СПОСОБ ИЗГОТОВЛЕНИЯ МАТРИКСА ДЛЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ И РАЗМНОЖЕНИЯ КЛЕТОЧНОЙ МАССЫ Российский патент 2011 года по МПК C12N15/71 B82B3/00 

Описание патента на изобретение RU2413000C1

Изобретение относится к области биотехнологии и может быть использовано в различных разделах медицины при внедрении современных нанобиоматериалов в качестве трехмерных матриксов для клеточных и тканевых культур. Наращивание клеточной массы в культуре in vitro является необходимым этапом многих исследований. В частности, для доклинических испытаний новых лекарственных препаратов, ряда физических воздействий на клетки, биотехнологических целей и других. Ряд клеточных культур являются адгезивными, а именно формируют тонкие слои на подложках (полистирол, стекло и другие) толщиной несколько десятков микрон. Кинетика роста таких клеточных культур зависит от многих составляющих, в том числе от состава питательной среды, температуры, адгезивных свойств полимера, плотности посева и других. Традиционно в последние 10-летия для культивирования указанных клеток используют культуральные флаконы, многолуночные культуральные планшеты, роллерные бутыли и др. Лимит культивирования в этих условиях 5-7 дней обусловлен несколькими причинами. Во-первых, ограниченной площадью поверхности культивирования, что ведет к быстрому заселению ее клетками и снижению их пролиферативной активности вследствие контактного торможения. Во-вторых, истощением питательной среды, что также приводит к торможению деления клеток. Приведенные причины (контактное торможение и истощение питательной среды) обуславливают необходимость периодического рассеивания клеток с использованием новой культуральной посуды и новой питательной среды. Таким образом, наращивание адгезивной клеточной культуры традиционным способом in vitro - длительная, дорогостоящая многоэтапная манипуляция. Размножение клеток в роллерных бутылях (с постоянной ротацией) вряд ли можно отнести к физиологическим способам, поскольку в таком случае могут нарушаться все пространственно-организованные процессы в клетках, в норме протекающие при постоянном воздействии на клетки земной гравитации. Одновременно такой способ позволяет за один пассаж нарастить значительную клеточную массу вследствие исходно бóльшей площади культуральной поверхности в сравнении с флаконами и сократить расход питательной среды. Кроме того, клеточные культуры, полученные в приповерхностных слоях, нельзя считать полными аналогами роста подобных клеток в организме, где клетки растут, существуют и делятся в объеме, формируя ткани, что генетически обусловлено.

Многие исследователи для культивирования клеточной массы используют микропорошки различных веществ, в частности кремнезема (SiO2). Известны различные способы приготовления микропорошков кремнезема для культивирования и размножения клеточной массы и устройства для их реализации [1-5]. Авторы работы [1] предлагают наносить на традиционно используемую культуральную поверхность пленку из коллоидного аморфного кремнезема толщиной <100 нм, которая обеспечивает хорошую смачиваемость и адгезивность для клеточных культур и, как следствие, высокую скорость их роста, более длительный рост культур (до контактного торможения) благодаря развитой поверхности. Однако такую пленку нельзя отнести к полностью биоинертным (так как она содержит биоактивные группы Si-OH). Кроме того, сами авторы отмечают, что пленка частично растворима в культуральной среде (неконтролируемый процесс), что ведет к обогащению микроокружения клеток кремнием. Следует отметить, что, несмотря на развитую поверхность пленки, культивирование клеток происходит в тонком слое и, таким образом, его продолжительность ограничивается контактным торможением, что требует замены культуральной посуды и среды культивирования.

Авторами работ [2, 3] патентуется материал для покрытия культуральной поверхности (полимерного носителя) в виде тонкого слоя оксида кремния, оксида алюминия, оксида магния или оксида железа путем вакуумного испарения или распыления, что улучшает условия культивирования и пролиферацию клеток. Хотя продолжительность культивирования (равно, как и количество наращиваемых за 1 пассаж клеток) увеличивается, но время культивирования (продолжительность пассажа до рассева клеток, замены посуды и среды) будет ограничено контактным торможением при заселении тонкого слоя на поверхности.

Авторами работы [4] патентуется технология получения макропористых гранул (бусин) из хитозана (диаметр пор - 30-150 мкм) как матриксов для культивирования клеток. Гранулы обладают развитой адгезивной поверхностью, к которой легко прикрепляются клетки. Большой размер пор позволяет клеткам заселяться в них и обеспечивает диффузию питательных веществ. Через поры может идти ангиогенез, хитозан не является биоинертным материалом. Биоактивность хитозана обусловлена тем, что в его основе лежит N-ацетил глюкозамин - углеводная составляющая внеклеточной основы костной и хрящевой тканей. Поэтому гранулы хитозана, как матриксы, ограниченно пригодны для наращивания в объеме адгезивных клеточных культур. Так, сами авторы предлагают использовать пористые хитазановые гранулы в качестве матриксов для стволовых клеток, в частности для исследования их дифференцировки в хондро- и остеогенном направлениях.

Аналогом заявляемого изобретения является изобретение [5] «Носитель для клеток», состоящий из микрочастиц кремнезема (SiO2) или алюмосиликата величиной 8 мкм (5-15 мкм), спеченных друг с другом при температуре 900°С в более крупные микрочастицы (агрегаты), размером 190 мкм (125-250 мкм), которые таким образом содержат от 30 до 110 более мелких микрочастиц. Такие микрочастицы (агрегаты) авторы предлагают использовать в качестве поверхности для роста клеток в объеме питательной среды. Таким образом, в изобретении [7] представлены особенности формирования клеточной массы и устройство, включающее культуральный объем, содержащий питательный раствор, клеточную культуру и микрочастицы кремнезема. В зависимости от целей исследования спеченные микрочастицы предлагается покрывать разными полимерами: агаром, альгинатом, декстраном, желатином, гликогеном, пектином, хитозаном, деацетилированным хитозаном. Предполагается, что толщина слоя полимера на поверхности микрочастиц должна быть в пределах 1-30 молекул. Предпочтительно использовать нерастворимые полимеры с 1 ОН- и 1 NH3+ группами. В данном изобретении (в сравнении с заявляемыми способом и устройством) есть ряд особенностей (недостатков). Прежде всего - нерегулярность структуры и формы мелких микрочастиц (5-15 мкм), из которых спечены более крупные микрочастицы (агрегаты), а именно нестандартизируемость их структуры и формы (что отмечают и сами авторы). Последнее относится и к спеченным из микрочастиц агрегатам. Кроме того, процесс спекания частиц при 900°С ведет к частичному остеклению их поверхности, следствием чего является формирование плотной иррегулярной упаковки микрочастиц с относительно гладкой (неразвитой) поверхностью. Высокая плотность агрегатов подтверждается и самими авторами: 1,1-1, 6, а именно варьирует в широких пределах и своем верхнем пределе (1, 6) существенно выше, чем у H2O. В результате агрегаты образуют плотный слой на дне культуральной посуды, что препятствует эффективному всестороннему заселению этих микрочастиц клетками, хотя авторы отмечают, что на агрегатах микрочастиц встречаются щели и выемки.

Наиболее близким аналогом (прототипом) заявляемого изобретения является способ изготовления матрикса с использованием микропорошков кремнезема (опаловых матриц и гейзерита- композита на основе кремнезема, являющегося природным аналогом опаловых матриц) для культивирования клеток [6, 7], включающий использование для этого образцов нанокомпозитов в виде упорядоченных упаковок наносфер SiO2, их дробление и рассеивание для выделения размеров 5-40 мкм, а также термообработку на воздухе и в вакууме. Однако микропорошки кремнезема, подготовленные по указанному в этих работах способу не меняют своих форм и размеров в процессе формирования двухфазной клеточной структуры, что приводит к замедлению и полному прекращению процесса клеточного роста из-за прекращения доступа питательного раствора к растущей клеточной массе. Используемое устройство не позволяет компенсировать дефицит микрочастиц опаловых матриц и гейзерита по формам и размерам, требуемым для поддержания процесса формирования двухфазной клеточной системы.

Патентуется способ изготовления матрикса для культивирования и размножения клеточной массы с использованием микропорошков кремнезема. Способ разработан с целью реализации в питательном растворе (культуральной среде) длительного по продолжительности процесса культивирования клеточной массы и получения ее больших объемов в виде пространственно разделенных двухфазных конгломератов размерами 0,05-1 мм, состоящих из упорядоченно расположенных клеток и микрочастиц кремнезема.

Предлагаемый способ основан на использовании микропорошков кремнезема для культивирования и размножения в культуральной среде клеточной массы, для чего включает применение нанокомпозитов в виде упорядоченных упаковок наносфер SiO2, их дробление и рассеивание для выделения размеров 5-40 мкм, предварительную термообработку микропорошка кремнезема на воздухе при температурах 750-850°С в течение 40-60 минут, при скорости изменения температуры в интервале 150-200 градусов/ч; термообработку в вакууме при температуре 300-350°С, давлении 0,1-0,5 Па, в течение 80-120 минут. В качестве упорядоченных упаковок наносфер SiO2 используют синтетические опаловые матрицы с размером наносфер 250-400 нм и нанопор 150-300 нм. В качестве упорядоченных упаковок наносфер SiO2 используют природные минералы из кремнезема с опалоподобной структурой, например гейзерит с размером наносфер 0,3-4 мкм и нанопор 0,5-4 мкм.

На фиг.1-6 представлены данные, иллюстрирующие особенности микропорошков из микрочастиц кремнезема (SiO2) и их взаимодействия с клеточной средой, в частности фиг.1. Частицы нанокомпозита - опаловой матрицы из упорядоченных упаковок наносфер SiO2 (растровая электронная микроскопия), составляющие микропорошок кремнезема; фиг.2. Строение поверхности нанокомпозита - опаловой матрицы - упорядоченных упаковок наносфер SiO2 (растровая электронная микроскопия); фиг.3. Культивирование фибробластов человека на микрочастицах опаловых матриц разных размеров (7 сутки). Увеличение: левый снимок х8, правый снимок х32; фиг.4. Разрыхление упорядоченных упаковок наносфер SiO2 в микрочастицах при их культивировании in vitro с фибробластами человека, 14 день культивирования (растровая электронная микроскопия); фиг.5. Структура сфероида из фибробластов человека и микрочастиц опаловых матриц (14 день культивирования; гематоксилин-эозин); фиг.6. Общий вид (растровая электронная микроскопия) отдельных объемных структур двухфазной системы клеточная биологическая масса + гейзерит: 28 дней и 60 дней культивирования.

В основе лежит разработанная ранее авторами технология получения объемных нанокомпозитов с регулируемыми размерами наносфер SiO2 в упорядоченных упаковках, в которых сферические наночастицы SiO2 имеют соприкосновение, близкое к точечному, что обеспечивает при определенных условиях увеличение скорости их дезинтеграции.

Преимущества предлагаемого изобретения. Предлагаемое изобретение - способ изготовления матрикса с использованием микропорошков кремнезема для культивирования и размножения клеточной массы:

- позволяет получить длительный по продолжительности процесс культивирования клеточной массы и поучения ее в большом объеме в виде пространственно разделенных двухфазных конгломератов размерами 0,05-1 мм, состоящих из упорядоченно расположенных клеток и микрочастиц кремнезема в культуральном объеме;

- использует для адгезии биоинертный материал - микрочастицы из упакованных наносфер SiO2, который не модифицирует и не трансформирует клетки;

- позволяет по мере формирования объемных (клеточно-опаловых конгломератов) добавлять дополнительные микрочастицы кремнезема и питательную среду без замены культуральной посуды, а следовательно, увеличивать объем, в котором культивируются и формируют сфероиды клетки, продолжать процесс наращивания клеточной массы без их перепассирования;

- позволяет легко заменять использованную питательную среду в культуральной посуде на свежую и в малом культуральном объеме за 1 месяц наращивать в 2-3 раза больше клеточной массы;

- позволяет технологически просто получать из двухфазных конгломератов одноклеточную суспензию традиционным способом (трипсинизацией).

Технический результат предлагаемого способа заключается не только в значительном повышении эффективности процесса выращивания клеток, но и в расширении областей применения подобных материалов в медицине: имплантаты жизненно важных органов; трансплантация клеток; трансдермальные или имплантируемые системы с контролируемым и регулируемым выходом биологически активных веществ; изделия с «памятью формы» для ортопедии и сердечно-сосудистой хирургии; биосенсоры; различные биотехнологические способы сепарации, очистки и идентификации биологических объектов на молекулярном и клеточном уровнях.

Примеры реализации предлагаемого способа

Микропорошки кремнезема для культивирования и размножения клеточной массы подготавливают дроблением массивных объемных образцов нанокомпозитов опаловых матриц (в качестве упорядоченных упаковок наносфер SiO2 используют синтетические опаловые матрицы с размером наносфер 250-400 нм и нанопор 150-300 нм, а также природные минералы из кремнезема с опалоподобной структурой, например гейзерит с размером наносфер 0,3-4 мкм и нанопор 0,5-4 мкм), рассеиванием полученного после дробления порошка для выделения размеров 5-40 мкм, предварительной термообработкой микропорошка кремнезема на воздухе при температурах 750-850°С в течение 40-60 минут при скорости изменения температуры в интервале 150-200 градусов/ч; термообработкой в вакууме при температуре 300-350°С, давлении 0,1-0,5 Па в течение 80-120 минут. Перед началом исследований образцы частиц микропорошка кремнезема тщательно (до 6 раз) отмывали в дистиллированной воде в объеме 50 мл: 1 г с последующим их спонтанным осаждением и высушиванием (150°С). Данную операцию повторяли дважды, далее образцы стерилизовали в сухожаровом шкафу (160°С, 120 мин).

Рост клеток с использованием частиц микропорошка кремнезема исследовали в 24-х луночных культуральных планшетах (Costar, США). При проведении экспериментов в планшеты помещали заранее подготовленные стерильные материалы (200 мг на лунку) и вносили по 1 мл ростовой среды для (и до) полного их насыщения культуральной жидкостью (не менее 4-х часов инкубации при 37°С в стерильных условиях). Особенности строения структуры «частицы микропорошка кремнезема - адгезивная культура клеток» in vitro, а также оценка адгезивных свойств, острой цитотоксичности опаловых матриксов и динамики нарастания на них клеток изучали на модели иммортализованных фибробластов человека (ФЧ, клон №1608, Медико-генетический научный центр РАМН). Клеточную линию поддерживали в полной ростовой среде следующего состава: среда ДМЕМ, 10% эмбриональная телячья сыворотка, глютамин (600 мг/л). В экспериментах использовали клетки в логарифмической фазе роста (предконфлюэнтный монослой). Для получения суспензии одиночных клеток монослой ФЧ обрабатывали 0,25% раствором трипсина, а полученную взвесь клеток дважды отмывали центрифугированием в большом объеме полной ростовой среды, производили их подсчет и оценку жизнеспособности, окрашивая клеточную суспензию 0,04% раствором трипанового синего. В платы с исследуемыми образцами (опыт) и без них (контроль) помещали ФЧ (190 тыс.клеток/см3, 380 тыс.клеток в лунке) в объеме 1500 мкл полной ростовой среды и инкубировали: для определения острой цитотоксичности в течение 4-24 ч, для оценки матриксных свойств микрочастиц опаловых микрочастиц - 3,7, 14 суток с регулярной (дважды в неделю) заменой полной ростовой среды. Культивирование проводили в атмосфере влажного воздуха (37°С), содержащего 5,0 об.% CO2. Жизнеспособность ФЧ в динамике экспериментов оценивали с использованием метода, основанного на способности дегидрогеназ живых клеток восстанавливать 3-(-4,5-диметилтиазолил-2)-2,5-дифенилтетразолий бромистый (МТТ) в голубые кристаллы формазана, нерастворимые в воде (МТТ-метод). Как было показано ранее, количество образовавшегося формазана характеризует пролиферативную активность различных клеток человека и животных (жизнеспособность/ количество).

Для проведения МТТ-теста в опытах in vitro по окончании культивирования ФЧ на культуральном пластике - полистерене (контроль) и ФЧ на образцах частиц опаловых матриксов (опыт) из каждой лунки отбирали по 100 мкл среды и вносили по 125 мкл раствора МТТ в концентрации 5 мг/мл. Через 3 ч инкубации (5,0% CO2, 37°С) из каждой лунки декантировали по 250 мкл среды. Образовавшийся формазан растворяли в изопропиловом спирте (750 мкл на лунку). От осадка, образующегося в результате преципитации белков в изопропаноле, освобождались центрифугированием плат в течение 10 мин при 3000 об/мин. Далее из каждой лунки переносили по 100 мкл супернатанта в 96 луночный плоскодонный планшет (Costar, США) и оценивали оптическую плотность (D усл.ед.) раствора формазана с использованием спектрофотометра МСС-340 (Швеция) при длине волны 540 нм (табл.1-2).

При оценке матриксных свойств образцов опаловых матриц определяли изменение пула ФЧ (Δ) для фиксированного периода по формуле:

Δ=([Dнаст-Dпред]/Dпред)×100%,

где D наст- величина оптической плотности раствора формазана для фиксированного периода, D пред - величина оптической плотности раствора формазана для предыдущего периода. Положительная величина пула ФЧ свидетельствовала о приросте популяции ФЧ, отрицательная - о гибели части популяции. Статистическую обработку результатов проводили по методу Стьюдента (достоверным считали разницу при р<0,05).

Гистологические исследования объемных опалово-клеточных конгломератов проводили традиционным способом, изготавливая парафиновые блоки и гистологические срезы, которые окрашивали гематоксилинэозином. В дальнейшем препараты изучали с использованием стереомикроскопа. Для определения цитотоксичности материала рассчитывали фракцию выживших клеток (ФВК) после 4-24 ч инкубации с ними по формуле:

ФВК=(D*опыт/Dконтр)×100%,

где D* опыт - оптическая плотность раствора формазана, усл. ед. (табл.3).

В качестве спектрофотометрического контроля (бланк) использовали пробы с чистой ростовой средой и пробы, содержащие тестируемые образцы в ростовой среде (без клеток).

В качестве спектрофотометрического контроля (бланк) использовали пробы с чистой ростовой средой и пробы, содержащие тестируемые образцы в ростовой среде (без клеток).

В экспериментах были использованы микрочастицы из упорядоченно упакованных наносфер SiO2 разных размеров, полученные путем термообработки при разных температурах на воздухе и в вакууме. Исследована сравнительная цитотоксичность образцов in vitro в сроки 4 и 24 часа культивирования ФЧ. Установлено, что наилучшими для культивирования клеток являются микрочастицы из упорядоченных упаковок SiO2 размером 0,25-0,4 мкм, содержащие нанопоры размером 150-300 нм. Последнее подтверждается макроскопическим исследованием роста ФЧ на опаловых частицах разных размеров (фиг.3): ФЧ образуют скопления вокруг более мелких частиц и в меньшей мере заселяют более крупные. Исследование динамики роста ФЧ (до 14 суток) показало, что прирост ФЧ на микрочастицах выбранного размера превышает таковой в контроле (на полистерене) на всех сроках культивирования на 50-70%, что и обеспечивает возможность более быстрого и интенсивного наращивания клеточной массы (табл.4).

Таблица 2 Величина прироста пула ФЧ при культивировании на полистирене (контроль), образцах опаловых матриц (ОМ) и гейзерите в разные сроки наблюдения (относительно предыдущего срока) Образцы материалов Величина прироста пула ФЧ (в %) 4 часа 1 сутки 3 суток 7 суток 14 суток Полистирен-I (контроль для образцов 1-4) 0 79 46 43 -23 Образец 1 (опыт) 0 45 41 83 -48 Полистирен-II (контроль для гейзерита) - 0 32 25 63 Гейзерит (опыт) - 0 -16 111 195

Микроскопическое исследование роста ФЧ с использованием микрочастиц размером 0,25-0,4 мкм, состоящих из упорядоченных упаковок SiO2, показало, что в динамике культивирования происходит формирование опалово-клеточных конгломератов, которые со временем увеличиваются в размерах, достигая на 14-21 сутки нескольких миллиметров в диаметре (фиг.3). Замена среды в культуральной посуде и добавление новых микрочастиц SiO2 позволяют продолжать наращивать клеточную массу до тех пор, пока весь объем культуральной посуды не будет занят опалово-клеточными конгломератами. «Культивирование» опаловых микрочастиц (сформированных из упакованных наносфер SiO2) без клеток не приводит к изменению их структуры и структуры их поверхности. В то же время при их культивировании с ФЧ при образовании опалово-клеточных конгломератов происходит разрыхление поверхности опаловых микрочастиц (клетками) - фиг.4.

Таблица 3 Оценка острой цитотоксичности образцов микрочастиц кремнезема (на основе ОМ) в отношении культуры ФЧ (время культивирования 4 и 24 ч, МТТ-тест) Измеряемые параметры Образцы Ом с диаметром наносфер 200 нм Контроль 1 2 3 4 4 часа Оптическая плотность раствора формазана (усл. ед.) 0,205 0,198 0,188* 0,189* 0,175* Фракция выживших клеток 100 97 92 92 85 24 часа Оптическая плотность раствора формазана (усл. ед.) 0,366 0,287* 0,270* 0,255* 0,276* Фракция выживших клеток, % 100 78 74 70 75

Гистологические исследования конгломератов типа сфероидов показали, что они представляют собой не просто клеточные конгломераты, инкрустированные микрочастицами SiO2. Конгломераты клетки располагаются концентрически, а опаловые частицы формируют геликоидально-подобные структуры (фиг.5-6), причем нарастание величины сфероида происходит за счет привлечения в его структуру все новых опаловых частиц. Важно, что даже в центре сфероида не наблюдается некроза и гибели клеток, вероятно, благодаря эффективной диффузии питательных веществ через нанопоры между упорядоченно упакованными наносферами SiO2. Разобщение клеток конгломератов производится традиционными методами, в частности трипсинизацией.

В таблице 4 приведены результаты культивирования и увеличения клеточной массы при использовании микропорошков кремнезема по предлагаемому изобретению. В экспериментах использованы синтетические опаловые матрицы, представляющие плотнейшую упорядоченную упаковку наносфер кремнезема с диаметром наносфер 250-400 нм и имеющие нанопоры размером 150-300 нм, образующиеся в результате плотнейшей упаковки наносфер в процессе изготовления объемных образцов, подвергаемых в последующем операциям дробления и рассеивания. Использовались образцы порошка кремнезема (опаловые матрицы и минерал из кремнезема с опалоподобной структурой), прошедшие предварительную термообработку при температурах T1=750-850°С в течение П1=40-60 минут, при скорости изменения температуры в интервале V=150-200 град/ч, и последующую термообработку в вакууме при температуре Т2=300-350°С, при давлении Р=0,1-0,5 Па, в течение П2=80-120 минут, что обеспечивало наличие в питательном растворе (культуральной среде) длительного по продолжительности процесса культивирования клеточной массы и получения ее большого объема в виде пространственно разделенных двухфазных конгломератов размерами 0,05-1 мм, состоящих из упорядоченно расположенных клеток и микрочастиц кремнезема (примеры 3, 14-16 в табл.4, примеры 1-2 иллюстрируют снижение эффективности процессов культивирования и размножения клеточной массы по сравнению с результатами, когда используются параметры по предлагаемому изобретению).

Одновременно в таблице 4 приведены аналогичные данные при использовании микропорошков по прототипу, следует отметить, что в таком случае развитие клеточной массы имеет место только на поверхности частиц, так что даже использование различных покрытий не приводит к ее объемному формированию (пример 18). Отметим, что двухфазные конгломераты в объеме культуральной среды не образуются при использовании параметров по прототипу. При использовании оптимальных параметров, приведенных в аналогах [5, 6], эффективность (под которой понимается увеличение прироста клеточной массы за единицу продолжительности по времени) процессов культивирования и размножения клеточной массы также ниже по сравнению с результатами по предлагаемому изобретению (пример 17). При использовании микропорошков кремнезема на основе опаловых матриц с диаметром наносфер 250-400 нм и имеющих нанопоры размером 150-300 нм, максимальная длительность эффективного процесса составляла не более 18 суток, тогда как при использовании природного минерала из кремнезема с опалоподобной структурой, а именно гейзерита с размером наносфер 0,3-4 мкм и нанопор 0,5-4 мкм, доходила до 60 суток (пример 3а, б).

Таблица 4 Примеры влияния способа приготовления микропорошков кремнезема на процессы культивирования и размножения клеточной массы по величине прироста пула ФЧ с использованием образцов опаловых матриц (Ом) с диаметром наносфер 250-400 нм и размером нанопор 150-300 нм и гейзерита (природного минерала на основе кремнезема с опалоподобной структурой) с размером наносфер 0,2-4 мкм и нанопор 0,5-4 мкм. № пп Измеряемые параметры Величина прироста пула ФЧ в течение суток Примечание Предварительная термообработка Термообработка в вакууме 7 14 24 Т1, °С П1, мин V, град/ч Т2, °С Р, Па П2, мин 1 730 40 150 300 0,5 100 80 100 - Ом с диаметром наносфер 250 нм 2 870 60 200 350 0,1 80 120 80 - 3 800 50 175 325 0,3 100 240 200 - Ом с диаметром наносфер 250 нм 800 50 175 325 0,3 100 140 450 850 гейзерит с диаметром наносфер 0,5 мкм 750 400 175 300 0,5 120 140 400 800 гейзерит с диаметром наносфер 2,5 мкм 4 800 40 175 325 0,3 100 200 180 - 5 800 50 150 325 0,3 100 190 170 - Ом с диаметром наносфер 300 нм 6 800 50 175 300 0,3 100 210 190 - 7 800 50 175 325 0,3 80 195 185 - Ом с диаметром наносфер 400 нм 8 800 50 175 325 0,3 100 220 190 - 9 800 60 175 325 0,3 100 230 185 10 800 50 200 325 0,3 100 200 175 - 11 800 50 175 325 0,1 100 210 180 - Ом с диаметром наносфер 300 нм 12 800 50 175 325 0,5 100 230 195 - 13 800 50 175 325 0,3 120 215 190 14 750 55 170 300 0,4 140 180 120 - 15 850 45 170 380 0,1 90 170 140 - 16 810 40 175 310 0,5 110 200 170 - 17 300 180 150 600 0,8 80 160 145 - Ом с диаметром наносфер 320 нм 20 800 50 175 325 0,3 100 150 475 920 гейзерит с диаметром наносфер 1,5 мкм

Приведенная в табл.4 продолжительность процесса культивирования клеточной массы, оценивалась по величине фракции выживших клеток (ФВК) и величине прироста пула ФЧ (Δ, в %), рассчитанных по результатам измерений оптической плотности раствора фор-мазана (в усл. ед.) в соответствии с приведенными выше формулами.

Образцы порошка кремнезема (опаловые матрицы и минералы из кремнезема с опалоподобной структурой), не прошедшие предварительную термообработку при температурах T1=750-850°С в течение П1=40-60 минут, при скорости изменения температуры в интервале V=150-200 град/ч и последующей термообработке в вакууме при температуре T2=300-350°С, при давлении P=0,1-0,5 Па в течение П2=80-120 минут не обеспечивают в питательном растворе (культуральной среде) длительного по продолжительности процесса культивирования клеточной массы и получения ее большого объема в виде пространственно разделенных двухфазных конгломератов размерами 0,05-1 мм, состоящих из упорядоченно расположенных клеток и микрочастиц кремнезема (примеры 1, 2, 4-13 в табл.4).

Источники информации

1. ЕР № 0853664 А1, кл. С12N 11/44 от 1997 г.

2. Япония № 08110963, кл. С12N 5/00 от 1996 г.

3. Япония № 0767618, кл. С12N 5/00 от 1995 г.

4. РФ № 02234514 С2, кл. кл. С12N 5/00 от 2000 г.

5. ЕР № 0245338 А1, кл. С12N 11/04 от 1987 г.

6. Самойлович М.И., Белянин А.Ф., Клещева С.М., Сергеева Н.С., Свиридова И.К., Кирсанова В.А., Ахмедова С.А., Урусов B.C., Шванская Л.В. Использование упорядоченных упаковок наносфер SiO2 для создания биосовместимых наноматериалов. // Нано- и микросистемная техника. 2008. № 8. С.38-49.

7. Урусов B.C., Самойлович М.И., Сергеева Н.С., Белянин А.Ф., Шванская Л.В., Свиридова И.К., Кирсанова В.А., Бычков А.Ю., Ахмедова С.А., Клещева С.М. Образование биокомпозитов на основе природных гейзеритов и синтетических опалов. // Доклады Академии наук. 2008. Т. 423. № 6. С.841-845.

Похожие патенты RU2413000C1

название год авторы номер документа
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ОПТИЧЕСКОЙ СРЕДЫ НА ОСНОВЕ НАНОЧАСТИЦ SiO 2009
  • Самойлович Михаил Исаакович
  • Клещева Светлана Михайловна
  • Белянин Алексей Федорович
  • Чернега Николай Владимирович
  • Багдасарян Сергей Александрович
RU2416681C2
СПОСОБ ГЕНЕРАЦИИ ИМПУЛЬСНОГО РЕНТГЕНОВСКОГО ИЗЛУЧЕНИЯ 2011
  • Чернега Николай Владимирович
  • Самойлович Михаил Исаакович
  • Кудрявцева Анна Дмитриевна
  • Белянин Алексей Федорович
  • Клещева Светлана Михайловна
RU2469516C1
УСТРОЙСТВО ДЛЯ ГЕНЕРАЦИИ НАПРАВЛЕННОГО ИМПУЛЬСНОГО РЕНТГЕНОВСКОГО ИЗЛУЧЕНИЯ 2011
  • Чернега Николай Владимирович
  • Самойлович Михаил Исаакович
  • Кудрявцева Анна Дмитриевна
  • Белянин Алексей Федорович
  • Клещева Светлана Михайловна
RU2480159C1
МАТЕРИАЛ ДЛЯ ЗАКРЫТИЯ КОСТНЫХ ДЕФЕКТОВ ПРИ РЕКОНСТРУКТИВНО-ПЛАСТИЧЕСКИХ ОПЕРАЦИЯХ 2006
  • Чиссов Валерий Иванович
  • Баринов Сергей Миронович
  • Сергеева Наталия Сергеевна
  • Решетов Игорь Владимирович
  • Свиридова Ирина Константиновна
  • Кирсанова Валентина Александровна
  • Фадеева Инна Вилоровна
  • Комлев Владимир Сергеевич
  • Ахмедова Сурая Абдулла Кызы
  • Филюшин Михаил Михаилович
RU2333010C1
БРОНЕБОЙНАЯ ПУЛЯ 2011
  • Яцкевич Виктор Антонович
  • Самойлович Михаил Исаакович
  • Белянин Алексей Федорович
  • Клещева Светлана Михайловна
  • Гурьянов Андрей Валерьевич
RU2464524C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ КОМПОЗИЦИОННОЙ ОПТИЧЕСКОЙ ХЕМОСЕНСОРНОЙ ПЛЕНКИ 2009
  • Калинин Дмитрий Валентинович
  • Сердобинцева Валентина Васильевна
  • Елисеев Александр Павлович
RU2399585C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ РОСТОВОЙ ДОБАВКИ НА ОСНОВЕ ЛИЗАТА ТРОМБОЦИТОВ ИЗ ТРОМБОЦИТАРНОЙ МАССЫ ДОНОРОВ К СРЕДЕ ДЛЯ НАРАЩИВАНИЯ КЛЕТОЧНОЙ МАССЫ СТВОЛОВЫХ, ПРОГЕНИТОРНЫХ, ДИФФЕРЕНЦИРОВАННЫХ И ОПУХОЛЕВЫХ КЛЕТОК 2016
  • Сергеева Наталья Сергеевна
  • Шанский Ярослав Дмитриевич
  • Свиридова Ирина Константиновна
  • Кирсанова Валентина Александровна
  • Ахмедова Сурая Абдулла Кызы
  • Каприн Андрей Дмитриевич
  • Пирогов Сергей Анатольевич
RU2648162C2
Способ получения плоско-выпуклых оптических элементов терагерцового диапазона из опала на основе кремнезема 2021
  • Улитко Владислав Эдуардович
  • Масалов Владимир Михайлович
  • Шикунова Ирина Алексеевна
  • Гавдуш Арсений Алексеевич
  • Зайцев Кирилл Игоревич
  • Курлов Владимир Николаевич
RU2756386C1
БИОПОЛИМЕРНЫЙ МАТРИКС ДЛЯ ПРОЛИФЕРАЦИИ КЛЕТОК И РЕГЕНЕРАЦИИ НЕРВНЫХ ТКАНЕЙ 2011
  • Беклемышев Вячеслав Иванович
  • Махонин Игорь Иванович
  • Мауджери Умберто Орацио Джузеппе
  • Абрамян Ара Аршавирович
  • Солодовников Владимир Александрович
  • Филиппов Константин Витальевич
RU2478398C1
УСТРОЙСТВО ДЛЯ ПРОВЕРКИ МАГНИТНОГО РЕЛЬЕФА МАТЕРИАЛОВ НОСИТЕЛЕЙ ИНФОРМАЦИИ 2019
  • Хлопов Борис Васильевич
  • Фесенко Максим Владимирович
  • Самойлова Валерия Сергеевна
RU2709438C1

Иллюстрации к изобретению RU 2 413 000 C1

Реферат патента 2011 года СПОСОБ ИЗГОТОВЛЕНИЯ МАТРИКСА ДЛЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ И РАЗМНОЖЕНИЯ КЛЕТОЧНОЙ МАССЫ

Изобретение относится к области биотехнологии и может быть использовано в различных разделах медицины при внедрении современных биоматериалов в качестве трехмерных матриксов для клеточных и тканевых культур. Микропорошок, полученный дроблением и рассеиванием упорядоченных упаковок микросфер SiO2, подвергают предварительной термообработке при температурах 750-850°С в течение 40-60 мин, при скорости изменения температуры в интервале 150-200°С/час и последующей термообработке в вакууме при температуре 300-350°С и давлении 0,1-0,5 Па в течение 80-100 мин, при этом в качестве упорядоченных упаковок микросфер SiO2 используют синтетические опаловые матрицы с размерами микросфер 0,25-0,4 мкм и микропор 0,15-0,3 мкм или природный минерал из кремнезема с опалоподобной структурой с размерами микросфер 0,3-4 мкм и микропор 0,5-4 мкм. Изобретение позволяет увеличить объем клеточной массы без замены культуральной среды. 6 ил., 4 табл.

Формула изобретения RU 2 413 000 C1

Способ изготовления матрикса для культивирования и размножения в культуральной среде фибробластов человека, включающий использование микропорошка, полученного дроблением и рассеиванием упорядоченных упаковок микросфер SiO2, а также термообработки на воздухе и в вакууме, отличающийся тем, что микропорошок подвергают предварительной термообработке на воздухе при температуре 750-850°С в течение 40-60 мин при скорости изменения температуры в интервале 150-200°С/ч и последующей термообработке в вакууме при температуре 300-350°С и давлении 0,1-0,5 Па в течение 80-100 мин, при этом в качестве упорядоченных упаковок микросфер SiO2 используют синтетические опаловые матрицы с размерами микросфер 0,25-0,4 мкм и микропор 0,15-0,3 мкм или природный минерал из кремнезема с опалоподобной структурой с размерами микросфер 0,3-4 мкм и микропор 0,5-4 мкм.

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 2011 года RU2413000C1

URUSOV V.S
et al
Formation of Biocomposites Based on Natural Geyserites and Synthetic Opals», Doklady Biological Sciences
Станок для изготовления деревянных ниточных катушек из цилиндрических, снабженных осевым отверстием, заготовок 1923
  • Григорьев П.Н.
SU2008A1
Способ гальванического снятия позолоты с серебряных изделий без заметного изменения их формы 1923
  • Бердников М.И.
SU12A1
NORAH O'FARRELL et al
Silicon nanoparticles: applications in cell biology and medicine International Journal of Nanomedicine
Пломбировальные щипцы 1923
  • Громов И.С.
SU2006A1

RU 2 413 000 C1

Авторы

Самойлович Михаил Исаакович

Белянин Алексей Федорович

Клещева Светлана Михайловна

Сергеева Наталья Сергеевна

Свиридова Ирина Константиновна

Кирсанова Валентина Александровна

Ахмедова Сурая Абдулла Кызы

Урусов Вадим Сергеевич

Шванская Лариса Викторовна

Даты

2011-02-27Публикация

2009-06-18Подача