ПРЕПАРАТЫ ТАНИНА ДЛЯ ПРИМЕНЕНИЯ В СЕЛЬСКОМ ХОЗЯЙСТВЕ ДЛЯ РАСТЕНИЙ Российский патент 2023 года по МПК A01N31/16 

[1] Настоящая заявка испрашивает приоритет на основании предварительной заявки США №62/722,782, поданной 24 августа 2018 г.; предварительной заявки США №62/723,168, поданной 27 августа 2018 г.; и предварительной заявки США №62/727,237, поданной 5 сентября 2018 г.; полное содержание каждой из которых настоящим включено посредством ссылки во всей своей полноте.

[2] ПРЕДШЕСТВУЮЩИЙ УРОВЕНЬ ТЕХНИКИ

[3] Бактерии являются наиболее распространенными микроорганизмами на нашей планете, и предотвращение и борьба с бактериями и заболеваниями, которые они вызывают, особенно в сельском хозяйстве, имеют первостепенное значение, поскольку это напрямую влияет на производство продуктов питания, необходимых для обеспечения жизнедеятельности человека. Несколько примеров этого упомянуты ниже.

[4] Erwinia amylovora причинила неисчислимые убытки, уничтожив целые насаждения яблок и груш в странах, где выращиваются эти фруктовые деревья. Например, только в штате Чиуауа, Мексика, погибло более 50 тысяч грушевых деревьев, и было заражено более миллиона деревьев различных сортов яблок. Это вызвало как крупные потери, так и отказ от выращивания таких фруктов в производственных регионах этого штата. Таким образом, из фитосанитарной проблемы для производителей фруктов это превратилось в серьезную социальную проблему. Производители фруктов серьезно обеспокоены симптомами заболевания, поскольку зараженные деревья выглядят так, как будто они были сожжены огнеметом, отсюда и название «бактериальный ожог». Та же самая ситуация произошла в высокоиндустриализированных странах, где выращивают эти фрукты, таких как, например, Соединенные Штаты Америки, Англия, Франция и страны бывшего Советского Союза. После сезона цветения бактерии, попавшие под воздействие влаги, например, мороси, росы и ветра, могут заражать сочные побеги. Бактериальный ожог появляется через одну-несколько недель после опадения лепестков. Симптомы этого заболевания продолжают прогрессировать в течение весенне-летнего сезона в чувствительных тканях, таких как листья и мелкие ветви.

[5] Болезнь Пирса, вызываемая бактериями Xylella fastidiosa, имеет стратегическое значение из-за величины затрат, которые она вызывает, когда поражает такие культуры, как виноград, олива, цитрусовые, косточковые деревья, такие как слива и персик, а также миндальные деревья. Она вызывает опустошающее действие, как результат поражения больших площадей. Это также одна из наиболее изученных учеными бактерий из-за склонности бактерий к колонизации, поскольку она может выживать в различных сортовых срезах, которые перевозились без строгого санитарного контроля на границах. Заболевание распространилось, и о нем уже сообщалось во многих странах Латинской Америки, Европы и Азии. Это заболевание считается основным фактором, ограничивающим рост и процветание пораженных сортов.

[6] В Центральной Америке и Южной Америке тысячи африканских пальм погибают из-за заболевания, вызываемого бактерией, которая еще не была корректно идентифицирована. Это вызвало необходимость в альтернативах для его контроля и в средстве, которое может противодействовать опустошающим действиям эпидемии. Для этого необходимо установить протоколы исследований с соответствующей научной строгостью, и эти протоколы должны выполняться большой группой производителей и, возможно, правительствами, чтобы установить биологический цикл патогена и то, как его лечить или предотвратить.

[7] В странах-производителях бананов, которым угрожает страшное заболевание, называемое «моко», вызываемое бактерией Ralstonia solanacearum, произошла потеря и отказ от целых культур, которые невозможно пересадить, поскольку патоген годами выживает в почве на тканях больного растения. Фермеры вынуждены тратить большие суммы денег на стерилизацию почвы путем использования токсичных веществ, что вызывает отрицательные эффекты на полезную флору и фауну в этом районе, таким образом, изменяя баланс и чувствительные питательные биогеохимические циклы, присутствующие в этой экосистеме.

[8] Такое же значение имеют бактерии, которые поражают овощи, злаковые, членов семейства крестоцветных, членов семейства пасленовых, членов семейства розоцветных, членов семейства вересковых и т.п., когда в благоприятных климатических условиях для развития заболевания можно почти полностью потерять урожай, и чтобы избежать этого, фермерам придется вкладывать большие суммы денег в применение веществ на основе антибиотиков в зависимости от применимого законодательства и их доступности.

[9] Применение антибиотиков в сельском хозяйстве, таких как гентамицин, окситетрациклин, стрептомицин и касугамицин, является эффективной альтернативой для предупреждения и борьбы с этими иллюстративными патогенами, но применение этих антибиотиков было ограничено в последние годы в Европе, Японии, Австралии, Новой Зеландии и Бразилии. Из-за этого производители имеют очень ограниченные варианты для лечения или предупреждения бактериальных заболеваний, которые из года в год сокращают их культуры и вызывают большие потери их урожая. Производители могут использовать только препараты на основе меди для внекорневых применений, что обеспечивает ограниченный контроль над имеющейся у них санитарной критической ситуацией. В этих странах, где применение антибиотиков в сельском хозяйстве запрещено, рост частоты возникновения бактериальных заболеваний вызывает тревогу, а в некоторых местах, таких как Италия, Испания, Новая Зеландия, Франция и другие страны, производство и винограда, и киви переживает сложный этап из-за наличия заболеваний, вызываемых бактериями, уничтожившими целые культурные сорта. В Австралии правительство и производители серьезно обеспокоены бактериальным заболеванием, поражающим пшеницу, чернику, сахарный тростник и зерновые, тем самым ставя под угрозу производство этих продуктов питания. То же самое происходит в Бразилии, Соединенных Штатах и Англии, где производители цитрусовых культур сообщают о неисчислимых потерях в результате заболевания, называемого «Желтый дракон», вызываемого бактерией Candidatus liberibacter, также поражающего Китай, Тайвань, Индию, Малайзию, Индонезию, Мьянму, Филиппины, Пакистан, Таиланд, Непал, Саудовскую Аравию, Афганистан и другие.

[10] КРАТКОЕ ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯ

[11] Основная цель данного изобретения заключается в создании нового антибактериального препарата, приемлемого для применения в сельском хозяйстве. Препарат является эффективеннымс для предотвращения, лечения и контроля заболеваний, вызванных бактериями и грибами, у растений, и в то же время обеспечивает экологически безопасную композицию, что позволяет осуществлять его санкционированное применение в тех странах, которые имеют высокие стандарты регистрации, и в тех странах, где применение антибиотиков было ограничено или запрещено.

[12] Препарат содержит танины в качестве активного ингредиента, смешанные с приемлемыми для сельского хозяйства эксципиентами, например, лигнином, таким как лигносульфонат натрия, полициклическим ароматическим углеводородом, таким как нафталинсульфонат, полисахаридами, такими как крахмал, и кремнистыми осадочными породами, такими как диатомовая земля. Приемлемый для сельского хозяйства препарат может быть помещен в и смешан с надлежащим количеством воды для разбрызгивания в виде очень маленьких капелек воды «до тех пор, пока он не начнет стекать в виде капель» посредством подходящего оборудования для культуры, для защиты которой он предназначен, в которой может присутствовать бактериальное повреждение, которое в противном случае будет продолжать приносить вред растениям. Таким образом, приемлемый для сельского хозяйства препарат позволяет избежать превышения экономических порогов рентабельности для производителя продуктов питания.

[13] Настоящее изобретение, в своей части, относится к композиции, содержащей танины, способу применения указанной композиции, содержащей танины, и применению указанной композиции, содержащей танины. Ниже приведены дополнительные подробности, касающиеся состава композиции и того, как ее можно применять и наносить на растения.

[14] Танины с древних времен использовались в кожевенной промышленности. Египтяне использовали плоды акации в кожевенных целях, и танины также используются в виноделии и медицине для лечения натуральными средствами некоторых заболеваний у людей. Танины являются очень вяжущими полифенольными соединениями и имеют горький вкус.

[15] КРАТКОЕ ОПИСАНИЕ ГРАФИЧЕСКИХ МАТЕРИАЛОВ

[16] На фиг. 1(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 5% предварительной смеси танинов, против Clavibacter sp.

[17] На фиг. 2(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 10% предварительной смеси танинов, против Clavibacter sp.

[18] На фиг. 3(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 20% предварительной смеси танинов, против Clavibacter sp.

[19] На фиг. 4(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 5% предварительной смеси танинов, против Clavibacter sp.

[20] На фиг. 5(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 10% предварительной смеси танинов, против Clavibacter sp.

[21] На фиг. 6(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 20% предварительной смеси танинов, против Clavibacter sp.

[22] На фиг. 7(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 5% предварительной смеси танинов, против Clavibacter sp.

[23] На фиг. 8(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 10% предварительной смеси танинов, против Clavibacter sp.

[24] На фиг. 9(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 20% предварительной смеси танинов, против Clavibacter sp.

[25] На фиг. 10(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 5% предварительной смеси танинов, против Erwinia sp.

[26] На фиг. 11(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 10% предварительной смеси танинов, против Erwinia sp.

[27] На фиг. 12(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 20% предварительной смеси танинов, против Erwinia sp.

[28] На фиг. 13(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 5% предварительной смеси танинов, против Erwinia sp.

[29] На фиг. 14(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 10% предварительной смеси танинов, против Erwinia sp.

[30] На фиг. 15(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 20% предварительной смеси танинов, против Erwinia sp.

[31] На фиг. 16(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 5% предварительной смеси танинов, против Pseudomonas sp.

[32] На фиг. 17(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 10% предварительной смеси танинов, против Pseudomonas sp.

[33] На фиг. 18(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 20% предварительной смеси танинов, против Pseudomonas sp.

[34] На фиг. 19(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 5% предварительной смеси танинов, против Pseudomonas sp.

[35] На фиг. 20(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 10% предварительной смеси танинов, против Pseudomonas sp.

[36] На фиг. 21(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 20% предварительной смеси танинов, против Pseudomonas sp.

[37] На фиг. 22(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 5% предварительной смеси танинов, против Ralstonia sp.

[38] На фиг. 23(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 10% предварительной смеси танинов, против Ralstonia sp.

[39] На фиг. 24(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 20% предварительной смеси танинов, против Ralstonia sp.

[40] На фиг. 25(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 5% предварительной смеси танинов, против Ralstonia sp.

[41] На фиг. 26(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 10% предварительной смеси танинов, против Ralstonia sp.

[42] На фиг. 27(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 20% предварительной смеси танинов, против Ralstonia sp.

[43] На фиг. 28(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 5% предварительной смеси танинов, против Ralstonia sp.

[44] На фиг. 29(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 10% предварительной смеси танинов, против Ralstonia sp.

[45] На фиг. 30(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 20% предварительной смеси танинов, против Ralstonia sp.

[46] На фиг. 31(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 20% предварительной смеси танинов, против Xanthomonas sp.

[47] На фиг. 32(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 20% предварительной смеси танинов, против Xanthomonas sp.

[48] На фиг. 33(a)-(c) показаны результаты испытания смеси, содержащей 20% предварительной смеси танинов, против Xanthomonas sp.

[49] На фиг. 34 показаны результаты испытания с использованием композиции A5.

[50] На фиг. 35 показаны результаты испытания с использованием композиции B15.

[51] На фиг. 36 показаны результаты испытания с использованием композиции +20.

[52] На фиг. 37 показаны результаты испытания с использованием композиции A.

[53] На фиг. 38 показаны результаты испытания с использованием композиции A5.

[54] На фиг. 39 показаны результаты испытания с использованием композиции B15.

[55] На фиг. 40 показаны результаты испытания с использованием композиции +20.

[56] На фиг. 41 показаны результаты испытания с использованием композиции A.

[57] На фиг. 42 показаны результаты испытания с использованием композиции A5.

[58] На фиг. 43 показаны результаты испытания с использованием композиции B15.

[59] На фиг. 44(a) и (b) показаны результаты испытания с использованием композиции +20.

[60] На фиг. 45(a) и (b) показаны результаты испытания с использованием композиции A.

[61] На фиг. 46 показаны результаты испытания с использованием композиции A5.

[62] На фиг. 47 показаны результаты испытания с использованием композиции B15.

[63] На фиг. 48(a)-(c) показаны результаты испытания с использованием композиции +20.

[64] На фиг. 49 показаны результаты испытания с использованием композиции A.

[65] На фиг. 50(a) и (b) показаны примеры монилиального ожога, измеренные во время испытания.

[66] Фиг. 51 представляет собой графическое представление табличных данных.

[67] Фиг. 52 представляет собой графическое представление табличных данных.

[68] Фиг. 53 представляет собой графическое представление табличных данных.

[69] Фиг. 54(a) и (b) представляют собой карты линейного прогноза (Кригинг).

[70] На фиг. 55(a) и (b) показаны результаты испытания против Alternaria sp.

[71] На фиг. 56(a) и (b) показаны результаты испытания против Phytophthora sp.

[72] На фиг. 57(a) и (b) показаны результаты испытания против Colletotrichum sp.

[73] На фиг. 58(a) и (b) показаны результаты испытания против Fusarium sp.

[74] На фиг. 59(a) и (b) показаны результаты испытания против Fusarium sp.

[75] На фиг. 60(a) и (b) показаны результаты испытания против Fusarium sp.

[76] На фиг. 61(a) и (b) показаны результаты испытания против Aspergillus sp.

[77] На фиг. 62(a) и (b) показаны результаты испытания против Aspergillus sp.

[78] На фиг. 63(a) и (b) показаны результаты испытания против Aspergillus sp.

[79] На фиг. 64 показаны результаты испытания против Clavibacter sp.

[80] На фиг. 65 показаны результаты испытания против Clavibacter sp.

[81] На фиг. 66 показаны результаты испытания против Clavibacter sp.

[82] На фиг. 67 показаны результаты испытания против Clavibacter sp.

[83] На фиг. 68 показаны результаты испытания против Erwinia sp.

[84] На фиг. 69 показаны результаты испытания против Erwinia sp.

[85] На фиг. 70 показаны результаты испытания против Erwinia sp.

[86] На фиг. 71 показаны результаты испытания против Erwinia sp.

[87] На фиг. 72 показаны результаты испытания против Ralstonia sp.

[88] На фиг. 73 показаны результаты испытания против Ralstonia sp.

[89] На фиг. 74 показаны результаты испытания против Ralstonia sp.

[90] На фиг. 75 показаны результаты испытания против Ralstonia sp.

[91] На фиг. 76 показаны результаты испытания против Xanthomonas sp.

[92] На фиг. 77 показаны результаты испытания против Xanthomonas sp.

[93] На фиг. 78 показаны результаты испытания против Xanthomonas sp.

[94] На фиг. 79 показаны результаты испытания против Xanthomonas sp.

[95] На фиг. 80 показаны результаты испытания против Xanthomonas sp.

[96] На фиг. 81 показаны результаты испытания против Xanthomonas sp.

[97] На фиг. 82 показаны результаты испытания против Xanthomonas sp.

[98] На фиг. 83 показаны результаты испытания против Xanthomonas sp.

[99] На фиг. 84 показаны результаты испытания против Erwinia sp.

[100] На фиг. 85 показаны результаты испытания против Erwinia sp.

[101] На фиг. 86 показаны результаты испытания против Erwinia sp.

[102] На фиг. 87 показаны результаты испытания против Erwinia sp.

[103] На фиг. 88 показаны результаты испытания против Ralstonia sp.

[104] На фиг. 89 показаны результаты испытания против Ralstonia sp.

[105] На фиг. 90 показаны результаты испытания против Ralstonia sp.

[106] На фиг. 91 показаны результаты испытания против Ralstonia sp.

[107] На фиг. 92 показаны результаты испытания против Clavibacter sp.

[108] На фиг. 93 показаны результаты испытания против Clavibacter sp.

[109] ПОДРОБНОЕ ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯ

[110] Приемлемый для сельского хозяйства препарат согласно настоящему изобретению может содержать танины в качестве активного ингредиента, смешанные с приемлемыми для сельского хозяйства эксципиентами. Такие приемлемые для сельского хозяйства эксципиенты включают, например, бактерициды, индукторы устойчивости, биопестициды, фунгициды, внекорневые удобрения, гормоны и тому подобное.

[111] Танины, которые могут быть использованы в приемлемом для сельского хозяйства препарате, включают любой тип танина, такой как, но не ограничиваясь перечисленным, эллаговые, пирогаллоловые или галловые танины. Также могут быть использованы «псевдотанины», такие как галловая кислота, такая как тригидроксибензойная кислота, или эллаговая кислота. Примерами таких танинов являются касталагин и вескалагин (оба являются эллаговыми танинами), но танины ими не ограничиваются, и другие танины также могут быть использованы. Например, могут быть использованы флаван-3-олы, такие как катехин, галлат эпикатехина, эпигаллокатехин, галлат эпигаллокатехина, проантоцианидины, теафлавины и теарубигины. Также могут быть использованы хлорогеновые кислоты (CGA), такие как гидроксикоричные кислоты, кофейная кислота, феруловая кислота и п-кумаровая кислота, и хинная кислота. Кроме того, также могут быть использованы ипекакуановые кислоты, такие как метин, цефаэлин, эметамин, ипекакуановая кислота, психотрин и O-метилпсихотрин. Также могут быть использованы такие танины, как робурин, касталин, кастанопсинины, казуариктин, экзоекарианин, экзоекаринины, грандинин, птерокаринин, пуникакортеин, пунакалагин, роиптелеанины, робурины, вескалин, галловая кислота, эллаговая кислота, процианидин. Важно отметить, что вышеуказанные танины являются лишь иллюстративными, и любой другой танин может быть использован. Танины могут быть использованы по отдельности или в комбинации друг с другом. Могут быть использованы природные или синтетические танины. В иллюстративных вариантах осуществления танин может представлять собой один или более из флавоноида, процианидина, проантоцианина, продельфинидина, профизетидина, проантоцианидина, цианидина, антоциана и катехина. Препараты согласно настоящему изобретению могут также содержать, в некоторых случаях, например, флаваноны и/или флаванолы.

[112] Количество танинов, которое может присутствовать в приемлемом для сельского хозяйства препарате, не ограничено как-либо конкретно, но может составлять от 0,01 до 99 мас. %. Например, они могут содержаться в препарате в количестве от 0,1 до 50 мас. %. В качестве еще одного примера, они могут содержаться в препарате в количестве от 0,1 до 10 мас. %. В качестве еще одного примера, они могут содержаться в препарате в количестве от 0,1 до 1 мас. %, от 0,5 до 5 мас. %, от 1 до 10 мас. %, от 10 до 20 мас. %, от 20 до 30 мас. %, от 30 до 40 мас. %, от 40 до 50 мас. %, от 50 до 60 мас. %, от 60 до 70 мас. %, от 70 до 80 мас. % и от 80 до 90 мас. %. В качестве еще одного примера, они могут содержаться в препарате в количестве от 1 до 25 мас. %, от 10 до 50 мас. %, от 25 до 75 мас. % или от 50 до 99 мас. %. Однако количество танина не ограничено как-либо конкретно при условии, что количество обеспечивает антибактериальные или противогрибковые действия, раскрытые в настоящем документе. Танины могут быть использованы и нанесены на растения в количествах, превышающих или меньших, чем любое количество, которое может иным образом присутствовать в растении, которое не было обработано раскрытой в настоящем документе композицией. Если танины применяют к растению, продуцирующему танины, танины, применяемые к данному растению, могут отличаться от любого танина, продуцируемого этим растением, или, в качестве альтернативы, могут представлять собой танины того же типа, что и танины, продуцируемые этим растением.

[113] Препарат на основе танина может включать один или более других приемлемых для сельского хозяйства средств, таких как диспергирующие агенты, поверхностно-активные вещества и/или увлажнители, инертные компоненты, загустители, бактерициды, индукторы устойчивости, биопестициды, фунгициды, внекорневые удобрения, гормоны и тому подобное.

[114] Примеры диспергирующих агентов, которые могут быть использованы с приемлемым для сельского хозяйства препаратом, включают, но не ограничиваются перечисленным, лигносульфонат натрия, альфа-олефинсульфонаты, алкилаурилсульфонаты, лигнинсульфонаты, блок-сополимеры, сополимеры этиленоксида и пропиленоксида, сополимеры полиоксиэтилена и полиоксипропилена, этоксилаты тридецилового спирта и полиакрилаты. Также могут быть использованы смеси диспергирующих агентов. Количество содержащегося диспергирующего агента не ограничено как-либо конкретно. В некоторых иллюстративных вариантах осуществления количество диспергирующего агента в препарате или общее количество смеси диспергирующих агентов в препарате может составлять от 1 до 70%. В других иллюстративных вариантах осуществления количество диспергирующего агента в препарате или общее количество смеси диспергирующих агентов в препарате может превышать, например, 2%, 5%, 10%, 15%, 20%, 25%, 30%, 35%, 40%, 45%, 50%, 55%, 60% или 65%. В других иллюстративных вариантах осуществления количество диспергирующего агента в препарате или общее количество смеси диспергирующих агентов в препарате может быть менее, например, 2%, 5%, 10%, 15%, 20%, 25%, 30%, 35%, 40%, 45%, 50%, 55%, 60% или 65%. В некоторых иллюстративных вариантах осуществления количество диспергирующего агента в препарате или общее количество смеси диспергирующих агентов в препарате может составлять от 5 до 20%, от 15 до 30%, от 25 до 40%, от 40 до 55% или от 55 до 70%.

Примеры поверхностно-активных веществ и/или увлажнителей, которые могут быть использованы с приемлемым для сельского хозяйства препаратом, включают, не ограничиваясь перечисленным, нафталинсульфонат, диоктилсульфосукцинат натрия, глицерин, полиглицерин, касторовое масло и/или соевое масло, додецилбензолсульфонат натрия, лаурилсульфат натрия и другие фосфаты. Также могут быть использованы смеси поверхностно-активных веществ и/или увлажнителей. Содержащееся количество поверхностно-активных веществ и/или увлажнителей не ограничено как-либо конкретно. В некоторых иллюстративных вариантах осуществления количество поверхностно-активного вещества и/или увлажнителя в препарате или общее количество смеси поверхностно-активных веществ и/или увлажнителей в препарате может составлять от 1 до 70%. В других иллюстративных вариантах осуществления количество поверхностно-активного вещества и/или увлажнителя в препарате или общее количество смеси поверхностно-активных веществ и/или увлажнителей в препарате может превышать, например, 2%, 5%, 10%, 15%, 20%, 25%, 30%, 35%, 40%, 45%, 50%, 55%, 60% или 65%. В других иллюстративных вариантах осуществления количество поверхностно-активного вещества и/или увлажнителя в препарате или общее количество смеси поверхностно-активных веществ и/или увлажнителей в препарате может быть менее, например, 2%, 5%, 10%, 15%, 20%, 25%, 30%, 35%, 40%, 45%, 50%, 55%, 60% или 65%. В некоторых иллюстративных вариантах осуществления количество поверхностно-активного вещества и/или увлажнителя в препарате или общее количество смеси поверхностно-активных веществ и/или увлажнителей в препарате может составлять от 5 до 20%, от 15 до 30%, от 25 до 40%, от 40 до 55% или от 55 до 70%.

[115] Примеры инертных компонентов, которые могут быть использованы с приемлемым для сельского хозяйства препаратом, включают, не ограничиваясь перечисленным, целит, диатомовую землю, бентонит, пирофиллит, каолин, монтмориллонит, тенардит, аттапульгит, доломит, глину, пробку, гуминовые кислоты и фульвокислоты. Также могут быть использованы смеси инертных компонентов. Содержащееся количество инертных компонентов не ограничено как-либо конкретно. В некоторых иллюстративных вариантах осуществления количество инертного компонента в препарате или общее количество смеси инертных компонентов в препарате может составлять от 1 до 95%. В других иллюстративных вариантах осуществления количество инертного компонента в препарате или общее количество смеси инертных компонентов в препарате может превышать, например, 2%, 5%, 10%, 15%, 20%, 25%, 30%, 35%, 40%, 45%, 50%, 55%, 60%, 65%, 70%, 75%, 80%, 85% или 90%. В других иллюстративных вариантах осуществления количество инертного компонента в препарате или общее количество смеси инертных компонентов в препарате может быть менее, например, 2%, 5%, 10%, 15%, 20%, 25%, 30%, 35%, 40%, 45%, 50%, 55%, 60%, 65%, 70%, 75%, 80%, 85% или 90%. В некоторых иллюстративных вариантах осуществления количество инертного компонента в препарате или общее количество смеси инертных компонентов в препарате может составлять от 5 до 20%, от 15 до 30%, от 25 до 40%, от 40 до 55%, от 55 до 70%, от 70 до 85% или от 80 до 95%.

[116] Примеры загустителей, которые могут быть использованы с приемлемым для сельского хозяйства препаратом, включают, не ограничиваясь перечисленным, ксантановую камедь, гуаровую камедь, мальтодекстрины, декстрины, лецитин и полисахариды. Также могут быть использованы смеси загустителей. Содержащееся количество загустителей не ограничено как-либо конкретно. В некоторых иллюстративных вариантах осуществления количество загустителя в препарате или общее количество смеси загустителей в препарате может составлять от 1 до 70%. В других иллюстративных вариантах осуществления количество загустителя в препарате или общее количество смеси загустителей в препарате может превышать, например, 2%, 5%, 10%, 15%, 20%, 25%, 30%, 35%, 40%, 45%, 50%, 55%, 60% или 65%. В других иллюстративных вариантах осуществления количество загустителя в препарате или общее количество смеси загустителей в препарате может быть менее, например, 2%, 5%, 10%, 15%, 20%, 25%, 30%, 35%, 40%, 45%, 50%, 55%, 60% или 65%. В некоторых иллюстративных вариантах осуществления количество загустителя в препарате или общее количество смеси загустителей в препарате может составлять от 5 до 20%, от 15 до 30%, от 25 до 40%, от 40 до 55% или от 55 до 70%.

[117] Примеры бактерицидов, которые могут быть использованы с приемлемым для сельского хозяйства препаратом, включают, не ограничиваясь перечисленным, гентамицин, стрептомицин, окситетрациклин, касугамицин, канамицин, TCMTB ((бензотиазол-2-илтио)метилтиоцианат), MTC (метилен-бис(тиоцианат)), бластицидин, натамицин и их смеси. Дополнительные примеры бактерицидов, которые могут быть использованы, включают другие аминогликозиды и другие тетрациклины. Содержащееся количество бактерицидов не ограничено как-либо конкретно. В некоторых иллюстративных вариантах осуществления количество бактерицида в препарате или общее количество смеси бактерицидов в препарате может составлять от 5 до 60%. В других иллюстративных вариантах осуществления количество бактерицида в препарате или общее количество смеси бактерицидов в препарате может превышать, например, 7%, 10%, 15%, 20%, 25%, 30%, 35%, 40%, 45%, 50% или 55%. В других иллюстративных вариантах осуществления количество загустителя в препарате или общее количество смеси загустителей в препарате может быть менее, например, 7%, 10%, 15%, 20%, 25%, 30%, 35%, 40%, 45%, 50% или 55%. В некоторых иллюстративных вариантах осуществления количество загустителя в препарате или общее количество смеси загустителей в препарате может составлять от 5 до 20%, от 15 до 30%, от 25 до 40%, от 40 до 55% или от 50 до 60%.

[118] Примеры индукторов устойчивости, которые могут быть использованы с приемлемым для сельского хозяйства препаратом, включают, не ограничиваясь перечисленным, флуоксастробин, метоминостробин, гимексазол, ацибензолар-с-метил, мандестробин, кумоксистробин, флуфеноксистробин, мандестробин, азоксистробин, эноксастробин, пикоксистробин, пираоксистробин, пираклостробин, пираметостробин, триклопирикарб, фамоксадон, димоксистробин, фенаминстробин, оризастробин, крезоксим-метил, трифлоксистробин, ламинарин и их смеси. Содержащееся количество индукторов устойчивости не ограничено как-либо конкретно. В некоторых иллюстративных вариантах осуществления количество индуктора устойчивости в препарате или общее количество смеси индукторов устойчивости в препарате может составлять от 5 до 50%. В других иллюстративных вариантах осуществления количество индуктора устойчивости в препарате или общее количество смеси индукторов устойчивости в препарате может превышать, например, 7%, 10%, 15%, 20%, 25%, 30%, 35%, 40% или 45%. В других иллюстративных вариантах осуществления количество индуктора устойчивости в препарате или общее количество смеси индукторов устойчивости в препарате может быть менее, например, 7%, 10%, 15%, 20%, 25%, 30%, 35%, 40% или 45%. В некоторых иллюстративных вариантах осуществления количество индуктора устойчивости в препарате или общее количество смеси индукторов устойчивости в препарате может составлять от 5 до 15%, от 15 до 25%, от 25 до 35%, от 35 до 45% или от 40 до 50%.

[119] Примеры биопестицидов, которые могут быть использованы с приемлемым для сельского хозяйства препаратом, включают, не ограничиваясь перечисленным, Bacillus subtillis, Bacillus amyloliquefasciens, карбоновые кислоты, оксолиновые кислоты, Bacillus micoides, Trichoderma atriviride, хитозан и их смеси. Содержащееся количество биопестицидов не ограничено как-либо конкретно. В некоторых иллюстративных вариантах осуществления количество биопестицида в препарате или общее количество смеси биопестицидов в препарате может составлять от 10 до 50%. В других иллюстративных вариантах осуществления количество биопестицида в препарате или общее количество смеси биопестицидов в препарате может превышать, например, 12%, 15%, 20%, 25%, 30%, 35%, 40% или 45%. В других иллюстративных вариантах осуществления количество биопестицида в препарате или общее количество смеси биопестицидов в препарате может быть менее, например, 12%, 10%, 15%, 20%, 25%, 30%, 35%, 40% или 45%. В некоторых иллюстративных вариантах осуществления количество биопестицида в препарате или общее количество смеси биопестицидов в препарате может составлять от 10 до 15%, от 15 до 25%, от 25 до 35%, от 35 до 45% или от 40 до 50%.

[120] Примеры фунгицидов, которые могут быть использованы с приемлемым для сельского хозяйства препаратом, включают, не ограничиваясь перечисленным, хлороталонил, PCNB (пентахлорнитробензол), манеб, препараты меди, цирам, манкоцеб, металаксил, беномил, ипродион, тифлузамид, диметоморф, миклобутанил, пентиопирад, флудиоксонил, циазофамид, тиабендазол, пропамокарб, фенгексамид, боскалид, флуопиколид, экстракт Reynoutria sachalinensis, трифлумизол, ипродион, пропамокарб, прохлораз, тиабендазол, эпоксиконазол, металаксил, цимоксанил, пикарбутразокс и их смеси. Содержащееся количество фунгицидов не ограничено как-либо конкретно. В некоторых иллюстративных вариантах осуществления количество фунгицида в препарате или общее количество смеси фунгицидов в препарате может составлять от 5 до 75%. В других иллюстративных вариантах осуществления количество фунгицида в препарате или общее количество смеси фунгицидов в препарате может превышать, например, 7%, 10%, 15%, 20%, 25%, 30%, 35%, 40%, 45%, 50%, 55%, 60%, 65% или 70%. В других иллюстративных вариантах осуществления количество фунгицида в препарате или общее количество смеси фунгицидов в препарате может быть менее, например, 7%, 10%, 15%, 20%, 25%, 30%, 35%, 40%, 45%, 50%, 55%, 60%, 65% или 70%. В некоторых иллюстративных вариантах осуществления количество фунгицида в препарате или общее количество смеси фунгицидов в препарате может составлять от 5 до 20%, от 15 до 30%, от 25 до 40%, от 40 до 55%, от 55 до 70% или от 60 до 75%.

[121] Примеры внекорневых удобрений, которые могут быть использованы с приемлемым для сельского хозяйства препаратом, включают, не ограничиваясь перечисленным, магний, бор, цинк, азот, марганец, кальций, алюминий, хелаты, железо, молибден, калий, кобальт, медь, фосфит, серу и аминокислоты. Содержащееся количество внекорневых удобрений не ограничено как-либо конкретно. В некоторых иллюстративных вариантах осуществления количество внекорневого удобрения в препарате или общее количество смеси внекорневых удобрений в препарате может составлять от 0,0001 до 60%. В других иллюстративных вариантах осуществления количество внекорневого удобрения в препарате или общее количество смеси внекорневых удобрений в препарате может превышать, например, 0,0005%, 0,001%, 0,005%, 0,01%, 0,05%, 0,1%, 0,5%, 1%, 5%, 15%, 25%, 35%, 45% или 55%. В других иллюстративных вариантах осуществления количество внекорневого удобрения в препарате или общее количество смеси внекорневых удобрений в препарате может быть менее, например, 0,0005%, 0,001%, 0,005%, 0,01%, 0,05%, 0,1%, 0,5%, 1%, 5%, 15%, 25%, 35%, 45% или 55%. В некоторых иллюстративных вариантах осуществления количество внекорневого удобрения в препарате или общее количество смеси внекорневых удобрений в препарате может составлять от 0,0001 до 0,001%, от 0,01 до 0,1%, от 0,1 до 1%, от 1 до 10%, от 5 до 25%, от 15 до 30%, от 25 до 50% или от 40 до 60%.

[122] Примеры гормонов, которые могут быть использованы с приемлемым для сельского хозяйства препаратом, включают, не ограничиваясь перечисленным, цитокинины, гиббереллины и ауксины. Содержащееся количество гормонов не ограничено как-либо конкретно. В некоторых иллюстративных вариантах осуществления количество гормона в препарате или общее количество смеси гормонов в препарате может составлять от 0,0001 до 20%. В других иллюстративных вариантах осуществления количество гормона в препарате или общее количество смеси гормонов в препарате может превышать, например, 0,0005%, 0,001%, 0,005%, 0,01%, 0,05%, 0,1%, 0,5%, 1%, 2,5%, 5%, 7,5%, 10% 12,5%, 15% или 17,5%. В других иллюстративных вариантах осуществления количество гормона в препарате или общее количество смеси гормонов в препарате может быть менее, например, 0,0005%, 0,001%, 0,005%, 0,01%, 0,05%, 0,1%, 0,5%, 1%, 2,5%, 5%, 7,5%, 10%, 12,5%, 15% или 17,5%. В некоторых иллюстративных вариантах осуществления количество гормона в препарате или общее количество смеси гормонов в препарате может составлять от 0,0001 до 0,001%, от 0,01 до 0,1%, от 0,1 до 1%, от 1 до 5%, от 5 до 10%, от 10 до 15% или от 15 до 20%.

[123] Примеры других приемлемых для сельского хозяйства веществ, которые могут быть использованы с приемлемым для сельского хозяйства препаратом, включают, не ограничиваясь перечисленным, сульфат меди, хлорокись меди, гидроксид меди, бордоскую жидкость (cuprocalcic sulfate), серу во всех вариантах, глюконат меди, октаноат меди, трехосновный сульфат меди, хлорид кальция, фосфорную кислоту, оксид цинка, фосфит и их смеси. Содержащееся количество других приемлемых для сельского хозяйства веществ не ограничено как-либо конкретно. В некоторых иллюстративных вариантах осуществления количество другого приемлемого для сельского хозяйства вещества в препарате или общее количество смеси других приемлемых для сельского хозяйства веществ в препарате может составлять от 0,05 до 70%. В других иллюстративных вариантах осуществления количество другого приемлемого для сельского хозяйства вещества в препарате или общее количество смеси других приемлемых для сельского хозяйства веществ в препарате может превышать, например, 0,1%, 0,5%, 1%, 5%, 10%, 15%, 20%, 25%, 30%, 35%, 40%, 45%, 50%, 55%, 60% или 65%. В других иллюстративных вариантах осуществления количество другого приемлемого для сельского хозяйства вещества в препарате или общее количество смеси других приемлемых для сельского хозяйства веществ в препарате может быть менее, например, 0,1%, 0,5%, 1%, 5%, 10%, 15%, 20%, 25%, 30%, 35%, 40%, 45%, 50%, 55%, 60% или 65%. В некоторых иллюстративных вариантах осуществления количество другого приемлемого для сельского хозяйства вещества в препарате или общее количество смеси других приемлемых для сельского хозяйства веществ в препарате может составлять от 0,05 до 0,1%, от 0,1 до 0,5%, от 0,5 до 1%, от 1 до 5%, от 5 до 15%, от 15 до 25%, от 25 до 40%, от 40 до 50%, от 50 до 60% или от 60 до 70%.

[124] Для получения приемлемого для сельского хозяйства препарата может быть использована предварительная смесь танинов, к которой могут быть добавлены другие вещества, присутствующие в приемлемом для сельского хозяйства препарате. Пример предварительной смеси танинов включает смесь, содержащую приблизительно 65% танинов (смесь приблизительно 35,5% касталагина, приблизительно 23,3% васкалагина, приблизительно 2,0% касталина и приблизительно 5,0% вескалина), приблизительно 15% сахаров и приблизительно 15% бентонита, где остальное составляет вода (если не указано иное, эта предварительная смесь будет называться предварительной смесью А). Компоненты предварительной смеси не ограничены как-либо конкретно, но иллюстративная предварительная смесь может содержать танины, углеводы и бентонит.

[125] Один иллюстративный препарат включает смесь 5 мас. % предварительной смеси A и 95 мас. % диатомовой земли (например, 50 граммов танинов на килограмм препарата и 950 граммов диатомовой земли на килограмм препарата).

[126] Еще один иллюстративный препарат включает смесь 10 мас. % предварительной смеси A и 90 мас. % диатомовой земли (например, 100 граммов танинов на килограмм препарата и 900 граммов диатомовой земли на килограмм препарата).

[127] Еще один иллюстративный препарат включает смесь 20 мас. % предварительной смеси A и 80 мас. % диатомовой земли (например, 200 граммов танинов на килограмм препарата и 800 граммов диатомовой земли на килограмм препарата).

[128] Еще один иллюстративный препарат включает смесь предварительной смеси A (200 г, 20 мас. %), лигносульфоната натрия (40 г, 4 мас. %), нафталинсульфоната (20 г, 2 мас. %), ксантановой камеди (5 г, 0,50 мас. %) и диатомовой земли (735 г, 73,50 мас. %).

[129] Приемлемый для сельского хозяйства препарат согласно настоящему изобретению может, например, быть помещен в и смешан с надлежащим количеством воды для разбрызгивания в виде очень маленьких капелек воды «до тех пор, пока он не начнет стекать в виде капель» посредством подходящего оборудования для культуры, для защиты которой он предназначен, в которой может присутствовать повреждение патогенами, которое в противном случае будет продолжать приносить вред растениям. Количество воды, которое может быть смешано с приемлемым для сельского хозяйства препаратом, может составлять, например, 50 литров воды на 2 килограмма на гектар при нанесении с самолета; 1000 литров воды на 2 кг на гектар при нанесении на растения с помощью опрыскивателя; 400-600 литров воды на 2 килограмма на гектар при применении на таких растениях, как томаты, перец, лук и тому подобное. Однако количество используемой воды не ограничено как-либо конкретно, и можно использовать любое разбавление при условии, что оно обеспечивает противопатогенные действия, раскрытые в настоящем документе.

[130] Способ, посредством которого приемлемый для сельского хозяйства препарат может быть введен растениям, не ограничен как-либо конкретно. Примеры включают нанесение приемлемого для сельского хозяйства препарата с помощью самолета или опрыскивателя (такого как пневматический опрыскиватель, ручной опрыскиватель или механический опрыскиватель). Приемлемый для сельского хозяйства препарат также может быть нанесен с помощью поливальной установки, посредством которой приемлемый для сельского хозяйства препарат вводят в почву. Кроме того, приемлемый для сельского хозяйства препарат может быть нанесен на растения с помощью оросительных систем. В определенных случаях приемлемый для сельского хозяйства препарат также может быть введен в растение с помощью инъекции.

[131] Приемлемый для сельского хозяйства препарат может быть нанесен на растение, листву растения или может быть нанесен на почву. Например, приемлемый для сельского хозяйства препарат может быть нанесен на листву, стебель, полог, ствол, корни, побеги, мелкие ветви и/или цветки растения. Приемлемый для сельского хозяйства препарат также может быть нанесен на семена и корневища растения. Приемлемый для сельского хозяйства препарат может быть нанесен на всходы.

[132] При нанесении на растение или листву растения приемлемый для сельского хозяйства препарат может быть введен в количестве, обеспечивающем бактерицидное действие согласно настоящему изобретению. Например, приемлемый для сельского хозяйства препарат может быть нанесен так, чтобы ввести количество танина, необходимое для обеспечения противопатогенных действий согласно настоящему изобретению. Такие количества могут быть определены на основе концентрации танинов, присутствующих в приемлемом для сельского хозяйства препарате. Например, может быть подходящим количество 2 килограмма (разведенного в подходящем количестве воды) на гектар растений. Приемлемый для сельского хозяйства препарат может быть введен растениям с интервалами, например, от 1 до 21 дня, предпочтительно с интервалами от 2 до 14 дней, а также предпочтительно с интервалами от 3 до 7 дней. Однако количества и интервалы не ограничиваются перечисленными и могут быть определены на основании приемлемого для сельского хозяйства препарата. Приемлемый для сельского хозяйства препарат может быть введен на стадии рассады, стадии всходов, стадии пересадки, вегетативной стадии, перед цветением, во время полного цветения, после цветения и во время завязывания плодов. Приемлемый для сельского хозяйства препарат также может быть введен во время периода покоя растения.

[133] Приемлемый для сельского хозяйства препарат согласно настоящему изобретению может быть изготовлен путем смешивания вместе веществ, перечисленных выше. Способ смешивания веществ не ограничен как-либо конкретно. Приемлемый для сельского хозяйства препарат может быть затем добавлен к заранее определенному количеству воды и, при необходимости, к водоулучшающему средству.

[134] Приемлемый для сельского хозяйства препарат представляет собой бактерицидный и фунгицидный препарат, который может быть использован в большом количестве различных растений и видов растений, имеющих большое экономическое значение. К ним относятся, но не ограничиваются ими, овощные культуры, такие как артишок, спаржа, свекла, буряк, болгарский перец, брокколи, брюссельская капуста, капуста, морковь, цветная капуста, сельдерей, сахарная кукуруза, огурец, баклажан, фасоль, овощная фасоль, лук, лук на перо, лук-порей, латук, горох, перец, картофель, тыква, редька, лук-батун, патиссон, батат, томат, кабачок и грибы; а также зерновые культуры, такие как пшеница, овес, кукуруза, рис, ячмень, сорго, тритикале, киноа и т.п.; а также плодовые культуры, такие как авокадо, яблоко, груши, персики, слива, банан, чернослив, цитрусовые, лимоны, апельсины, гранат, папайя, манго, личи, рамбутан, клубника, клюква, ежевика, малина; а также другие культуры, такие как орехи, травы, сахарный тростник и тому подобное.

[135] Приемлемый для сельского хозяйства препарат также продемонстрировал преимущества при обработке питомников и парников, а также у декоративных растений, таких как цветы, которые включают хризантемы, маргаритки, розы, бегонии, гладиолусы, герани, гардении и гвоздики. Приемлемый для сельского хозяйства препарат также пригоден для защиты затеняющих деревьев, лесных деревьев и однолетних и двухлетних культур от бактериальных заболеваний.

[136] В качестве примеров, состав приемлемого для сельского хозяйства препарата эффективен для борьбы с грамотрицательными видами и грамположительными видами, такими как виды Erwinia, виды Pseudomonas, виды Xanthomonas, виды Pectobacterium, виды Enterobacter, виды Pantoea, виды Streptomyces, виды Phytoplasmas, виды Corynebacterium, виды Ralstonia, виды Clavibacter и виды Agrobacterium. В частности, бактерий, принадлежащих к следующим видам: Acetobacter aceti, Acetobacter pasteurianus, Acidovorax anthurii, Acidovorax avenae, Acidovorax avenae subsp.avenae, Acidovorax avenae subsp.cattleyae, Acidovorax avenae subsp.citrulli, Acidovorax konjaci, Acidovorax valerianellae, Acidovorax cattleyae, Acidovorax citrulli, Acidovorax oryzae Rhizobium, Rhizobium larrymoorei, Rhizobium radiobacier, Rhizobium rhizogenes, Rhizobium rubi, Rhizobium viti. Arthrobacter sp.Arthrobacter ilicis, Bacillus sp., Bacillus megaterium, Bacillus megaierium pv. cerealis, Bacillus pumilus, Brenneria alni, Brenneria nigrifluens, Brenneria quercina, Brenneria rubrifaciens, Brenneria salicis, Brenneeria quercina pv. quercina, Brenneeria quercina pv. lupinicola, Burkholderia andropogonis, Burkholderia caryophylli, Burkholderia cepacia, Burkholderia gladioli, Burkholderia gladioli pv. agaricicola, Burkholderia gladioli pv alliicola, Burkholderia gladioli pv. Gladioli, Burkholderia glumae, Burkholderia plantarii, Ralstonia solanacearum, Candidatus liberibacter, Candidatus liberibacter africanis, Candidatus liberibacter africanis subsp.capensis, Candidatus liberibacter americanus, Candidatus liberibacter asiaticus, Candidatus phlomobacter, Candidatus phlomobacter fragariae, Candidatus phytoplasma, Candidatus phytoplasma allocasuarinae, Candidatus phytoplasma americanum, Candidatus phytoplasma asteris, Candidatus phytoplasma auranlifolia, Candidatus phytoplasma australasia, Candidatus phytoplasma australiense, Candidatus phytoplasma brasiliense, Candidatus phytoplasma caricae, Candidatus phytoplasma castaniae, Candidatus phytoplasma cynodontis, Candidatus phytoplasma fragariae, Candidatus phytoplasma fraxini, Candidatus phytoplasma graminis, Candidatus phytoplasma japonicum, Candidatus phytoplasma lycopersici, Candidatus phytoplasma mali, Candidatus phytoplasma oryzae, Candidatus phytoplasma phoenicium, Candidatus phytoplasma pini, Candidatus phytoplasma prunorum, Candidatus phytoplasma pyri, Candidatus phytoplasma rhamni, Candidatus phytoplasma spartii, Candidatus phytoplasma trifolii, Candidatus phytoplasma ulmi, Candidatus phytoplasma ziziphi, Candidatus phytoplasma omanense, Candidatus phytoplasma tamaricis, Candidatus liberibacter psyllaurous, Candidatus liberibacter solanacearum, Clavibacter sp, Rathayibacter iranicus, Clavibacter michiganensis, Clavibacter michiganensis subsp.insidiosus, Clavibacter michiganensis subsp.michiganensis, Clavibacter michiganensis subsp.nebraskensis, Clavibacter michiganensis subsp.sepedonicus, Clavibacter michiganensis subsp.tessellarium, Clostridium sp.Clostridium puniceum. Corynebacterium sp.Curtobacterium sp., Curtobacterium flaccumfaciens pv. hetae, Curtobacterium flaccumfaciens pv. flaccumfaciens, Curtobacterium flaccumfaciens pv. ilicis, Curtobacterium flaccumfaciens pv. oortii, Curtobacterium flaccumfaciens pv. poinsettiae, Dickeya sp., Dickeya chrysanthemi, Dickeya chrysanthemi pv. chrysanthemi, Dickeya chrysanthemi pv. parthenii, Dickeya dadantii, Dickeya diantbicola, Dickeya dieffenbachiae, Dickeya paradisiaca, Dickeya zeae, Enterobacter sp.Enterobacter cancerogenus, Enterobacter cloacae, Enterobacter cloacae subsp dissolvens, Enterobacter nimipressuralis, Enterobacter pyrinus, Erwinia sp., Erwinia amylovora, Erwinia mallotivora, Erwinia papayae, Erwinia persicina, Erwinia psidii, Erwinia pyrifoliae, Erwinia rhapontici, Erwinia tracheiphila, Ewingella sp., Ewingella americana, Gluconobacter sp.G. oxydans, Herbaspirillum sp., Herbaspirilium rubrisubalbicans, Janthinobacterium sp.J. agaricidamnosum, Leifsonia sp.Leifsonia cynodontis, Leifsonia xyli, Leifsonia xyli subsp.cynodontis, Leifsonia xyli subsp xyli, Nocardia sp., Nocardia vaccinii, Pantoea sp., Pantoea agglomerans, Pantoea agglomerans pv. gypsophilae, Pantoea agglomerans pv. millettiae, Pantoea ananatis, Pantoea ananatis pv. ananatis, Pantoea ananatis pv. uredova, Pantoea stewartii, Pantoea stewartii subsp.indologenes, Pantoea stewartii subsp.stewartii, Pectobacterium sp., Pectobacterium atrosepticum, Pectobacterium betavasculorum, Pectobacterium cacticida, Pectobacterium carotovorum, Pectobacterium carotovorum subsp.carotovorum, Pectobacterium carotovorum subsp.odoriferum, Pectobacterium cypripedii, Pectobacterium wasabiae, Pseudomonas sp., Pseudomonas agarici, Pseudomonas amygdali, Pseudomonas asplenii, Pseudomonas avellanae, Pseudomonas beteli, Pseudomonas cannabina, Pseudomonas caricapapayae, Pseudomonas cichorii, Pseudomonas cissicola, Pseudomonas corrugata, Pseudomonas costantinii, Pseudomonas ficusereclae, Pseudomonas flectens, Pseudomonas fuscovaginae, Pseudomonas hibiscicola, Pseudomonas marginalis, Pseudomonas matginalis pv. alfalfae, Pseudomonas marginalis pv. marginalis Pseudomonas marginalis pv. pastinacae, Pseudomonas mediterranea, Pseudomonas meliae Pseudomonas palleroniana, Pseudomonas salomonii, Pseudomonas savastanoi, Pseudomonas savastanoi pv. fraxini, Pseudomonas savastanoi pv. glycinea, Pseudomonas savastanoi pv. nerii, Pseudomonas savastanoi pv. phaseolitica, Pseudomonas savastanoi pv. retacarpa, Pseudomonas savastanoi pv. savastanoi, Pseudomonas syringae, Pseudomonas syringae pv.aceris, Pseudomonas syringae pv. actinidiae, Pseudomonas syringae pv. aesculi, Pseudomonas syringae pv. alisalensis, Pseudomonas syringae pv. antirrhini, Pseudomonas syringae pv. apii, Pseudomonas syringae pv. aptata, Pseudomonas syringae pv. atrofaciens, Pseudomonas syringae pv. atropurpura, Pseudomonas avellanae, Pseudomonas syringae pv. avvi, Pseudomonas syringae pv. berberidis, Pseudomonas cannabina, Pseudomonas syringae pv. broussonetiae, Pseudomonas syringae pv. castaneae, Pseudomonas syringae pv cerasicola, Pseudomonas syringae pv. ciccaronei, Pseudomonas syringae pv coriandricola, Pseudomonas syringae pv. coronafaciens, Pseudomonas syringae pv. coryli, Pseudomonas syringae pv. cunninghamiae, Pseudomonas syringae pv. daphniphylli, Pseudomonas syringae pv. delphinii, Pseudomonas syringae pv. dendropanacis, Pseudomonas syringae pv. disoxyli, Pseudomonas syringae pv. eriobotryae, Pseudomonas syringae pv. garcae, Pseudomonas sevastanoi pv. glycineae, Pseudomonas syringae pv. helianthi, Pseudomonas syringae pv. hibisci, Pseudomonas syringae pv. syringae, Pseudomonas syringae pv. lachrymans, Pseudomonas syringae pv lapsa, Pseudomonas syringae pv. maculicola, Pseudomonas syringae pv. mellea, Pseudomonas syringae pv. mori, Pseudomonas syringae pv. morsprunorum, Pseudomonas syringae pv. myricae, Pseudomonas syringae pv. oryzae, Pseudomonas syringae pv. papulans, Pseudomonas syringae pv. passiflorae, Pseudomonas syringae pv. persicae, Pseudomonas sevastanoi pv. phaseolicola, Pseudomonas syringae pv. philadelphi, Pseudomonas syringae pv. photiniae, Pseudomonas syringae pv. pisi, Pseudomonas syringae pv. porri, Pseudomonas syringae pv. primulae, Pseudomonas syringae pv. rhaphiolepidis, Pseudomonas syringae pv. ribicola, Pseudomonas syringae pv. sesami, Pseudomonas syringae pv. solidagae, Pseudomonas syringae pv. spinaceae, Pseudomonas syringae pv. striafaciens, Pseudomonas syringae pv. syringae, Pseudomonas syringae pv. tabaci, Pseudomonas syringae pv. tagetis, Pseudomonas syringae pv. theae, Pseudomonas syringae pv. tomato, Pseudomonas syringae pv. ulmi, Pseudomonas syringae pv. viburni, Pseudomonas syringae pv. zizaniae, Pseudomonas syringae pv., Ralstonia solanacearum, Ralstonia syzygii, Rathayibacter iranicus, Rathayibacter rathayi, Rathayibacter toxicus, Rathayibacter tritici, Rhizobacter dauci, Rhizobium larrymoorei, Rhizobium radiobacter, Rhizobium rhizogenes, Rhizobium rubi, Rhizobium vitis, Rhodococcus fascians, Samsonia erythrinae, Serratia marcescens, Serratia proteamaculans, Sphingomonas melonis, Sphingomonas suberifasciens, Spriroplasma citri, Spriroplasma kunkelii, Spriroplasma phoeniceum, Streptomyces acidiscabies, Streptomyces albidoflavus, Streptomyces candidus, Streptomyces caviscabies, Streptomyces collinus, Streptomyces europaeiscabiei, Streptomyces intermedius, Streptomyces ipomocae, Streptomyces luridiscabiei, Streptomyces niveiscabiei, Streptomyces puniciscabiei, Streptomyces reticuliscabei, Streptomyces scabiei, Streptomyces setonii, Streptomyces steliiscabiei, Streptomyces turgidiscabieis, Streptomyces wedmorensis, Xanthomonas albilineans, Xanthomonas alfalfae, Xanthomonas alfalfae subsp.alfalfae, Xanthomonas alfalfae subsp.citrumelonis, Xanthomonas arboricola, Xanthomonas arboricola pv. celebensis, Xanthomonas arboricola pv. corylina, Xanthomonas arboricola pv. fragariae, Xanthomonas arboricola pv. juglandis, Xanthomonas anoxopodis pv. poinsettiicola, Xanthomonas arboricola pv. populi, Xanthomonas arboricola pv. pruni, Xanthomonas anoxopodis, Xanthomonas fuscans subsp.aurantifolii, Xanthomonas axanopodis pv. allii, Xanthomonas axonopodis pv. axonopodis, Xanthomonas axonopodis pv. baubiniae, Xanthomonas axonopodis pv. begoniae, Xanthomonas axonopodis pv. betlicola, Xanthomonas axonopodis pv. biophyti, Xanthomonas axonopodis pv. cajani, Xanthomonas axonopodis pv. cassiae, Xanthomonas citri, Xanthomonas axonopodis pv. clitoriae, Xanthomonas axonopodis pv. coracanae, Xanthomonas axonopodis pv. cyamopsidis, Xanthomonas axonopodis pv. desmodii, Xanthomonas axonopodis pv. desmodiigangetici, Xanthomonas axonopodis pv. desmodiilaxiflori, Xanthomonas axonopodis pv. desmodiirotundifolii, Xanthomonas axonopodis pv. dieffenbachiae, Xanthomonas axonopodis pv. erythrinae, Xanthomonas axonopodis pv. fascicularis, Xanthomonas axonopodis pv. glycines, Xanthomonas axonopodis pv. khayae, Xanthomonas axonopodis pv. lespedezae, Xanthomonas axonopodis pv. maculifoliigardeniae, Xanthomonas citri subsp.malvacearum, Xanthomonas axonopodis pv. manibotis, Xanthomonas axonopodis pv. martyniicola, Xanthomonas axonopodis pv. melbusii, Xanthomonas axonopodis pv. nakataecorchori, Xanthomonas campestris pv. passiflorae, Xanthomonas axonopodis pv. patelii, Xanthomonas axonopodis pv. pedalii, Xanthomonas axonopodis pv. phaseoli, Xanthomonas axonopodis pv. phyllanthi, Xanthomonas axonopodis pv. physalidicola, Xanthomonas axonopodis pv. poinsettiicola, Xanthomonas axonopodis pv. punicae, Xanthomonas axonopodis pv. rhynchosiae, Xanthomonas axonopodis pv. ricini, Xanthomonas axonopodis pv. sesbaniae, Xanthomonas axonopodis pv. tamarindi, Xanthomonas axonopodis pv. vasculorum, Xanthomonas vesicatoria, Xanthomonas axonopodis pv. vignaeradiatae, Xanthomonas axonopodis pv. vignicola, Xanthomonas axonopodis pv. vitians, Xanthomonas bromi, Xanthomonas campestris, Xanthomonas campestris pv. aberrans, Xanthomonas campestris pv. armoraciae, Xanthomonas campestris pv. barbareae, Xanthomonas campestris pv. campestris, Xanthomonas campestris pv. incanae, Xanthomonas campestris pv. plantaginis, Xanthomonas campestris pv. raphani, Xanthomonas campestris pv. alangii, Xanthomonas campestris pv. amaranthicola, Xanthomonas campestris pv. amorphophalli, Xanthomonas campestris pv. aracearum. Xanthomonas campestris pv. arecae, Xanthomonas campestris pv. argemones, Xanthomonas campestris pv. arracaciae, Xanthomonas campestris pv. asclepiadis, Xanthomonas campestris pv. azadirachteae, Xanthomonas campestris pv. badrii, Xanthomonas campestris pv. betae, Xanthomonas campestris pv. bilvae, Xanthomonas campestris pv. blepharidis, Xanthomonas campestris pv. boerbaaviae, Xanthomonas campestris pv. brunneivaginae, Xanthomonas campestris pv. cannabis, Xanthomonas campestris pv. cannae, Xanthomonas campestris pv. carissae, Xanthomonas campestris pv. centellae, Xanthomonas campestris pv. clerodendri, Xanthomonas campestris pv. convolvuli, Xanthomonas campestris pv. coriandri, Xanthomonas campestris pv. daturae, Xanthomonas campestris pv. durantae, Xanthomonas campestris pv. esculenti, Xanthomonas campestris pv. eucalypti, Xanthomonas campestris pv. euphorbiae, Xanthomonas campestris pv. fici, Xanthomonas campestris pv. guizotiae, Xanthomonas campestris pv. gummisudans, Xanthomonas campestris pv. heliotropii, Xanthomonas campestris pv. ionidii, Xanthomonas campestris pv. lantanae, Xanthomonas campestris pv. laureliae, Xanthomonas campestris pv. lawsoniae, Xanthomonas campestris pv. leeana, Xanthomonas campestris pv. leersiae, Xanthomonas campestris pv. malloti, Xanthomonas campestris pv. mangiferaeindicae, Xanthomonas campestris pv. merremiae, Xanthomonas campestris pv. mirabilis, Xanthomonas campestris pv. mori, Xanthomonas campestris pv. musacearum, Xanthomonas campestris pv. nigromaculans, Xanthomonas campestris pv. obscurae, Xanthomonas campestris pv. olilorii, Xanthomonas campestris pv. papavericola, Xanthomonas campestris pv. parthenii, Xanthomonas campestris pv. paulliniae, Xanthomonas campestris pv. pennamericanum, Xanthomonas campestris pv. phormiicola, Xanthomonas campestris pv. physalidis, Xanthomonas campestris pv. sesami, Xanthomonas campestris pv. spermacoces, Xanthomonas campestris syngonii, Xanthomonas campestris pv. tardicrescens, Xanthomonas campestris pv. thespesiae, Xanthomonas campestris pv. thirumalacharii, Xanthomonas campestris pv. tribuli, Xanthomonas campestris pv. trichodermae, Xanthomonas campestris pv. uppalii, Xanthomonas campestris pv. vernomiae, Xanthomonas campestris pv. viegasii, Xanthomonas campestris pv. viticola, Xanthomonas campestris pv. vitiscarnosae, Xanthomonas campestris pv. vitistrifoliae, Xanthomonas campestris pv. vitiswoodrowii, Xanthomonas campestris pv. zantedeschiae, Xanthomonas campestris pv zingibericola, Xanthomonas campestris pv. zinniae, Xanthomonas cassavae, Xanthomonas citri subsp malvarearum, Xanthomonas codiaei, Xanthomonas curcubitae, Xanthomonas cynarae, Xanthomonas euvesicatoria, Xanthomonas fragariae, Xanthomonas fuscans, Xanthomonas fuscans subsp.aurantifolii, Xanthomonas fuscans subsp.fuscans, Xanthomonas gardneri, Xanthomonas hortorum pv. carotae, Xanthomonas hortorum pv. hederae, Xanthomonas hortorum pv. pelargonii, Xanthomonas hortorum pv. taraxaci, Xanthomonas hyacinthi, Xanthomonas melonis, Xanthomonas oryzae, Xanthomonas oryzae pv. oryzae, Xanthomonas oryzae pv. oryzicola, Xanthomonas perforans, Xanthomonas pisi, Xanthomonas populi, Xanthomonas sacchari, Xanthomonas theicola, Xanthomonas translucens, Xanthomonas translucens pv. arrhenatheri, Xanthomonas translucens pv. cerealis, Xanthomonas translucens pv. graminis, Xanthomonas translucens pv. phlei, Xanthomonas translucens pv. phleipratensis, Xanthomonas translucens pv. poae, Xanthomonas translucens pv. secalis, Xanthomonas translucens pv. translucens, Xanthomonas translucens pv. undulosa, Xanthomonas vasicola, Xanthomonas vasicola pv. holcicola, Xanthomonas vesicatoria, Xylella fastidiosa, Xanthomonas fastidiosa subsp.fastidiosa, Xanthomonas fastidiosa subsp.multiplex, Xylophilus ampelinus, Gibbsiella quercinecans, Pantoea citrea, Pantoea cypripedii, Pseudomonas cannabina, Pseudomonas cannabina pv. alisalensis, Pseudomonas cannabina pv. cannabina, Tatumella morbirosei, Tatumella ptyseos, Xanthomonas axonopodis pv. anacardii, Xanthomonas anoxopodis mangiferaeindicae, Xanthomonas axonopodis pv. spondiae, Xanthomonas dyei, Xanthomonas dyei pv. dysoxyli, Xanthomonas dyei pv. eucalypti, Xanthomonas dyei pv. laureliae, Xanthomonas translucen pv. pistaciae.

[137] Другие растения, такие как Cotoneaster, Pyracantha, Stranvaesia, Fraxinus, Pyrus, Malus, Capsicum, Cydonia, Crataegus и Soreus, могут извлекать пользу от применения приемлемого для сельского хозяйства препарата на основе танина. Например: приемлемый для сельского хозяйства препарат на основе танинов также может быть использован непосредственно на растениях или деревьях следующих родов:

[138] Asparagus officinalis, Alocasia macrorhiza, Acoelorraphe wrightii, Aiphanes aculeata, Archontophoenix alexandrae, Areca catechu, Acer negundo, Acer saccharinum, Arbustus xalapensis, Acasia farmesiana, Alnus acuminata, Aloe barbadensis, Apuntia spp., Anthurium andraeanum, Apium graveolens, Avena sativa, Actinidia deliciosa, A. chinensis, A. erguta, Anacardium occidentale, Allium cepa, Allium schoenoprasum, Allium fistulosum, A. ascalonicum, Annona reticulata, Amelanchier alnifolia, A. canadensis, A. laevia, Aronia arbutifolia, A. melanocarpa, Aruncus sylvester, Allium sativum, Allium porrum, Apium gravolens, Arachis hypogaea, Annona squamosa, Annona muricata, Acalypha hispida, Arachis hypogaea, Allium schoeroprassum, Apium graveolens, Allium spp., Adianthum spp, Brassica oleracea, B. campestris, B. napus, Byrsonima crassifolia, Brassica oleracea, B. oleracea var. botrytis, Brassica capitate, Begonia argenteo-guttata, Bidens pilosa, Boldoa purpurascens, Bixa orellana, Bucida buceras, Buddleia cordata, Brahea armata, Beta vulgaris, Bougainvillea spectabilis, Bombax emarginatum, Beaucamea recurvata, Bahuinia divaricata, Curcubita moschata, C. maxima, C. pepo, Cucumis melo, Cucumis sativus, Chrysophyllum cainito, Coco nucifera, Carica papaya, Citrus aurantifolia, Citrus limonum, Calocarpum mammosum, Citrus reticulata, Citrullus vulgaris, Citrus aurantium, Citrus sinensis, Crataegus mexicana, Casimiroa edulis, Cucumis sativus, Colocasia esculenta, Cajanus cajan, Chamadorea graminofilia, Caladium spp., Chlorophytum comosum, Chysanthemum sinense, Cordyline terminalis, Cycas spp., Crocus sativus, Cinnamomum canella wintereana, Castus ruber, Callistephus hortensis, Coriandrum sativum, Coleus blumei, Chysantellum americanum, Casuarina equisetifolia, Cedrela odorata, Ceiba pentandra, Callistemon lanceolatus, Cassia fistula, Magnolia sp., Cocos nucifera, Chrysalidocarpus, Cyca circinalis, Cyca revoluta, Cynara cardunculus, C. scolymus, Citrus paradisi, Citrus grandis, Cestrum nocturnus, Chaenomeles japonica, C. lagenaria, Cotoneaster acuminatus, C. Adpressus Bois, C. affinis, C. ambiguus, C. apiculatus, C. ascendens, C. bullatus, C. floribunda, C. buxifolius, C. buxifolius f. vellaea, C. commixtus, C. congestus, C. conspicuus, C. dammeri, C. dielsianus, C. divaricatus, C. elegans, C. floccosus, C. foveolatus, C. franchetti, C. frigidus, C. glabratus, C. glaucophyllus, C. harrysmithii, C. henryanus, C. hissarcus, C. ignavus, C. insignia, C. horizontalis, C. khasiensis, C. lacteus, C. laxiflorus, C. lucidus, C. melanocarpus, C. microphyllus, C. moupinensis, C. multiflorus, C. nanshan, C. nitens, C. obscurus, C. obtusus, C. pannosus, C. perpusillus, C. polyanthemus, C. postratus, C. racemiflorus, C. roseus, C. rotundifolius, C. rubens, C. salsifolius, C. siminsii, C. soongoricus, C. spendens, C. stemianus, C. tenuipes, C. tormentosus, C. veitchii, C. villosulus, C. wardii, C. watereri, C, zabelii, Cowania slanburiana, Crataegomespilus dardarii, Crataegus arnoldiana, C. crusgalli, C. douglassi, C. flavellata, C. mollis, C. monogyna, C. oxyacantha, C. pedicellata, C. phaenopyrum, C. punctata, C. succulenta, C. uniflora,, Capsicum annuum, Citrus sp., Cydonia oblonga, C. sinensis, Carya illinoinensis, Cocos nucifera, Chenopodium ambrosoides, Chamaerops humilis, Chamaedorea elegans, Citrus paradisi-reticulata, Catleya spp., Carum carvi, Chrysalidocarpus lutescens, Curcuma longa, Ceratozania mexicana, Caryota urens, Coccothrinax readii, Chamaedorea tepejilote, Coffea arabica, Dryas sp., Dianthus caryophyllus, Dieffenbachia spp., Dracaena deremensis, Daucus carota, Delonix regia, Dioscorea spp, Dypsis decaryi, Dicon espinolosum, Dicon edule, Daucus carota, Dracaena marginata, Delonix regia, Eriobotrya japonica, Exochorda sp., Eryobotria japonica, Echeveria spp., Euphorbia pulcherrima, Enterolobium cyclocarpum, Erythrina crista-galli, Elaeis guineensislutences, Eryngium foetidum, Erythrina Americana, Fragaria X ananassa, F. virginiana, Ficus carica, Fraxinus uhdei, Ficus lirata, Fragaria vesca, Ficus benjamina, Ficus retusa, Foeniculum vulgare, Geum sp., G. herbaceum, G. barbadense, G. hirstiumlpomoes batatas, Gossypium hirsutum, Glycine max, Geranium sp., Gardenia jasminoides, Gladiolus communis, Gerbera jamesonii, Guazuma ulmifolia, Grevillea robusta, Howea fosteriana, Hyophorbe lagenicaulis, Hibiscus rosa-sinensis, Helianthus annuus, Hoffmannia ghiresbreghtii, Helychrysum bracteanum, Heteromeles arbutifolia, Holodiscus discolor, Hibiscus elatus, Hyptis suaveolens, Helianthus tuberosus, Hibiscus esculentus, Higrangea macrophylla, Hedychium coronarium, lxora incarnata, Iris spp., Impatiens balsamina, Juglandis nigra, Juglans regia, Justicia pectoralis, Jacaranda mimosifolia, Kageneckia oblonga, Kerria japonica, Kalanchoe pinnata, Lactuca sativa, Lycopersicon esculentum, Licuala grandis, Licuala peltata, L. paludosa, L. orbicularis,, Ligustrum japonicum, Livistona chinensis, Lippia sp., Lens culinaris, Liquidambar styraciflua, Lagerstroemia indica, Malpighia punicifolia, Mammea americano, Melicocea bijuga, Mangifera indicaAnanas comosus, Musa paradisiaca, Musa balsisiana, Myrciaria cauliflora, Malus domestica tomanlhes tristaneae carpa Malus malus spp., Mespillus germanica, Morus alba, Manihot esculenta, Medicago sativa, Monstera spp., Murraya paniculata, Mysotis scorpioides, Mejorana hortensis, Mentha arvensis, Mentha nemorosa, Morus alba, Nepholepsis spp., Nasturtium officinale, Nerium oleander, Osteomeles anthyllidfolia, Oryza sativa, Olea europea, Ocimum basilicum, Ocimum santum, P. capuli, P. allehaniensis, P. avium, P. besseyi, Prunus armeniaca, P. salicina, P. simonii, P. spinosa, P. triloba, P. mexicana, P. ceracifera, P. dasycarpa, P. domestica, P. fremontii, P. ilicifolia, P. lusitanica, P. mume, P. nigra, Prunus persica, Pyracantha angustifolia, P. atalantioides, P. coccinea, P. crenulata, P. crenulata var. kansuensis, P. fortuneana, P. koidzummi, P. rogersiana, P. umbellata, Phaseolus vulgaris, Psidium cattleianum, Photinia deflexa, P. glabra, P. villona, Physocarpus sp.Protentilia sp., Prinsepia sp., Pyrus communis, Pisum sativum, Pistacia vera, Prunus avium, Pachyrhizus erosus, Phyllantus acidus, Philodendron spp., Polianthes tuberosa, Pilea rotundifolia, Portulaca pilosa, Parkinsonia aculeata, Phoenix roebelenii, Pilea microphylla, Pimpinella asisum, Piper auritum, Pluchea carolinensis, Populus tremuloides, Populus canadensis, Populus italica, Pithecellobium dulce, Prosopis juliflora, Plumeria rubra, Platanus mexicanus, Phoenix datilifera, Pritchardia pacifica, Phoenix roebelenii, Pandanus utilis, Pastinaca sativa, Persea americana, Pouteria campechiana, Psidium guajaba, Punica granatum, Passiflora laurifolia, Peraphyllum ramossissimum, Pachypodium lamerei, Phoenix canadiensis, Quercus laurina, Quercus mexicana, Quercus rubra, Quercus rugosa, Quercus virginiana, Raphiolepia indica, Rhodotypos scandens, Rosa blanda, R. multiflora, R. rubiginasa, R. rubrifolia, Rubus idaeos, Rheum rhabarbarum, Rumex acetosa, Ravenea rivularis, Rhapis excelsa, Roystonea regia, Rhoeo discolor, Rosmarinus officinalis, Rubus ulmifolius, Rosa spp, Rhoeo discolor, Raphanus sativus, Roystonea regia, Rhizophora mangle, Salycopersicum esculentum, Sorbaria sp., Sorbus americana, S. aria, S. aucuparia, S. mougeotii, S. occidentalis, S. tianshanica, Spiraea cantoniensis, S. densiflora, S. van houteii, Solanum meolongenaSechium edule, Spinacia olereasa, Scindapsus spp., Spathyphyllum wallisii, Schefflera actinophylla, Sedum morganiarum, Sorghum bicolor, Salix bonplandiana, Schinus molle, Schinus terebinthefolius, Salix chilensis, Salix babylonica, Syagrus romanzoffiana, Scheelea liebmannii, Sabal palmetto, Sabal minor, Scorzonera hispanica, Saccharum officinarum, Spondias dulcis, Solanum tuberosum, Sansevieria spp, Strelitzia reginae, Tebebuia rosea, Tebebuia donnell-smithiiTamarix gallica, Thrinax radiata, Tragopogon porrifolius, Thuja orientalis,, Talinum palicunatum, Tithonia diversofilia, Theobroma cacao, Tripticum aestivum, Tamarindus indica, Terminalia catapa, Ulmus parviflora, Vitis vinifera, Valerianella locusta, Vaccinium myrtillus, Vicia faba, Veitchia merrilli, Vetiveria zizanioides, Veitchia merilli, Verbena domingensis, Weddelia rugosa tenuis, Xanthosoma sugittifollum, Zea mays, Zinnia elegans, Zebrina pendula, Zingonium spp., Zanthoxylum pistacifolium, Zingiber cassumunar, Zamia furfuracea.

[139] Не ограничиваясь какой-либо конкретной теорией, полагают, что танины воздействуют на бактерии посредствомактивного изменения среды, в которой они растут, размножаются и питаются, развивая состояние сверхизменения.

[140] Танины взаимодействуют с мембраной бактериальной клетки и вызывают гибель бактериальной клетки.

[141] Бактерии в основном делятся на две группы (грамотрицательные и грамположительные), различие между которыми заключается в составе их клеточной стенки. Грамотрицательные бактерии имеют один слой пептидогликана и поверхностную мембрану, состоящую из липопротеинов и гликопротеинов, в то время как грамположительные бактерии не имеют поверхностной мембраны и содержат много слоев пептидогликана, поэтому их толщина значительна.

[142] Функция клеточной стенки заключается в формировании и защите внутренней части клетки от изменений давления или обмена внеклеточных жидкостей. Это определяет выживание клетки. Как упомянуто выше, клеточная стенка состоит в основном из белков в их различных формах (фосфопротеины, гликопротеины, липопротеины и т.п.). Грамотрицательные бактерии содержат большее количество белков, в то время как грамположительные бактерии содержат тейхоевую кислоту на поверхности, которая образуется из полимеров глицерина и нескольких белков.

[143] По этой причине органический приемлемый для сельского хозяйства препарат, содержащий эллаговые танины, в основном разрушает грамотрицательные бактерии и грибы, а также разрушает грамположительные бактерии, которые могут быть восприимчивы к средству.

[144] При контакте танинов с клеточной стенкой, клеточная стенка подвергается лизису и разрушается, и выживание клеток ухудшается из-за осмотического давления и повреждения внешними агентами.

[145] ПРИМЕРЫ

[146] Некоторые из обсуждаемых в настоящем документе испытаний проводили в лаборатории, и они объективно продемонстрировали бактерицидное действие раскрытого в настоящем документе приемлемого для сельского хозяйства препарата на основе танинов в различных концентрациях против пяти родов бактерий, которые являются наиболее важными, так как поражают растения, имеющие экономическое значение.

[147] В соответствующих примерах фитопатогенные штаммы, такие как Xanthomonas sp., Clavibacter sp., Erwinia sp., Pseudomonas sp.и Ralstonia sp., выделяли из различных плодовых и овощных культур. Смесь для применения в сельском хозяйстве разрабатывали в соответствии со следующими описаниями.

[148] Чувствительность бактерий к рассматриваемому препарату оценивали в чашках Петри с использованием метода отравленной пищи, используя агаровые питательные среды, смешанные с соответствующим количеством препарата. Метод отравленной пищи обычно используется для оценки противогрибкового действия в отношении плесневых грибов, и этот метод был модифицирован для испытания против бактерий вместо плесени. В этом методе соответствующий препарат вводили в расплавленный агар в желаемой конечной концентрации и хорошо перемешивали. Затем полученную среду разливали в чашки Петри. После предварительной инкубации в течение ночи чашки Петри, содержащие среду, инокулировали соответствующими бактериями. После дальнейшей инкубации в подходящих условиях для испытываемого бактериального штамма измеряли положительный или отрицательный рост в контрольной чашке и чашках с образцами. Таким образом, вкратце, в этой методике использовали агар в качестве носителя для дозы средства, и после затвердевания инокулировали очень высокую концентрацию бактериальной суспензии, оставляя контрольную чашку Петри, инокулированную той же бактериальной суспензией, содержащей только агар без препарата.

[149] Соответствующий препарат смешивали с агаром для получения соответствующей концентрации для каждого примера. Например, для образования 0,1 грамма на литр препарата 0,1 грамма препарата добавляли к 1 литру агара. Ясно, что результаты с использованием агара будут соответствовать результатам, которые были бы получены при использовании воды вместо агара. Таким образом, подразумевается, что результаты, полученные с использованием агара, соответствуют результатам, которые были бы получены, если бы в качестве среды использовалась вода.

[150] Результаты измеряли через 96 часов. Количество бактериальных колоний подсчитывали посредством методики, основанной на подсчете «колониеобразующих единиц», или КОЕ, присутствующих в грамме или миллилитре образца. Считали, что каждая колония, которая развивается в выбранной культуральной среде после определенного времени инкубации при соответствующей температуре, происходит от микроорганизма или их совокупности в исследуемом образце. Также считали, что микроорганизм или микроорганизмы способны образовывать колонию, то есть микроорганизм(-ы) является КОЕ. Для надежного подсчета колоний выполняли необходимые десятичные разведения образца перед помещением его в культуральную среду. Наиболее распространенной процедурой для подсчета бактерий является подсчет жизнеспособных колоний посевом на чашках Петри. В этом методе серийные разведения образца, содержащего жизнеспособные микроорганизмы, высевали на подходящую среду для роста. Суспензию либо распределяли по поверхности чашек с агаром (поверхностный метод посева), либо смешивали с расплавленным агаром, разливали в чашки и оставляли затвердевать (метод глубинного посева). Планшеты затем инкубировали в условиях, обеспечивающих размножение микроорганизмов, так что образовывались колонии, которые можно было видеть без помощи микроскопа. Предполагалось, что каждая бактериальная колония возникает из отдельной клетки, претерпевшей деление клетки. Следовательно, путем подсчета количества колоний и учета коэффициента разбавления определяли количество бактерий в исходном образце.

[151] Для отмеченных примеров результаты были положительными, как обсуждается ниже, и показали бактерицидное действие в некоторых случаях при дозе 1 или 2 грамма на литр, где рост бактерий не наблюдали, по сравнению с контролем, содержавшим бактериальную суспензию без какого-либо препарата.

[152] Как описано ниже, некоторым смесям присваивали коды A5, B15, A и +20. А5 описывал композицию, которая включала предварительную смесь А (21,98 мас. %), сульфат гентамицина (8,08 мас. %), лигносульфонат натрия (4 мас. %), нафталинсульфонат (2 мас. %), ксантановую камедь (0,50 мас. %) и диатомовую землю (63,44 мас. %). B15 описывал композицию, которая включала предварительную смесь А (21,98 мас. %), окситетрациклин (15,69 мас. %), лигносульфонат натрия (4 мас. %), нафталинсульфонат (2 мас. %), ксантановую камедь (0,50 мас. %) и диатомовую землю (55,83 мас. %). Композиция A представляла собой композицию, содержащую 20 мас. % предварительной смеси А, 4 мас. % лигносульфоната натрия, 2 мас. % нафталинсульфоната, 0,50 мас. % ксантановой камеди и 73,5 мас. % диатомовой земли. «+20» описывал композицию, которая включала предварительную смесь А (21,98 мас. %), хлорокись меди (20 мас. %), лигносульфонат натрия (4 мас. %), нафталинсульфонат (2 мас. %), ксантановую камедь (0,50 мас. %) и диатомовую землю (51,52 мас. %).

[153] В каждом препарате в приведенных в настоящем документе примерах диатомовую землю (в случае, когда она использовалась) стерилизовали при 200°С в течение 2 часов до ее добавления в препарат.

[154] Предварительная смесь

[155] В указанных случаях использовали предварительную смесь А. Как отмечено выше, предварительная смесь А содержала приблизительно 65% танинов (смесь приблизительно 35,5% касталагина, приблизительно 23,3% васкалагина, приблизительно 2,0% касталина и приблизительно 5,0% вескалина), приблизительно 15% сахаров и приблизительно 15% бентонита, где остальное составляла вода.

[156] Пример 1A

[157] Исследовали эффективность препарата в отношении Clavibacter sp.с использованием различных концентраций предварительной смеси танинов в препаратах (например, 5%, 10% и 20%) и с применением различных концентраций каждого препарата.

[158] Препарат, содержащий 5% предварительной смеси танинов, включал смесь 5 мас. % предварительной смеси A и 95 мас. % диатомовой земли (50 граммов танинов на килограмм препарата и 950 граммов диатомовой земли на килограмм препарата).

[159] Препарат, содержащий 10% предварительной смеси танинов, включал смесь 10 мас. % предварительной смеси A и 90 мас. % диатомовой земли (100 граммов танинов на килограмм препарата и 900 граммов диатомовой земли на килограмм препарата).

[160] Препарат, содержащий 20% предварительной смеси танинов, включал смесь 20 мас. % предварительной смеси A и 80 мас. % диатомовой земли (200 граммов танинов на килограмм препарата и 800 граммов диатомовой земли на килограмм препарата).

[161] На фиг. 1(a)-(c) показаны результаты для случая, когда предварительная смесь танинов содержалась в препарате в количестве 5 мас. %. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 1(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 1(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 1(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 1(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[162] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 1(а)-(с).

[163] Таблица 1

Образец КОЕ Контроль более 250 0,1 г/л более 250 0,2 г/л более 250 0,3 г/л более 250 0,4 г/л более 250 0,5 г/л более 250 1,0 г/л более 250 2 г/л более 250 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[164] Как можно видеть из фиг. 1(a)-(c), эффективными дозами 5% препарата в этом испытании считали 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Clavibacter sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 4 г/л и 6 г/л Clavibacter sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[165] На фиг. 2(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 10 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 2(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 2(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 2(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 2(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[166] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 2(a)-(c).

[167] Таблица 2

Образец КОЕ Контроль более 250 0,1 г/л более 250 0,2 г/л более 250 0,3 г/л более 250 0,4 г/л более 250 0,5 г/л более 250 1,0 г/л Визуально не определяется 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

168] Как можно видеть из фиг. 2(a)-(c), эффективными дозами 10% препарата в этом испытании считали 1 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Clavibacter sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 1 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Clavibacter sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[169] На фиг. 3(a)-(c) показаны результаты для случая, когда предварительная смесь танинов содержалась в препарате в количестве 20 мас. %. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 3(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 3(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 3(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 3(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[170] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 3(a)-(c).

[171] Таблица 3

Образец КОЕ Контроль более 250 0,1 г/л более 250 0,2 г/л более 250 0,3 г/л более 250 0,4 г/л более 250 0,5 г/л Визуально не определяется 1,0 г/л Визуально не определяется 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[172] Как можно видеть из фиг. 3(a)-(c), эффективными дозами 20% препарата в этом испытании считали 0,5 г/л, 1 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Clavibacter sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 0,5 г/л, 1 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Clavibacter sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[173] Пример 1B

[174] Пример 1А воспроизводили за исключением того, что бактерии, добавляемые в агар, разводили. В примере 1A бактерии, которые добавляли в агар, получали из бактериального бульона. В этом примере бактерии, которые добавляли в агар, получали разведением 1 мл бактериального бульона, использованного в примере 1А, в 9 мл физиологического раствора, в результате чего получали первый разбавленный бактериальный раствор.

[175] На фиг. 4(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 5 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 4(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 4(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 4(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 4(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[176] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 4(a)-(c).

[177] Таблица 4

Образец КОЕ Контроль 173 0,1 г/л 152 0,2 г/л 129 0,3 г/л 145 0,4 г/л 198 0,5 г/л 147 1,0 г/л 124 2 г/л 141 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется Образец КОЕ Контроль 173 0,1 г/л 152 0,2 г/л 129 0,3 г/л 145 0,4 г/л 198 0,5 г/л 147 1,0 г/л 124 2 г/л 141 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[178] Как можно видеть из фиг. 4(a)-(c), эффективными дозами 5% препарата в этом испытании считали 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Clavibacter sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 4 г/л и 6 г/л Clavibacter sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[179] На фиг. 5(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 10 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 5(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 5(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 5(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 5(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[180] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 5(a)-(c).

[181] Таблица 5

Образец КОЕ Контроль 217 0,1 г/л 253 0,2 г/л 198 0,3 г/л 241 0,4 г/л 243 0,5 г/л Визуально не определяется 1,0 г/л Визуально не определяется 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[182] Как можно видеть из фиг. 5(a)-(c), эффективными дозами 10% препарата в этом испытании считали 1,0 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Clavibacter sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 1,0 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Clavibacter sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[183] На фиг. 6(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 20 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 6(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 6(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 6(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 6(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[184] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 6(a)-(c).

[185] Таблица 6

Образец КОЕ Контроль 146 0,1 г/л 140 0,2 г/л 135 0,3 г/л 145 0,4 г/л Визуально не определяется 0,5 г/л Визуально не определяется 1,0 г/л Визуально не определяется 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[186] Как можно видеть из фиг. 6(a)-(c), эффективными дозами 20% препарата в этом испытании считали 0,4 г/л, 0,5 г/л, 1,0 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Clavibacter sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 0,4 г/л, 0,5 г/л, 1,0 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Clavibacter sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[187] Пример 1C

[188] Пример 1А воспроизводили за исключением того, что бактерии, добавляемые в агар, разводили. В этом примере бактерии, добавляемые в агар, получали добавлением 1 мл первого разведенного бактериального раствора из примера 1B в 9 мл физиологического раствора, в результате чего получали второй разбавленный бактериальный раствор.

[189] На фиг. 7(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 5 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 7(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 7(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 7(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 7(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[190] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 7(a)-(c).

[191] Таблица 7

Образец КОЕ Контроль 18 0,1 г/л 15 0,2 г/л 13 0,3 г/л 17 0,4 г/л 23 0,5 г/л 22 1,0 г/л 24 2 г/л 12 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[192] Как можно видеть из фиг. 7(a)-(c), эффективными дозами 5% препарата в этом испытании считали 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Clavibacter sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 4 г/л и 6 г/л Clavibacter sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[193] На фиг. 8(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 10 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 8(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 8(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 8(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 8(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[194] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 8(a)-(c).

[195] Таблица 8

Образец КОЕ Контроль 31 0,1 г/л 26 0,2 г/л 30 0,3 г/л 37 0,4 г/л 35 0,5 г/л Визуально не определяется 1,0 г/л Визуально не определяется 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[196] Как можно видеть из фиг. 8(a)-(c), эффективными дозами 10% препарата в этом испытании считали 0,5 г/л, 1,0 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Clavibacter sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 0,5 г/л, 1,0 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Clavibacter sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[197] На фиг. 9(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержалась в препарате в количестве 20 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 9(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 9(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 9(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 9(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[198] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 9(a)-(c).

[199] Таблица 9

Образец КОЕ Контроль 27 0,1 г/л 23 0,2 г/л 21 0,3 г/л 12 0,4 г/л Визуально не определяется 0,5 г/л Визуально не определяется 1,0 г/л Визуально не определяется 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[200] Как можно видеть из фиг. 9(a)-(c), эффективными дозами 20% препарата в этом испытании считали 0,4 г/л, 0,5 г/л, 1,0 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Clavibacter sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 0,4 г/л, 0,5 г/л, 1,0 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Clavibacter sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[201] Пример 2A

[202] Эффективность препарата в отношении Erwinia sp. испытывали так же, как в примере 1A, за исключением того, что бактерия представляла собой Erwinia sp.

[203] На фиг. 10(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 5 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 10(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 10(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 10(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 10(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[204] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 10(a)-(c).

[205] Таблица 10

Образец КОЕ Контроль 210 0,1 г/л 240 0,2 г/л 240 0,3 г/л 230 0,4 г/л 110 0,5 г/л 250 1,0 г/л Визуально не определяется 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[206] Как можно видеть из фиг. 10(a)-(c), эффективными дозами 5% препарата в этом испытании считали 1,0 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Erwinia sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 1,0 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Erwinia sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[207] На фиг. 11(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 10 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 11(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 11(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 11(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 11(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[208] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 11(a)-(c).

[209] Таблица 11

Образец КОЕ Контроль более 250 0,1 г/л более 250 0,2 г/л более 250 0,3 г/л более 250 0,4 г/л более 250 0,5 г/л Визуально не определяется 1,0 г/л Визуально не определяется 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[210] Как можно видеть из фиг. 11(a)-(c), эффективными дозами 10% препарата в этом испытании считали 0,5 г/л, 1,0 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Erwinia sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 0,5 г/л, 1,0 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Erwinia sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[211] На фиг. 12(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 20 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 12(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 12(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 12(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 12(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[212] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 12(a)-(c).

[213] Таблица 12

Образец КОЕ Контроль более 250 0,1 г/л более 250 0,2 г/л Визуально не определяется 0,3 г/л Визуально не определяется 0,4 г/л Визуально не определяется 0,5 г/л Визуально не определяется 1,0 г/л Визуально не определяется 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[214] Как можно видеть из фиг. 12(a)-(c), эффективными дозами 20% препарата в этом испытании считали 0,2 г/л, 0,3 г/л, 0,4 г/л, 0,5 г/л, 1,0 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Erwinia sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 0,2 г/л, 0,3 г/л, 0,4 г/л, 0,5 г/л, 1,0 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Erwinia sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[215] Пример 2B

[216] Воспроизводили условия примера 1B за исключением того, что бактерия представляла собой Erwinia sp.

[217] На фиг. 13(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 5 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 13(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 13(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 13(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 13(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[218] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 13(a)-(c).

[219] Таблица 13

Образец КОЕ Контроль 31 0,1 г/л 35 0,2 г/л 22 0,3 г/л 22 0,4 г/л 27 0,5 г/л Визуально не определяется 1,0 г/л Визуально не определяется 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[220] Как можно видеть из фиг. 13(a)-(c), эффективными дозами 5% препарата в этом испытании считали 0,5 г/л, 1,0 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Erwinia sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 0,5 г/л, 1,0 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Erwinia sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[221] На фиг. 14(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 10 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 14(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 14(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 14(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 14(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[222] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 14(a)-(c).

[223] Таблица 14

Образец КОЕ Контроль 11 0,1 г/л 7 0,2 г/л 7 0,3 г/л 7 0,4 г/л Визуально не определяется 0,5 г/л Визуально не определяется 1,0 г/л Визуально не определяется 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[224] Как можно видеть из фиг. 14(a)-(c), эффективными дозами 10% препарата в этом испытании считали 0,4 г/л, 0,5 г/л, 1,0 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Erwinia sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 0,4 г/л, 0,5 г/л, 1,0 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Erwinia sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[225] На фиг. 15(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 20 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 15(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 15(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 15(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 15(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[226] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 15(a)-(c).

[227] Таблица 15

Образец КОЕ Контроль более 250 0,1 г/л Визуально не определяется 0,2 г/л Визуально не определяется 0,3 г/л Визуально не определяется 0,4 г/л Визуально не определяется 0,5 г/л Визуально не определяется 1,0 г/л Визуально не определяется 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[228] Как можно видеть из фиг. 15(a)-(c), эффективными дозами 20% препарата в этом испытании считали 0,1 г/л, 0,2 г/л, 0,3 г/л, 0,4 г/л, 0,5 г/л, 1,0 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Erwinia sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 0,1 г/л, 0,2 г/л, 0,3 г/л, 0,4 г/л, 0,5 г/л, 1,0 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Erwinia sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[229] Пример 3A

[230] Эффективность препарата в отношении Pseudomonas sp.испытывали также, как в примере 1A, за исключением того, что бактерия представляла собой Pseudomonas sp.

[231] На фиг. 16(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 5 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 16(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 16(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 16(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 16(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[232] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 16(a)-(c).

[233] Таблица 16

Образец КОЕ Контроль более 250 0,1 г/л более 250 0,2 г/л более 250 0,3 г/л более 250 0,4 г/л более 250 0,5 г/л более 250 1,0 г/л более 250 2 г/л более 250 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[234] Как можно видеть из фиг. 16(a)-(c), эффективными дозами 5% препарата в этом испытании считали 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Pseudomonas sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 4 г/л и 6 г/л Pseudomonas sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[235] На фиг. 17(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 10 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 17(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 17(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 17(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 17(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[236] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 17(a)-(c).

[237] Таблица 17

Образец КОЕ Контроль более 250 0,1 г/л более 250 0,2 г/л более 250 0,3 г/л более 250 0,4 г/л более 250 0,5 г/л более 250 1,0 г/л более 250 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[238] Как можно видеть из фиг. 17(a)-(c), эффективными дозами 10% препарата в этом испытании считали 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Pseudomonas sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Pseudomonas sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[239] На фиг. 18(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержалась в препарате в количестве 20 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 18(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 18(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 18(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 18(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[240] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 18(a)-(c).

[241] Таблица 18

Образец КОЕ Контроль более 250 0,1 г/л более 250 0,2 г/л более 250 0,3 г/л более 250 0,4 г/л более 250 0,5 г/л более 250 1,0 г/л Визуально не определяется 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[242] Как можно видеть из фиг. 18(a)-(c), эффективными дозами 20% препарата в этом испытании считали 1 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Pseudomonas sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 1 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Pseudomonas sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[243] Пример 3B

[244] Воспроизводили условия примера 1B за исключением того, что бактерия представляла собой Pseudomonas sp.

[245] На фиг. 19(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 5 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 19(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 19(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 19(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 19(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[246] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 19(a)-(c).

[247] Таблица 19

Образец КОЕ Контроль 32 0,1 г/л 32 0,2 г/л 32 0,3 г/л 28 0,4 г/л 26 0,5 г/л 32 1,0 г/л 29 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[248] Как можно видеть из фиг. 19(a)-(c), эффективными дозами 5% препарата в этом испытании считали 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Pseudomonas sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Pseudomonas sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[249] На фиг. 20(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 10 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 20(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 20(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 20(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 20(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[250] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 20(a)-(c).

[251] Таблица 20

Образец КОЕ Контроль 148 0,1 г/л 152 0,2 г/л 146 0,3 г/л 137 0,4 г/л 140 0,5 г/л 123 1,0 г/л 137 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[252] Как можно видеть из фиг. 20(a)-(c), эффективными дозами 10% препарата в этом испытании считали 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Pseudomonas sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Pseudomonas sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[253] На фиг. 21(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 20 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 21(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 21(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 21(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 21(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[254] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 21(a)-(c).

[255] Таблица 21

Образец КОЕ Контроль более 250 0,1 г/л более 250 0,2 г/л более 250 0,3 г/л более 250 0,4 г/л более 250 0,5 г/л более 250 1,0 г/л Визуально не определяется 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[256] Как можно видеть из фиг. 21(a)-(c), эффективными дозами 20% препарата в этом испытании считали 1 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Pseudomonas sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 1 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Pseudomonas sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[257] Пример 4A

[258] Эффективность препарата в отношении Ralstonia sp.испытывали так же, как в примере 1A, за исключением того, что бактерия представляла собой Ralstonia sp.

[259] На фиг. 22(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 5 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 22(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 22(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 22(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 22(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[260] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 22(a)-(c).

[261] Таблица 22

Образец КОЕ Контроль более 250 0,1 г/л более 250 0,2 г/л более 250 0,3 г/л более 250 0,4 г/л более 250 0,5 г/л более 250 1,0 г/л более 250 2 г/л более 250 4 г/л более 250 6 г/л более 250

[262] Как можно видеть из фиг. 22(a)-(c), для этого испытания могут потребоваться более высокие эффективные концентрации.

[263] На фиг. 23(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 10 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 23(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 23(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 23(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 23(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[264] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 23(a)-(c).

[265] Таблица 23

Образец КОЕ Контроль более 250 0,1 г/л более 250 0,2 г/л более 250 0,3 г/л более 250 0,4 г/л более 250 0,5 г/л более 250 1,0 г/л более 250 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[266] Как можно видеть из фиг. 23(a)-(c), эффективными дозами 10% препарата в этом испытании считали 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Ralstonia sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Ralstonia sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[267] На фиг. 24(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 20 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 24(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 24(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 24(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 24(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[268] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 24(a)-(c).

[269] Таблица 24

Образец КОЕ Контроль более 250 0,1 г/л более 250 0,2 г/л более 250 0,3 г/л более 250 0,4 г/л более 250 0,5 г/л более 250 1,0 г/л более 250 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[270] Как можно видеть из фиг. 24(a)-(c), эффективными дозами 20% препарата в этом испытании считали 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Ralstonia sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Ralstonia sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[271] Пример 4B

[272] Воспроизводили условия примера 1B за исключением того, что бактерия представляла собой Ralstonia sp.

[273] На фиг. 25(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 5 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 25(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 25(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 25(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 25(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[274] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 25(a)-(c).

[275] Таблица 25

Образец КОЕ Контроль 98 0,1 г/л 104 0,2 г/л 97 0,3 г/л 93 0,4 г/л 93 0,5 г/л 94 1,0 г/л 104 2 г/л 126 4 г/л 99 6 г/л 96

[276] Как можно видеть из фиг. 25(a)-(c), для этого испытания может потребоваться более высокая эффективная концентрация.

[277] На фиг. 26(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 10 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 26(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 26(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 26(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 26(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[278] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 26(a)-(c).

[279] Таблица 26

Образец КОЕ Контроль 171 0,1 г/л 172 0,2 г/л 188 0,3 г/л 174 0,4 г/л 158 0,5 г/л 171 1,0 г/л 194 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[280] Как можно видеть из фиг. 26(a)-(c), эффективными дозами 10% препарата в этом испытании считали 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Ralstonia sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Ralstonia sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[281] На фиг. 27(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 20 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 27(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 27(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 27(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 27(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[282] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 27(a)-(c).

[283] Таблица 27

Образец КОЕ Контроль 144 0,1 г/л 127 0,2 г/л 138 0,3 г/л 178 0,4 г/л 170 0,5 г/л 162 1,0 г/л 198 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[284] Как можно видеть из фиг. 27(a)-(c), эффективными дозами 20% препарата в этом испытании считали 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Ralstonia sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Ralstonia sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[285] Пример 4C

[286] Воспроизводили условия примера 1C за исключением того, что бактерия представляла собой Ralstonia sp.

[287] На фиг. 28(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 5 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 28(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 28(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 28(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 28(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 5 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[288] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 28(a)-(c).

[289] Таблица 28

Образец КОЕ Контроль 13 0,1 г/л 12 0,2 г/л 13 0,3 г/л 13 0,4 г/л 8 0,5 г/л 11 1,0 г/л 11 2 г/л 13 4 г/л 9 6 г/л 10

[290] Как можно видеть из фиг. 28(a)-(c), для этого испытания может потребоваться более высокая эффективная концентрация.

[291] На фиг. 29(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 10 мас. % относительно массы предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 29(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 29(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 29(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 29(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 10 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[292] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 29(a)-(c).

[293] Таблица 29

Образец КОЕ Контроль 26 0,1 г/л 26 0,2 г/л 27 0,3 г/л 24 0,4 г/л 22 0,5 г/л 18 1,0 г/л 24 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[294] Как можно видеть из фиг. 29(a)-(c), эффективными дозами 10% препарата в этом испытании считали 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Ralstonia sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Ralstonia sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[295] На фиг. 30(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 20 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 30(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 30(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 30(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 30(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[296] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 30(a)-(c).

[297] Таблица 30

Образец КОЕ Контроль 25 0,1 г/л 17 0,2 г/л 19 0,3 г/л 19 0,4 г/л 20 0,5 г/л 21 1,0 г/л 13 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[298] Как можно видеть из фиг. 30(a)-(c), эффективными дозами 20% препарата в этом испытании считали 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Ralstonia sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Ralstonia sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[299] Пример 5A

[300] Эффективность препарата в отношении Xanthomonas sp.испытывали так же, как в примере 1A, за исключением того, что бактерия представляла собой Xanthomonas sp.

[301] На фиг. 31(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 20 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 31(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 31(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 31(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 31(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[302] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 31(a)-(c).

[303] Таблица 31

Образец КОЕ Контроль более 250 0,1 г/л более 250 0,2 г/л более 250 0,3 г/л более 250 0,4 г/л более 250 0,5 г/л более 250 1,0 г/л Визуально не определяется 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[304] Как можно видеть из фиг. 31(a)-(c), эффективными дозами 20% препарата в этом испытании считали 1,0 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Xanthomonas sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 1,0 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Xanthomonas sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[305] Пример 5B

[306] Воспроизводили условия примера 1B за исключением того, что бактерия представляла собой Xanthomonas sp.

[307] На фиг. 32(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 20 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 32(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 32(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 32(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 32(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[308] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 32(a)-(c).

[309] Таблица 32

Образец КОЕ Контроль 120 0,1 г/л 120 0,2 г/л 100 0,3 г/л 97 0,4 г/л 120 0,5 г/л 100 1,0 г/л 12 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[310] Как можно видеть из фиг. 32(a)-(c), эффективными дозами 20% препарата в этом испытании считали 1 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Xanthomonas sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 1 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Xanthomonas sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[311] Пример 5C

[312] Воспроизводили условия примера 1C за исключением того, что бактерия представляла собой Xanthomonas sp.

[313] На фиг. 33(a)-(c) показаны результаты для случая, когда танины содержались в препарате в количестве 20 мас. % предварительной смеси. Верхняя левая чашка Петри на каждой из фиг. 33(a)-(c) представляет собой контрольные чашки Петри, в которых не применяли препарат. На фиг. 33(a) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси танинов, вводили в растворе, содержащем 0,1 г/л, 0,2 г/л и 0,3 г/л препарата. На фиг. 33(b) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 0,4 г/л, 0,5 г/л и 1,0 г/л препарата. На фиг. 33(c) показаны результаты для случая, когда препарат, содержащий 20 мас. % предварительной смеси таннинов, вводили в растворе, содержащем 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л препарата.

[314] В приведенной ниже таблице показано количество КОЕ в чашках Петри на фиг. 33(a)-(c).

[315] Таблица 33

Образец КОЕ Контроль 120 0,1 г/л 160 0,2 г/л 130 0,3 г/л 100 0,4 г/л 150 0,5 г/л 130 1,0 г/л Визуально не определяется 2 г/л Визуально не определяется 4 г/л Визуально не определяется 6 г/л Визуально не определяется

[316] Как можно видеть из фиг. 33(a)-(c), эффективными дозами 20% препарата в этом испытании считали 1,0 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л, которые были концентрациями, при которых Xanthomonas sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 1,0 г/л, 2 г/л, 4 г/л и 6 г/л Xanthomonas sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[317] Пример 6

[318] Условия проведения испытаний из примера 1C повторяли, за исключением того, что каждая из композиций A5, B15, A и +20 была по отдельности использована вместо препаратов, использованных в примере 1C. Композиции A, A5, B15 и +20 испытывали против Clavibacter sp., с использованием контроля, в концентрациях 1 г/л, 2 г/л и 4 г/л.

[319] На фиг. 34 показаны результаты испытания с использованием композиции A5. Контроль показал рост бактерий, в то время как отсутствие роста бактерий в чашках Петри, которые подвергали воздействию 1 г/л, 2 г/л и 4 г/л композиции A5, показало антибактериальное действие композиции A5.

[320] На фиг. 35 показаны результаты испытания с использованием композиции B15. Контроль показал рост бактерий, в то время как отсутствие роста бактерий в чашках Петри, которые подвергали воздействию 1 г/л, 2 г/л и 4 г/л композиции B15, показало антибактериальное действие композиции B15.

[321] На фиг. 36 показаны результаты испытания с использованием композиции +20. Контроль и 1 г/л композиция показали рост бактерий, в то время как отсутствие роста бактерий в чашках Петри, которые подвергали воздействию 2 г/л и 4 г/л композиции +20, показало антибактериальное действие композиции +20.

[322] На фиг. 37 показаны результаты испытания с использованием композиции A. Контроль показал рост бактерий, в то время как отсутствие роста бактерий в чашках Петри, которые подвергали воздействию 1 г/л, 2 г/л и 4 г/л композиции A, показало антибактериальное действие композиции A.

[323] Пример 7

[324] Условия проведения испытаний из примера 2C повторяли, за исключением того, что каждая из композиций A5, B15, A и +20 была по отдельности использована вместо препарата, использованного в примере 2. Композиции A5, B15 и +20 испытывали против Erwinia sp., с использованием контроля, в концентрациях 1 г/л, 2 г/л и 4 г/л.

[325] На фиг. 38 показаны результаты испытания с использованием композиции A5. Контроль показал рост бактерий, в то время как отсутствие роста бактерий в чашках Петри, которые подвергали воздействию 1 г/л, 2 г/л и 4 г/л композиции A5, показало антибактериальное действие композиции A5.

[326] На фиг. 39 показаны результаты испытания с использованием композиции B15. Контроль показал рост бактерий, в то время как отсутствие роста бактерий в чашках Петри, которые подвергали воздействию 1 г/л, 2 г/л и 4 г/л композиции B15, показало антибактериальное действие композиции B15.

[327] На фиг. 40 показаны результаты испытания с использованием композиции +20. Контроль и 1 г/л композиция показали рост бактерий, в то время как отсутствие роста бактерий в чашках Петри, которые подверглаи воздействию 2 г/л и 4 г/л композиции +20, показало антибактериальное действие композиции +20.

[328] На фиг. 41 показаны результаты испытания с использованием композиции A. Контроль показал рост бактерий, в то время как отсутствие роста бактерий в чашках Петри, которые подверглаи воздействию 1 г/л, 2 г/л и 4 г/л композиции A, показало антибактериальное действие композиции A.

[329] Пример 8

[330] Условия проведения испытаний из примера 4C повторяли, за исключением того, что каждая из композиций A5, B15, A и +20 была по отдельности использована вместо препарата, использованного в примере 4. Композиции A5, B15, A и +20 испытывали против Ralstonia sp., с использованием контроля, например, в концентрациях 1 г/л, 2 г/л и 4 г/л.

[331] На фиг. 42 показаны результаты испытания с использованием композиции A5. Контроль показал рост бактерий, в то время как отсутствие роста бактерий в чашках Петри, которые подвергали воздействию 1 г/л, 2 г/л и 4 г/л композиции A5, показало антибактериальное действие композиции A5.

[332] На фиг. 43 показаны результаты испытания с использованием композиции B15. Контроль показал рост бактерий, в то время как отсутствие роста бактерий в чашках Петри, которые подвергали воздействию 1 г/л, 2 г/л и 4 г/л композиции B15, показало антибактериальное действие композиции B15.

[333] На фиг. 44(a) и (b) показаны результаты испытания с использованием композиции +20. Контроль показал рост бактерий, так же как и чашки Петри, которые подвергали воздействию 1 г/л, 2 г/л и 4 г/л композиции +20, в то время как отсутствие роста бактерий в чашках Петри, которые подвергали воздействию 14 г/л, 16 г/л и 18 г/л композиции +20, показало антибактериальное действие композиции +20.

[334] На фиг. 45(a) и (b) показаны результаты испытания с использованием композиции A. Контроль и композиции, содержащие 12 г/л, 14 г/л и 16 г/л, показали рост бактерий, в то время как отсутствие роста бактерий в чашках Петри, которые подвергали воздействию 12 г/л, 14 г/л и 16 г/л композиции A, показало антибактериальное действие композиции A.

[335] Пример 9

[336] Условия проведения испытаний из примера 5C повторяли, за исключением того, что каждая из композиций A5, B15, A и +20 была по отдельности использована вместо препарата, использованного в примере 5. Композиции A5, B15, A и +20 испытывали против Xanthomonas sp., с использованием контроля, например, в концентрациях 1 г/л, 2 г/л и 4 г/л.

[337] На фиг. 46 показаны результаты испытания с использованием композиции A5. Контроль показал рост бактерий, в то время как отсутствие роста бактерий в чашках Петри, которые подвергали воздействию 1 г/л, 2 г/л и 4 г/л композиции A5, показало антибактериальное действие композиции A5.

[338] На фиг. 47 показаны результаты испытания с использованием композиции B15. Контроль показал рост бактерий, в то время как отсутствие роста бактерий в чашках Петри, которые подвергали воздействию 1 г/л, 2 г/л и 4 г/л композиции B15, показало антибактериальное действие композиции B15.

[339] На фиг. 48(a)-(c) показаны результаты испытания с использованием композиции +20. Контроль показал рост бактерий, в то время как отсутствие роста бактерий в чашках Петри, которые подвергали воздействию 14 г/л, 16 г/л и 18 г/л композиции +20, показало антибактериальное действие композиции +20.

[340] На фиг. 49 показаны результаты испытания с использованием композиции A. Контроль показал рост бактерий, в то время как отсутствие роста бактерий в чашках Петри, которые подвергали воздействию 1 г/л, 2 г/л и 4 г/л композиции A, показало антибактериальное действие композиции A.

[341] Пример 10

[342] Был создан приемлемый для сельского хозяйства препарат, состав которого включал смесь предварительной смеси A (200 г, 20 мас. %), лигносульфоната натрия (40 г, 4 мас. %), нафталинсульфоната (20 г, 2 мас. %), ксантановой камеди (5 г, 0,50 мас. %) и диатомовой земли (735 г, 73,50 мас. %).

[343] Приемлемый для сельского хозяйства препарат в концентрации 2000 г/1000 л раствора испытывали вместе с необработанным контролем, к которому во время испытания не применяли никаких антибиотиков, в яблоневом саду, ранее подвергшемся значительному натиску заболевания (Erwinia amylovora). Сад содержал и был окружен условиями, способствующими развитию заболевания, такими как: высокое содержание влаги в верхней части подстилающего грунта, прилегающие сады, в которых выращивался сорт яблок Гала, в последние годы подвергшийся высокому уровню заражения, и появление зооглеи, начавшей образовываться в некоторых его частях, что привело к решению посадить новые деревья в саду. Культура, которую испытывали, представляла собой яблоню сорта Golden Smoothie.

[344] В этом испытании осуществляли пять нанесений на 220 деревьев с использованием 250 литров воды, чтобы покрыть ? га (гектара), с помощью пневматического опрыскивателя. Деревья в зоне обработки опрыскивали с помощью пневматического опрыскивателя до тех пор, пока вода не начинала стекать, охватывая 4 ряда. Опрыскивания были приурочены к цветению плодовых деревьев и опадению лепестков. Зону испытания опрыскивали один раз каждые 6-9 дней во время сезона цветения. Таким образом, охватывали период перед цветением, а также период цветения.

[345] Нанесения осуществляли в следующие дни в следующих дозировках:

[346] Таблица 34

Дата Дозировка 1 день 500 г/га 9 день 1 кг/га 15 день 1 кг/га 24 день 1 кг/га 33 день 1 кг/га

[347] Оценку проводили на 38 день, когда любая инфекция, вызванная болезнью в период цветения (монилиальный ожог), была бы видна.

[348] Эксперимент проводили с использованием парного T-критерия. Данные анализировали с помощью анализа с T-критерием с использованием пакета программ обработки статистических данных R (R Core Team (2016). R: A language and environment for statistical computing.R Foundation for Statistical Computing, Вена, Австрия. URL https://www.R-proiect.org/). Как отмечали выше, одну оценку проводили через 5 дней после последнего опрыскивания. Собирали средние данные о количестве монилиальных ожогов на дерево. Данные, собранные в саду, показали, что действие нового антибактериального препарата на основе танинов было значимым (P<0,05). По сравнению с необработанным контролем новый антибактериальный препарат на основе танинов контролировал инфекцию, вызывающую монилиальные ожоги.

[349] На фиг. 50 (a) и (b) показаны примеры монилиального ожога, измеренные во время этого испытания. В таблице 35 приведены статистические данные, полученные в этом испытании. Фиг. 51 представляет собой графическое представление данных из таблицы 35.

[350] Таблица 35

Ряд деревьев Среднее количество монилиальных ожогов на дерево Обработанные деревья Контроль 1 3 62 2 25 70 3 39 66 4 28 59 Ряд деревьев Среднее количество монилиальных ожогов на дерево Обработанные деревья Контроль 1 3 62 2 25 70 3 39 66 4 28 59

[351] Значение критерия нормальности Шапиро-Уилка составляет W=0,91053 с p-значением 0,3578. T-значение этих данных составило минус 5,1178, со значением df 6 и p-значением 0,002183.

[352] Этот эксперимент показал, что новый антибактериальный препарат на основе танинов показал эффект уменьшения количества зараженных цветущих побегов по сравнению с контролем (который не подвергался воздействию препарата). Это важно, поскольку каждый зараженный бутон (монилиальный ожог) представляет собой точку роста, которая будет потеряна на следующие 4 года. То есть, продуктивная древесина этого цветочного бутона помимо нулевого роста в год его заражения теряет свою продуктивную ценность, создавая затраты на компенсацию плодовых ветвей и скрытые риски будущих инфекций.

[353] Пример 11

[354] В этом эксперименте у сорта яблок Гала после цветения присутствовал инфекционный бактериальный ожог (Erwinia amylovora).

[355] Эта конкретная партия подверглась воздействию града, и из-за ран от града произошла первоначальная вспышка бактериального ожога. Обрезку исходных зараженных побегов осуществляли как в партии обработки, так и в контрольной партии, после чего к партии обработки применяли новый антибактериальный препарат на основе танинов.

[356] Было запланировано четыре применения нового антибактериального препарата на основе танинов, чтобы охватить сезон высокой относительной влажности из-за дождя. Применение осуществляли в 1 день, 6 день, 11 день и 18 день; в дозе 2,0 кг/га.

[357] Применение нового антибактериального препарата на основе танинов осуществляли с помощью пневматического опрыскивателя с использованием 1000 литров раствора на гектар, покрывая 9 рядов по 47 деревьев в каждом. Как в обработанной зоне, так и в контроле измеряли пригодный участок из 5 рядов. Оценки делали путем подсчета числа бактериальных ожогов на дерево в 15 день и 28 день.

[358] Препарат, который применяли в этом примере, представлял собой препарат, описанный в примере 10, в концентрации 2000 г препарата на 1000 литров воды. Деревья в зоне обработки опрыскивали с помощью пневматического опрыскивателя до тех пор, пока вода не начинала стекать. В этом испытании опрыскивания проводили каждые 5 дней после опадения лепестков, чтобы охватить дальнейшее заражение побегов, известное как «бактериальные ожоги». Зону для испытаний опрыскивали один раз каждые 5 дней в течение трех циклов и один раз через 7 дней после третьего применения. Эксперимент проводили с использованием парного T-критерия. Данные анализировали с помощью анализа с T-критерием с использованием пакета программ обработки статистических данных R (R Core Team (2016). R: A language and environment for statistical computing. R Foundation for Statistical Computing, Вена, Австрия. URL https://www.R-project.org/). Первую оценку проводили через 4 дня после третьего опрыскивания. Собирали данные о количестве бактериальных ожогов. Данные, собранные из этого испытания, при первой оценке показали, что действие изобретения был значимым (P<0,05). По сравнению с необработанным контролем новый антибактериальный препарат на основе танинов контролировал инфекцию в периоде после опадения лепестков, известную как бактериальные ожоги (см. таблицу 36). Фиг. 52 представляет собой графическое представление данных из таблицы 3.

[359] Таблица 36

Ряд деревьев Среднее количество бактериальных ожогов на ряд Обработанные деревья Контроль 1 42 256 2 24 363 3 100 234 4 113 215 5 124 95

[360] Значение критерия нормальности Шапиро-Уилка составляло W=0,93245 с p-значением 0,4724. Среднее значение в обработанной группе составляло 80,6, в то время как среднее значение в необработанной группе составляло 232,6, что иллюстрирует антибактериальное действие этой композиции. T-значение этих данных составило минус 3,2116, со значением df 8 и p-значением 0,0124.

[361] Вторую оценку проводили через 10 дней после четвертого опрыскивания. Данные полевых наблюдений преобразовывали (log [y]), чтобы уменьшить дисперсию. Данные, собранные в этом испытании, при второй оценке показали, что действие нового антибактериального препарата на основе танинов было значимым (P<0,05). По сравнению с необработанным контролем новый антибактериальный препарат на основе танинов контролировал инфекцию в периоде после опадения лепестков, известную как бактериальные ожоги (см. таблицу 4). Фиг. 53 представляет собой графическое представление данных из таблицы 37.

[362] Таблица 37

Ряд деревьев Среднее количество бактериальных ожогов на ряд, преобразованное (log [y]) Обработанные деревья Контроль 1 1,982271 2,891537 2 1,845098 2,869232 3 1,851258 2,826075 4 2,313867 2,866878 5 2,1959 2,356026

[363] Значение критерия нормальности Шапиро-Уилка составляло W=0,8547 с p-значением 0,06605. Среднее значение в обработанной группе составляло 2,037679, в то время как среднее значение в необработанной группе составляло 2,761950, тем самым иллюстрируя антибактериальный эффект этой композиции. T-значение этих данных составило минус 5,2241, со значением df 8 и p-значением 0,0007986.

[364] Карты линейного прогноза (Кригинг) были составлены после 28 дня и показаны на фиг. 54(a) и (b). На фиг. 54(a) показано количество бактериальных ожогов в зоне, обработанной новым антибактериальным препаратом на основе танинов. На фиг. 54(b) показана контрольная зона, которая была смежной с зоной испытания. Изображения имитируют вид культуры с высоты птичьего полета, где для каждого из значений бактериальных ожогов проводили интерполяция между точками (в этом примере для яблонь). Шкала справа показывает цвета, обозначающие количество зараженных побегов (бактериальных ожогов), белые цвета являются индикатором наибольшего количества зараженных пятен в зоне.

[365] Этот пример демонстрирует, что использование нового антибактериального препарата на основе танинов при выращивании яблонь сорта Гала в количестве 2 кг/га обеспечивает значительное улучшение по сравнению с необработанным контролем с точки зрения среднего числа зараженных побегов на ряд (бактериальных ожогов).

[366] Пример 12

[367] Был создан приемлемый для сельского хозяйства препарат, имеющий состав согласно примеру 10: смесь предварительной смеси A (200 г, 20 мас. %), лигносульфоната натрия (40 г, 4 мас. %), нафталинсульфоната (20 г, 2 мас. %), ксантановой камеди (5 г, 0,50 мас. %) и диатомовой земли (735 г, 73,50 мас. %). Был приготовлен раствор приемлемого для сельского хозяйства препарата в воде, имеющий концентрацию 7,5 граммов приемлемого для сельского хозяйства препарата на литр. 37,5 г раствора взвешивали и добавляли в агар, используя метод отравленной пищи согласно примеру 1А.

[368] Патогенный гриб Alternaria sp.добавляли в агар и инкубировали при 28°С в течение 120 часов. Это действие повторяли в четырех чашках Петри. После инкубации проводили оценку, в которой измерения диаметров роста грибов в агаре, содержащем приемлемый для сельского хозяйства препарат, сравнивали с диаметром четырех контролей, которые содержали приемлемый для сельского хозяйства препарат, но не содержали патогенный гриб. Процент ингибирования рассчитывали для каждого образца с использованием следующей формулы, и среднее значение для четырех повторений брали в качестве процента ингибирования для примера:

Процент ингибирования=((Радиальный рост контроля - Радиальный рост патогена)/Радиальный рост контроля)) ? 100

[369] На фиг. 55 показаны результаты испытания и показано, что приемлемый для сельского хозяйства препарат ингибировал рост Alternaria sp. Фиг. 55(a) представляет собой контроль, а фиг. 55(b) представляет собой испытанную композицию. Измеренный процент ингибирования для Alternaria sp. составил 51,4%.

[370] Пример 13

[371] Воспроизводили условия примера 12, за исключением того, что патологический гриб представлял собой Phytophthora sp. На фиг. 56 показаны результаты испытания и показано, что приемлемый для сельского хозяйства препарат ингибировал рост Phytophthora sp. Фиг. 56(a) представляет собой контроль, а фиг. 56(b) представляет собой испытанную композицию. Измеренный процент ингибирования для Phytophthora sp. составил 100%.

[372] Пример 14

[373] Воспроизводили условия примера 12, за исключением того, что патологический гриб представлял собой Colletotrichum sp. На фиг. 57 показаны результаты испытания и показано, что приемлемый для сельского хозяйства препарат ингибировал рост Colletotrichum sp. Фиг. 57(a) представляет собой контроль, а фиг. 57(b) представляет собой испытанную композицию. Измеренный процент ингибирования для Colletotrichum sp. составил 100%.

[374] Пример 15A

[375] Воспроизводили условия примера 12, за исключением того, что патологический гриб представлял собой Fusarium sp. На фиг. 58 показаны результаты испытания и показано, что приемлемый для сельского хозяйства препарат ингибировал рост Fusarium sp. Фиг. 58(a) представляет собой контроль, а фиг. 58(b) представляет собой испытанную композицию. Измеренный процент ингибирования для Fusarium sp. составил 69,49%.

[376] Пример 15B

[377] Воспроизводили условия примера 15А, за исключением того, что испытуемая композиция представляла собой композицию танина, выделенного из квебрахового дерева (род Schinopsis) (композиция «QAMAEA6Q03»). На фиг. 59 показаны результаты испытания и показано, что приемлемый для сельского хозяйства препарат ингибировал рост Fusarium sp. Фиг. 59(a) представляет собой контроль, а фиг. 59(b) представляет собой испытанную композицию. Измеренный процент ингибирования для Fusarium sp. составил 64,89%.

[378] Пример 15C

[379] Воспроизводили условия примера 15А, за исключением того, что испытуемая композиция представляла собой композицию танина, выделенного из акации (род Acacia) (композиция «QAMMSAPA06»). На фиг. 60 показаны результаты испытания и показано, что приемлемый для сельского хозяйства препарат ингибировал рост Fusarium sp. Фиг. 60(a) представляет собой контроль, а фиг. 60(b) представляет собой испытанную композицию. Измеренный процент ингибирования для Fusarium sp. составил 63,78%.

[380] Пример 16A

[381] Воспроизводили условия примера 12, за исключением того, что патологический гриб представлял собой Aspergillus sp. На фиг. 61 показаны результаты испытания и показано, что приемлемый для сельского хозяйства препарат ингибировал рост Aspergillus sp. Фиг. 61(a) представляет собой контроль, а фиг. 61(b) представляет собой испытанную композицию. Измеренный процент ингибирования для Aspergillus sp. составил 89,76%.

[382] Пример 16B

[383] Воспроизводили условия примера 16А, за исключением того, что испытуемая композиция представляла собой композицию танина, выделенного из квебрахового дерева (род Schinopsis) (композиция «QAMAEA6Q03»). На фиг. 62 показаны результаты испытания и показано, что приемлемый для сельского хозяйства препарат ингибировал рост Aspergillus sp. Фиг. 62(a) представляет собой контроль, а фиг. 62(b) представляет собой испытанную композицию. Измеренный процент ингибирования для Aspergillus sp. составил 78,92%.

[384] Пример 16C

[385] Воспроизводили условия примера 16А, за исключением того, что испытуемая композиция представляла собой композицию танина, выделенного из акации (род Acacia) (композиция «QAMMSAPA06»). На фиг. 63 показаны результаты испытания и показано, что приемлемый для сельского хозяйства препарат ингибировал рост Aspergillus sp. Фиг. 63(a) представляет собой контроль, а фиг. 63(b) представляет собой испытанную композицию. Измеренный процент ингибирования для Aspergillus sp. составил 68,79%.

[386] Пример 17A

[387] Воспроизводили условия примера 1A, за исключением того, что испытывали композицию танина, выделенного из квебрахового дерева (род Schinopsis) (композиция «QAMAEA6Q03»). Как можно видеть из фиг. 64, эффективными дозами композиции в этом испытании считали 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л, которые были концентрациями, при которых Clavibacter sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л Clavibacter sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[388] Пример 17B

[389] Воспроизводили условия примера 17A, за исключением того, что испытывали композицию, содержащую 20% QAMAEA6Q3. Как можно видеть из фиг. 65, эффективными дозами композиции в этом испытании считали 2 г/л, 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л, которые были концентрациями, при которых Clavibacter sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 2 г/л, 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л Clavibacter sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[390] Пример 18A

[391] Воспроизводили условия примера 1A, за исключением того, что испытывали композицию танина, выделенного из акации (род Acacia) (композиция «QAMMSAPA06»). Как можно видеть из фиг. 66, эффективными дозами композиции в этом испытании считали 0,5 г/л, 1 г/л, 2 г/л, 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л, которые были концентрациями, при которых Clavibacter sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 0,5 г/л, 1 г/л, 2 г/л, 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л Clavibacter sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[392] Пример 18B

[393] Воспроизводили условия примера 18A за исключением того, что испытывали композицию, содержащую 20% QAMMSAPA06. Как можно видеть из фиг. 67, эффективными дозами композиции в этом испытании считали 1 г/л, 2 г/л, 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л, которые были концентрациями, при которых Clavibacter sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 1 г/л, 2 г/л, 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л Clavibacter sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[394] Пример 19A

[395] Воспроизводили условия примера 2A, за исключением того, что испытывали композицию танина, выделенного из квебрахового дерева (род Schinopsis) (композиция «QAMAEA6Q03»). Как можно видеть из фиг. 68, эффективными дозами композиции в этом испытании считали 2 г/л, 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л, которые были концентрациями, при которых Erwinia sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 2 г/л, 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л Erwinia sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[396] Пример 19B

[397] Воспроизводили условия примера 19A, за исключением того, что испытывали композицию, содержащую 20% QAMAEA6Q03. Как можно видеть из фиг. 69, эффективными дозами композиции в этом испытании считали 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л, которые были концентрациями, при которых Erwinia sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л Erwinia sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[398] Пример 20A

[399] Воспроизводили условия примера 2A, за исключением того, что испытывали композицию танина, выделенного из акации (род Acacia) (композиция «QAMMSAPA06»). Как можно видеть из фиг. 70, эффективными дозами композиции в этом испытании считали 1 г/л, 2 г/л, 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л, которые были концентрациями, при которых Erwinia sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 1 г/л, 2 г/л, 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л Erwinia sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[400] Пример 20B

[401] Воспроизводили условия примера 20A за исключением того, что испытывали композицию, содержащую 20% QAMMSAPA06. Как можно видеть из фиг. 71, эффективными дозами композиции в этом испытании считали 1 г/л, 2 г/л, 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л, которые были концентрациями, при которых Erwinia sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 1 г/л, 2 г/л, 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л Erwinia sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[402] Пример 21A

[403] Воспроизводили условия примера 4A, за исключением того, что испытывали композицию танина, выделенного из квебрахового дерева (род Schinopsis) (композиция «QAMAEA6Q03»). Как можно видеть из фиг. 72, для лечения или предупреждения Ralstonia sp.необходима доза, превышающая 8 г/л.

[404] Пример 21B

[405] Воспроизводили условия примера 21A, за исключением того, что испытывали композицию, содержащую 20% QAMAEA6Q03. Как можно видеть из фиг. 73, для лечения или предупреждения Ralstonia sp.необходима доза, превышающая 8 г/л.

[406] Пример 22A

[407] Воспроизводили условия примера 4A, за исключением того, что испытывали композицию танина, выделенного из акации (род Acacia) (композиция «QAMMSAPA06»). Как можно видеть из фиг. 74, эффективными дозами композиции в этом испытании считали 2 г/л, 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л, которые были концентрациями, при которых Ralstonia sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 2 г/л, 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л Ralstonia sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[408] Пример 22B

[409] Воспроизводили условия примера 22A, за исключением того, что испытывали композицию, содержащую 20% QAMMSAPA06. Как можно видеть из фиг. 75, эффективными дозами композиции в этом испытании считали 2 г/л, 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л, которые были концентрациями, при которых Ralstonia sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 2 г/л, 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л Ralstonia sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[410] Пример 22A

[411] Воспроизводили условия примера 5A, за исключением того, что испытывали композицию танина, выделенного из квебрахового дерева (род Schinopsis) (композиция «QAMAEA6Q03»). Как можно видеть из фиг. 76, эффективными дозами композиции в этом испытании считали 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л, которые были концентрациями, при которых Xanthomonas sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 2 г/л, 6 г/л и 8 г/л Xanthomonas sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[412] Пример 22B

[413] Воспроизводили условия примера 22A за исключением того, что испытывали композицию, содержащую 20% QAMAEA6Q03. Как можно видеть из фиг. 77, эффективными дозами композиции в этом испытании считали 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л, которые были концентрациями, при которых Xanthomonas sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л Xanthomonas sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[414] Пример 23A

[415] Воспроизводили условия примера 5A, за исключением того, что испытывали композицию танина, выделенного из акации (род Acacia) (композиция «QAMMSAPA06»). Как можно видеть из фиг. 78, эффективными дозами композиции в этом испытании считали 1 г/л, 2 г/л, 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л, которые были концентрациями, при которых Xanthomonas sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 1 г/л, 2 г/л, 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л Xanthomonas sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[416] Пример 23B

[417] Воспроизводили условия примера 23A, за исключением того, что испытывали композицию, содержащую 20% QAMMSAPA06. Как можно видеть из фиг. 79, эффективными дозами композиции в этом испытании считали 1 г/л, 2 г/л, 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л, которые были концентрациями, при которых Xanthomonas sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 1 г/л, 2 г/л, 4 г/л, 6 г/л и 8 г/л Xanthomonas sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[418] Пример 24A

[419] Воспроизводили условия примера 5A, за исключением того, что испытывали композицию, содержащую синтетические танины («TALSRA»; содержащая 3% танинов). Как можно видеть из фиг. 80 и 81, эффективными дозами композиции в этом испытании считали 41 мл/л, 51 мл/л и 61 мл/л, которые были концентрациями, при которых Xanthomonas sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 41 мл/л, 51 мл/л и 61 мл/л Xanthomonas sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[420] Пример 24B

[421] Воспроизводили условия примера 24A, за исключением того, что испытывали композицию, содержащую другие синтетические танины («TALSFWW»; содержащая 3% танинов). Как можно видеть из фиг. 82 и 83, эффективными дозами композиции в этом испытании считали 46 мл/л, 56 мл/л и 66 мл/л, которые были концентрациями, при которых Xanthomonas sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 46 мл/л, 56 мл/л и 66 мл/л Xanthomonas sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[422] Пример 25A

[423] Воспроизводили условия примера 2A, за исключением того, что испытывали композицию, содержащую синтетические танины («TALSRA»; содержащая 3% танинов). Как можно видеть из фиг. 84 и 85, эффективными дозами композиции в этом испытании считали 11 мл/л, 21 мл/л, 31 мл/л, 41 мл/л, 51 мл/л и 61 мл/л, которые были концентрациями, при которых Erwinia sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 11 мл/л, 21 мл/л, 31 мл/л, 41 мл/л, 51 мл/л и 61 мл/л Erwinia sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[424] Пример 25B

[425] Воспроизводили условия примера 25A, за исключением того, что испытывали композицию, содержащую другие синтетические танины («TALSFWW»; содержащая 3% танинов). Как можно видеть из фиг. 86 и 87, эффективными дозами композиции в этом испытании считали 16 мл/л, 26 мл/л, 36 мл/л, 46 мл/л, 56 мл/л и 66 мл/л, которые были концентрациями, при которых Erwinia sp. росла с гораздо меньшей скоростью, чем контроль. В концентрациях 16 мл/л, 26 мл/л, 36 мл/л, 46 мл/л, 56 мл/л и 66 мл/л Erwinia sp.визуально не обнаруживалась, и, следовательно, не росла в агаре.

[426] Пример 26A

[427] Воспроизводили условия примера 4A, за исключением того, что испытывали композицию, содержащую синтетические танины («TALSRA»; содержащая 3% танинов). Как можно видеть из фиг. 88 и 89, ни одна из испытанных доз не была признана эффективной дозой композиции, так как Ralstonia sp. росла со скоростью, сопоставимой с контролем.

[428] Пример 26B

[429] Воспроизводили условия примера 26A, за исключением того, что испытывали композицию, содержащую другие синтетические танины («TALSFWW»; содержащая 3% танинов). Как можно видеть из фиг. 90 и 91, ни одна из испытанных доз не была признана эффективной дозой композиции, так как Ralstonia sp. росла со скоростью, сопоставимой с контролем.

[430] Пример 27A

[431] Воспроизводили условия примера 1A, за исключением того, что испытывали композицию, содержащую синтетические танины («TALSRA»; содержащая 3% танинов). Как можно видеть из фиг. 92, ни одна из испытанных доз не была признана эффективной дозой композиции, так как Clavibacter sp. росла со скоростью, сопоставимой с контролем.

[432] Пример 27B

[433] Воспроизводили условия примера 27A, за исключением того, что испытывали композицию, содержащую другие синтетические танины («TALSFWW»; содержащая 3% танинов). Как можно видеть из фиг. 93, ни одна из испытанных доз не была признана эффективной дозой композиции, так как Clavibacter sp. росла со скоростью, сопоставимой с контролем.

[434] Хотя концепция изобретения была описана в связи с тем, что в настоящем документе считается практическими иллюстративными вариантами осуществления, следует понимать, что концепция изобретения в настоящем документе не ограничивается раскрытыми вариантами осуществления и охватывает различные модификации и эквиваленты, включенные в сущность и объем прилагаемой формулы изобретения.

Изобретение относится к области биотехнологии и представляет собой композицию для предупреждения или лечения заболевания у растений, содержащую танины, воду и один или несколько инертных компонентов, выбранных из группы, состоящей из целита, диатомовой земли, бентонита, пирофиллита, каолина, монтмориллонита, тенардита, аттапульгита, доломита, глины, пробки, гуминовых кислот и фульвокислот, причем заболевание вызвано бактерией, выбранной из группы, состоящей из Clavibacter sp., Erwinia sp., Pseudomonas sp., Ralstonia sp. и Xanthomonas sp., или заболевание вызвано грибом, выбранным из группы, состоящей из Alternaria sp., Phytophthora sp., Colletotrichum sp., Fusarium sp. и Aspergillus sp., причем танины включают один или несколько танинов, выбранных из группы, состоящей из касталагина, вескалагина, касталина, вескалина, танинов, полученных из видов растения Acacia, и танинов, полученных из видов растения Schinopsis, и способ предупреждения или лечения заболевания у растений, включающий введение композиции по любому из пп. 1-6 нуждающемуся в этом растению путем распыления, причем заболевание вызвано бактерией, выбранной из группы, состоящей из Clavibacter sp., Erwinia sp., Pseudomonas sp., Ralstonia sp. и Xanthomonas sp., или заболевание вызвано грибом, выбранным из группы, состоящей из Alternaria sp., Phytophthora sp., Colletotrichum sp., Fusarium sp. и Aspergillus sp. Изобретение позволяет создать новый антибактериальный препарат для применения в сельском хозяйстве. Препарат является эффективным для предотвращения, лечения и контроля заболеваний, вызванных бактериями и грибами, у растений и в то же время обеспечивает экологически безопасную композицию. 2 н. и 10 з.п. ф-лы, 93 ил., 37 табл., 27 пр.

1. Композиция для предупреждения или лечения заболевания у растений, содержащая танины, воду и один или несколько инертных компонентов, выбранных из группы, состоящей из целита, диатомовой земли, бентонита, пирофиллита, каолина, монтмориллонита, тенардита, аттапульгита, доломита, глины, пробки, гуминовых кислот и фульвокислот,

причем заболевание вызвано бактерией, выбранной из группы, состоящей из Clavibacter sp., Erwinia sp., Pseudomonas sp., Ralstonia sp. и Xanthomonas sp., или заболевание вызвано грибом, выбранным из группы, состоящей из Alternaria sp., Phytophthora sp., Colletotrichum sp., Fusarium sp. и Aspergillus sp.,

причем танины включают один или несколько танинов, выбранных из группы, состоящей из касталагина, вескалагина, касталина, вескалина, танинов, полученных из видов растения Acacia, и танинов, полученных из видов растения Schinopsis,

причем композиция предназначена для введения растениям путем распыления.

2. Композиция по п. 1, где композиция дополнительно содержит по меньшей мере одно вещество, выбранное из группы, состоящей из диспергирующих агентов, поверхностно-активных веществ и/или увлажнителей, загустителей, бактерицидов, индукторов устойчивости, биопестицидов, фунгицидов, внекорневых удобрений и гормонов.

3. Композиция по п. 1 или 2, где композиция содержит танин, углеводы и бентонит.

4. Композиция по п. 1 или 2, где композиция содержит диатомовую землю.

5. Композиция по п. 4, где композиция дополнительно содержит лигносульфат натрия, нафталинсульфонат и ксантановую камедь.

6. Композиция по любому из пп. 1-5, где танин включает касталагин и/или вескалагин.

7. Способ предупреждения или лечения заболевания у растений, включающий введение композиции по любому из пп. 1-6 нуждающемуся в этом растению путем распыления,

причем заболевание вызвано бактерией, выбранной из группы, состоящей из Clavibacter sp., Erwinia sp., Pseudomonas sp., Ralstonia sp. и Xanthomonas sp., или заболевание вызвано грибом, выбранным из группы, состоящей из Alternaria sp., Phytophthora sp., Colletotrichum sp., Fusarium sp. и Aspergillus sp.

8. Способ по п. 7, где композицию вводят в по меньшей мере одно из: листвы, стебля, полога, ствола, корней, побегов, мелких ветвей или цветков растения, или вводят в по меньшей мере одно из: семян или корневищ растения.

9. Способ по п. 7 или 8, где композицию вводят растению по меньшей мере дважды с интервалом от 1 до 21 дня.

10. Способ по любому из пп. 7-9, где композицию вводят на стадии всходов, стадии пересадки, вегетативной стадии, стадии перед цветением, стадии полного цветения, стадии после цветения, стадии завязывания плода или во время периода покоя растения.

11. Способ по любому из пп. 7-10, где растение представляет собой овощное растение, зерновое растение, плодовое растение, орехоплодное растение или сахарный тростник.

12. Способ по п. 11, где растение представляет собой плодовое дерево.