных здесь активных ингредиентов, как белок, химические соединения, нуклеиновые кислоты или клетки, или физиологически приемлемые соли или их лекарственные формы, с другими химическими компонентами, такими как классические лекарственные средства, физиологически пригодные носители и наполнители. Целью фармацевтической композиции является облегчение введения композиции или клетки в организм. Фармацевтические композиции по настоящему изобретению можно получать посредством хорошо известных в данной области процессов, например действием процессов обычного смешивания, растворения, гранулирования, изготовления драже, растирания в порошок, эмульгирования, инкапсулирования, включения или лиофилизации.

В дальнейшем фразы "физиологически пригодный носитель" и "фармацевтически приемлемый носитель" являются взаимозаменяемыми и относятся к носителю или растворителю, который не вызывает значительного раздражения в организме и не отменяет биологической активности и свойств вводимого конъюгата.

Здесь термин "наполнитель" относится к добавленному в фармакологическую композицию инертному веществу для дополнительного облегчения процессов и введения активных ингредиентов. Примеры наполнителей, без ограничения, включают в себя карбонат кальция, фосфат кальция, различные сахара и типы крахмала, производные целлюлозы, желатин, растительные масла и полиэтиленгликоли.

Способы формулирования и введения активных ингредиентов можно найти в "Remington's Pharmaceutical Sciences, "Mack Publishing Co., Easton, PA, последнее издание, введенное здесь в качестве ссылки.

Несмотря на то что возможны различные описанные ранее пути введения активных ингредиентов, целью по настоящему изобретению предпочтительно является способ местного введения и с помощью местного носителя. Местный носитель представляет собой носитель, который, как правило, пригоден для местного введения активных ингредиентов и включает в себя любой из таких известных в данной области материалов. Местный носитель выбран таким образом, чтобы дать композиции желаемую форму, например жидкий или нежидкий носитель, примочка, крем, паста, гель, порошок, мазь, раствор, жидкий растворитель, капли и нечто подобное, и может включать в себя материал, встречающийся в природе, или синтетического происхождения. Необходимо, очевидно, что выбранный носитель не оказывает неблагоприятного действия на активное средство или другие компоненты лекарственной формы для местного применения, стабилен по отношению ко всем компонентам лекарственной формы для местного применения. Примеры пригодных местных носителей для применения здесь включают в себя воду, спирты и другие нетоксичные органические растворители, глицерин, минеральное масло, силикон, вазелиновое масло, ланолин, жирные кислоты, растительные масла, парабены, воска и что-либо подобное. Предпочтительными лекарственными формами здесь являются бесцветные мази без запаха, жидкости, примочки, крема и гели.

Мази представляют собой полутвердые препараты, основой которых обычно является вазелин или другие нефтепродукты. Специфической используемой основой мази, как следует понимать специалистам в данной области, является основа, обеспечивающая оптимальную доставку активных ингредиентов, и предпочтительно также хорошо обеспечит другие желаемые характеристики, как, например, смягчение или что-либо подобное. Как и в случае с другими носителями или основами, основа мази должна быть инертной, стабильной, не вызывающей раздражения и сенсибилизации. Как объясняют у Remington: The Science and Practice of Pharmacy, 19th Ed. (Easton, Pa.: Mack Publishing Co., 1995), страницы 1399-1404, основы мазей можно сгруппировать в четыре класса: маслянистые основы, эмульгируемые основы, эмульсии и водорастворимые основы. Маслянистые основы мазей включают в себя, например, растительные масла, полученные из животных жиры и полученные из нефти полутвердые углеводороды. Эмульгируемые основы мазей, также известны как абсорбирующие основы мазей, не содержат или содержат небольшое количество воды, например сульфат гидроксистеарина, безводный ланолин и гидрофильный вазелин. Эмульсионные основы мазей представляют собой либо эмульсии вода в масле (W/O) или масло в воде (O/W) и включают в себя, например, цетиловый спирт, глицерилмоностеарат, ланолин и стеариновую кислоту. Предпочтительно водорастворимые основы мазей приготовлены из полиэтиленгликолей с разным молекулярным весом; можно вновь сделать ссылку на Remington: The Science and Practice of Pharmacy for further information.

Примочки представляют собой препараты, прикладываемые к поверхности кожи без растирания, и обычно являются жидкими или полутвердыми препаратами, в которых твердые частицы, включая активное средство, представлены на водной или спиртовой основе. Примочки обычно представляют собой суспензии из твердых частиц и могут содержать жидкую маслянистую эмульсию типа "масло в воде". Здесь предпочтительно примочки представляют собой препараты для обработки больших областей тела из-за легкости применения более жидкой композиции. Как правило, необходимо, чтобы в примочке нерастворимое вещество было мелкоизмельченным. Обычно примочки содержат суспендирующие вещества для продукции более тонких дисперсий, а также соединения, полезные для локализации и удержания активного средства в контакте с кожей, например метилцеллюлоза, карбоксиметилцеллюлоза натрия, или что-либо подобное.

Кремы, содержащие выбранные активные ингредиенты, представляют собой, как известно в данной области, вязкую жидкость или полутвердые эмульсии либо масло в воде или вода в масле. Основы кремов смываются водой и содержат масляную фазу, эмульгатор и водную фазу. Масляную фазу также иногда называют "внутренней" фазой, как правило, состоящей из вазелина и жирного спирта, такого как цетиловый или стеариловый спирт; водная фаза обычно, хотя не обязательно, превышает масляную фазу по объему и обычно содержит увлажнитель. Эмульгатор в препарате крема, как объясняют выше в Remington, обычно неионный, анионный, катионный или амфотерный сурфактант.

Препараты гелей предпочтительны для применения на коже головы. Как следует понимать специалистам в области формулирования местных активных ингредиентов, гели представляют собой полутвердые системы суспензионного типа. Однофазные гели содержат органические макромолекулы, распределенные, главным образом, равномерно по всему жидкому носителю, который обычно является водным, но также предпочтительно содержит спирт и необязательно масло.

Носители для нуклеиновых кислот включают в себя, но не ограничены примерами, липосомы, включающие в себя адресные липосомы, комплексообразующие средства нуклеиновых кислот, вирусные оболочки и что-либо подобное. Однако также можно применять трансформацию незащищенными нуклеиновыми кислотами.

В лекарственные препараты изобретения для местного применения могут быть включены различные добавки, известные специалистам в данной области. Например, растворители можно применять для растворения некоторых активных ингредиентов веществ. Другие необязательные добавки включают в себя вещества, усиливающие проницаемость кожи, замутнители, антиоксиданты, гелеобразующие вещества, загустители, стабилизаторы и что-либо подобное.

Как уже упоминали выше, по настоящему изобретению средства местного применения для обработки ран могут содержать другие фармацевтически активные средства или ингредиенты, которые обычно применяют для обработки таких ран. Они включают в себя иммунодепрессанты, такие как циклоспорин, антиметаболиты, такие как метотрексат, кортикостероиды, витамин D и аналоги витамина D, витамин A или его аналоги, как этретинат, смола, деготь, противозудные средства и восстанавливающие роговицу средства, такие как можжевеловое масло, кератолитические средства, такие как салициловая кислота, смягчающие средства, умягчители, антисептики и дезинфицирующие вещества, такие как бактерицидный препарат детранол (также известный как антралин), фотосенсибилизаторы, такие как псорален и метоксален, и УФ-облучение. Также можно добавлять другие средства, такие как противомикробные средства, противогрибковые средства, антибиотики и противовоспалительные средства. Также можно совместно использовать обработку посредством оксигенации (высокого кислородного давления).

Топические композиции по настоящему изобретению также можно доставлять в кожу с применением обычных пластырей дермального типа или изделий, где композиция активных ингредиентов содержится в слоистой структуре, выполняющей функцию средства доставки лекарств, при прикреплении к коже. В такой структуре композиция активных ингредиентов содержится в слое, или "резервуаре", находящемся под верхним защитным слоем. Слоистая структура может содержать один резервуар, или она может содержать множество резервуаров. В одном варианте осуществления резервуар включает в себя полимерный матрикс фармацевтически приемлемого контактного клейкого материала, служащего для прикрепления системы к коже при доставке активных ингредиентов. Примеры пригодных кожных контактных клейких материалов включают в себя, но не ограничены примерами, полиэтилены, полисилоксаны, полиизобутилены, полиакрилаты, полиуретаны и что-либо подобное. Конкретный выбранный полимерный клей зависит от конкретных активных ингредиентов, носителя и т.д., т.е. клей должен быть сочетаемым со всеми компонентами композиции, содержащей активные ингредиенты. Альтернативно резервуар, содержащий активные ингредиенты, и кожный контактный клей представлены в виде отдельных и обособленных слоев, где клей находится под резервуаром, который в этом случае может быть либо полимерным матриксом, как описано выше, или он может быть жидким или гидрогелевым резервуаром, или может иметь какую-нибудь другую форму.

Защитный слой в этих слоистых материалах, выполняющих функцию верхней поверхности средства, функционирует как основной структурный элемент слоистой структуры и придает устройству значительную долю его эластичности. Выбираемый материал для защитного слоя нужно выбрать так, чтобы он являлся значительно герметичным, чтобы активировать ингредиенты и любые другие компоненты композиции, содержащей активные ингредиенты, таким образом предотвращая потерю любых компонентов через верхнюю поверхность средства. Защитный слой может быть окклюзивным или неокклюзивным в зависимости от того, желательно ли, чтобы кожа в течение доставки активных ингредиентов увлажнялась. Предпочтительно защитный слой сделан из пленки или мембраны предпочтительно гибкого эластичного материала. Примеры полимеров, пригодных для защитного слоя, включают в себя полиэтилен, полипропилен и полиэстеры.

Во время хранения и до применения слоистая структура включает в себя разделительный вкладыш. Непосредственно перед применением этот вкладыш удаляют со средства, чтобы открыть его основную поверхность, либо резервуар активных ингредиентов, или отдельный слой контактного клея так, чтобы эту систему можно было прикрепить к коже. Этот разделительный вкладыш должен быть сделан из активных ингредиентов/непроницаемое для носителя вещество.

Такие средства можно производить с применением обычных способов, известных в данной области, например посредством распределения жидкой смеси клея, активных ингредиентов и носителя на защитном слое, с последующим наслоением разделительного вкладыша. Аналогично клейкую смесь можно распределять по разделительному вкладышу с последующим наслоением защитного слоя. Альтернативно резервуар активных ингредиентов можно приготовить в отсутствие активных ингредиентов или инертного наполнителя и затем заполнить посредством "пропитывания" активными ингредиентами/смесь носителя.

Как и в случае лекарственных средств для местного применения изобретения, композиция, содержащая активные ингредиенты с резервуарами активных ингредиентов этих слоистых систем, может содержать ряд компонентов. В некоторых случаях активные ингредиенты можно выпускать "без примесей", т.е. в отсутствие дополнительных жидкостей. Однако в большинстве случаев активные ингредиенты будут растворены, диспергированы или суспендированы в пригодном фармацевтически приемлемом носителе, обычно растворителе или геле. Другие компоненты, которые могут быть представлены, включают в себя консерванты, стабилизаторы, сурфактанты и что-либо подобное.

Описанные здесь фармацевтические композиции также могут включать в себя пригодные твердо- или гель-фазные носители или наполнители. Примеры таких носителей или наполнителей включают в себя, но не ограничены примерами, карбонат кальция, фосфат кальция, различные сахара, крахмалы, производные целлюлозы, желатин и полимеры, такие как полиэтиленгликоли.

Дозирование зависит от типа, тяжести и проявления повреждения и от восприимчивости человека к активным ингредиентам, так же как от используемой лекарственной формы, активности конкретного конъюгата и используемого пути введения. Средние специалисты в данной области могут легко определить оптимальные дозировки, методологии дозирования и частоту повторений. Точную формулировку, путь введения и дозирование можно выбрать при помощи лечащего врача исходя из состояния больного. (См., например, Fingl, et al., 1975, в "The Pharmacological Basis of Therapeutics", Ch.1 p.1).

Таким образом, в зависимости от тяжести и восприимчивости подлежащего лечению состояния дозирование может представлять собой однократное или повторное введение с курсом лечения длительностью от нескольких суток до нескольких недель или до достижения выздоровления, или до достижения сокращения повреждения кожи.

В некоторых аспектах настоящего изобретения применяют способы (клеточной) генной терапии in vivo и ex vivo, включающие в себя трансформацию клеток и трансформацию гена по типу knock-in. Как применяют здесь, генная терапия относится к переносу интересующего генетического материала (например, ДНК или РНК) в хозяина для лечения или предотвращения генетического или приобретенного заболевания, или состояния, или фенотипа. Интересующий генетический материал кодирует продукт (например, белок, пептид, функциональную РНК, антисмысловую РНК), продукция которого желаема in vivo. Например, интересующий генетический материал может кодировать гормон, рецептор, фермент, полипептид или пептид с терапевтическим действием. Для обзора см., обычно, текст "Gene Therapy" (Advanced in Pharmacology 40, Academic Press, 1997).

В генную терапию вовлечены два базовых способа (i) ex vivo; и (ii) in vivo генная терапия. При генной терапии ex vivo клетки выделяют из пациента или получают из еще одного источника и во время культивирования обрабатывают in vitro. Как правило, функциональная замена гена представляет собой введение в клетку посредством соответствующей системы доставки гена/способа (трансфекции, трансдукции, гомологичной рекомбинации и т.д.) и экспрессирующей системы по мере необходимости, и затем модифицированные клетки наращивают в культуре и возвращают хозяину/пациенту. Показали, что эти генетически реимплантированные клетки экспрессируют in situ трансфицированный генетический материал.

При генной терапии in vivo клетки-мишени не выделяют из человека, скорее перенесенный генетический материал вводят в клетки организма реципиента in situ, которые находятся внутри реципиента. В альтернативном варианте осуществления, если ген хозяина является дефектным, ген восстанавливают in situ (Culver, 1998. (Abstract) Antisense DNA & RNA based therapeutics, February 1998, Coronado, CA). Показали, что эти генетически измененные клетки экспрессируют трансфицированный генетический материал in situ.

Экспрессирующий ген вектор способен доставлять/переносить гетерологическую нуклеиновую кислоту в клетку хозяина. Как известно в данной области, экспрессирующий вектор может включать в себя элементы для контроля позиционирования, экспрессии и транскрипции нуклеиновой кислоты в клетку селективным образом. Следует заметить, что часто 5'UTR и/или 3'UTR гена можно замещать посредством 5'UTR и/или 3'UTR экспрессирующего вектора. Кроме того, как применяют здесь, экспрессирующий вектор может, по мере необходимости, не включать в себя 5'UTR и/или 3'UTR перенесенного действительного гена, а включать в себя только кодирующую специфические аминокислоты область.

Экспрессирующий вектор может включать в себя промотор для контроля транскрипции гетерологического материала и может представлять собой конститутивный или индуцибельный промотор, чтобы позволить избирательную транскрипцию. Необязательно сюда можно включать энхансеры, которые могут быть необходимы для получения необходимых уровней транскрипции. Как правило, энхансеры представляют собой любую нетранслируемую последовательность ДНК, работающую рядом с кодирующей последовательностью (in cis), чтобы изменить базальный уровень транскрипции, диктуемый промотором. Экспрессирующий вектор также может включать в себя ген отбора, как описано здесь ниже.

Векторы можно вводить в клетки или ткани посредством любого одного из множества известных в данной области способов. Описание таких способов можно обычно найти в Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Springs Harbor Laboratory, New York 1989, 1992), в Ausubel et al., Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley and Sons, Baltimore, Maryland 1989), Chang et al. Somatic Gene Therapy, CRC Press, Ann Arbor, MI 1995), Vega et al., Gene Targeting, CRC Press, Ann Arbor MI (995), Vectors: A Survey of Molecular Cloning Vectors and Their Uses, Butterworths, Boston MA 1988) и Gilboa et al. (Biotechniques 4 (6): 504-512, 1986), и включают в себя, например, стабильную или временную трансфекцию, липофекцию, электропорацию и инфекцию рекомбинантными вирусными векторами. Дополнительно см. патент США 4866042 о векторах, вовлекающих центральную нервную систему, и также патенты США 5464764 и 5487992 о способах положительной-отрицательной селекции.

Введение нуклеиновых кислот посредством инфекции предлагает несколько преимуществ над другими перечисленными способами. Более высокую эффективность можно получить в результате их инфекционной природы. Кроме того, вирусы являются очень специализированными и типично инфицируют и размножаются в конкретных типах клеток. Таким образом, их природную специфичность можно применять для нацеливания векторов на конкретные типы клеток in vivo или в пределах ткани или смешанной культуры клеток. Также вирусные векторы можно модифицировать специфическими рецепторами или лигандами для изменения специфичности мишени через рецептор опосредованные события.

Конкретный пример введения вирусного ДНК-вектора и экспрессии рекомбинационных последовательностей представляет собой происходящий из аденовируса вектор Adenop53TK. Этот вектор экспрессирует ген тимидинкиназы (TK) вируса герпеса для положительной или отрицательной селекции и экспрессирующую кассету для желаемых рекомбинантных последовательностей. Этот вектор можно применять для инфекции клеток, имеющих аденовирусный рецептор, включающий в себя большинство тканей эпителиального происхождения, так же как и другие. Этот вектор, так же как и другие, проявляющие сходные желаемые функции, можно применять для обработки смешанной популяции клеток, которые могут включать в себя, например, in vitro или ex vivo культуру клеток, ткань или человека. Также могут быть включены признаки, ограничивающие экспрессию в отдельных типах клеток. Такие признаки включают в себя, например, промотор и регуляторные элементы, специфичные для желаемого типа клеток.

Дополнительно рекомбинантные вирусные векторы полезны для экспрессии in vivo желаемой нуклеиновой кислоты, так как они предлагают преимущества, такие как латеральная инфекция и направленная специфичность. Латеральная инфекция присуща жизненному циклу, например, ретровирусов, и представляет собой процесс, посредством которого однажды инфицированные клетки продуцируют много вирионов-потомков, отпочковывающихся и инфицирующих соседние клетки. Результатом является то, что большая область быстро становится инфицированной, большая часть которой исходно не была инфицирована посредством исходных вирусных частиц. Существует отличие в типах вирусных инфекций, в которых инфекционный агент распространяется только через дочернее потомство. Также можно получать вирусные векторы, не способные распространяться латерально. Эта особенность может быть полезной, если желаемая цель представляет собой введение конкретного гена только в локализованном количестве намеченных клеток.

Как описано выше, вирусы представляют собой очень специализированные инфекционные агенты, которые разрабатывают во многих случаях для того, чтобы избежать механизмы защиты хозяина. Типично вирусы инфицируют и размножаются в конкретных типах клеток. Направленная специфичность вирусных векторов использует его природную специфичность к специфически намеченным предопределенным типам клеток и, таким образом, вводит рекомбинантный ген в инфицированную клетку. Применяемый вектор в способах и композициях изобретения зависит от желаемого намеченного типа клеток и известен специалистам в данной области.

Ретровирусные векторы можно конструировать для функционирования либо в виде инфекционных частиц, или для прохождения одного начального цикла инфекции. В первом случае геном вируса модифицировали так, чтобы он сохранял все необходимые гены, регуляторные последовательности и сигналы упаковки для синтеза новых вирусных белков и РНК. Когда эти молекулы синтезируются, клетка-хозяин упаковывает РНК в новые вирусные частицы, способные проходить дальнейшие циклы инфекции. Геном вектора также конструируют так, чтобы кодировать и экспрессировать желаемый рекомбинантный ген. В случае неинфекционных вирусных векторов геном вектора, как правило, подвергают мутированию для разрушения вирусного сигнала упаковки, необходимого для инкапсуляции РНК в вирусные частицы. Без такого сигнала любые сформированные частицы не содержат генома и, следовательно, не могут проходить через последующие циклы инфекции. Конкретный тип вектора будет зависеть от планируемого применения. Реально существующие векторы также известны и легко доступны в данной области, или их может сконструировать специалист в данной области с применением хорошо известной методологии.

Рекомбинантный вектор можно вводить несколькими способами. Например, если применяют вирусные векторы, в процедуре можно воспользоваться преимуществом их специфичности в отношении мишени и, следовательно, их не обязательно вводить локально в участок поражения. Однако местное введение может обеспечить более быстрое и более эффективное лечение.

Способы для трансформации клеток in vivo и ex vivo, включая сюда гомологичную рекомбинацию, применяемую в способах "knock-in", указаны, например, в патентах США 5487992, 5464764, 5387742, 5360735, 5347075, 5298422, 5288846, 5221778, 5175385, 5175384, 5175383, 4736866, а также у Burke and Olson, Methods в Enzymology, 194:251-270 1991); Capecchi, Science 244: 1288-1292 (1989); Davies et al., Nucleic Acids Research, 20 (11): 2693-2698 (1992); Dickinson et al., Human Molecular Genetics, 2 (8): 1299-1302 (1993); Duff and Lincoln, "Insertion of a pathogenic mutation into a yeast artificial chromosome containing the human APP gene and expression in ES cells", Research Advances in Alzheimer's Disease and Related Disorders, 1995; Huxley et al., Genomics, 9: 742-750 (1991); Jakobovits et al., Nature, 362: 255-261 (1993); Lamb et al., Nature Genetics, 5: 22-29 (1993); Pearson and Choi, Proc. Natl. Acad. Sci. USA (1993). 90: 10578-82; Rothstein, Methods in Enzymology, 194: 281-301 (1991); Schedl et al., Nature, 362: 258-261 (1993); Strauss et al., Science, 259: 1904-1907 (1993). Также дополнительная информация представлена в патентных заявках WO 94/23049, WO 93/14200, WO 94/06908, WO 94/28123.

Дополнительные объекты, преимущества и новые свойства настоящего изобретения будет понятны специалисту в данной области при изучении следующих далее примеров, которые не предназначены для ограничения. Кроме того, каждый из различных вариантов осуществления и аспектов настоящего изобретения, как указано выше и приведено в разделе формулы изобретения ниже, находит экспериментальную поддержку в следующих ниже примерах.

Примеры

Далее приведена ссылка на следующие ниже примеры, которые вместе с приведенными выше описаниями иллюстрируют изобретение не лимитирующим образом.

Как правило, здесь применяют номенклатуру, и лабораторные процедуры, примененные в настоящем изобретении, включают в себя молекулярные, биохимические, микробиологические способы и способы рекомбинантных ДНК. Такие способы полностью описаны в литературе. Смотри, например, "Molecular Cloning: A Laboratory Manual "Sambrook et al., (1989); "Current Protocols in Molecular Biology" Volumes I-III Ausubel, R.M., ed. (1994); Ausubel et al., "Current Protocols in Molecular Biology", John Wiley and Sons, Baltimore, Maryland (1989); Perbal, "A Practical Guide to Molecular Cloning", John Wiley & Sons, New York (1988); Watson et al., "Recombinant DNA", Scientific American Books, New York; Birren et al. (eds) "Genome Analysis: A Laboratory Manual Series", Vols. 1-4, Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York (1998); методологии, как излагают в патентах США №№4666828; 4683202; 4801531; 5192659 и 5272057; "Cell Biology: A Laboratory Handbook", Volumes I-III Cellis, J.E., ed. (1994); "Culture of Animal Cells -A Manual of Basic Technique" by Freshney, Wiley-Liss, N.Y. (1994), Third Edition; "Current Protocols in Immunology" Volumes I-III Coligan J.E., ed. (1994); Stites et al. (eds), "Basic and Clinical Immunology" (8th Edition), Appleton & Lange, Norwalk, CT (1994); Mishell and Shiigi (eds), "Selected Methods in Cellular Immunology", W.H.Freeman and Co., New York (1980); доступные иммунологические исследования подробно описаны в патентной и научной литературе, смотри, например, патенты США №№3791932; 3839153; 3850752; 3850578; 3853987; 3867517; 3879262; 3901654; 3935074; 3984533; 3996345; 4034074; 4098876; 4879219; 5011771 и 5281521; "Oligonucleotide Synthesis" Gait, M.J., ed. (1984); "Nucleic Acid Hybridization" Hames, B.D., and Higgins S.J., eds. (1985); "Transcription and Translation" Hames, B.D., и Higgins S.J., eds. (1984);"Animal Cell Culture" Freshney, R.I., ed. (1986); "Immobilized Cells and Enzymes" IRL Press, (1986); "A Practical Guide to Molecular Cloning" Perbal, B., (1984) и "Methods in Enzymology" Vol.1-317, Academic Press; "PCR Protocols: A Guide To Methods And Applications", Academic Press, San Diego, CA (1990); Marshak et al., "Strategies for Protein Purification and Characterization - A Laboratory Course Manual" CSHL Press (1996); которые все объединяют посредством ссылки, как будто полностью приведены здесь. Другие основные ссылки предоставлены по всему этому документу. Полагают, что процедуры, приведенные в данном описании, хорошо известны из уровня техники и представлены для удобства читателя. Вся содержащаяся здесь информация объединена посредством ссылки.

Материалы и экспериментальные способы

Материалы: Среда культуры ткани и сыворотка получены из Biological Industries (Beit HaEmek, Израиль). Повышенную химическую люминесценцию (ECL) выполняли с помощью коммерческого набора, полученного из BioRad (Израиль). Моноклональное антитело к p-tyr получали из Upstate Biotechnology Inc. (Lake Placid, NY, США). Поликлональные и моноклональные антитела к изоформам PKC получали из Santa Cruz (Калифорния, США) и Transduction Laboratories (Lexington, KY). Крысиные mAb (GoH3) к α6 мыши получали из Pharmingen (San Diego, CA). Антитело 6844 для α6A цитоплазматического домена получено в качестве подарка от Dr.V.Quaranta (Scripps Research Institute, La Jolla, CA). Крысиное mAb, направленное против внеклеточного домена мышиного β4 (346-11A), получено в качестве подарка от Dr.S.J.Kennel (Oak Ridge National Laboratory, Oak Ridge, TN). Крысиное mAb к фосфотирозину получали из Zymed (San Francisco, CA). IgG с пероксидазой хрена к кроличьим и мышиным антителам получали из Bio-Rad (Израиль). Леупептин, апротинин, PMSF, DTT, Na-ортованадат и пепстатин получали из Sigma Chemicals (St. Louis, MO). Инсулин (humulinR-рекомбинантный инсулин человека) получали из Eli Lilly France SA (Fergersheim, Франция). IGF1 получили в качестве подарка от Babco-Convance (Richmond, CA). BDGF-BB получали из R&D systems (Minneapolis) и миристоилированный псевдосубстрат PKCα получали из Calbinochem (San Diego, CA).

Выделение и культивирование мышиных кератиноцитов: Первичные кератиноциты выделяли из кожи новорожденных, как описано ранее [18]. Кератиноциты культивировали в минимальной необходимой среде Игла (EMEM), содержащей 8% Chelex (Chelex-100, BioRad) обработанной эмбриональной телячьей сыворотки. Для поддержания пролиферативного базального клеточного фенотипа конечную концентрацию Ca²⁺ установили до 0,05 мМ. Эксперименты выполняли через 5-7 суток культивирования.

Приготовление экстрактов клеток и анализ Вестерн-блот: Для получения грубых мембранных фракций готовили лизаты клеток посредством соскребания клеток в PBS, содержащий 10 мкг/мл апротинина, 10 мкг/мл леупептина, 2 мкг/мл пепстатина, 1мМ PMSF, 10 мМ ЭДТА, 200 мкМ NaVO₄ и 10 мМ NaF. После гомогенизации и 4 циклов замораживание/таяние, лизаты осаждали при 4°C в течение 20 минут в микроцентрифуге на максимальной скорости. Супернатант, содержащий растворимую цитозольную белковую фракцию, переносили в другую пробирку. Осадок ресуспендировали в 250 мкл PBS, содержащего 1% Triton X-100 с ингибиторами фосфатазы и протеазы, инкубировали в течение 30 минут при 4°C и осаждали в микроцентрифуге на максимальной скорости при 4°C. Супернатант содержит мембранную фракцию. Концентрации белка измеряли с применением модифицированного анализа Лоури (Bio-Rad DC Protein Assay Kit). Вестерн-блот анализ клеточных белковых фракций выполняли, как описано выше [6].

Приготовление клеточных лизатов для иммунопреципитации: Содержащие кератиноциты культуральные чашки отмывали в PBS без Ca²⁺ и Mg²⁺. Клетки механически отделяли в буфере RIPA (50 мМ Трис-HCl pH 7,4; 150 мМ NaCl; 1 мМ ЭДТА; 10 мМ NaF; 1% Triton x100; 0,1% SDS, 1% дезоксихолата Na), содержащем смесь ингибиторов протеазы и фосфатазы (20 мкг/мл леупептина; 10 мкг/мл апротинина; 0,1 мМ PMSF; 1 мМ DTT; 200 мкМ ортованадата; 2 мкг/мл пепстатина). Препарат центрифугировали в микроцентрифуге на максимальной скорости в течение 20 минут при 4°C. Супернатант применяли для иммунопреципитации.

Иммунопреципитация: Лизат предварительно очищали посредством смешивания 300 мкг клеточного лизата с 25 мкл Protein A/G Sepharose (Santa Cruz, CA, USA) и суспензию непрерывно перемешивали в течение 30 минут при 4°C. Затем препарат центрифугировали на максимальной скорости при 4°C в течение 10 минут и добавляли 30 мкл A/G Sepharose к супернатанту вместе со специфическими поликлональными или моноклональными антителами к отдельным антигенам (разведение 1:100). Образцы перемешивали всю ночь при 4°C. Затем суспензию центрифугировали на максимальной скорости в течение 10 минут при 4°C и осадок отмывали в буфере RIPA. Суспензию снова центрифугировали при 15000 × g (4°C в течение 10 минут) и отмывали четыре раза в TBST. Добавляли буфер для образца (0,5 M Трис·HCl pH 6,8; 10% SDS; 10% глицерола; 4% 2-бета-меркаптоэтанола; 0,05% бромфенолового синего) и образцы кипятили в течение 5 минут и затем подвергали SDS-PAGE.

Анализ прикрепления: 24-луночные чашки Петри (Greiner) покрывали (250 мкл/лунку) 20 мкг/мл матриксными белками в PBS в течение 1 часа при 37°С. После инкубации планшеты отмывали и инкубировали с 0,1% BSA в течение 30 минут при комнатной температуре для блокирования неспецифического связывания. Культуры кератиноцитов коротко трипсинизировали 0,25% трипсином с последующим откреплением, клетки ресуспендировали и добавляли кератиноциты (1×10⁶) на покрытые лунки и инкубировали в течение 1 часа при 37°С. Неадгезивные клетки удаляли, лунки промывали дважды с PBS и оставшиеся клетки экстрагировали в 1 М NaOH. Количество клеток определяли посредством концентраций белков с применением модифицированного анализа Лоури (Bio-Rad DC Protein Assay Kit). Результаты рассчитывали посредством процентного отношения относительно необработанных контролей.

Иммунофлуоресценция: Первичные кератиноциты наносили на покрытые ламинином 5 предметные стекла. Двухсуточные кератиноциты инфицировали PKC аденовируса в течение одного часа, отмывали дважды в PBS и поддерживали в культуре с низким содержанием Ca²⁺ MEM. Через двадцать четыре часа после инфекции клетки фиксировали в 4% параформальдегиде в течение 30 минут с последующим нарушением проницаемости клетки 0,2% Triton в течение 5 минут. Для анализа контрольные и инфицированные кератиноциты отмывали в PBS и инкубировали всю ночь при 4°C с антителами к PKC (Santa Cruz), растворенными в 1% BSA в PBS. После инкубации стекла дважды отмывали в течение 10 минут в PBS и инкубировали с биотинилированными вторыми антителами к кроличьим в течение 20 минут, дважды отмывали в PBS и инкубировали со стрептавидин-FITC в течение 20 минут. Для анализа окрашивания α6β4 предметные стела обрабатывали 0,2% Triton X-100 в течение 5 минут на льду с последующей фиксацией в метаноле. Стекла инкубировали с антителами к α6 или β4 всю ночь с последующей инкубацией с биотинилированными вторыми антителами к кроличьим соответственно в течение 20 минут, дважды отмывали в PBS и инкубировали со стрептавидин-FITC в течение 20 минут. Затем отмывали два раза в PBS, стекла заключали в глицериновом буфере, содержащем 1% п-фенилендиамина (Sigma), и оценивали флуоресценцию посредством лазерной конфокальной сканирующей микроскопии (MRC1024, Bio-Rad, UK).

Аденовирусные конструкции: рекомбинантные аденовирусные векторы конструировали, как описано выше [19]. Доминантно негативные мутанты мышиных PKC производили посредством замещения остатка лизина в АТФ-связывающем сайте на аланин. Мутантную кДНК вырезали из экспрессирующего вектора SRD с EcoR I и лигировали в космидную кассету pAxCAlw для конструирования вектора Ax. Доминантно негативная активность генов демонстрировали посредством его аутофосфорилирующей активности.

Трансдукция кератиноцитов генами изоформ PKC: Культуральную среду удаляли и культуры кератиноцитов инфицировали вирусным содержащим PKC рекомбинантные аденовирусы супернатантом в течение часа. Затем культуры дважды отмывали в MEM и снова вносили в питательную среду. Через десять часов после инфекции клетки переносили в MEM без сыворотки и с низким содержанием Ca²⁺ на 24 часа. Кератиноциты из контрольных и обработанных инсулином или из обработанных IGF1

культур применяли для анализов пролиферации, захвата ⁸⁶Rb или экстрагировали и фракционировали в цитозольную и мембранную фракции для иммунопреципитации, иммунофлуоресценции и Вестерн-блоттинга, как описано.

Активность PKC: Специфическую активность PKC определяли в свежеприготовленных иммунопреципитатах из культур кератиноцитов последующими соответствующими обработками. Эти лизаты готовили в буфере RIPA без NaF. Активность измеряли с применением SignaTECT Protein Kinase C Assay System (Promega, Madison, WI, USA) в соответствии с инструкциями производителя. Псевдосубстрат PKCα применяли в этих исследованиях в качестве субстрата.

Пролиферация клеток: На 24-луночных планшетах измеряли пролиферацию клеток посредством включения [³H]тимидина. Клетки импульсно возбуждали [³H]тимидином (1 мкКи/мл) всю ночь. После инкубации клетки отмывали пять раз в PBS и добавляли 5% TCA в каждую лунку на 30 минут. Раствор удаляли и клетки растворяли в 1% Triton X-100. Меченый включенный в клетки тимидин считали в ³H-окне Tricarb жидкостного сцинтилляционного счетчика.

Активность Na⁺/K⁺ помпы: Активность Na⁺/K⁺ помпы определяли посредством измерений уабаин-чувствительного поглощения ⁸⁶Rb целыми клетками в 1 мл PBS без K⁺, содержащем 2 мМ RbCl и 2,5 мкКи ⁸⁶Rb. Поглощение Rb прерывали через 15 минут посредством удаления среды, после которого клетки быстро отмывали четыре раза в холодном 4°C PBS без K⁺ и растворяли в 1% Triton X-100. Клетки из чашки добавляли к 3 мл H₂O в сцинтилляционной виале. Образцы считали в ³H-окне Tricarb жидкостного сцинтилляционного счетчика. Поглощение Rb, специфически связанное с активностью Na⁺/K⁺ помпы, определяли посредством вычитания накопленных имп/мин в присутствии 10^-4 М уабаина из поглощения, определенного в отсутствие ингибитора.

Иммунокиназный анализ PKC: Очищенные и стандартизированные изозимы PKC были любезно предоставлены Dr.P.Blumberg (NCI, NIH, U.S.) и Dr.Marcello G.Kazanietz (University of Pennsylvania, School of Medicine). Первичные кератиноциты собирали в 500 мкл l% Triton Lysis Buffer (1% Triton-X 100, 10 мкг/мл апротинина и леупептина, 2 г/мл пепстатина, 1 мМ PMSF, 1 мМ ЭДТА, 200 мкМ Na₂VO₄, 10 мМ NaF в 1 x PBS). Лизаты инкубировали при 4°C в течение 30 минут и осаждали при 16000 × g в течение 30 минут при 4°C. Супернатанты переносили в новую пробирку. Иммунопреципитацию клеточных лизатов проводили всю ночь при 4°C с 5 мкг/образец анти-α6/GoH3 (PharMingen) и 30 мкл/образец белка A/G-Plus agarose slurry (Santa Cruz). Бусы отмывали один раз буфером RIPA и дважды 50 мМ Трис/HCl pH 7,5. 35 мкл реакционного буфера (1 мМ CaCl₂, 20 мМ MgCl₂, 50 мМ Трис·HCl pH 7,5) добавляли к каждому анализу. Каждому анализу 5,5 мкл/анализ суспензии фосфолипидных везикул, содержащих DMSO или 10 мМ TPA, добавляли к взвеси вместе со стандартизированным количеством специфического изозима PKC. Реакцию инициировали посредством добавления 10 мкл/анализ 125 мМ АТФ (1,25 мкКи/анализ[γ-³²P] АТФ, Amersham) и продолжали в течение 10 минут при 30°C. Затем бусы отмывали дважды в буфере RIPA. Добавляли 30 мкл/образец белок-нагрузочного красителя (3 x Laemmli, 5% SDS) и кипятили образцы в течение 5 минут на водной бане. Белки разделяли посредством SDS-PAGE на 8,5% геле, переносили на Protran мембраны (Schleicher & Schuell) и визуализировали посредством авторадиографии. В качестве контроля для активности PKC применяли фосфорилирование гистонов и фосфорилирование PKC субстратного пептида.

РЕЗУЛЬТАТЫ ЭКСПЕРИМЕНТОВ

ПРИМЕР 1

Эффективная сверхэкспрессия изоформ PKC с применением рекомбинантных аденовирусных векторов

Посредством применения аденовируса с рекомбинантной β-галактозидазой достигали высокой эффективности инфекции с более чем 90% популяции культивируемых кератиноцитов, экспрессирующих рекомбинантный белок. Инфекция аденовирусом с рекомбинантной β-галактозидазой не влияет на жизнеспособность клеток или клеточный рост. Кроме того, экспрессия β-галактозидазы продолжалась вплоть до двух недель культивирования, и ее применяли в качестве контроля инфекции в следующих далее экспериментах. Проверяли эффективность конструкций аденовируса с рекомбинантной PKC для индукции экспрессии белка и их способность правильно активироваться в культурах мышиных кератиноцитов. Как видно на "вестерн-блоте" на фиг.1, через 24 часа после 1 часа инфекции конструкциями аденовирусом с рекомбинантной PKC наблюдали существенное увеличение экспрессии конкретного белка PKC от 5 до 10 раз выше уровней эндогенной экспрессии конкретных изоформ. Рекомбинантный белок можно выявлять в инфицированных культурах кератиноцитов уже через 6 часов после инфекции, а пик экспрессии получали через 24 часа. Экспрессия белка продолжалась на протяжении всего периода культивирования (до четырнадцати суток)

ПРИМЕР 2

Сверхэкспрессированные формы PKC активируются активаторами PKC

Рекомбинантные белки изоформ PKC, как правило, отвечали на активаторы PKC. Как видно на фиг.2, обработка бриостатином 1 индуцировала перемещение белков PKCα и δ в мембранную фракцию с меньшим эффектом на изоформы PKCη и ζ, сходно с результатами, полученными с эндогенными изоформами, и, как ожидали, исходя из требований их кофакторов.

ПРИМЕР 3

Сверхэкспрессированные формы PKC активируются в их нативной форме

Уже через 18 часов после инфекции киназные анализы PKC выявили, что иммунопреципитаты отдельных изоформ PKC были ферментативно активными без дополнительной необходимости стимуляции активаторами PKC (фиг.3).

ПРИМЕР 4

Сверхэкспрессия конкретных форм PKC индуцирует в первичных кератиноцитах отчетливые морфологические изменения

Каждая из применяемых конструкций аденовирусов с PKC индуцировала в первичных кератиноцитах конкретное морфологическое изменение (фиг.4). Неинфицированные первичные культуры мышиных кератиноцитов и инфицированные β-галактозидазой клетки демонстрировали кубовидную морфологию, типичную для характеристик пролиферирующих базальных клеток в культуре. Вне зависимости от изоформной специфичности все сверхэкспрессирующие PKC кератиноциты продемонстрировали морфологические изменения, типичные для активации PKC, включая сюда удлинение клеток и появление нейроноподобных отростков. Однако каждая из изоформ PKC обладала характерным эффектом на морфологию кератиноцитов. Инфекция PKCα индуцировала расслоение кератиноцитов с типичной плоской морфологией. Напротив, PKCη проявлялась в виде конденсированных клонов клеток, демонстрирующих морфологические характеристики базальных клеток, пролиферирующих с быстрой скоростью (фиг.4). Обнаружено, что две из изоформ оказывают воздействие на клеточный матрикс, а также на ассоциации клетка-клетка. Через 18-48 часов после инфекции PKCδ клетки выглядели удлиненными и увеличенными за счет нейроноподобных выростов. За этим следовала постепенная потеря клеток в культуральной чашке, которая возрастала в течение периода культивирования. Кератиноциты, сверхэкспрессирующие PKCζ, выглядели как шарообразные кластеры, свободно сидящие на культуральной чашке и постепенно разрушающиеся через несколько суток после инфекции.

ПРИМЕР 5

Различная локализация сверхэкспрессированных изоформ PKC в инфицированных первичных кератиноцитах

Различные морфологические изменения были ассоциированы с различной клеточной локализацией, как охарактеризовано посредством иммунофлюоресцентного анализа. В пролиферирующих кератиноцитах PKCα, PKCδ и PKCζ экспрессировались в цитоплазме, а также в плазматической мембране. Подобно экспрессии эндогенного белка изоформа PKCη локализовалась в перинуклеарной области кератиноцитов (фиг.5). Динамическое изменение в распределении было связано с PKCδ и PKCζ, где следующая за откреплением клеток экспрессия изоформ PKC преимущественно локализовалась в клеточной мембране (фиг.5).

ПРИМЕР 6

Экспериментальные результаты регуляции экспрессии α6β4 изоформами PKC

Проверяли способность конкретных изоформ PKC регулировать белки, являющиеся характеристикой основного фенотипа пролиферирующего базального слоя. Так как супрессия интегрина α6β4 представляет собой одно из ранних событий, происходящих при дифференцировке кератиноцитов, оценивали способность различных изоформ PKC регулировать экспрессию интегрина α6β4, интегрина, который специфически локализуется в гемидесмосомах базального слоя. Как можно видеть на иммуноблоте, представленном на фиг.6, только изоформы PKCδ и PKCζ были способны супрессировать экспрессию α6β4 по сравнению с уровнями субъединиц интегрина α6β4 в контрольных каратиноцитах. В то же время уровни интегриновых субъединиц α3 или β1 не снижались. Напротив, соответственно сверхэкспрессия изоформы PKCα приводила к увеличенному в размере от двух до трех раз выше уровня экспрессии в контроле уровню α6β4 (фиг.6). Сверхэкспрессия PKCη не влияла на уровень экспрессии белка α6β4. Некоторые характеристики ассоциированы с коммитированием клеток в направлении дифференцировки, и они после супрессии белка α6β4 включают в себя снижение скорости пролиферации, синтез нового кератина, открепление клеток и потерю присоединения к компонентам базальной мембраны. Изменений в экспрессии кератина при сверхэкспрессии различных изоформ PKC не наблюдали. Она включала в себя экспрессию K5 и K14, характерную для базальных пролиферирующих кератиноцитов, и K1 и K10, характерную для ранних стадий дифференцировки в шиповатые клетки. Кроме того, когда скорость пролиферации анализировали посредством включения ³H-тимидина, корреляции между потерей экспрессии α6β4 и пролиферативным потенциалом не наблюдали.

ПРИМЕР 7

Сверхэкспрессированные PKCη и PKCδ индуцируют пролиферацию кератиноцитов in vitro

Сверхэкспрессия PKCη и PKCδ значимо индуцирует пролиферацию кератиноцитов в пять и в два раза выше, чем контрольные уровни соответственно (фиг.7). PKCζ и PKCα не воздействуют на пролиферацию клеток.

ПРИМЕР 8

Сверхэкспрессированные PKCδ и ζ индуцируют открепление кератиноцитов in vitro

Исследовали адгезивные свойства сверхэкспрессирующих PKCδ и ζ кератиноцитов. По сравнению с контрольными кератиноцитами изменений в адгезивном потенциале к конкретным белкам матрикса, включающим в себя ламинин 1, ламинин 5, фибронектин и коллаген, не наблюдали (данные не представлены). Однако в клетках, сверхэкспрессирующих изоформы PKCδ и PKCζ, потеря контакта клеток с культуральной чашкой была ассоциирована с постепенным откреплением кератиноцита от культуральной чашки (фиг.4).

ПРИМЕР 9

Эффекты сверхэкспрессии изоформ PKC на локализацию интегрина α6β4 в гемидесмосомах

Так как экспрессия α6β4 необходима для формирования гемидесмосомального адгезивного комплекса, исследовали связь супрессии α6β4 и клеточного открепления с локализацией α6β4 в гемидесмосомах. На фиг.8 представлен иммунофлуоресцентный анализ ассоциации α6β4 с гемидесмосомальными комплексами. Как видно на фиг.8, по сравнению с контрольными инфицированными кератиноцитами повышение экспрессии интегрина α6β4 в сверхэкспрессирующих PKCα кератиноцитах (фиг.6) ассоциировано с увеличенной интеграцией α6β4 с гемидесмосомальными комплексами. В сверхэкспрессирующих PKCη клетках также индуцирована ассоциация интегрина α6β4 с гемидесмосомальными комплексами, хотя и меньше, чем наблюдали в клетках, сверхэкспрессирующих PKCα. В соответствии с ожидаемым в сверхэкспрессирующих PKCδ и PKCζ кератиноциты выявили, что значительная супрессия интегрина α6β4 ассоциирована со сниженной интеграцией α6β4 с клеточными гемидесмосомальными комплексами (фиг.8). Данные результаты позволяют предположить, что интегрин α6β4 играет важную роль в ассоциации клеток с матриксом и прикреплении кератиноцитов к подлежащей базальной мембране. Кроме того, PKCδ и ζ опосредовали супрессию α6β4, инициировали открепление клеток кератиноцитов отличным от процессов дифференцировки кератиноцитов путем. Наконец, для установления связи опосредованной PKC супрессии α6β4, уменьшения интеграции α6β4 в гемидесмосомы и специфических морфологических изменений с откреплением кератиноцитов исследовали изменения количества прикрепленных и открепленных клеток, сверхэкспрессирующих в течение периода культивирования различные изоформы PKC. На фиг.9 прикрепленные клетки считали в культурах через 24 и 48 часов после инфекцией аденовирусами с PKC. Как можно ясно заметить, индуцированные и PKCδ, и PKCζ клетки утрачиваются in vitro. Параллельно потеря клеток в культуре коррелировала с увеличением клеток, плавающих в покрывающей среде. Данные результаты указывают на то, что PKCδ и PKCζ важны для контроля стадии открепления, связанной с ранними стадиями дифференцировки и миграции клеток.

ПРИМЕР 10

PKCη в физиологических условиях по-разному регулирует пролиферацию и дифференцировку кератиноцитов

Как ясно показано на фиг.7, сверхэкспрессирующие изоформу PKCη клетки пролиферируют с повышенной скоростью, от пяти до семи раз превышающей скорость у контрольных неинфицированных клеток и соответственно большей, чем в культурах кератиноцитов, сверхэкспрессирующих другие изоформы PKC. Однако индукция пролиферации зависела от стадии дифференцировки кератиноцитов, как определено посредством регуляции концентраций Ca²⁺ в среде. В пролиферирующих кератиноцитах, содержащихся при низких концентрациях Ca²⁺ (0,05 мМ), эндогенная PKCη локализовалась в перинуклеарной области большинства пролиферирующих клеток (фиг.10). В этих условиях сверхэкспрессия PKCη индуцировала существенное увеличение пролиферации кератиноцитов (фиг.11). Однако когда кератиноциты дифференцировались при повышающихся до 0,12 мМ концентрациях Ca²⁺, сверхэкспрессия PKCη не стимулировала пролиферацию, но дополнительно стимулировала дифференцировку кератиноцитов. Данные результаты позволяют предположить, что сверхэкспрессированная PKCη только индуцирует пролиферацию в пролифирирующих в физиологических условиях клетках, но не препятствует клеточной дифференцировке. Несоответствие в регуляции экспрессии PKCη также наблюдали in vivo. В активно пролиферирующей коже, а также в нервных клетках эмбриона идентифицировали экспрессию PKCη, тогда как в зрелом головном мозге взрослого не наблюдали PKCη, а в эпидермисе PKCη локализовался в гранулярном слое кожи.

ПРИМЕР 11

Сверхэкспрессия PKCη и DNPKCη специфически регулирует локализацию PKC и клеточную морфологию

Для дальнейшего подтверждения результатов, свидетельствующих о положительной роли PKCη в обеих стадиях пролиферации или дифференцировки у кератиноцитов, анализировали эффекты конструкции доминантно-негативного антивируса с неактивной киназой PKCη посредством изучения эффекта инфекции на пролиферирующие и дифференцирующиеся кератиноциты. Как видно на фиг.12, аденовирусная инфекция PKCη и DNPKCη была эффективна и на стадии пролиферации, и на стадии дифференцировки. Как и предсказано, в пролиферирующих кератиноцитах DNPKCη индуцировала дифференцировку кератиноцитов с существенным изменением клеточной морфологии, включающим в себя сглаживание клеток, потерю межклеточных связей подобно морфологическим изменениям, ассоциированным с индуцированной Ca²⁺ дифференцировкой (фиг.12A-B). Кроме того, данные изменения были ассоциированы с выключением пролиферации кератиноцитов (фиг.11) и существенной индукцией маркеров дифференцировки, включающих в себя кератин 1, кератин 10, лорикрин и филаггрин, повышенными до уровней, сходных с теми, которые присутствуют в нормальной коже in vivo (фиг.13A-B). В то же время при инициации программы дифференцировки сверхэкспрессия DNPKCη не отменяла индукцированную Ca²⁺ дифференцировку. Эти результаты позволяют предположить, что PKCη и DNPKCη можно применять для различным образом регулируемой пролиферации и дифференцировки кератиноцитов в физиологических условиях.

ПРИМЕР 12

Эксперименты in vivo

Для тестирования способности PKCη различным образом регулировать клеточную пролиферацию и дифференцировку in vivo оценивали способность PKCη индуцировать заживление полностью операционных ран, сделанных на спине голых мышей. Способность кератиноцитов экспрессировать экзогенный рекомбинантный белок подтверждали применением контрольного аденовируса с β-gal. Как можно видеть на фиг.14, через две недели после инфекции экспрессия β-gal в кератиноцитах in vitro, а также в коже in vivo сохранялась. Представляет интерес то, что когда сравнивали с контролем процесс заживления ран после локальной инфекции мышей аденовирусными конструкциями с PKCα и PKCη, только PKCη индуцировала формирование грануляционной ткани уже через четверо суток после местной инфекции. Это также включало в себя организованное формирование мышечного, жирового и дермального слоев. В то же время в контрольной и инфицированной PKCα коже не замечено конденсированной грануляционной ткани, и не наблюдали закрытия раны (фиг.14). Таким образом, PKCη можно рассматривать как первичного кандидата для регуляции пролиферации и дифференцировки кожи при индукции процессов заживления ран.

ПРИМЕР 13

Инсулин специфически индуцирует перемещение PKCδ в пролиферирующих кератиноцитах

Обнаружено, что на пролиферацию кератиноцитов влияют две изоформы PKC, продуцируемой в коже: PKCη и PKCδ. С целью испытания и идентифицирования эндогенных факторов, активирующих конкретные изоформы PKC, регулирующие пролиферацию в коже, оценивали способность некоторых факторов роста, известных как способствующие пролиферации кератиноцитов, включая сюда EGF, KGF, инсулин, PDGF и IGF1, активировать конкретные изоформы PKC зависимым от роста образом. В коже экспрессируются изоформы PKC α, δ, ε, η и ζ. Так как активация изоформ PKC ассоциирована с их перемещением в мембранные фракции, исследовали воздействие этих факторов роста на перемещение различных изоформ PKC из цитозоля в мембрану. Как видно на фиг.15, уже через 5 минут после стимуляции инсулин специфически индуцирует перемещение PKCδ из цитоплазмы в мембранные фракции. Экспрессия PKCδ на мембране сохранялась в течение нескольких часов после стимуляции инсулином. Напротив, IGF1 уменьшал экспрессию PKCδ на мембране и увеличивал ее относительный уровень экспрессии в цитоплазматической фракции. Другие факторы роста на перемещение и локализацию PKCδ значимо не влияли. Изменений в распределении других изоформ PKC после стимуляции любым из факторов роста, включающих в себя IGF1 и инсулин, не наблюдали.

ПРИМЕР 14

Инсулин специфически индуцирует активацию PKCδ в пролиферирующих кератиноцитах

С целью определения того, достаточно ли перемещения PKCδ для активации, измеряли киназную активность PKC иммунопреципитатов из цитоплазмы и мембранных фракций обработанных инсулином и IGF1 кератиноцитов. Как показано на фиг.16, инсулин, но не IGF1 увеличивал активность PKCδ в мембранной фракции. Во фракции цитоплазмы повышения активности PKCα не наблюдали. Индуцируемая инсулином активация была специфична для PKCδ, и после стимуляции инсулином в течение периода до 30 минут не наблюдали активации PKC α, ε, η или ζ. Все вместе эти результаты позволяют предположить селективную стимуляцию активации PKCδ инсулином, но не IGF1.

ПРИМЕР 15

Инсулин и IGF1 обладают аддитивным эффектом на пролиферацию кератиноцитов

С целью анализа того, играет ли специфическая активация PKCδ роль в специфическом индуцируемом инсулином митогенном пути в кератиноцитах, митогенные эффекты инсулина и IGF1 анализировали посредством изучения их способности индуцировать пролиферацию кератиноцитов, измеряемую включением тимидиновой метки. Как показано на фиг.17A, и инсулин, и IGF1 стимулировали включение тимидина зависимым от доз образом с максимальной индукцией, достигаемой при 10^-7 и 10^-8 М соответственно. При каждой концентрации максимальная стимуляция посредством IGF1 была больше, чем максимальная стимуляция инсулином. Представляет интерес то, что при всех концентрациях, когда оба гормона вводили совместно, мирогенные эффекты были аддитивными (фиг.17B). Данные результаты позволяют предположить, что инсулин регулирует пролиферацию кератиноцитов через определенный путь, не зависящий от индуцируемой IGF1 пролиферации кератиноцитов.

ПРИМЕР 16

Ассоциация между индуцированной инсулином активацией PKCδ и индуцированной инсулином пролиферацией кератиноцитов

С целью прямого изучения ассоциации между индуцированной инсулином активацией PKCδ и индуцированной инсулином пролиферацией кератиноцитов для сверхэкспрессии PKCδ дикого типа (WTPKCδ), а также доминантно-негативного мутанта PKC с неактивной киназой, препятствующей активности эндогенной PKCδ (DNPKCδ), применяли конструкции аденовирусов с рекомбинантной PKC. Изучали эффекты сверхэкспрессии WTPKCδ и DNPKCδ на индуцированную инсулином пролиферацию кератиноцитов. Обе конструкции, а также конструкция PKCα, эффективно экспрессировались в кератиноцитах (фиг.18A). Кроме того, инфекция PKCδ и PKCα индуцировала специфичную для изоформы активность PKC в несколько раз выше контрольных уровней (фиг.18B). Как и ожидали, сверхэкспрессия DNPKCδ не индуцировала активность PKC. Как можно увидеть на фиг.19A, обработка нетрансфицированных клеток инсулином или сверхэкспрессия WTPKCδ без обработки инсулином увеличивали включение тимидина приблизительно до одинаковых уровней, от двух до трех раз больших, чем в необработанных клетках или клетках, трансдуцированных посредством PKCα. Кроме того, добавление инсулина к клеткам, уже сверхэкспрессирующим WTPKCδ, не вызывало какого-либо дополнительного увеличения включения тимидина. IGF1 сходным образом увеличивал захват тимидина в неинфицированных клетках и в клетках, сверхэкспрессирующих WTPKCδ и PKCα (фиг.19A). Прямое участие PKCδ в индуцируемой инсулином пролиферации дополнительно проверяли посредством выключения активности PKCδ. Как видно на фиг.19B, базальное включение тимидина в клетки, сверхэкспрессирующие доминантно-негативную PKCδ, было незначительным, но значимо меньшим, чем включение тимидина в неинфицированные клетки. Сверхэкспрессия DNPKCδ полностью уничтожала индуцированную инсулином пролиферацию, но не воздействовала на индуцируемую IGF1 пролиферацию. Кроме того, дополнительные эффекты инсулина и IGF1 были снижены по сравнению с дополнительными эффектами одного IGF1.

ПРИМЕР 17

Специфичность активации PKCδ для опосредуемого инсулином пути

Специфичность активации PKCδ для опосредуемого инсулином пути анализировали посредством исследования эффектов PKCδ и DNPKCδ на митогенный ответ на различные факторы роста, включающие в себя: IGF1, EGF, KGF, ECGF и PDGF. Как видно на фиг.20, сверхэкспрессия DNPKCδ селективно устраняла пролиферативные эффекты, индуцируемые инсулином, но не блокировала пролиферативные эффекты любых других тестируемых факторов роста. Однако сверхэкспрессия PKCδ имитировала индуцируемую инсулином пролиферацию и не воздействовала на индуцируемую IGF1 пролиферацию. Пролиферация, индуцируемая стимуляцией посредством EGF и KGF, была увеличена (фиг.21). Эти данные указывают, что активация PKCδ инсулином опосредует пролиферацию кератиноцитов посредством пути, вовлекающего PKCδ, и что данный путь расположен выше путей передачи сигнала EGF и KGF, двух основных факторов роста, из известных как регуляторы пролиферации кератиноцитов. В итоге обнаружили, что инсулин представляет собой специфический регулятор активности PKCδ, который может быть конкретным кандидатом для регуляции пролиферации кератиноцитов, индуцируемой инсулином, EGF и KGF.

ПРИМЕР 18

Индуцируемая инсулином активность PKCδ и пролиферация кератиноцитов опосредованы транскрипционной активацией STAT3

Дополнительно охарактеризовывали роль PKCδ в передаче сигналов инсулином и обнаружили, что она вовлекает индукцию активации транскрипции, опосредуемой STAT3. Как видно на фиг.23, в первичных кератиноцитах показано, что PKCδ специфически ассоциируется с STAT3. После стимуляции инсулином PKCδ активируется и в свою очередь фосфорилирует и активирует STAT3 (фиг.24). Кроме того, ингибирование активности PKCδ фармакологическим ингибитором (ротлерин) также ингибирует активацию ядерной транслокации STAT3. Кроме того, как видно на фиг.25, сверхэкспрессия STAT3 индуцирует пролиферацию, сходную с пролиферацией, индуцируемой инсулином и сверхэкспрессией PKCδ, а ингибирование активности PKCδ сверхэкспрессией доминантно-негативного мутанта PKCδ ингибирует способность STAT3 индуцировать пролиферацию кератиноцитов. Суммарно данные результаты позволяют предположить, что инсулин и PKCδ играют роль в активации транскрипции, ассоциированной с пролиферацией кератиноцитов.

ПРИМЕР 19

PKCδ и PKCζ необходимы для процесса заживления ран in vivo

Важность изоформ PKC в процессе заживления ран in vivo устанавливали с применением нуль-мышей по конкретной изоформе PKC. Как видно на фиг.22A-B, когда делали глубокие раны на спине нуль-мышей по PKCδ, PKCζ, PKCα (нокаут, KO) и однопометных с ними животных дикого типа, замедленное заживление ран наблюдали у мышей с отсутствием PKCδ и PKCζ, но не PKCα. Эти данные указывают на то, что даже в отсутствие диабетического фона конкретные изоформы PKC необходимы для процесса заживления ран в коже.

ПРИМЕР 20

Однократное в сравнении с многократными применениями инсулина для заживления ран in vivo

На спине мышей C57BL в возрасте 8-10 недель посредством разреза делали раны и обрабатывали, как указано ниже: (i) ежедневно в течение 7 суток применяли 0,1 мкМ инсулина; (ii) ежедневно в течение 7 суток применяли 1 мкМ инсулина; (iii) ежедневно в течение 7 суток применяли 10 мкМ инсулина; (iv) 1 мкМ инсулина применяли однократно через 4 суток после нанесения ран; и (v) ежедневно в течение 7 суток применяли носитель (PBS) в качестве контроля. Всех мышей умерщвляли через семь суток после нанесения ран и измеряли их области открытых ран. Как видно на фиг.26, ежедневная обработка инсулином в концентрации 1 мкМ значимо более эффективна, чем ежедневные обработки инсулином в более низкой (0,1 мкМ) или более высокой (10 мкМ) концентрации. Неожиданно обработка одноразовым применением инсулина в концентрации 1 мкМ была значимо более эффективной, чем обработка семью ежедневными применениями инсулина в той же концентрации.

Так как наблюдаемые раны были покрыты рубцовой тканью, корректно оценить фактическое закрытие раны и формирование реконструированного эпидермиса было трудно. Поэтому эффекты инсулина на эпидермальное и дермальное закрытие раневой ткани определяли посредством гистологических параметров. Эпидермальное закрытие ран определяли окрашиванием раневых разрезов антителами к кератину 14 (K14, Babco-Convance, Richmond, CA, USA), выявлявших образование базальных клеток в раневой щели. Дермальное закрытие ран рассматривали положительным, если на обеих сторонах раны можно было наблюдать кожу в одном поле, наблюдаемом в световым микроскопе при увеличении ×100.

Как видно на фиг.27, все обработки инсулином эффективно способствовали эпидермальному и дермальному закрытию. Подобно результатам, показанным на фиг.26, ежедневная обработка инсулином в концентрации 1 была значительно более эффективной, чем ежедневная обработка инсулином в концентрациях 0,1 мкМ или 10 мкМ. Кроме того, однократное применение инсулина при концентрации 1 мкМ было значительно более эффективным, чем применение семи повторов инсулина раз в сутки в той же концентрации.

Следовательно, данные результаты ясно обосновывает терапевтическую эффективность инсулина для заживления ран in vivo, как определено морфологическими, а также гистологическими параметрами. Данные результаты неожиданно показывают, что определение оптимального количество и/или частоты применений инсулина является важной стадией для правильного лечения ран.

ПРИМЕР 21

Сочетание инсулина и тромбоцитарного фактора роста (PDGF-BB) для заживления ран in vivo

На спине мышей C57BL в возрасте 8-10 недель посредством разреза делали раны и через 4 суток после нанесения ран обрабатывали, как указано ниже: (i) носитель (PBS) в качестве контроля; (ii) 1 мкМ инсулина; (iii) 10 мкМ PDGF-BB (R&D Systems, Minneapolis, USA); и (iv) 1 мкМ инсулин + 10 мкМ PDGF-BB. Через трое суток после обработки всех мышей умерщвляли и обработанные раны анализировали гистологически на эпидермальное и дермальное закрытие, как описано в примере 20 выше.

Как видно на фиг.28, обработка или только инсулином, или только PDGF-BB была частично эффективной на эпидермальное закрытие (увеличение на 30-40% по сравнению с контролем) и на дермальное закрытие (увеличение на 10-20% по сравнению с контролем). Однако обработка совместно инсулином и PDGF-BB приводила к значительно большему эпидермальному закрытию (приблизительно на 80% больше контроля), а также дермальному закрытию (приблизительно на 60%). Таким образом, результаты показывают, что сочетание инсулина и PDGF-BB воздействует на заживление раны синергичным образом. Результаты дополнительно указывают на потенциал сочетания инсулина с другими факторами роста или трансформирующим фактором, таким как EGF, TGFβ, KGF, для терапевтического лечения ран.

ПРИМЕР 22

Сочетание инсулина и ингибитора PKCα для лечения ран in vivo

На спине мышей C57BL в возрасте 8-10 недель посредством разреза делали раны и ежедневно в течение 7 суток обрабатывали или носителем (PBS) в качестве контроля или 0,67 мкМ инсулином (HO/01; Humulin, Eli Lilly, USA) вместе с ингибитором PKCα (HO/02; миристоилированный псевдосубстрат PKCα; Calibiochem, San Diego, CA, USA). Через семь суток после нанесения ран всех мышей умерщвляли и обработанные раны анализировали на закрытие ран, эпидермальное закрытие, дермальное закрытие и пространственную дифференцировку эпидермальных клеток. Закрытие ран определяли измерением области открытой раны. Дермальное закрытие ран рассматривали положительным, если на обеих сторонах раны можно было наблюдать кожу в одном поле, наблюдаемом в световым микроскопе при увеличении ×100. Эпидермальное закрытие ран определяли окрашиванием раневых разрезов антителом к K14, выявлявшим формирование базальных клеток в раневой щели. Пространственную дифференцировку эпидермальных клеток определяли окрашиванием раневых разрезов антителом к K1, выявлявшим вновь сформированные эпителиальные клетки.

Как показано на фиг.28-32, совестное применение инсулина и (HO/01) ингибитора PKCα (HO/02) значительно активизирует закрытие ран (фиг.29A-B), дермальное закрытие (фиг.30), эпидермальне закрытие (фиг.31) и пространственную дифференцировку эпидермальных клеток (фиг.32). Как можно видеть на фиг.33, обработка инсулином HO/01 совместно с ингибитором PKCα HO/02 увеличивала эпидермальное закрытие ран приблизительно от 15 до 70%, увеличивала пространственную дифференцировку эпидермальных клеток приблизительно от 15 до 50% по сравнению с носителем в качестве контроля соответственно.

Следовательно, результаты показывают, что терапевтическое лечение ран инсулином в сочетании с ингибитором PKCα эффективно активирует эпидермальное закрытие, дермальное закрытие, пространственную дифференцировку эпидермальных клеток и последующее заживление ран.

ПРИМЕР 23

Сочетание инсулина и ингибитора PKCα преодолевает неблагоприятные побочные эффекты, вызываемые лечением только инсулином

На спине мышей C57BL в возрасте 8-10 недель посредством разреза делали раны и ежедневно в течение 7 суток обрабатывали или носителем (PBS) в качестве контроля или 1 мкМ инсулином (Humulin, Eli Lilly, USA) или смесью 1 мкМ инсулина вместе с 1 мкМ псевдосубстрата PKCα (Calibiochem, San Diego, CA, USA). Через семь суток после нанесения ран всех мышей умерщвляли и обработанные раны гистологически анализировали на пролиферативную способность эпидермиса (PCNA), ангиогенез, воспаление, эпидермальные клетки и процессы ремоделирования в раневой щели.

Как можно видеть в таблице 1 ниже, лечение только инсулином вызывало существенное увеличение частоты возникновения аномального ангиогенеза в ране по сравнению с контролем с буфером (60% и 25% соответственно). Так как процесс заживления раны включает в себя быстро пролиферирующие эпидермальные клетки, такой усиленный ангиогенез может также увеличить риск запуска развития злокачественной опухоли. С другой стороны, когда инсулин объединяли с ингибитором PKCα, ангиогенеза в области обработанной раны не наблюдали.

Таблица 1
Действие одного инсулина и инсулина в сочетании с ингибитором PKCα на интенсивность ангиогенеза в области раны Обработка Пролиферативная способность эпидермиса (слои базальных клеток, PCNA) Ангиогенез Контроль PBS (обработка PBS) n=4 5 высоко аномальный 7 нормальный 8 нормальный 6 нормальный средняя 6,5   Только инсулин n=5 8 высоко аномальный 8 нормальный 6 нормальный 5 высоко аномальный 5 высоко аномальный средняя 6,4   Инсулин + ингибитор PKCα n=5 6 нормальный 6 нормальный 4 нормальный 2 нормальный 3 нормальный средняя 4,2  

Кроме того, обработка только инсулином приводила к увеличенному воспалению, гиперплазии эпидермальных клеток, замедленной дифференцировке шиповатого слоя эпидермальных клеток и усиленному рубцеванию. Ни одного из вредных побочных эффектов, происходящих вследствие обработки только инсулином, не наблюдали, когда с инсулином сочетали ингибитор PKCα.

ПРИМЕР 24

Ингибитор PKCα уменьшает воспаление ран

Поздний и тяжелый воспалительный ответ в ранах может подавлять процесс заживления, таким образом, предотвращая развитие такого воспаления, можно способствовать процессу заживления ран. Таким образом, в следующем ниже эксперименте тестировали действие ингибитора PKCα и инсулина на воспаление ран.

На спине мышей C57BL посредством разреза делали раны и ежедневно в течение 7 суток обрабатывали: (i) PBS в качестве контроля; (ii) 1 мкМ ингибитора PKCα (миристоилированный псевдосубстрат; Calibiochem, USA); (iii) 1 мкМ инсулина (Eli Lilly, USA) или смесью 1 мкМ ингибитора PKCα и 1 мкМ инсулина. Через семь суток после нанесения ран всех мышей умерщвляли и обработанные раны обследовали на воспаление под микроскопом. Полученные в результате частоты возникновения тяжелого воспаления, наблюдаемые в области раны, обобщены в таблице 1a ниже.

Таблица 1a Обработка Частота возникновения тяжелого воспаления раны (%) Контроль PBS 60,0 Ингибитор PKCα 40,0 Инсулин 56,0 Ингибитор PKCα + инсулин 50,0

Результаты показывают, что введение в раны ингибитора PKCα вызывает существенное (33,3%) снижение частоты возникновения тяжелого воспаления раны по сравнению с контролем. Один инсулин не оказывал противовоспалительного эффекта в экспериментальных условиях.

Данные результаты указывают на то, что ингибитор PKCα можно применять в терапии для контроля тяжелого воспаления ран. Продемонстрированная способность ингибитора PKCα уменьшать воспаление, связанная с его способностью содействовать эпидермальному закрытию, дермальному закрытию и пространственной дифференцировке эпидермальных клеток (см. в примере 22 выше), делает его потенциально наиболее эффективным терапевтическим средством для заживления ран.

ПРИМЕР 25

Совместные эффекты модуляции экспрессии и/или активности конкретных изоформ PKC в дермальных клетках и введения в клетки различных средств на ускорение закрытия ран in vitro

Материалы и методы:

Реагенты: фактор D (адипсин) человека, CalbioChem, California USA; рекомбинантный мышиный TNFα, R&D Systems, Minneapolis USA; GW 9662, Cayman chemical, USA; псевдосубстратный ингибитор протеинкиназы Cα, CalbioChem, California USA; псевдосубстратный ингибитор протеинкиназы Cζ, CalbioChem, California USA; псевдосубстратный ингибитор протеинкиназы Cη, CalbioChem, California USA; PDGF-BB, Cytolab, Israel; IL-6, Cytolab, Israel; KGF/FGF-7, Cytolab, Israel; IGF-1, Cytolab, Israel; TGFβ2, Cytolab, Israel; эпидермальный фактор роста (EGF), мышь, Chemicon international, California USA; PKCdelta RACK, AnaSpec, California USA; розиглитазон, CalbioChem. California USA; адипонектин, MBL, Massachusetts USA and Copaxone®, TEVA, Israel.

Анализ закрытия ран in vitro: Кератиноциты и фибробласты (дермальные клетки) культивировали в течение пяти суток в чашках Петри (вн. диам. 5 см), затем в каждой чашке с применением 200 мкл наконечника пипетки наносили перекрестные насечки. Культивируемые клетки инфицировали аденовирусными конструкциями, способными модулировать экспрессию и/или активность конкретных изоформ PKC. Таким образом, аденовирусные конструкции с PKC дикого типа (WT) применяли для активации конкретных PKC, тогда как аденовирусные конструкции с доминантно-негативной (DN) PKC применяли для ингибирования конкретных PKC. К культивируемым клеткам дополнительно добавляли одно из следующих веществ: инсулин (6,7×10^-7 М), адипонектин (1 мкг на чашку), адипсин (2 мкг/мл), IL-6 (1 мкг на чашку), GW9662 (1 мкг на чашку), KGF (1 мкг на чашку), TNFα (12 мкг/мл), TGFβ, розиглитазон, ингибиторы SRC, PKCδ RACK (10^-7 М) и ингибирующий пептид псевдосусбстрата PKCα (10^-7 М). Полученные в результате уровни закрытия ран определяли через 24-48 часов после обработки с применением значений индекса, находящихся в диапазоне от 0 (нет закрытия) до 10 (полное закрытие).

Результаты:

Эффекты совместных обработок на закрытие ран фибробластами in vitro обобщены в таблицах 2a-b и 3a-b ниже. Результаты показывают, что ингибирование экспрессии и/или активности PKCα в фибробластах в значительной степени способствуют закрытию ран при сочетании с введением в клетки адипсина или инсулина (значения индекса закрытия ран составляют 10 и 8 соответственно). Закрытие ран также ускорялось при ингибировании в клетках фибробластов PKCα совместно с ингибированием PKCη, ингибированием PKCε, активацией PKCδ или активацией PKCζ (значения индекса закрытия ран составляют 9, 9, 9 и 7 соответственно; фиг.34A-E). Кроме того, закрытие ран ускоряло ингибирование в фибробластах PKCζ совместно с введением в клетки KFG (значения индекса закрытия ран составляют 7; фиг.36). Кроме того, дополнительно, закрытие ран ускорялось ингибированием в фибробластах PKCβ в сочетании с введением инсулина, IL-6, KGF или GW9662 (значения индекса закрытия ран составляют 8, 7, 9 и 8 соответственно; фиг.38A-E).

Таблица 2a
Эффект совместных обработок на закрытие фибробластами ран in vitro¹   Контроль Адипсин Инсулин IL-6 TGFβ KGF Ингибирование PKCα 4 10 8 3 н.о. 2 Ингибирование PKCβ 4 н.о. 8 7 1 9 Ингибирование PKCζ 2 н.о. 0 2 н.о. 7 ¹ шкала закрытия находилась в диапазоне от 0 (нет закрытия) до 10 (полное закрытие)
н.о. = не определяли  

Таблица 2b
Эффект совместных обработок на закрытие фибробластами ран in vitro¹   Адипонектин Розиглитазон GW9662 Ингибиторы SRC Ингибирование PKCα 3 5 2 3 Ингибирование PKCβ 3 3 8 2 Ингибирование PKCζ 2 2 1 1 ¹ шкала закрытия находилась в диапазоне от 0 (нет закрытия) до 10 (полное закрытие)

Таблица 3a
Эффект совместных обработок на закрытие фибробластами ран in vitro¹   Контроль Активация PKCη Ингибирование PKCη Активация PKCε Ингибирование PKCα 4 5 9 3 ¹ шкала закрытия находилась в диапазоне от 0 (нет закрытия) до 10 (полное закрытие)

Таблица 3b
Эффект совместных обработок на закрытие фибробластами ран in vitro¹   Ингибирование PKCε Активация PKCδ Активация PKCζ Ингибирование PKCζ Ингибирование PKCα 9 9 7 1 ¹ шкала закрытия находилась в диапазоне от 0 (нет закрытия) до 10 (полное закрытие)

Эффекты совместных обработок на закрытие ран кератиноцитами in vitro обобщены в таблицах 4a-b и 5a-b ниже. Результаты показывают, что ингибирование экспрессии и/или активности PKCα в кератиноцитах в значительной степени способствуют закрытию ран при сочетании с введением в клетки KGF, IL-6, TNFα или пептида PKCδ RACK (значения индекса закрытия ран составляют 6, 8, 10 и 8 соответственно; фиг.35A-C и G). Закрытие ран также усиливалось при ингибировании в кератиноцитах PKCα совместно со стимуляцией в клетках PKCη, PKCε или PKCζ (значения индекса закрытия ран составляют 10, 9 и 6 соответственно; фиг.35A, D-F и H). Кроме того, закрытию ран способствовало ингибирование в кератиноцитах PKCζ совместно с введением в клетки IL-6, TNFα или адипонектина (значения индекса закрытия ран составляют 9, 9 и 7 соответственно; фиг.37A-D). Кроме того, дополнительно, закрытие ран ускорялось стимуляцией активности и/или экспрессии в кератиноцитах PKCδ в сочетании с активацией PKCε, активацией PKCζ или ингибированием PKCα в клетках или с введением в клетки адипсина (индекс закрытия ран составляет 7, 8, 8 и 8 соответственно; фиг.39A-E).

Таблица 4b
Эффект совместных обработок на закрытие фибробластами ран in vitro¹   Розиглитазон Ингибиторы SRC PKCδ RACK Псевдосубстрат PKCα Псевдосубстрат PKCα + инсулин Инсулин н.о. н.о. 9 9 н.о. Ингибирование PKCα 2 0 8 н.о. н.о. Активация PKCδ н.о. н.о. н.о. н.о. н.о. Ингибирование PKCζ 2 0 0 н.о. н.о. ¹ шкала закрытия находилась в диапазоне от 0 (нет закрытия) до 10 (полное закрытие).
н.о. = не определено.

Таблица 5a
Эффект совместных обработок на закрытие фибробластами ран in vitro¹   Контроль Активация PKCη Ингибирование PKCη Активация PKCε Ингибирование PKCα 3 10 5 9 Ингибирование PKCδ 3 н.о. н.о. 7 ¹ шкала закрытия находилась в диапазоне от 0 (нет закрытия) до 10 (полное закрытие).
н.о. = не определено.

Таблица 5b
Эффект совместных обработок на закрытие фибробластами ран in vitro¹   Ингибирование PKCε Активация PKCζ Ингибирование PKCζ Ингибирование PKCα Ингибирование PKCα 2 6 3 - Ингибирование PKCδ 3 8 3 8 ¹ шкала закрытия находилась в диапазоне от 0 (нет закрытия) до 10 (полное закрытие).
н.о. = не определено.

Таким образом, результаты указывают, что закрытие ран можно существенно ускорить модуляцией в дермальных и эпидермальных клетках, колонизирующих область раны, экспрессии и/или активности конкретных изоформ PKC при сочетании с введением в клетки фактора роста, такого как IL-6, KGF, TNFα, гормона, такого как инсулин, адипокина, такого как адипсин или адипонектин, PKCδ RACK и/или GW9662.

ПРИМЕР 26

Введение сополимера-1 для заживления ран in vitro и in vivo

Материалы и методы:

Сополимер-1: сополимер-1 (глатирамера ацетат) представляет собой активный ингредиент лекарственного средства копаксон® (Copaxone® (Teva, Израиль)), который в клинике применяют для лечения рассеянного склероза. Сополимер-1 представляет собой синтетический полипептидный аналог основного белка миелина (MBP), являющегося природным компонентом миелиновой оболочки. Химически сополимер-1 обозначает полимер L-глютаминовой кислоты с L-аланином, L-лизином и L-тирозином, ацетатом (соль). Его структурная формула представляет собой: (Glu, Ala, Lys, Tyr) x.X CH₃COOH (C₅H₉NO₄·C₃H₇NO₂·C₆H₁₄N₂O₂·C₉H₁₁NO₃) x·x C₂H₄O₂. Средняя молекулярная масса глатирамера ацетата составляет 4700-11000 Дальтон. Его синтезируют посредством химической полимеризации четырех аминокислот, формируя продукты со средней молекулярной массой 23000 Дальтон (патент США №3849550).

Анализы in vitro: Анализы проводили по существу, как описано в примере 24 выше. Сополимер-1 добавляли к культивируемым кератиноцитам в концентрации 55 мкг на чашку, или только его самого или в сочетании с псевдосубстратом PKCα (1 мкМ) и/или инсулином (1 мкМ). Полученные уровни закрытия ран определяли через 48 часов после обработки с применением значений индекса, находящихся в диапазоне от 0 (нет закрытия) до 10 (полное закрытие).

Анализы in vivo: На спине мышей C57BL посредством разреза делали раны (20 мм) и через 4 суток после нанесения ран обрабатывали, как указано ниже: (i) носитель (PBS) в качестве контроля; (ii) сополимер-1 (55 мкг/мл); (iii) смесь сополимера-1 (55 мкг/мл) и инсулина (1 мкМ); (iv) смесь ингибирующего пептида псевдосубстрата PKCα (1 мкМ) и инсулина (1 мкМ); и (v) смесь сополимера-1 (55 мкг/мл), ингибирующего пептида псевдосубстрата PKCα (1 мкМ) и инсулина (1 мкМ). Раны морфологически анализировали на (i) закрытие ран, (ii) формирование рубца и (iii) кровотечение/выделение из ран.

Результаты:

Анализы in vitro: Введение сополимера-1 в культивируемые кератиноциты обеспечивало закрытие ран in vitro до значения индекса 8 по шкале от 0 (нет закрытия) до 10 (полное закрытие). Сочетание сополимера-1 с ингибирующим пептидом псевдосубстрата PKCα или со смесью из ингибирующего пептида псевдосубстрата PKCα и инсулина приводило к сходным эффектам (значения индекса закрытия ран составляют 8 и 9 соответственно; фиг.40A-F). Таким образом, результаты указывают, что сополимер-1 способен существенно ускорять закрытие ран in vitro самостоятельно.

Анализы in vivo: Введение в резаные раны сополимера-1, одного или в сочетании с инсулином и/или с псевдосубстратом PKCα, по сравнению с необработанным контролем значительно уменьшало область раневой щели и ускоряло формирование рубца в ранах. Кроме того, все обработки с сополимером-1 эффективно предотвращали кровотечение и выделение в области раны.

Таким образом, результаты указывают, что введение в область раны эффективного количества сополимера-1, одного или в сочетании с инсулином и/или ингибирующим пептидом псевдосубстрата PKCα, может значительно ускорить процесс заживления раны.

ПРИМЕР 27

Влияние секретируемых тимусом веществ на процесс заживления раны

Материалы и методы:

На верхней части спины (рядом с шеей) нормальных взрослых грызунов и мышей с STZ-диабетом проводили раневые разрезы. Животных умерщвляли через 7 или 9 суток после обработки и раны гистологически анализировали на влияние присутствия тимуса рядом с раной и эпидермальное и дермальное закрытие ран с применением процедуры окрашивания, как описано в примере 20 выше.

Результаты:

Как можно видеть на фиг.42A-H, присутствие тимуса в непосредственной близости от раневой щели коррелировало с ускоренной эпителизацией, грануляцией ткани и рубцовым сморщиванием кожи в ранах. Данные наблюдения указывают на то, что тимус секретировал вещества, которые могут эффективно содействовать процессу заживления ран. Таким образом, происходящие из тимуса вещества, такие как тимозин, бета-тимозины (например, тимозин бета 4, тимозин бета 10, тимозин бета 9; тимозин бета 12, тимозин бета 14), альфа-тимозины (например, тимозин альфа, 1/ задаксин, протимозин альфа, паратимозин альфа), тимулин, IGFI, IGFII, NGF, соматостатин, тироглобулин, паратиреоидный гормон и/или тимические гормональные пептиды (THP), можно применять в лечении для ускорения процесса заживления ран.

Необходимо понимать, что определенные отличительные признаки изобретения, которые для ясности описаны в контексте отдельных вариантов осуществления изобретения, также можно определять в сочетании в одном из вариантов осуществления. Наоборот, различные отличительные признаки изобретения, которые для ясности описаны в контексте одного варианта изобретения, можно также определять отдельно или в любой пригодной субкомбинации.

Хотя изобретение описано в связи с его конкретными вариантами осуществления, понятно, что специалистам в данной области очевидны множество альтернатив, модификаций и вариаций. Таким образом, следует рассматривать все такие альтернативы, модификации и вариации, которые попадают в пределы сущности и основного объема приложенной формулы изобретения. Все указанные в данном описании публикации, патенты, патентные заявки полностью включены в данную заявку в качестве ссылки, до такой же степени, как если бы каждая отдельная публикация, каждый патент, каждая патентная заявка были конкретно и индивидуально указаны для включения сюда в качестве ссылки. Кроме того, цитирование или обозначение в данной заявке любой ссылки, не следует рассматривать как допущение того, что такая ссылка доступна как известный для данного изобретения уровень техники.

ЦИТИРУЕМЫЕ ССЫЛКИ ПО НОМЕРАМ

(Дополнительные ссылки процитированы в тексте)

1. Hennings, H., Michael, D., Cheng, С., Steinert, P., Holbrook, K., and Yuspa, S.H. Calcium regulation of growth and differentiation of mouse epidermal cells in culture. Cell, 19: 245-254, 1980.

2. Yuspa, S.H., Kilkenny, A.E., Steinert, P.M., and Roop, D.R. Expression of murine epidermal differentiation markers is tightly regulated by restricted extracellular calcium concentrations in vitro. J.Cell Biol., 109; 1207-1217, 1989.

3. Fuchs, E. Epidermal differentiation: the bare essentials. J.Cell Biol., 777: 2807-2814, 1990.

4. Yuspa, S.H. The pathogenesis of squamous cell cancer: lessons learned from studies of skin carcinogenesis-Thirty-third G.H.A. Clowes Memorial Award Lecture. Cancer Res., 54: 1178-1189, 1994.

5. Hennings, H. and Holbrook, K.A. Calcium regulation of cell-cell contact and differentiation of epidermal cells in culture. An ultrastructural study. Exp. Cell Res., 143: 127-142, 1983.

6. Tennenbaum, Т., Li, L., Belanger, A.J., De Luca, L.M., and Yuspa, S.H. Selective changes in laminin adhesion and α6β4 integrin regulation are associated with the initial steps in keratinocyte maturation. Cell Growth Differ., 7: 615-628, 1996.

7. Tennenbaum, Т., Belanger, A.J., Quaranta, V., and Yuspa, S.H. Differential regulation of integrins and extracellular matrix binding in epidermal differentiation and squamous tumor progression. J.Invest. Dermatol., 7: 157-161, 1996.

8. Nishizuka, Y. The molecular heterogeneity of PKC and its implications for cellular regulation. Nature, 334: 661-665, 1988.

9. Nishizuka, Y. The family of protein kinase С for signal transduction. JAMA, 262: 1826-1833, 1989.

10. Denning, M.F., Diugosz, A.A., Williams, E.K., Szallasi, Z., Blumberg, P.M., and Yuspa, S.H. Specific protein kinase С isozymes mediate the induction of keratinocyte differentiation markers by calcium. Cell Growth Differ., 6: 149-157, 1995.

11. Diugosz, A.A., Pettit, G.R., and Yuspa, S.H. Involvement of Protein kinase С in Ca²⁺-mediated differentiation on cultured primary mouse keratinocytes. J.Invest. Dermatol., 94: 519-519, 1990.(Abstract)

12. Diugosz, A.A. and Yuspa, S.H. Coordinate changes in gene expression which mark the spinous to granular cell transition in epidermis are regulated by protein kinase C. J.Cell Biol., 120: 217-225, 1993.

13. Kuroki, Т., Kashiwagi, M., Ishino, К., Huh, N., and Ohba, M. Adenovirus-mediated gene transfer to keratinocytes-a review. J.Investig. Dermatol. Symp.Proc., 4: 153-157, 1999.

14. Rosenfeld, M.A., Siegfried, W., Yoshimura, K., Yoneyama, K., Fukayama, M., Stier, L.E., Paakko, P.K., Gi, P., Stratford-Perricaudet, M., Jallet, J., Pavirani, A., Lecocq, J.P., and Crystal, R.G. Adenovirus-mediated transfer of a recombinant al-antitrypsin gene to the lung epithelium in vivo. Science, 252: 431-434, 1991.

15. Setoguchi, Y., Jaffe, H.A., Danel, C., and Crystal, R.G. Ex Vivo and in vivo gene transfer to the skin using replication-deficient recombinant adenovirus vectors. J.Invest. Dermatol., 702: 415-421, 1994.

16. Greenhaigh, D.A-, Rothnagel, J.A., and Roop, D.R.Epidermis: An attractive target tissue for gene therapy. J.Invest. Dermatol., 103: 63S-69S, 1994.

17. Miyake, S., Makimura, M., Kanegae, Y., Harada, S., Sato, Y., Takamori, K., Tokuda, C., and Saito, I. Efficient generation of recombinant adenoviruses using adenovirus DNA-terminal protein complex and a cosmid bearing the full-length virus genome. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A., 93: 1320-1324, 1996.

18. Diugosz, A.A., Glick, A.B., Tennenbaum, Т., Weinberg, W.C., and Yuspa, S.H. Isolation and utilization of epidermal keratinocytes for oncogene research. In: P.K.Vogt and I.M.Verma (eds.). Methods in Enzymology, pp.3-20, New York: Academic Press. 1995.

19. Ohba, M., Ishino, K., Kashiwagi, M., Kawabe, S., Chida, K., Huh, N.H., and Kuroki, T. Induction of differentiation in normal human keratinocytes by adenovirus-mediated introduction of the eta and delta isoforms of protein kinase C. Mol. Cell Biol., 18: 5199-5207, 1998.

20. Weinstein, M.L. Update on wound healing: a review of the literature. Mil.Med., 163: 620-624, 1998.

21. Singer, A.J. and dark, R.A. Cutaneous wound healing. N.Engl.J.Med., 341: 738-746, 1999.

22. Whitby, D.J. and Ferguson, M.W. Immunohistochemical localization of growth factors in fetal wound healing. Dev.Biol., 147: 207-215, 1991.

23. Kiritsy, C.P., Lynch,.В., and Lynch, S.E. Role of growth factors in cutaneous wound healing: a review. Crit.Rev.Oral Biol.Med., 4: 729-760, 1993.

24. Andresen, J.L., Ledet, Т., and Ehlers, N. Keratocyte migration and peptide growth factors: the effect of PDGF, bFGF, EGF, IGF-I, aFGF and TGF-beta on human keratocyte migration in a collagen gel. Curr.Eye Res., 16: 605-613, 1997.

25. Werner, S., Breeden, M., Hubner, G., Greenhaigh, D.G., and Longaker, M.T. Induction of keratinocyte growth factor expression is reduced and delayed during wound healing in the genetically diabetic mouse. J.Invest. Dermatol., 103: 469-473, 1994.

26. Threadgill, D.W., Diugosz, A.A., Hansen, L.A., Tennenbaum, Т., Lichti, U., Yee, D., LaMantia, C., Mourton, Т., Hen-up, K., Harris, R.C., Barnard, J.A., Yuspa, S.H., Coffey, RJ., and Magnuson, T. Targeted disruption of mouse EGF receptor: effect of genetic background on mutant phenotype. Science, 269: 230-234, 1995.

27. Osada, S., Mizuno, К., Theo, T.C., Akita, Y., Suzuki, K.., Kuroki, Т., and Ohno, S. A phorbol ester receptor/protein kinase, nPKCn, a new member of the protein kinase С family predominantly expressed in lung and skin. J.Biol.Chem., 265: 22434-22440, 1990.

28. Chida, K., Sagara, H., Suzuki, Y., Murakami, A., Osada, S., Ohno, S., Hirosawa, K., and Kuroki, T. The η isoform of protein kinase С is localized on rough endoplasmic reticulum. Mol.Cell BioL, 14: 3782-3790, 1994.

29. Knighton, D.R. and Fiegel, V.D. Growth factors and comprehensive surgical care of diabetic wounds. Curr. Opin. Gen. Surg.,: 32-9:32-39, 1993.

30. Shaw, J.E. and Boulton, A.J. The pathogenesis of diabetic foot problems: an overview. Diabetes, 46 Suppl 2: S58-61: S58-S611997.

31. Coghlan, M.P., Pillay, T.S., Tavare, J.M., and Siddle, K. Site-specific anti-phosphopeptide antibodies: use in assessing insulin receptor serine/threonine phosphorylation state and identification of serine-1327 as a novel site of phorbol ester-induced phosphorylation. Biochem. J., 305: 893-899, 1994.

32. Grunfeld, C. Diabetic foot ulcers: etiology, treatment, and prevention. Adv. Intern. Med., 37:103-32: 103-132, 1992.

33. Reiber, G.E., Lipsky, B.A., and Gibbons, G.W. The burden of diabetic foot ulcers. Am.J.Surg., 176: 5S-10S, 1998.

34. Wertheimer, E., Trebicz, M., Eldar, Т., Gartsbein, M., Nofeh-Mozes, S., and Tennenbaum, T. Differential Roles of Insulin Receptor and Insulin-Like Growth Factor-1 Receptor in Differentiation of Murine Skin Keratinocytes. J.Invest. Dermatol., in press: 2000.

35. Gschwendt, M. Protein kinase С delta. Eur.J.Biochem., 259: 555-564, 1999.

36. Bajou, К., Noel, A., Gerard, R.D., Masson, V., Bmnner, N., Holst-Hansen, C., Skobe, M., Fusenig, N.E., Carmeliet, P., Collen, D., and Foidart, J.M. Absence of host plasminogen activator inhibitor 1 prevents cancer invasion and vascularization. Nat.Med., 4: 923-928, 1998.

37. Alessenko, A., Khan, W.A., Wetsel, W.C., and Hannun, Y.A. Selective changes in protein kinase C isoenzymes in rat liver nuclei during liver regeneration. Biochem. Biophys. Res. Commun., 182: 1333-1339, 1992.

38. Soltoff, S.P. and Toker, A. Carbachol, substance P, and phorbol ester promote the tyrosine phosphorylation of protein kinase Cδ in salivary gland epithelial cells. J.Biol.Chem., 270: 13490-13495, 1995.

39. Mischak, H,, Pierce, J.H., Goodnight, J., Kazanietz, M.G., Blumberg, P.M., and Mushinski, J.F. Phorbol ester-induced myeloid differentiation is mediated by protein kinase C-α and -δ and not by protein kinase C-βII, -ε, -zeta and eta. J.Biol.Chem., 268: 20110-20115, 1993.

40. Sun, Q., Tsutsumi, К., Kelleher, M.B., Pater, A., and Pater, M.M. Squamous metaplasia of normal and carcinoma in situ of HPV 16-immortalized human endocervical cells. Cancer Res., 52: 4254-4260, 1992.

41. Mischak, H., Goodnight, J., Kolch, W., Martiny-Baron, G., Schaechtle, C., Kazanietz, M.G., Blumberg, P.M., Pierce, J.H., and Mushinski, J.F. Over-expression of protein kinase C-δ and -ε in NIH 3T3 cells induces opposite effects of growth, morphology, anchorage dependence, and tumorigenicity. J.Biol.Chem., 268: 6090-6096, 1993.

42. Braiman, L., Alt, A., Kuroki, Т., Ohba, M., Bak, A., Tennenbaum, Т., and Sampson, S.R. Protein kinase Cdelta mediates insulin-induced glucose transport in primary cultures of rat skeletal muscle. Mol. Endocrinol., 13: 2002-2012, 1999.

43. Braiman, L., Sheffi-Friedman, L., Bak, A., Tennenbaum, Т., and Sampson, S.R. Tyrosine phosphorylation of specific protein kinase С isoenzymes participates in insulin stimulation of glucose transport in primary cultures of rat skeletal muscle. Diabetes, 48: 1922-1929, 1999.

44. Bandyopadhyay, G., Standaert, M.L., Kikkawa, U., Ono, Y., Moscat, J., and Farese, R.V. Effects of transiently expressed atypical (zeta, lambda), conventional (alpha, beta) and novel (delta, epsilon) protein kinase С isoforms on insulin-stimulated translocation of epitope-tagged GLUT4 glucose transporters in rat adipocytes: specific interchangeable effects of protein kinases C-zeta and C-lambda. Biochem.J, 337: 461-470, 1999.

45. Formisano, P., Oriente, F., Miele, C., Caruso, M., Auricchio, R., Vigliotta, G., Condorelli, G., and Beguinot, F. In NIH-3T3 fibroblasts, insulin receptor interaction with specific protein kinase C isoforms controls receptor intracellular routing. J.Biol.Chem., 273: 13197-13202, 1998.

46. Wang, Q.J., Bhattacharyya, D., Garfield, S., Nacro, K., Marquez, V.E., and Blumberg, P.M. Differential localization of protein kinase С delta by phorbol esters and related compounds using a fusion protein with green fluorescent protein. J.Biol.Chem., 274: 37233-37239, 1999.

Изобретение относится к медицине и может быть использовано для лечения повреждений кожи или кожных ран. Для этого местно вводят сополимер-1 в эффективной для этого дозе. Предложена также фармацевтическая композиция для местного введения, содержащая сополимер-1. Изобретение способствует быстрому закрытию ран, ускорению образования рубца. 2 н. и 23 з.п.ф-лы, 43 ил., 10 табл.

1. Способ индукции или ускорения процесса заживления поврежденной кожи или кожной раны, включающий введение в поврежденную кожу или кожную рану терапевтически эффективного количества сополимера-1.

2. Способ по п.1, где указанное введение проводят в виде однократного применения.

3. Способ по п.1, где указанное терапевтически эффективное количество сополимера-1 представляет собой концентрацию сополимера-1, находящуюся в диапазоне от 1 до 500 мкг/мл.

4. Способ по п.1, включающий дополнительное введение в поврежденную кожу или кожную рану терапевтически эффективного количества ингибитора РКСα или смеси ингибитора РКСα и инсулина вместе с указанным сополимером-1.

5. Способ по п.4, включающий введение в поврежденную кожу или кожную рану терапевтически эффективных количеств сополимера-1 и ингибитора РКСα.

6. Способ по п.5, включающий введение в поврежденную кожу или кожную рану терапевтически эффективных количеств сополимера-1 и ингибитора РКСα N-миристоилированного пептида псевдосубстрата РКСα.

7. Способ по п.4, включающий введение в поврежденную кожу или кожную рану терапевтически эффективных количеств сополимера-1, инсулина и N-миристоилированного пептида псевдосубстрата РКСα.

8. Способ по п.7, где инсулин является рекомбинантным или имеет природное происхождение.

9. Способ по п.7, где указанное терапевтически эффективное количество инсулина представляет собой концентрацию инсулина, находящуюся в диапазоне от 0,1 до 10 мкМ.

10. Способ по любому из пп.1-9, где указанная рана выбрана из группы, состоящей из язвы, раны, связанной с диабетом, ожога, солнечного ожога, застарелой раны кожи, раны при буллезном эпидермолизе, кожно-нарывной раны, псориатической раны, раны кожи животного, диабетической раны животного, рваной раны, раны хирургического разреза и послеоперационной спаечной раны.

11. Способ по п.10, где указанная язва выбрана из группы, состоящей из диабетической язвы, пролежня, венозной язвы.

12. Способ по любому из пп.1-3, где указанный сополимер-1 содержится в фармацевтической композиции, адаптированной для местного введения.

13. Способ по любому из пп.4-9, где указанный сополимер-1 и N-миристоилированный пептид псевдосубстрата РКСα или сополимер-1 и смесь N-миристоилированного пептида псевдосубстрата РКСα и инсулина содержатся в фармацевтической композиции, адаптированной для местного введения.

14. Способ по п.12, где указанная фармацевтическая композиция выбрана из группы, состоящей из водного раствора, геля, крема, пасты, примочки, аэрозоля, суспензии, порошка, коллоидного раствора, бальзама и мази.

15. Способ по п.13, где указанная фармацевтическая композиция выбрана из группы, состоящей из водного раствора, геля, крема, пасты, примочки, аэрозоля, суспензии, порошка, коллоидного раствора, бальзама и мази.

16. Способ по п.14 или 15, где указанная фармацевтическая композиция включает твердую основу.

17. Фармацевтическая композиция для местного применения для индукции или ускорения процесса заживления поврежденной кожи или кожной раны, содержащая терапевтически эффективное количество сополимера-1, и фармацевтически приемлемый носитель.

18. Фармацевтическая композиция по п.17, где указанную фармацевтическую композицию вводят посредством однократного применения.

19. Фармацевтическая композиция по п.17, где указанное терапевтически эффективное количество сополимера-1 представляет собой концентрацию сополимера-1, находящуюся в диапазоне от 1 до 500 мкг/мл.

20. Фармацевтическая композиция по п.17, дополнительно содержащая ингибитор РКСα или смесь ингибитора РКСα и инсулина.

21. Фармацевтическая композиция по п.20, содержащая сополимер-1 и ингибитор РКСα.

22. Фармацевтическая композиция по п.21, содержащая сополимер-1 и ингибитор РКСα N-миристоилированный пептид псевдосубстрата РКСα.

23. Фармацевтическая композиция по п.21, содержащая сополимер-1, инсулин и ингибитор РКСα N-миристоилированный пептид псевдосубстрата РКСα.

24. Фармацевтическая композиция по п.23, где указанный инсулин является рекомбинантным или имеет природное происхождение.

25. Фармацевтическая композиция по п.23, где указанное терапевтически эффективное количество инсулина представляет собой концентрацию инсулина, находящуюся в диапазоне от 0,1 до 10 мкМ.