Изобретение относится к водной токсикологии и токсикогенетике и может быть использовано для оценки генотоксических эффектов водорастворимых соединений, в частности для оценки эколого-гигиенического состояния водоемов, испытывающих постоянное воздействие промышленных сточных вод и их растворимых компонентов, по комплексу количественных показателей.
Известен способ оценки генотоксичности оценки загрязнителей прибрежных морских акваторий по частоте хромосомных аномалий у представителя равноногих рачков отряда Isopoda (Jaera.sp) [Самбук И.С., Варгузина Е.Н., Дукельская А.В., Барабанова Л.В. Оценка частоты хромосомных аномалий у Jaera.sp в различных биотапах Белого моря. - Тезисы докладов IV научной сессии морской биологической станции Санкт-Петербургского Государственного университета. - Санкт-Петербуг, 2003, с.18-19]. Способ основан на цитогенетическом анализе кариотипов особей, различающихся средой обитания, учете хромосомных аберраций ана-телофазным методом.
Существенным недостатком этого метода является отсутствие оценки токсичности и оценивание мутагенности только по частоте хромосомных аномалий. Учет генных мутаций предлагаемым методом не проводится, хотя они являются наиболее значимыми в прогностическом отношении.
Известен способ биотестирования загрязнителей [Положительное решение о выдаче патента №2008105242. Способ биотестирования активности препаратов, полученных из дождевых червей. Стом Д.И., Балаян А.Э., Полехина С.В., Быбин В.А.]. Способ основан на помещении червей (олигохет) в испытуемый раствор и использовании в качестве тест-реакции изменения поведения объекта (сползание в клубок).
Существенным недостатком этого способа является отсутствие количественных показателей для оценки тестируемого агента, не разработана критериальная оценка уровня мутагенности, а также отсутствует валидизация показателей сравнения биологической активности исследуемого загрязнителя со стандартным токсикантом и мутагеном.
Известен способ оценки вредного влияния токсического стресса на баланс энергии подопытных организмов по локализации клеточной энергии (ЛКЭ) [The missing biomarker link: relationships between effects on the cellular energy allocation biomarker of toxicant-stressed Daphnia magna and corresponding population characteristics / De Coen Wim M., Janssen Colin R. // Environ. Toxicol. and Chem., 2003. 22, №7. - С.1632-1641]. Способ основан на количественной оценке изменений имеющихся запасов энергии, Е[а] (общее содержание карбогидратов, протеина и липидов) и поглощения энергии Е[с] (активность переноса электронов) у новорожденных особей Daphnia magna, которых в течение 96 ч подвергают воздействию токсических веществ. Авторы сравнивают внутренний отклик организмов с параметрами всей популяции, такими как внутренняя скорость естественной прибыли и среднюю общую продуктивность на одну женскую особь. Наблюдаемые снижения значений ЛКЭ являются результатом как снижения Е[а], так и увеличения Е[с].
Существенным недостатком данного способа является отсутствие оценки генетических эффектов токсикантов.
Известен способ биологической оценки токсичности воды и устройство для биологической оценки токсичности воды [А.С. СССР №1068083 (СССР). Кл. G01N 33/18, 1982]. Способ основан на помещении дафний в специальное устройство с последующей регистрацией изменения физиологического состояния под действием токсикантов. Токсичность оценивают по изменению частоты движения эпиподитов ракообразных.
Недостатком данного способа является оценка токсичности только по одному показателю - частоте движения эпиподитов, для регистрации которого требуется специальное устройство. Кроме того, способ не позволяет оценивать мутагенность испытуемых растворов.
Наиболее близким к изобретению по технической сущности и достигаемому результату является «Способ оценки токсичности водных сред» [А.С.№1234770 (СССР). Заявл. 25.06.84, №3765741/23-26; МКИ G01N 33/18// С02А 3/34. Павленко В.В., Денисова Т.П. - Опубл. 30.05.86, Бюл. №20]. Способ оценивает токсические и генетические эффекты водных растворов на дафниях, учитывая гибель и плодовитость особей в исходном и втором поколениях.
Недостатком данного способа является использование несинхронизированной культуры дафний, вследствие чего получаемые результаты имеют выраженную гетерогенность. Кроме того, уровень генотоксической активности сравнивается только с контролем (вода), что не дает возможности оценивать их активность в сравнении с эталонными токсикантами и мутагенами на основе изоэффективных концентраций; не разработаны оценочные шкалы, а при расчете показателей мутагенности не учитывается суммарное мутирование: индуцированное и спонтанное.
Задачей предлагаемого изобретения является разработка способа оценки генотоксичности водных сред, повышающего точность оценки токсических и генетических эффектов, индуцированных исследуемыми агентами.
Поставленная задача решается предлагаемым способом, включающим приготовление опытных проб, получение синхронизированной культуры дафний от одного наиболее плодовитого клона из популяции дафнии за исключением лабораторной популяции, экспонирование одновозрастных, партеногенетических дафний из синхронизированной культуры параллельно в исследуемом растворе (опыт), в воде (К-контроль), в растворе эталонного токсиканта (Кт +), в растворе эталонном мутагена (Км +), регистрацию физиологического состояния у особей исходного поколения (F0), определение коэффициентов токсичности, а именно коэффициента гибели (L0) и коэффициента плодовитости (Р0), регистрацию физиологического состояния дафний второго поколения (F2), определение суммарной мутагенной активности по формуле &=foп/fк, где fоп - частота появления летальных и сублетальных мутаций в опыте, а fк - частота появления летальных и сублетальных мутаций в контроле, сравнение ее значения с изоэффективными концентрациями эталонных мутагенов и токсикантов, выделение лимитирующего показателя вредности, установление уровня генотоксической активности на основании полученных результатов.
Способ осуществляется следующим образом.
Используют дафний из любой популяции дафний за исключением лабораторной популяции. От дафний используемой популяции получают синхронизированную двухсуточную тест-культуру одного вымета [Бакаева Е.Н., Никаноров A.M. Гидробионты в оценке качества вод суши. - М.: Наука, 2006. - с.106, с.194, с.215-216]. Такая культура обладает достаточной стабильностью и однородностью по генетическим и физиолого-биохимическим свойствам, что позволяет снизить ошибку опыта [Строганов Н.С., Колосова Л.В. Ведение лабораторной культуры и определение плодовитости дафний в ряде поколений. - Методики биологических исследований по водной токсикологии. - М.: Наука, 1971. -с.213-214].
Дафний из полученной синхронизированной тест-культуры экспонируют в водном растворе агента. Выживших после экспонирования особей помещают в чистую водную среду. Параллельно опытным вариантам ставят три контроля. В первом дафний содержат в дехлорированной водопроводной воде (К), во втором - в растворе эталонного токсиканта (Кт +), в третьем - в растворе эталонного мутагена (Км +).
У обработанных дафний (F0) регистрируют гибель и плодовитость выживших особей. Сравнивают показатели гибели обработанных особей, показатели плодовитости выживших особей исходного поколения с соответствующими величинами в контролях (К, Кт + и Км +).
Количественным выражением изменения гибели и плодовитости исходного поколения, индуцированного агентами за счет их токсичности, являются коэффициенты гибели (L0) и плодовитости (Р0).
Коэффициент гибели L0 определяют как отношение величины летального эффекта у дафний F0 в опытном варианте к контрольному: .
Коэффициент плодовитости Р0 определялся отношением величины плодовитости дафний F0 в опытном варианте к соответствующему показателю в контроле: .
Анализ величин показателей L0 и Р0 позволяет сделать заключение о степени выраженности токсической активности агента. Для ее определения используют оценочные шкалы, где величина определяемого показателя коррелирует со степенью активности эталонного токсиканта (таблица 1, 2).
Во втором поколении (F2) учитывают появление мутантных особей, причем отдельно регистрируют индуцированных (опыт) и спонтанно возникших (контроль-вода) мутантов. На основании полученных данных рассчитывают коэффициент суммарной мутагенности &, по которому оценивают степень мутагенной активности (таблица 3):
,
где foп. - частота появления мутантов в опыте, fк. - частота появления мутантов в контроле.
Степень генотоксической опасности исследуемых агентов определяется по ранее разработанным шкалам (табл.1-3) [Денисова Т.П.Токсико-генетический подход к санитарно-гигиенической оценке промышленных сточных вод и их химических компонентов. Дис., Иркутск, 2006, с.56, с.58].
Пример 1. С целью получения синхронизированной культуры популяции любого вида дафний, отличающейся физиологической и генетической однородностью, производят следующие операции. От дафний, взятых из любой популяции, за исключением лабораторной популяции получают одновозрастное потомство, из которого отбирают 8-10 партеногенетических самок, рассаживают их индивидуально в сосуды с дехлорированной водой. Плотность посадки: 1 особь на 50 мл воды. Через 12-18 дней от каждой из них получают до 300 и более одновозрастных партеногенетических потомков (рисунок 1). Потомки от каждой материнской особи не смешиваются. Для опыта отбирают потомство одного наиболее плодовитого клона.
В качестве примеров в предлагаемом способе использовали дафний из популяций различных водоемов Иркутской области (р.Ангара и Братское водохранилище): Daphnia galeata, Daphnia longispina, Daphnia cristata.
Пример 2. Определяют токсичное действие стандартного токсиканта - фенола в диапазоне концентраций 0,01 мг/л - 100,0 мг/л. По десять дафний из синхронизированной культуры в двухсуточном возрасте помещают в аквариумы с растворами фенола на каждый опытный образец. Параллельно опытному образцу ставят контрольный вариант с водой. Плотность посадки во всех вариантах - 10 особей на 500 мл среды. В течение 24 часов экспонирования дафний учитывают их гибель. После окончания экспозиции выживших особей переносят в аквариумы с чистой водой и содержат в ней до достижения ими 20-суточного возраста. При этом учитывают гибель дафний и плодовитость выживших.
По результатам повторных опытов рассчитывают среднюю гибель дафний F0, определяя достоверность отличий по сравнению с контролем. В растворах фенола от 10,0 мг/л до 100 мг/л все дафнии погибают, а в растворах от 1,0 мг/л до 0,01 мг/л выживает часть дафний.
Фенол в концентрации 1,0-0,01 мг/л индуцирует снижение плодовитости обработанных особей F0 по сравнению с контрольным уровнем (Р<0,05).
На основании изложенного фенол оценивают как чрезвычайно токсичное соединение в диапазоне концентраций от 1,0 до 100,0 мг/л (D.longispina, D.cristatd). Для D.galeata фенол является чрезвычайно токсичным соединением в диапазоне концентраций от 10,0 до 100,0 мг/л, высокую токсичность он обнаруживает при концентрации 1,0 мг/л.
При концентрации 0,1 мг/л фенол проявляет себя как токсичный, а при концентрации 0,01 мг/л - как умеренно токсичный агент для всех видов дафний (табл.4).
Пример 3. Исследуют мутагенное действие супермутагена N-НММ (N-нитрозо-N-метилмочевины).
Двухсуточных дафний из подготовленной синхронизированной культуры помещают в аквариумы с растворами N-HMM по 10 штук на каждый опытный образец. Исследуют растворы N-HMM в диапазоне концентраций 0,1 мг/л - 100,0 мг/л. Параллельно опытному образцу ставят контрольный вариант с водой. Плотность посадки во всех вариантах - 10 особей на 500 мл среды. Дафний экспонируют 24 ч. После окончания экспозиции выживших особей переносят в аквариумы
с чистой водой и содержат в ней до достижения ими 20-суточного возраста. Все появившееся потомство (первое поколение - F1) пересаживают в аквариумы с чистой водой и содержат там до достижения ими 20-суточного возраста. В течение этого периода появляющееся от них потомство (второе поколение - F2) пересаживают в аквариумы с чистой водой. За появившимися особями второго поколения ежедневно наблюдают и учитывают их гибель и плодовитость.
В таблице 5 представлены данные о токсичности N-HMM. Растворы N-HMM в концентрациях 50,0 и 100,0 мг/л индуцируют у всех видов давний несовместимые с жизнью физиологические нарушения, приводящие к гибели дафний.
При концентрации 10,0 мг/л N-НММ характеризуется как токсичный агент: L0 в диапазоне от 6,8 до 7,8 (табл.5). Более низкие концентрации N-HMM в основном характеризуются умеренной токсичностью по показателю гибели.
У всех выживших особей во всех опытных вариантах с N-НММ отмечают снижение плодовитости дафний (Р≤0,05). Это свидетельствует о токсичности низких концентраций N-HMM (Р0, табл.5).
Итак, N-HMM проявляет чрезвычайную токсичность при концентрациях от 50,0 до 100,0 мг/л. При концентрации 10,0 мг/л N-HMM характеризуется как токсичный агент, а при концентрациях от 5,0 до 0,1 мг/л - как умеренный токсикант, на что указывают коэффициенты L0 и Р0 (табл.5).
Генетические эффекты, индуцированные N-HMM, оценивают среди дафний F2 - внуков особей, выживших после обработки N-HMM. В таблице 6 представлены данные о мутагенной активности N-HMM для исследуемых популяций дафний.
N-HMM индуцирует появление сублетальных мутантов, частота которых в основном достоверно выше контрольного значения (Р≤0,05) и выражается в гибели дафний второго поколения.
Так, в популяции D.galeata дафнии второго поколения в опытных вариантах гибнут в 1,5-3,4 раза больше, чем в контроле. В популяции D.longispina эти различия составляют 1,8-2,0, а в популяции D.cristata 1,04-2,5 раза.
Летальные мутации, индуцированные N-HMM, проявляются в достоверном снижении плодовитости самок F2 по сравнению контролем (Р≤0,05). Плодовитость дафний второго поколения в популяции D.galeata ниже контрольной в 2,1-4,8 раза; в популяции D.longispina эти различия составляют 2,5-8,3 раза, а в популяции D.cristata - 1,3-2,7.
Полученные данные указывают на то, что в популяциях сохраняются сублетальные и летальные мутации, которые являются компонентами суммарной мутагенности N-HMM.
Все исследованные растворы N-HMM генетически активны, на это указывает величина коэффициента & (табл.7): 100>&>10. N-HMM в исследованном диапазоне концентраций оценивают как мутаген средней активности.
Таким образом, N-HMM обладает токсичным и средним мутагенным действием на дафний исследованных популяций: D.galeata, D.longispina, D.cristata. Уровень биологической активности N-HMM зависит от ее концентрации.
Пример 4. Исследуют токсичное и мутагенное действие сточной воды ОАО «ЦКК», прошедшей полный технологический цикл очистки перед сбросом в природный водоем.
Сточные воды, прошедшие все этапы очистки, достоверно снижают жизнеспособность дафний всех трех популяций (табл.8): превышение по показателю гибели составляет 7,8-10,8 при экспозиции 24 часа. При экспозиции 96 часов все дафнии D.longispina погибают, в популяциях D.galeata и D.cristata часть дафний выживает.
Плодовитость выживших дафний во всех опытных вариантах ниже контрольного значения в 2 и более раза (табл.8).
Во втором поколении (в опытных вариантах) обнаруживают мутантных особей (табл.9). У дафний всех трех популяций индуцированы сублетальные мутации, выражающиеся в гибели особей, и летальные мутации, проявляющиеся в снижении плодовитости.
В целом, очищенные неразбавленные сточные воды оценивают как мутагены средней активности (табл.10).
Таким образом установлено на всех трех популяциях дафний, что уровень генотоксичности неразбавленных очищенных сточных вод увеличивается от длительности их воздействия. Анализируемые сточные
воды при экспозиции 96 час оценивают как чрезвычайно токсичные, а при экспозиции 24 часа - как, в основном, токсичные со средней мутагенной активностью. Лимитирующим показателем вредности является мутагенность (табл.11).
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
СПОСОБ ОЦЕНКИ ГЕНОТОКСИЧНОСТИ ВОДНЫХ СРЕД | 2011 |
|
RU2491546C2 |
Способ оценки токсичности водных сред | 1984 |
|
SU1234770A1 |
СПОСОБ БИОМОНИТОРИНГА ВОДОЕМА С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ ГЕНЕТИЧЕСКОГО СОСТАВА ПОПУЛЯЦИЙ ХИРОНОМИД | 2014 |
|
RU2569354C1 |
СПОСОБ БИОТЕСТИРОВАНИЯ ТОКСИЧНОСТИ ВОДНОЙ СРЕДЫ | 2011 |
|
RU2462707C1 |
СПОСОБ ЭКОЛОГИЧЕСКОЙ ОЦЕНКИ ОСТРОЙ ТОКСИЧНОСТИ ВОДЫ | 2004 |
|
RU2279072C2 |
СПОСОБ БИОТЕСТИРОВАНИЯ ТОКСИЧНОСТИ ВОДЫ НА НИЗШИХ РАКООБРАЗНЫХ ЖИВОТНЫХ | 2008 |
|
RU2377560C1 |
СПОСОБ ОЦЕНКИ ТОКСИЧЕСКОГО ДЕЙСТВИЯ ПЕСТИЦИДОВ НА ВОДНЫЕ ОБЪЕКТЫ | 2009 |
|
RU2446396C2 |
СПОСОБ ПРОФИЛАКТИКИ И КОРРЕКЦИИ ЦИТОГЕНЕТИЧЕСКИХ НАРУШЕНИЙ | 2012 |
|
RU2504392C1 |
Способ прогнозирования степени риска развития онкологических заболеваний населения, использующего воду открытых водоемов и водотоков для хозяйственно-питьевого водоснабжения | 2021 |
|
RU2794149C1 |
СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ТОКСИЧНОСТИ ВОДНЫХ СРЕД | 2008 |
|
RU2369867C1 |
Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к водной токсикологии и токсикогенетике. Предложен способ оценки генотоксической активности водных сред. Получают синхронизированную культуру дафний от одного наиболее плодовитого клона из популяции дафнии за исключением лабораторной популяции. Экспонируют одновозрастные, партеногенетические дафнии из синхронизированной культуры параллельно в исследуемом растворе (опыт), в воде (К-контроль), в растворе эталонного токсиканта (Кт+), в растворе эталонного мутагена (Км+). Регистрируют физиологическое состояние у особей исходного поколения (F0). Определяют коэффициенты токсичности, а именно коэффициент гибели (L0) и коэффициент плодовитости (Р0). Регистрируют физиологическое состояние дафний второго поколения (F2). Определяют суммарную мутагенную активность по формуле: &=foп/fк, где foп - частота появления летальных и сублетальных мутаций в опыте, a fк - частота появления летальных и сублетальных мутаций в контроле. Сравнивают ее значения с изоэффективными концентрациями эталонных мутагенов и токсикантов. Выделяют лимитирующий показатель вредности и устанавливают уровень генотоксической активности на основании полученных результатов. Изобретение позволяет повысить точность оценки токсических и генетических эффектов, индуцированных исследуемыми агентами. 11 табл., 4 пр., 1 ил.
Способ оценки генотоксической активности водных сред, включающий приготовление опытных проб, получение синхронизированной культуры дафний от одного наиболее плодовитого клона из популяции дафнии, за исключением лабораторной популяции, экспонирование одновозрастных, партеногенетических дафний из синхронизированной культуры параллельно в исследуемом растворе (опыт), в воде (К-контроль), в растворе эталонного токсиканта (Кт+), в растворе эталонного мутагена (Км+), регистрацию физиологического состояния у особей исходного поколения (F0), определение коэффициентов токсичности, а именно коэффициента гибели (L0) и коэффициента плодовитости (Р0), регистрацию физиологического состояния дафний второго поколения (F2), определение суммарной мутагенной активности по формуле: &=foп/fк, где foп - частота появления летальных и сублетальных мутаций в опыте, a fк - частота появления летальных и сублетальных мутаций в контроле, сравнение ее значения с изоэффективными концентрациями эталонных мутагенов и токсикантов, выделение лимитирующего показателя вредности, установление уровня генотоксической активности на основании полученных результатов.
ДЕНИСОВА Т.П | |||
Токсико-генетический подход к санитарно-гигиенической оценке промышленных сточных вод и их химических компонентов // Диссертация | |||
- Иркутск, 2006, с.36-38, 40-122 | |||
Способ оценки токсичности водных сред | 1984 |
|
SU1234770A1 |
Авторы
Даты
2013-04-10—Публикация
2010-02-02—Подача