ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЙ СПОСОБ ЛЕЧЕНИЯ ЗЛОКАЧЕСТВЕННЫХ ОПУХОЛЕЙ ПЕЧЕНИ ВНУТРИПОРТАЛЬНЫМ ВВЕДЕНИЕМ ЗИМОЗАНА, ИНКОРПОРИРОВАННОГО В ФАГОЦИТИРУЮЩИЕ КЛЕТКИ Российский патент 2013 года по МПК G01N33/00 

Описание патента на изобретение RU2485496C2

Изобретение относится к медицине и биотехнологии, а именно к способам активации противоопухолевой цитотоксичности макрофагов. Метод может быть использован для лечения злокачественных опухолей и метастазов в печени, а также в качестве метода стимуляции предшественников гранулоцитов и моноцитов в комбинированной терапии злокачественных новообразований различной локализации с применением химио- и лучевой терапии.

Среди активаторов некоторых функций иммунной системы известен бета-глюкан, на который обратили внимание еще в середине 50-х - 60-х годов прошлого века. Он существует в двух формах - это частичковая (водонерастворимая), типичным представителем которой является зимозан и многочисленные разновидности водорастворимой формы бета-глюкана, отличающиеся друг от друга химической разветвленностью макромалекулы биополимера. Известно, что бета-глюкан повышает неспецифическую иммунологическую реактивность в основном за счет активации им системы мононуклеарных фагоцитов (1). Однако вышеупомянутые формы бета-глюкана резко отличаются друг от друга по силе воздействия на макрофаги. Зимозан выгодно отличается от водорастворимых форм тем, что оказывает на макрофаги более выраженное и пролонгированное воздействие. Кроме того, он способен активировать гораздо больший спектр его функций в отличие от растворимых форм глюкана (2, 3, 4). Во-первых, после однократного внутривенного введения зимозана мыши ее печеночные макрофаги могут находиться в функционально-активном состоянии около 30 дней. Во-вторых, фагоцитоз зимозановых частичек сопровождается выбросом огромного количества активных форм кислорода, провоспалительных цитокинов и других флогогенных веществ, что выражается в значительном повышении биоцидного потенциала макрофагов, который играет ведущую роль не только в уничтожении микробов и паразитов, но и в лизисе опухолевых клеток. В-третьих, зимозан способен сильно стимулировать кроветворение и, в частности, его грануломиелоцитарный росток, в результате чего вес селезенки и печени мыши может увеличиться в несколько раз за счет притока в них клеток лимфоидной ткани и прежде всего макрофагов. В-четвертых, биологические механизмы активации макрофагов обеих форм бета-глюкана различны (5).

Однако, несмотря на многолетние исследования, зимозан не нашел своего применения в клинической практике, не считая единичных работ, проведенных в 60-х - 70-х годах прошлого столетия на территории СССР. Нужно отметить, что в этих исследованиях он применялся только для внутримышечных инъекций и в минимальных дозировках (6, 7). В настоящее время применение зимозана в практической медицине на территории России и за рубежом полностью прекращено. И вот почему:

1) Поскольку внутримышечное введение зимозана неминуемо повлечет за собой его «оседание» в макрофагах маргинальной зоны региональных лимфоузлов и резидентных макрофагах в самом месте изначального введения, то естественно, что в кровоток, если он и попадет, то в очень незначительных количествах.

2) Внутримышечное введение зимозана в больших количествах невозможно, поскольку связано с возможностью возникновения болезненных инфильтратов.

3) Внутривенное введение зимозана человеку никогда не проводилось. В экспериментах на животных введение различных микрочастиц, как правило, приводит к образованию микротромбов. Например, в руководствах по наномедицине описаны неединичные случаи образования микротромбов после внутривенного введения микрочастиц различной природы. Эти частицы, попав к кровоток, быстро опсонизируются сывороточными опсонинами и активизируют некоторые компоненты свертывающей системы крови и, как следствие этого, они проявляют склонность к тромбообразованию. Именно по этой причине до сих пор микрочастицы нагруженные различными лекарственными препаратами не нашли своего широкого применения в медицине.

4) Известно, что практически все эффекты зимозана на макрофаги и другие клетки опосредованы через его связывание с маннозным рецептором (Dectin-1) (8). В момент этого связывания на поверхности резидентных макрофагов происходит мощный выброс активных форм кислорода, цитокинов и других флогогенных продуктов (9), что приводит даже к повреждению клеток окружающих тканей. В крайнем случае могут появиться симптомы начала системного воспаления, что влечет за собой мультиорганную недостаточность (10).

5) В клинической практике он применялся только в очень малых дозировках (1 мг/мл) и был рассчитан только для внутримышечного способа введения. Можно с уверенностью сказать, что именно его малые дозировки и внутримышечный способ введения стали причиной получения порой недостоверных и неоднозначных результатов в проведенных многочисленных клинических научных экспериментах.

6) Зимозан, попав в кровь, способен через непосредственный контакт с некоторыми компонентами сывороточного комплемента приводить к появлению в сыворотке многочисленных биологически активных веществ, которые способны вызвать целый ряд нежелательных, а порой смертельно опасных осложнений (11, 12).

Задачей изобретения является разработка безопасного парентерального способа введения зимозана с целью преимущественно локального (органного) повышения противоопухолевой цитотоксичности макрофагов для лечения злокачественных опухолей и метастазов в печени.

Поставленная задача решается путем экранировании поверхности зимозановых гранул (инкапсулирование), дабы не допустить прямого контакта поверхностно-расположенных концевых молекул бета-глюкана с маннозными рецепторами клеток крови и эндотелия сосудов, а также компонентами системы сывороточного комплемента, что позволит избежать развития всевозможных побочных эффектов и адресной их доставки в пораженный орган.

Сущность способа заключается в следующем. Из организма животного или человека выделяют фагоциты (макрофаги), способные активно фагоцитировать опсонизированный зимозан. Затем эти «нагруженные» зимозаном макрофаги вводят в портальную вену печени. Сами же нагруженные зимозаном макрофаги практически не обладают цитотоксическим потенциалом, поскольку основной выброс цитотоксических молекул - активные формы кислорода и фактор некроза опухоли - альфа происходит в условиях ЕХ VIVO, а значит на этапе до введения леток в организм животного или человека. Кроме того, фагоциты, поглотившие опсонозированный зимозан, погибают в течение нескольких часов.

Такая схема использования зимозана может позволить его введение даже внутривенным способом, не приводя к каким-либо неблагоприятным последствиям. Потенциал токсической активности самого «нагруженного» зимозаном макрофага имеет безопасное значение, поскольку основной выброс флогогенных продуктов макрофага завершается, как правило, через 1-3 часа после контакта с макрофагами, а это, как известно, происходит уже вне организма («ex vivo»). Более того, после того как произойдет фагоцитоз зимозана, макрофаг апоптотирует в течение 1-3-х суток (13). Такой функционально «разряженный» зимозаннагруженный макрофаг сохраняет способность к инициации гранулематозного воспаления за счет притока, дифференцировки и активации различных форменных элементов иммунной системы в месте его введения. Здесь необходимо добавить, что такое зимозаниндуцированное гранулематозное воспаление всегда сопровождается признаками гиперчувствительности замедленного типа. Все эти процессы и определяют механизм повышения противоопухолевой цитотоксичности макрофагов в очаге введения вышеупомянутых клеток.

Зимозан известен как индуктор гранулематозного воспаления, следствием чего в месте введения вышеуказанных макрофагов начинает возникать приток функционально активных клеточных элементов иммунной системы (в подавляющем большинстве своем - это макрофаги и в меньшей степени различные популяции лимфоцитов и естественных киллеров - НК-клеток), способных уничтожать различные агенты инфекционного и паразитарного происхождения, а также опухолевые клетки.

Способ применен в эксперименте в лечении печеночных метастазов мышиной злокачественной меланомы В 16. Для этого вводили нагруженные зимозаном макрофаги непосредственно в портальную вену, чтобы клеточная концентрация в органе достигла максимальной своей величины в силу того, что печень является самым большим «органом-депо» системы мононуклеарных фагоцитов любого млекопитающего. Этот факт позволяет надеяться на то, что все вышеперечисленные побочные эффекты будут сведены к минимуму, поскольку почти все введенные макрофаги «осядут» в печени (14).

Предлагаемый способ предусматривает несколько стадий:

1) Получение элиситированных крахмалом перитонеальных макрофагов мыши:

За 4 дня внутрибрюшинно вводили 4% крахмал в объеме 1 мл.

2) Приготовление опсонизированного зимозана:

Гомогенизированный любым способом (механическим или на ультразвуковой установке) зимозан инкубировали при 37 градусах по Цельсию в течение 30 минут в неинактивированной сыворотке мышей. Затем частички зимозана трижды отмывали в 10 миллилитрах забуференного физиологического раствора при 3000 об/мин.

4) Процедура «нагрузки» макрофагов опсонизированными гранулами зимозана:

Одним из условий процедуры «нагрузки» зимозаном макрофагов является избыток гранул зимозана - это не менее 100 гранул на 1 макрофаг, находящийся в плотном монослое культуры, или концентрация зимозана в культуре должна быть примерно 2-4 мг/мл культуральной среды. Фагоцитоз проводят в среде RPMI 1640 с добавлением инактивированной эмбриональной 10% сыворотки мышей.

5) Снятие зимозаннагруженных макрофагов с поверхности пластика:

Пластиковую плашку диаетром 90 мм или флакон для культивирования клеток с площадью не менее 25 кв. см трижды отмывают от непоглощенных частичек зимозана забуференным физиологическим раствором. Монослой клеток открепляют от поверхности резиновым или пластиковым скрепером. Затем полученную суспензию клеток трижды отмывают центрифугированием в 10 мл забуференного физиологического раствора при 1000 об/мин и в течение 8 минут. В дальнейшем осадок ресуспендируют в среде RPMI 1640 и проводят подсчет клеток. Количество введенных внутрипеченочно макрофагов должно быть 15 млн на мышь. Количество введенных в портальную вену печени клеток меланомы В16 было 30000 на одну мышь.

Макрофаги вводились совместно с клетками злокачественной меланомы В16 в портальную вену мышки. Результат регистрировали на 14 день. Оценивался общий вес и относительное число метастазов в печени. Результаты представлены в табл.1 и на фиг.1 и фиг.2

Предложенный способ парентерального введения лекарственного препарата зимозана, инкорпорированного в условиях «ex vivo» в аутологичные макрофаги (фагоциты), позволяет увеличить количество активированных макрофагов в печени.

Основным преимуществом таких зимозаннагруженных макрофагов является:

1) Отсутствие возможности этих «нагруженных» клеток формировать макро- и микротромбы;

2) Учитывая анатомо-физиологические особенности печени, макрофаги в течение достаточно продолжительного времени будут зафиксированы в ее паренхиме, поскольку она является основным естественным резервуаром для клеток системы мононуклеарных фагоцитов.

Таблица 1 Действие зимозаннагруженных макрофагов на метастазы меланомы В16 в печени Количество метастазов Площадь поражения печени мышиной меланомой В16 (%) Относительный вес печени (%) Меланома В16 (контроль) 871.0±130.1 76.6±7.0 13.1±1.2 Меланома В16+ зимозаннагруженные макрофаги 146.7±38.0* 15.6±4.1* 8.1±0.23* *-Р<0.05

Похожие патенты RU2485496C2

название год авторы номер документа
Способ инкорпорации биологически активных микро- и наночастиц в нейтрофилы 2016
  • Любимов Геннадий Юрьевич
  • Любимов Андрей Геннадьевич
  • Козлов Владимир Александрович
RU2633502C2
Способ модификации развития аденокарциномы в эксперименте 2020
  • Кит Олег Иванович
  • Франциянц Елена Михайловна
  • Каплиева Ирина Викторовна
  • Котиева Инга Мовлиевна
  • Трепитаки Лидия Константиновна
  • Нескубина Ирина Валерьевна
  • Бандовкина Валерия Ахтямовна
  • Сурикова Екатерина Игоревна
  • Ишонина Оксана Георгиевна
RU2743960C1
СПОСОБ ДИАГНОСТИКИ ХРОНИЧЕСКОГО ГЕПАТИТА У ДЕТЕЙ 1997
  • Харламова Ф.С.
  • Извекова В.А.
  • Учайкин В.Ф.
  • Чередниченко Т.В.
  • Портных И.А.
RU2131125C1
Способ моделирования лимфогенного и гематогенного метастазирования мышиной меланомы В у белых нелинейных крыс 2016
  • Кит Олег Иванович
  • Франциянц Елена Михайловна
  • Каплиева Ирина Викторовна
  • Трепитаки Лидия Константиновна
RU2615908C1
Способ усиления роста меланомы В16/F10 по сравнению с ростом меланомы В16/F10 при самостоятельной перевивке и замедления роста LLC (карциномы Льюиса) по сравнению с ростом LLC при самостоятельной перевивке при первично-множественных злокачественных опухолях на фоне первичного иммунодефицита 2021
  • Франциянц Елена Михайловна
  • Каплиева Ирина Викторовна
  • Бандовкина Валерия Ахтямовна
  • Трепитаки Лидия Константиновна
  • Сурикова Екатерина Игоревна
  • Погорелова Юлия Александровна
  • Нескубина Ирина Валерьевна
  • Котиева Инга Мовлиевна
  • Шумарин Константин Александрович
  • Ишонина Оксана Георгиевна
RU2759487C1
Способ образования опухолевых узлов меланомы в организме экспериментальных животных 2022
  • Кит Олег Иванович
  • Франциянц Елена Михайловна
  • Шихлярова Алла Ивановна
  • Нескубина Ирина Валерьевна
RU2796892C1
СПОСОБ УГНЕТЕНИЯ РОСТА МЕЛАНОМЫ У МЫШЕЙ-ОПУХОЛЕНОСИТЕЛЕЙ 2023
  • Яценко Елена Михайловна
  • Барановский Денис Станиславович
  • Клабуков Илья Дмитриевич
  • Кисель Анастас Андреевич
  • Шестакова Виктория Андреевна
  • Смирнова Екатерина Игоревна
  • Исаева Елена Васильевна
  • Шегай Петр Викторович
  • Иванов Сергей Анатольевич
  • Каприн Андрей Дмитриевич
RU2813701C2
СПОСОБ МОДИФИКАЦИИ ХРОНИЧЕСКОЙ БОЛЬЮ ЗЛОКАЧЕСТВЕННОГО РОСТА МЕЛАНОМЫ В У МЫШЕЙ 2017
  • Кит Олег Иванович
  • Франциянц Елена Михайловна
  • Каплиева Ирина Викторовна
  • Трепитаки Лидия Константиновна
  • Котиева Инга Мовлиевна
RU2650587C1
СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ГЕНЕРАЦИИ СУПЕРОКСИДНОГО АНИОН-РАДИКАЛА ФАГОЦИТАМИ В БИОЛОГИЧЕСКОМ МАТЕРИАЛЕ 1994
  • Коган А.Х.
  • Хапугина И.В.
  • Расулов М.И.
  • Рапопорт С.И.
  • Погромов А.П.
RU2064680C1
Способ подавления роста меланомы В16 у лабораторных животных 2022
  • Яценко Елена Михайловна
  • Пронкевич Марианна Даняльевна
  • Петров Василий Николаевич
  • Белкина Светлана Владимировна
RU2784443C2

Иллюстрации к изобретению RU 2 485 496 C2

Реферат патента 2013 года ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЙ СПОСОБ ЛЕЧЕНИЯ ЗЛОКАЧЕСТВЕННЫХ ОПУХОЛЕЙ ПЕЧЕНИ ВНУТРИПОРТАЛЬНЫМ ВВЕДЕНИЕМ ЗИМОЗАНА, ИНКОРПОРИРОВАННОГО В ФАГОЦИТИРУЮЩИЕ КЛЕТКИ

Изобретение относится к медицине, а именно к гастроэнтерологии, и может быть использовано для лечения злокачественных опухолей и метастазов в печени. Для этого зимозан вводят в портальную вену печени в инкорпорированной в фагоцитирующие клетки форме. Использование данного способа позволяет повысить неспецифическую иммунологическую реактивность в очаге злокачественного новообразования. 1 пр., 1 табл., 2 ил.

Формула изобретения RU 2 485 496 C2

Экспериментальный способ лечения злокачественных опухолей печени зимозаном, отличающийся тем, что зимозан вводят в портальную вену печени в инкорпорированной в фагоцитирующие клетки форме.

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 2013 года RU2485496C2

СПОСОБ КОРРЕКЦИИ БИОХИМИЧЕСКИХ И ИММУНОЛОГИЧЕСКИХ НАРУШЕНИЙ В УСЛОВИЯХ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЙ ОСТРОЙ ТОКСИЧЕСКОЙ ГЕПАТОПАТИИ, СОПРОВОЖДАЮЩЕЙСЯ ПОВЫШЕНИЕМ ИММУНОЛОГИЧЕСКОЙ РЕАКТИВНОСТИ 2002
  • Смахтин М.Ю.
  • Конопля А.И.
  • Северьянова Л.А.
  • Бобынцев И.И.
RU2205658C1
ЖАНАЕВА С.Я
и др
Роль стимуляции и депрессии макрофагов в развитии и метастазировании опухолей
- Бюллетень СО РАМН, №3 (125), с.121-126
МАЯНСКИЙ А.Н
Клинические аспекты фагоцитоза
- Казань: МАГАРИФ, 1993, с.99
FARADIJ A
et al
Phase I trial of intravenous infusion of ex-vivo-activated autologous

RU 2 485 496 C2

Авторы

Любимов Геннадий Юрьевич

Любимов Андрей Геннадьевич

Козлов Владимир Александрович

Даты

2013-06-20Публикация

2011-06-14Подача