Изобретение относится к области ветеринарной медицины, в частности ветеринарной санитарной экспертизы.
Прекращение жизни животного связано с необратимыми процессами, протекающими в мышечной ткани, и при окислении органических веществ происходит распад промежуточных продуктов.
В связи с этим нами была установлена концентрация промежуточных продуктов при распаде органических веществ в вытяжке органов и тканей (длиннейшая мышца спины, сердечная мышца, печень, легкие, селезенка и почки) при метастронгилезе свиней (Metastrongylus elongates); при дикроцелиозе (Dicrocoelium lanceatum), эхинококкозе (Echinococcus granulosus) у крупного рогатого скота, что позволит установить влияние продуктов их жизнедеятельности на накопление летучих органических веществ.
Известен унифицированный метод определения триглицеридов по реакции с ацетилацетатом после экстракции смесью гептана и изопропилового спирта [см. А.И.Карпищенко и др. Справочник Медицинские лабораторные технологии, под ред. А.И.Карпищенко, в 2-х томах, Т.2 С.92-93], где метод основан на экстрагировании триглицеридов смесью гептана и изопропилового спирта, в которую переходят неполярные липиды; более полярные остаются в водной фазе. Триглицериды гидролизуются щелочью, глицерин окисляется йодной кислотой до формальдегида, который определяется по цветной реакции с ацетилацетоном.
Ход определения включает: экстрагирование триглицеридов смесью гептана и изопропилового спирта. Для окисления глицерина до формальдегида добавляют йодную кислоту и ацетилацетоновый реактив, в результате которого образуется желто-зеленое окрашивание, интенсивность которого измеряют фотометрированием при длине волны 425 нм в кюветах с длиной оптического пути 0,5 см против контрольной пробы, которую ставят так же, как и опытную, но вместо исследуемого материала используют 0,5 мл дистиллированной воды. Калибровочную пробу обрабатывают так же, как и опытную, но вместо исследуемой сыворотки или плазмы крови вносят 0,5 мл калибровочного раствора и 0,5 мл дистиллированной воды. Развивающаяся окраска соответствует окраске опытной пробы, в которую взята плазма с содержанием триглицеридов 2 ммоль/л. Расчет проводят по правилу пропорции или по калибровочному графику. Если используется калибровочный раствор, содержащий воду, то при постановке калибровочного опыта берут 0,5 мл рабочего калибровочного раствора, а воду не добавляют.
Также известно определение свободных жирных кислот качественной реакцией (см. Н.Н.Крылова, Ю.Н.Лясковская. Биохимия мяса. / М.: Пищепромиздат, - 1957, - с.337), где метод основан на способности изменять окраску в зависимости от кислотности среды с помощью индикатора нейтрального красного. Пробу свиного топленого жира (примерно 0,5-1 г) помещают в маленькую фарфоровую ступку, заливают раствором нейтрального красного и после тщательного растирания пестиком сливают раствор нейтрального красного (оставшиеся капли жидкости, если они мешают наблюдению, смывают водой). После такой обработки свиной жир приобретает одну из следующих окрасок: желтая с зеленоватым оттенком или желтая, которая свидетельствует о свежести жира; от желтой до светло-коричневой - старый жир, но пригодный для использования в пищу; от желто-коричневой до коричневой - жир сомнительной пищевой пригодности; от коричневой до красной - испорченный. Для проведения реакции применяют свежеприготовленный 0,01%-ный раствор нейтрального красного на водопроводной воде (рН 7,0-7,2). Реакцию можно проводить и с другими животными жирами, но при этом получаются менее четкие результаты. Окраска жира после обработки зависит от наличия высокомолекулярных и низкомолекулярных жирных кислот; окраска изменяется более резко в присутствии ничтожных количеств низкомолекулярных кислот.
Наиболее близким по технической сущности является способ определения компонентов летучих жирных кислот в рубцовой жидкости в преджелудке у коров с помощью газового хроматографа, которую предварительно подвергали паровой дисцилляции для определения общего количества летучих жирных кислот (Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук, автор Хмельков Я.Т. «Этиологическая структура, патогенез и лечение вторичных застойных дистоний преджелудков у коров», Белград, 2006, с.8).
Недостатками известных способов являются отсутствие возможности определения большого количественного состава летучих органических веществ в вытяжке органов и тканей (длиннейшая мышца спины, сердечная мышца, печень, легкие, селезенка и почки) при метастронгилезе (Metastrongylus elongates) на качество продуктов из мяса свиней и крупного рогатого скота при дикроцелиозе (Dicrocoelium lanceatum) и эхинококкозе (Echinococcus granulosus) на качество продуктов из мяса крупного рогатого скота.
Техническим решением задачи является определение летучих органических веществ с помощью газо-жидкостной хроматографии в котором подвижной фазой служит газ или пар, а неподвижной - жидкость, нанесенная на твердый носитель или на стенки колонки при установлении качества и безопасности продуктов убоя животных при метастронгилезе свиней (Metastrongylus elongates); при дикроцелиозе (Dicrocoelium lanceatum) у крупного рогатого скота; эхинококкозе (Echinococcus granulosus) крупного рогатого скота.
Поставленная задача достигается тем, что в способе оценки качества продуктов убоя животных согласно изобретению берут биопробу, в качестве которой используют длиннейшую мышцу спины, сердечную мышцу, печень, легкие, селезенку и почки, измельчают, получают вытяжку, помещают в газовый хроматограф, определяют общую концентрацию карбоновых кислот, альдегидов, сложных эфиров и спиртов, сравнивают полученные показатели с аналогичными показателями в биопробе продуктов убоя здоровых животных и при изменении показателей общей концентрации карбоновых кислот, альдегидов, сложных эфиров и спиртов в исследуемой биопробе относительно аналогичных показателей в биопробе продуктов убоя здоровых животных продукты убоя животных считают зараженными гельминтами и оценивают как недоброкачественные.
Преимущество данного метода состоит в следующем: высокая эффективность разделения компонентов, недоступная при других методах исследования; низкий расход реактивов и растворителей; простота аппаратуры; высокая скорость анализа и высокая воспроизводимость условий реакции; хорошая растворимость производных в водной среде; широкие возможности газо-жидкостной хроматографии для выявления летучих органических веществ в вытяжке органов и тканях (длиннейшая мышца спины, сердечная мышца, печень, легкие, селезенка и почки) при метастронгилезе свиней, дикроцелиозе и эхинококкозе крупного рогатого скота. Кроме того, установлены порядок и время выхода летучих органических веществ в вытяжке органов и тканей (длиннейшая мышца спины, сердечная мышца, печень, легкие, селезенка и почки) у свиней и крупного рогатого скота, а также заявляемое предложение является более экономичным, т.к. не требует применения особо дорогостоящих химических реактивов.
Новизна заявленного предложения обусловлена тем, что экспресс-анализом установлены параметры изменения концентрации летучих органических веществ в органах и тканях при инвазии свиней возбудителем Metastrongylus elongates, крупного рогатого скота - Dicrocoelium lanceatum, крупного рогатого скота - Echinococcus granulosus на газо-жидкостном хроматографе (ГАЛС-311), за счет разделения смесей летучих веществ, при многократном динамическом перераспределении их компонентов между сорбентом и газом-носителем при его движении вдоль слоя сорбента.
Пример конкретного осуществления способа оценки качества продуктов убоя животных.
Состав летучих компонентов изучают на газо-жидкостном хроматографе «Кристалл-2000 М», оборудованном 50 м кварцевой капиллярной колонкой HP FFAP с внутренним диаметром 0,32 мм, производства США.
Для изучения компонентов летучих жирных кислот в органах и мышечных тканях проводят подготовку проб органов и тканей (длиннейшая мышца спины, сердечная мышца, печень, легкие, селезенка и почки) при метастронгилезе свиней, дикроцелиозе и эхинококкозе крупного рогатого скота. С этой целью предварительно измельчают требуемые орган или мышечную ткань, затем берут навеску органов и тканей в количестве 4-6 г и помещают в прибор для отгонки летучих продуктов с водяным паром. Проводят перегонку проб органов и тканей, при этом полученную вытяжку собирают в мерную колбу на 50 см3. Одну часть вытяжки используют для определения летучих компонентов на газовом хроматографе, другую - для определения аммиака. Объем вытяжки делят на массу навески, таким образом, производят разбавление исходной пробы, что учитывают в количественных расчетах.
Для определения летучих компонентов (альдегиды, спирты, уксусная, масляная, валериановая кислоты и другие) 2 мкл вытяжки из органов и тканей с использованием заранее проведенной калибровки дозируют в газо-жидкостной хроматограф.
Режим работы газового хроматографа: кварцевая капиллярная колонка длиной 50 м, внутренний диаметр 0,32 мм; неподвижная жидкая фаза FFAP; температура инжектора хроматографа - 170°С; температура подогрева детектора ДИП - 170°С; входное давление на колонке - 60 кПа; температура термостата колонок - 50°С, изотерма - 7 мин, затем программирование температуры со скоростью 5°С/мин до 140°С, выдержка - 20 мин, затем программирование температуры со скоростью 10°С/мин до 160°С и выдержка до конца анализа не менее 40 мин.; испаритель с делением потока, коэффициент деления потока - 1: 33; поток газа-носителя через колонку - 1,21 см3/мин; объем пробы - 2 мм3; газ-носитель - азот; расход водорода - 25 см3/минуту; расход воздуха - 250 см3/мин; время анализа - 60 мин.
Для количественных расчетов содержания компонентов в органах и тканях применяют метод абсолютной калибровки. Модельную смесь ацетальдегида, сложных эфиров, метанола и сивушного масла готовят на 40%-ном водноспиртовом растворе с использованием спирта «Экстра» и дистиллированной воды. Модель подбирают по составу с использованием аттестованных градуировочных смесей, близких к исследуемым объектам (длиннейшая мышца спины, сердечная мышца, печень, легкие, селезенка и почки).
Порядок и время выхода (мин, сек) летучих органических компонентов в указанном режиме анализа приведены в таблицах 1 и 2.
Установлены границы относительной погрешности (%) измерения массовой концентрации (мг/дм3) летучих компонентов и нормативы оперативного контроля (%) измеряемых массовых концентраций (мг/дм3) летучих компонентов, результаты которых показаны в таблицах 3 и 4.
Результаты научных исследований для установления качества и безопасности продуктов убоя животных при гельминтозах по выявлению концентрации летучих органических веществ
В результате проведенных исследований при инвазии свиней метастронгилюсами в длиннейшей мышце спины концентрация уксусной кислоты была ниже на 51% (в 2 раза), пропионовой - в 1,7 раза, изовалериановой - в 6 раз, чем у клинически здоровых животных. В отличие от контрольной группы масляная кислота в опытной группе не была выявлена. В длиннейшей мышце спины при метастронгилезе общая концентрация карбоновых кислот составила 46,76 мг/кг фарша и была ниже в 2 раза, чем у клинически здоровых свиней (табл.5).
При метастронгилезе свиней в сердечной мышце концентрация уксусной кислоты была ниже в 2,2 раза, пропионовой - в 38 раз, изомасляной - в 18 раз, изовалериановой - в 1,1 раза, чем у клинически здоровых животных. В сердечной мышце общая концентрация карбоновых кислот составила 60,58 мг/кг фарша и была ниже в 2,3 раза, чем у клинически здоровых свиней (табл.5).
В тканях печени при метастронгилезе свиней концентрация уксусной кислоты была выше в 1,6 раза, пропионовой - в 44 раза, изомасляной - в 14,2 раза, чем у клинически здоровых животных. В отличие от контрольной группы масляная и валериановая кислоты в опытной группе не были выявлены. В тканях печени общая концентрация карбоновых кислот составила 39,33 мг/кг фарша и была выше в 2,5 раза, чем у клинически здоровых свиней (табл.6).
В легочной ткани, пораженной метастронгилюсами, концентрация уксусной кислоты была выше в 5 раз, пропионовой - в 16 раз и, напротив, ниже изовалериановой кислоты в 4 раза, чем у клинически здоровых животных. В отличие от контрольной группы в опытной группе были зарегистрированы изомасляная кислота, концентрация которой составила 4,48 мг/кг фарша и масляная - 2,72 мг/кг фарша. В тканях печени общая концентрация карбоновых кислот составила 39,33 мг/кг фарша и была выше в 2,5 раза, чем у клинически здоровых животных (табл.6).
В тканях селезенки при метастронгилезе концентрация уксусной кислоты была выше в 1,3 раза, пропионовой - в 52 раза, чем у клинически здоровых животных. В отличие от контрольной группы в опытной группе была зарегистрирована изомасляная кислота, концентрация которой составила 0,17 мг/кг фарша. В тканях селезенки общая концентрация карбоновых кислот составила 180,04 мг/кг фарша и была выше в 2,5 раза, чем у клинически здоровых свиней (табл.7).
В тканях почек при метастронгилезе концентрация уксусной кислоты была ниже в 1,1 раза, пропионовой - в 8 раз и, напротив, изовалериановая кислота была выше в 1,6 раза, чем у клинически здоровых животных. В почечной ткани общая концентрация карбоновых кислот составила 71,38 мг/кг фарша и была ниже в 1,1 раза, чем у клинически здоровых свиней (табл.7).
При метастронгилезе в вытяжке длиннейшей мышцы спины концентрация фурфурола была выше в 5,4 раза и, напротив, ацетальдегида - ниже в 1,1 раза, чем у клинически здоровых животных. В опытной группе не был зарегистрирован ацетоин и, напротив, выявлен каприловый альдегид, концентрация которого составила 14,69 мг/кг фарша. В вытяжке длиннейшей мышцы спины общая концентрация альдегидов составила 44,29 мг/кг фарша и была выше в 2,8 раза, чем у клинически здоровых свиней.
В вытяжке сердечной мышцы при метастронгилезе концентрация фурфурола была выше в 2 раза, ацетоина - в 5,4 раза и, напротив, этилацеталя была ниже в 10 раз, ацетальдегида - в 6 раз, каприлового альдегида - в 1,6 раза, чем у клинически здоровых животных. В вытяжке сердечной мышцы общая концентрация альдегидов составила 92,49 мг/кг фарша и была выше в 2,8 раза, чем у клинически здоровых свиней.
При метастронгилезе в вытяжке печени концентрация ацетальдегида и каприлового альдегида была выше в 4 раза, фурфурола - в 10 раз, ацетоина - в 12 раз, чем у клинически здоровых животных. В опытной группе в отличие от контрольной группы был зарегистрирован этилацеталь, концентрация которого составила 1,38 мг/кг фарша. В вытяжке печени общая концентрация альдегидов составила 14,74 мг/кг фарша и была выше в 5,7 раза, чем у клинически здоровых свиней.
В пораженной легочной ткани были зарегистрированы альдегиды в концентрации 75,75 мг/кг фарша, при этом концентрация ацетальдегида составила 15,40 мг/кг фарша, фурфурола - 29,55 мг/кг фарша, ацетоина - 17,54 мг/кг фарша, каприлового альдегида - 13,26 мг/кг фарша. При этом концентрация фурфурола была выше в 2,2 раза, чем каприлового альдегида, ацетальдегида - в 1,9 раза, ацетонна - в 1,7 раза по сравнению с клинически здоровыми животными.
При метастронгилезе в вытяжке селезенки концентрация ацетальдегида и каприлового альдегида была выше в 2 и 3 раза соответственно, фурфурола - в 12 раз, чем у клинически здоровых животных. В опытной группе в отличие от контрольной группы был зарегистрирован ацетоин, концентрация которого составила 4,68 мг/кг фарша. В вытяжке селезенки общая концентрация альдегидов составила 129,45 мг/кг фарша и была выше в 7 раз, чем у клинически здоровых свиней.
При метастронгилезе в вытяжке почек концентрация ацетальдегида, каприлового альдегида, фурфурола и ацетоина была выше в 2-3 раза, чем у клинически здоровых животных. В вытяжке почек общая концентрация альдегидов составила 80,70 мг/кг фарша и была выше в 2,4 раза, чем у клинически здоровых свиней.
Максимальная концентрация альдегидов при метастронгилезе отмечена в вытяжке селезенки, которая была выше в 9 раз, чем в вытяжке печени, в 3 раза - в вытяжке длиннейшей мышцы спины, в 1,7 раза - в вытяжке легких, в 1,4 раза - в вытяжке сердечной мышцы.
При метастронгилезе в вытяжке длиннейшей мышцы спины были выявлены сложные эфиры: концентрация этилкаприлата была выше в 1,3 раза и, напротив, ниже метилкаприлата в 5,3 раза. В опытной группе в отличие от контрольной группы был зарегистрирован этилацетат, концентрация которого составила 4,33 мг/кг фарша и метилацетат - 11,37 мг/кг фарша. В вытяжке длиннейшей мышцы спины общая концентрация сложных эфиров составила 20,01 мг/кг фарша и была выше в 1,4 раза, чем у клинически здоровых свиней.
В вытяжке сердечной мышцы при метастронгилезе были выявлены сложные эфиры: концентрация метилкаприлата была выше в 2,4 раза, этилформиата - в 5 раз, этилкаприлата - в 2,7 раза, чем у клинически здоровых свиней. В опытной группе в отличие от контрольной группы также зарегистрирован этилацетат, концентрация которого составила 0,75 мг/кг фарша, изоамилацетата - 0,31 мг/кг фарша, метилацетат - 16,11 мг/кг фарша. В вытяжке сердечной мышцы общая концентрация сложных эфиров составила 25,70 мг/кг фарша и была выше в 10 раз, чем у клинически здоровых свиней (табл.6).
При метастронгилезе в вытяжке печени выявлены сложные эфиры: концентрация этилацетата была выше в 32 раза, этилформиата - в 2 раза, чем у клинически здоровых свиней. В изучаемых группах в вытяжке печени не были зарегистрированы метилкаприлат, изоамилацетат, метилацетат и этилкаприлат. В вытяжке печени общая концентрация сложных эфиров составила 9,76 мг/кг фарша и была выше в 13 раз, чем у клинически здоровых свиней (табл.6).
В вытяжке легких при метастронгилезе были выявлены сложные эфиры: концентрация метилкаприлата была выше в 1,1 раза, этилкаприлата - в 11,2 раза, чем у клинически здоровых свиней. В опытной группе были зарегистрированы этилацетат, концентрация которого составила 0,74 мг/кг фарша, метилацетат - 6,18 мг/кг фарша, этилформиат - 2,70 мг/кг фарша, в отличие от контрольной группы. В изучаемых группах не был зарегистрирован сложный эфир изоамилацетат. В вытяжке легких общая концентрация сложных эфиров составила 11,46 мг/кг фарша и была практически на одном уровне с концентрацией клинически здоровых свиней (табл.6).
При метастронгилезе в вытяжке селезенки выявлены сложные эфиры: концентрация этилацетата была выше в 11 раз, метилацетата - в 2,2 раза, этилкаприлата - в 3,5 раза, чем у клинически здоровых свиней. В опытной группе были зарегистрированы: метилкаприлат, концентрация которого составила 1,73 мг/кг фарша, этилформиат - 1,41 мг/кг фарша, в отличие от контрольной группы. В изучаемых группах не был зарегистрирован сложный эфир изоамилацетат. В вытяжке селезенки общая концентрация сложных эфиров составила 58,87 мг/кг фарша и была выше в 2,6 раза, чем у клинически здоровых свиней (табл.7).
В вытяжке почечной ткани были выявлены сложные эфиры: концентрация метилкаприлата была выше в 1,4 раза, этилформиата - 1,5 раза и, напротив, была ниже этилацетата - в 1,3 раза, чем у клинически здоровых свиней. В изучаемых группах не были зарегистрированы изометилацетат, метилацетат и этилкаприлат. В вытяжке селезенки общая концентрация сложных эфиров составила 10,50 мг/кг фарша и была выше в 1,2 раза, чем у клинически здоровых свиней (табл.7).
При метастронгилезе общая концентрация сложных эфиров составила: в вытяжке длиннейшей мышцы спины - 20,01 мг/кг, в вытяжке сердечной мышцы - 25,70 мг/кг, в вытяжке печени - 9,76 мг/кг, в вытяжке легких - 11,46 мг/кг, в вытяжке селезенки - 58,87 мг/кг, в вытяжке почек - 10,50 мг/кг. Наибольшее содержание сложных эфиров отмечено в вытяжке селезенки, которое было выше в 5 раз, чем в вытяжке легких, в 6 раз - в вытяжке печени, в 3 раза - в вытяжке длиннейшей мышцы спины, в 2,3 раза - в вытяжке сердечной мышцы (табл.5).
Среди спиртов при метастронгилезе свиней в вытяжке длиннейшей мышце спины были зарегистрированы: метанол, концентрация которого составила 31,22 мг/кг, изоамиловый спирт - 4,72 мг/кг. В вытяжке длиннейшей мышце спины концентрация фенилэтанола и 1-гексанола была практически на одном уровне с концентрацией у клинически здоровых животных. В опытной группе 1,3-пропиленгликоль был ниже в 2 раза, чем в контрольной. В отличие от контрольной в опытной группе не был зарегистрирован 2,3-бутиленгликоль (табл.5).
При метастронгилезе в сердечной мышце были зарегистрированы спирты: метанол, концентрация которого составила 16,15 мг/кг, фенилэтанола - 5,19 мг/кг, 1-пропанола - 1,77 мг/кг, 1-гексанола - 1,85 мг/кг. В опытной группе концентрация изобутанола была выше в 4,4 раза, 1-бутанола и 2,3-бутиленгликоля - в 2 раза (табл.5).
В тканях печени при метастронгилезе были зарегистрированы спирты: этанол, концентрация которого составила 0,02об.%, изобутанола - 0,21 мг/кг, 2-пропанола - 4,76 мг/кг, 1-амилола - 0,83 мг/кг, 1-гексанола - 0,80 мг/кг. В опытной группе концентрация фенилэтанола была выше в 1,1 раза, 2,3-бутиленгликоля - в 33 раза, чем в контрольной группе (табл.6).
В легочной ткани при метастронгилезе были зарегистрированы спирты: метанол, концентрация которого составила 8,90 мг/кг, этанола - 0,03об.%, фенилэтанола - 12,07 мг/кг, изоамилового - 4,42 мг/кг, 1-амилола - 3,73 мг/кг, 1 гексанола - 5,22 мг/кг, 1-бутанола - 0,29 мг/кг. В опытной группе концентрации 2,3-бутиленгликоля была выше в 3,3 раза и 1,3-пропиленгликоля - в 1,3 раза, чем в контрольной группе (табл.6).
При метастронгилезе в тканях селезенки были зарегистрированы спирты: метанол, концентрация которого составила 9,44 мг/кг, этанола - 0,02об.%, фенилэтанола - 8,33 мг/кг, 1-пропанола - 2,03 мг/кг, 2-пропанола - 1,96 мг/кг, изоамилового - 2,33 и 1,3-пропиленгликоля - 11,44 мг/кг. В опытной группе концентрация 2,3-бутиленгликоля была выше в 10 раз, 1-гексанола - 1,7 раза, чем в контрольной группе (табл.7).
В почечной ткани при метастронгилезе были зарегистрированы спирты: этанол, концентрация которого составила 0,02об.%, изоамилового - 1,61 мг/кг, 1-амилола - 1,47 мг/кг. В опытной группе концентрация 1-гексанола и метанола была выше в 1,6 раза и в 1,7 раза соответственно, фенилэтанола и 1,3-пропиленгликоля - в 1,3 раза, 2,3-бутиленгликоля - в 2,5 раза, чем в контрольной группе (табл.7).
При метастронгилезе свиней концентрация этиллактата (полисахарид) в вытяжке сердечной мышцы и почек была ниже в 7 раз и 5 раз соответственно по сравнению с клинически здоровыми животными. В опытной группе концентрация этиллактата в тканях печени и легких составила 3,58 мг/кг и 0,39 мг/кг соответственно и в то же время не выявлена в длиннейшей мышце спины и в тканях селезенки (табл.5).
При метастронгилезе свиней концентрация диацетила (кетон) в вытяжке почек была выше в 1,6 раза по сравнению с клинически здоровыми животными. В опытной группе концентрация этиллактата сердечной мышцы составила 4,54 мг/кг, в тканях легких - 2,56 мг/кг, в тканях селезенки - 5,27 мг/кг и не выявлена в длиннейшей мышце спины и в тканях печени (табл.7).
В результате проведенных исследований при инвазии крупного рогатого скота Echinococcus granulosus общая концентрация карбоновых кислот составила 46,95 мг/кг и была ниже в 1,3 раза в длиннейшей мышце спины, 34,59 мг/кг (в 1,2 раза) - в сердечной мышце (табл.8), 16,17 мг/кг (в 2 раза) - селезенки и, напротив, выше в 10 раз (149,28 мг/кг) в тканях печени, в 3,4 раза (105,10 мг/кг) - в легочной ткани (табл.9), в 2 раза (88,10 мг/кг) - почек (табл.10), чем у клинически здоровых животных
При эхинококкозе общая концентрация альдегидов составила 23,02 мг/кг и была ниже в 1,6 раза в длиннейшей мышце спины, 6,82 мг/кг (в 1,7 раза) - селезенки и, напротив, выше в 19,4 раза (46,90 мг/кг) в тканях печени, в 4 раза (48,70 мг/кг) - в легочной ткани, в 2 раза (117,95 мг/кг) - в сердечной мышце, в 1,1 раза (18,95 мг/кг) - почек, чем у клинически здоровых животных.
При эхинококкозе общая концентрация сложных эфиров составила 10,48 мг/кг и была выше в 2 раза в длиннейшей мышце спины, 4,49 мг/кг (в 3,7 раза) - селезенки, 7,47 мг/кг (в 3 раза) - в тканях печени, 9,68 мг/кг (в 3,3 раза) - в легочной ткани, 5,25 мг/кг (в 3 раза) - в сердечной мышце, 11,26 мг/кг (в 9 раз) - почек, чем у клинически здоровых животных.
При эхинококкозе в длиннейшей мышце спины были зарегистрированы спирты: метанол, концентрация которого составила 2,89±0,05 мг/кг, изоамиловый спирт - 2,76±0,03 мг/кг, этанол - 0,06±0,001 об.%. Концентрация 2,3-бутиленгликоля была выше в 1,1 раза, чем у клинически здоровых животных.
При эхинококкозе в сердечной мышце были зарегистрированы спирты: метанол, концентрация которого составила 3,05±0,02 мг/кг, изоамиловый спирт - 3,82±0,05 мг/кг. Концентрация 2,3-бутиленгликоля была выше в 5 раз, этанола - в 8 раз, чем у клинически здоровых животных.
При эхинококкозе в тканях печени были зарегистрированы спирты: метанол, концентрация которого составила 10,76±0,05 мг/кг, изоамиловый спирт - 1,78±0,02 мг/кг, 1-амилол - 1,83±0,03 мг/кг, 2,3-бутиленгликоль - 30,88±0,21 мг/кг, 1,3-пропиленгликоль - 10,96±0,07 мг/кг (табл.9).
В легочной ткани при эхинококкозе были зарегистрированы спирты: метанол, концентрация которого составила 4,75±0,05 мг/кг, изоамиловый спирт - 1,25±0,01 мг/кг, 2,3-бутиленгликоль - 32,50±0,34 мг/кг, 1,3-пропиленгликоль - 7,36±0,05 мг/кг, этанол - 0,01±0,001 мг/кг. Концентрация 1-амилола была выше в 1,4 раза, чем у клинически здоровых животных (табл.9).
В тканях селезенки при эхинококкозе были зарегистрирован метанол, концентрация которого составила 2,80±0,05 мг/кг. В почечной ткани концентрация метанола составила 12,57±0,09 мг/кг, 2,3-бутиленгликоля - 2,84±0,04 мг/кг, фенилэтанола была выше в 2,2 раза, чем у клинически здоровых животных (табл.10).
При эхинококкозе на газо-жидкостном хроматографе зарегистрирован диацетил (кетон), концентрация которого составила в сердечной мышце 10,08±0,04 мг/кг, в тканях печени - 2,84±0,03 мг/кг.
В результате проведенных исследований при инвазии крупного рогатого скота Dicrocoelium lanceatum общая концентрация карбоновых кислот составила 35,13 мг/кг и была ниже в 1,7 раза в длиннейшей мышце спины, в 1,2 раза (35,47 мг/кг) - почек и, напротив, выше в 2 раза (83,46 мг/кг) - в сердечной мышце, в 6 раз (85,49 мг/кг) в тканях печени, в 1,5 раза (47,51 мг/кг) - в легочной ткани, в 1,2 раза (35,25 мг/кг) - селезенки, чем у клинически здоровых животных.
При дикроцелиозе общая концентрация альдегидов составила 229,25 мг/кг и была выше в 4 раза в сердечной мышце, в 22 раза (52,16 мг/кг) в тканях печени - в 16 раз (178,37 мг/кг) - в легочной ткани, в 6 раз (75,64 мг/кг) - селезенки, в 1,7 раза (32,28 мг/кг) - почек, чем у клинически здоровых животных. Концентрация альдегидов в длиннейшей мышце спины была практически на одном уровне с клинически здоровыми животными.
Общая концентрация сложных эфиров при дикроцелиозе составила 5,74 мг/кг и была выше в 3,2 раза в сердечной мышце, 8,27 мг/кг (в 3 раза) - в тканях печени, 5,41 мг/кг (в 1,8 раза) - в легочной ткани, 5,02 мг/кг (в 4 раза) - селезенки, 58,15 мг/кг (в 44 раза) - почек, чем у клинически здоровых животных. Концентрация альдегидов в длиннейшей мышце спины была практически на одном уровне с клинически здоровыми животными.
При дикроцелиозе в длиннейшей мышце спины были зарегистрированы спирты: метанол, концентрация которого составила 15,02±0,09 мг/кг, этанола - 0,02±0,01 об.%, 1,3-бутиленгликоль - 23,06±0,06.
В сердечной мышце при дикроцелиозе были зарегистрированы спирты: метанол, концентрация которого составила 10,71±0,09 мг/кг, изоамиловый спирт - 7,40±0,06 мг/кг. Концентрация этанола была выше в 3 раза, чем у клинически здоровых животных.
При дикроцелиозе в тканях печени были зарегистрированы спирты: метанол, концентрация которого составила 24,12±0,09 мг/кг, изоамиловый спирт - 1,78±0,02 мг/кг, 1-амилол - 6,78±0,07 мг/кг, 1,3-пропиленгликоль - 24,21±0,12 мг/кг.
В легочной ткани при дикроцелиозе были зарегистрированы спирты: метанол, концентрация которого составила 11,05±0,12 мг/кг, изоамиловый спирт - 1,22±0,02 мг/кг, 2,3-бутиленгликоль - 3,21±0,03 мг/кг, 1,3-пропиленгликоля - 19,70±0,25 мг/кг, этанол - 0,03±0,01 мг/кг. Концентрация 1-амилола была выше в 1,4 раза, чем у клинически здоровых животных.
При дикроцелиозе в тканях селезенки были зарегистрирован метанол, концентрация которого составила 16,80±0,10 мг/кг, 2,3-бутиленгликоля - 4,39±0,04 мг/кг. В почечной ткани концентрация метанола составила 6,29±0,04 мг/кг, 1-амилола - 2,33±0,03 мг/кг, 1,3-пропиленгликоля - 1,72±0,03 мг/кг.
При дикроцелиозе на газо-жидкостном хроматографе зарегистрирован диацетил (кетон), концентрация которого составила в длиннейшей мышце спины 4,34±0,03 мг/кг, в сердечной мышце - 4,30±0,05 мг/кг, в тканях печени - 5,32±0,06 мг/кг, в легочной ткани - 4,06±0,07 мг/кг, в тканях селезенки - 4,27±0,03 мг/кг, почечной ткани - 2,59±0,06 мг/кг.
Таким образом, при метаболизме гельминтов (Metastrongylus elongates, Dicrocoelium lanceatum и Echinococcus granulosus) в тканях и органах животных накапливается значительное количество уксусного альдегида и продуктов его реакции со спиртами - ацеталей. Уксусный альдегид является не только побочным продуктом спиртового брожения, но и продуктом окисления спирта, который образуется в процессе жизнедеятельности гельминтов. Содержание уксусного альдегида может служить критерием степени окисленности тканей животных, который позволяет достоверно определить качество мяса и субпродуктов. Последнее объясняется функциональными особенностями органов и тканей, а также наличием продуктов метаболизма гельминтов, которые характеризовались различной степенью окисленности.
Уксусный альдегид, образовавшийся в процессе жизнедеятельности гельминтов, взаимодействует, в первую очередь, с этиловым спиртом, образуя ацеталь. Продуктом реакции ацетальдегида является диацетил, относящийся к классу кетонов, представлен жидкостью желтого цвета, его наличие характеризует окисленность мышечной ткани и различных органов и особенно пораженного гельминтами органа, который ухудшает органолептические показатели органов и тканей, так как имеет запах прогорклого сливочного масла. При окислении мышечной ткани и различных органов животного образуется избыточное количество ацетоина. Образовавшийся в больших концентрациях фурфурол придает запах перегретых отрубей, ухудшающий качество продуктов убоя животных. Из летучих кислот самую негативную оценку имеет масляная кислота, которая придает продуктам запах прогорклого сливочного масла.
Следовательно, по концентрации летучих органических веществ можно установить, что при метастронгилезе свиней, дикроцелиозе и эхинококкозе крупного рогатого скота внутренние органы следует направлять на техническую утилизацию, туши - на промышленную переработку (изготовление вареных и варено-копченых колбас) в связи окисленностью тканей и органов животных.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
СПОСОБ ОЦЕНКИ КАЧЕСТВА ПРОДУКТОВ УБОЯ ЖИВОТНЫХ | 2009 |
|
RU2392618C1 |
СПОСОБ ОЦЕНКИ КАЧЕСТВА РЫБ, ЗАРАЖЕННЫХ ГЕЛЬМИНТАМИ | 2009 |
|
RU2403565C1 |
СПОСОБ ОЦЕНКИ КАЧЕСТВА ПРОДУКТОВ УБОЯ ЖИВОТНЫХ | 2009 |
|
RU2402763C1 |
СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ПИТАТЕЛЬНОЙ ЦЕННОСТИ РЫБ, ЗАРАЖЕННЫХ ГЕЛЬМИНТАМИ | 2009 |
|
RU2403551C1 |
СПОСОБ ОТКОРМА БЫЧКОВ НА ЭКОЛОГИЧЕСКИ ЗАГРЯЗНЕННЫХ ТЕРРИТОРИЯХ | 2009 |
|
RU2402206C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ПОЛУФАБРИКАТА ИЗ МЯСА СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ И ПТИЦЫ | 2008 |
|
RU2391876C1 |
Лиофилизат на основе лигандов к простат-специфическому мембранному антигену (ПСМА) для приготовления радиофармацевтической композиции в форме раствора для инъекций для лечения рака предстательной железы, радиофармацевтическая композиция на ее основе для лечения рака предстательной железы и способ приготовления радиофармацевтической композиции | 2023 |
|
RU2817970C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЭКСТРАКТА, ОБЛАДАЮЩЕГО ПРОТИВОЛЕПРОЗНОЙ АКТИВНОСТЬЮ | 2009 |
|
RU2410111C1 |
СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ СОДЕРЖАНИЯ СВИНЦА В ОРГАНАХ СВИНЕЙ | 2005 |
|
RU2285920C1 |
ЭНЕРГЕТИЧЕСКИЙ БЕЗАЛКОГОЛЬНЫЙ НАПИТОК | 2010 |
|
RU2423887C1 |
Изобретение относится к области ветеринарной экспертизы. Способ заключается в том, что берут биопробу, в качестве которой используют длиннейшую мышцу спины, сердечную мышцу, печень, легкие, селезенку и почки, измельчают, получают вытяжку и помещают в газовый хроматограф. Определяют общую концентрацию карбоновых кислот, альдегидов, сложных эфиров и спиртов. Сравнивают полученные показатели с аналогичными показателями в биопробе продуктов убоя здоровых животных. При изменении показателей общей концентрации карбоновых кислот, альдегидов, сложных эфиров и спиртов в исследуемой биопробе относительно аналогичных показателей в биопробе продуктов убоя здоровых животных, продукты убоя животных считают зараженными гельминтами и оценивают как недоброкачественные. Способ позволяет упростить процесс исследований и снизить трудозатраты при оценке качества продуктов убоя животных. 9 табл.
Способ оценки качества продуктов убоя животных, отличающийся тем, что берут биопробу, в качестве которой используют длиннейшую мышцу спины, сердечную мышцу, печень, легкие, селезенку и почки, измельчают, получают вытяжку, помещают в газовый хроматограф, определяют общую концентрацию карбоновых кислот, альдегидов, сложных эфиров и спиртов, сравнивают полученные показатели с аналогичными показателями в биопробе продуктов убоя здоровых животных, и при изменении показателей общей концентрации карбоновых кислот, альдегидов, сложных эфиров и спиртов в исследуемой биопробе относительно аналогичных показателей в биопробе продуктов убоя здоровых животных, продукты убоя животных считают зараженными гельминтами и оценивают как недоброкачественные.
ХМЕЛЬКОВ Я.Т | |||
Этиологическая структура, патогенез и лечение вторичных застойных дистоний преджелудков у коров, автореф | |||
диссерт | |||
на соиск | |||
уч | |||
степ | |||
канд | |||
вет | |||
наук | |||
- Белгород, 2006, с.8 | |||
КРЫЛОВА Н.Н | |||
и др | |||
Биохимия мяса | |||
- М.: Пищепромиздат, 1957, с.337 | |||
ГУГУШВИЛИ Н.Н | |||
Ветеринарно-санитарная экспертиза при инфекционных и инвазионных болезнях животных | |||
- Краснодар, 2000, с.343. |
Авторы
Даты
2011-04-10—Публикация
2009-03-03—Подача