Способ применения композиции, включающей действующее вещество энисамия йодид Российский патент 2024 года по МПК A61K31/4425 A61P31/12 

Описание патента на изобретение RU2827811C1

Настоящее изобретение относится к области биохимии, фармацевтики, медицины, а именно, к применению энисамия йодида для снижения воспалительных реакций.

Воспаление представляет собой защитно-приспособительную гомеостатическую реакцию организма, в том числе, активацию иммунной системы в ответ на повреждение, вызванное чужеродным фактором (патогенный микроорганизм, химический/физический раздражитель и т.д.) или поврежденным, измененным "своим" (продукты тканевого распада, кровоизлияния, и т.д.) с последующим отторжением этого повреждающего фактора и ликвидацией последствий повреждения.

В качестве стереотипного ответа воспаление представляет собой механизм врожденного иммунитета, по сравнению с приобретенным иммунитетом, который является специфичным для каждого патогена.

Патофизиологическая основа воспаления представляет собой комплексный ответ, основанный, в том числе, на различных индуцирующих воспаление молекулах и множестве опосредующих воспаление и сенсибилизирующих молекулах, которые, вызывают воспаление через дублирующий механизм.

Кроме того, помимо блокирования провоспалительных молекул, многие противовоспалительные лекарственные препараты также ингибируют регуляторные контуры, которые высвобождают эндогенные противовоспалительные молекулы.

Например, нестероидные противовоспалительные препараты (далее НПВП), уменьшают воспаление путем блокирования ферментативной активности циклооксигеназы, ключевого фермента, который катализирует превращение арахидоновой кислоты в простагландины и лейкотриены.

Таким образом, НПВП уменьшают воспаление, путем предотвращения синтеза всех простагландинов. То есть препараты данной группы влияют на синтез противовоспалительных простагландинов, блокируя эндогенный противовоспалительный ответЭ то обстоятельство зачастую продлевает хроническое воспаление и является отрицательным фактором, ограничивающим их применение.

Кроме того, известно, что при наличии в организме человека воспаления, в нем активируются универсальный индуцибельный фактор транскрипции NF-κB.

После его активации индуцируется транскрипция провоспалительных генов, в том числе генов, кодирующих цитокины, хемокины, инфламмасомы.

При этом ингибирование активности NF-κB, позволяет снизить уровни экспрессии индуцибельной синтазы оксида азота (iNOS) и циклооксигеназы-2 (СОХ-2), определяющих ответ тканей на воспаление, повреждение и канцерогенез.

Таким образом, нарушение регуляции универсального индуцибельного фактора транскрипции NF-κB вызывает воспаление, аутоиммунные заболевания, а также развитие вирусных инфекций и рака.

Поэтому в настоящий момент существует актуальная потребность в регуляторах NF-κB, iNOS и СОХ-2, обеспечивающих противовоспалительные и хемопротекторные эффекты.

Из уровня техники известна композиция для ингибирования экспрессии генов, кодирующих ферменты Циклооксигеназу-1 и Циклооксигеназу-2 (далее ЦОГ- 1, ЦОГ- 2) и способ ее применения под торговым наименованием «Мелоксикам» в форме раствора для внутримышечного введения, 10 мг/мл (ЛС-007393/09-220618).

Данная композиция является нестероидным противовоспалительным средством, обладающим противовоспалительным, жаропонижающим, антипиритическим действием (ЛС -007393/09 - 220618 далее - [1]).

Механизм действия данного препарата заключается в ингибировании синтеза простагландинов в результате избирательного подавления ферментативной активности циклооксигеназы ЦОГ- 2.

Однако, недостатком применения известного решения [1] является то, что ингибирование постоянно присутствующего изофермента ЦОГ-1 приводит к побочным действиям со стороны желудка и почек.

Кроме того, при назначении Мелоксикама в высоких дозах, при длительном применении в сочетании с индивидуальными особенностями пациента, ингибирование им синтеза ЦОГ - 1, 2 снижается.

Еще одним недостатком известного средства [1] является возможность вызывания им эрозивно-язвенного заболевания желудочно-кишечного тракта.

При этом поиск и разработка новых соединений, проявляющих фармакологическую активность, сопряжены с определенными сложностями, поскольку необходимо чтобы новое вещество не только оказывало нужное терапевтическое действие, но было бы безопасным для пациента, обладало бы низкой токсичностью и минимумом побочных эффектов.

В связи с этим актуальным является изучение новых аспектов применения уже известных соединений, лекарственных препаратов, так как их потенциально возможное негативное или позитивное влияние на организм человека уже достаточно хорошо изучено и подтверждено обширной клинической практикой.

При этом из уровня техники известен препарат энисамия йодид, являющийся производным изоникотиновой кислоты (N-метил-4-бензилкарбомидопиридиний йодид) в форме капсул, таблеток, раствора и сиропа (см. Инструкцию по применению лекарственного препарата для медицинского применения Нобазит® (энисамия йодид, таблетки, покрытые пленочной оболочкой) ЛП-003508 от 16.03.2016).

Препарат Нобазит® (энисамия йодид) представляет собой противовирусное средство, подавляющее действие вирусов гриппа и других возбудителей ОРВИ за счет ингибирующего влияния на процесс проникновения вирусов через клеточную мембрану.

Энисамия йодид повышает резистентность организма к вирусным инфекциям, снижает острые клинические проявления вирусной интоксикации и способствует сокращению продолжительности заболевания.

Предложенная группа решений направлена на достижение следующих технических результатов:

- Ингибирование воспаления;

- Пода вление образования радикалов;

- Воздействие на NF-κB в качестве мишени;

- Инициация экспрессии мРНК;

- Фармакологическое влияние на медиаторы воспаления: ЦОГ1, ЦОГ2, NF-κB, ИЛ-1, ИЛ-6, ИЛ-8, ФНО-альфа, ИЛ-4, ИЛ-10 и TGFb;

- Стабильное ингибирование синтеза ЦОГ -1,2;

- Отсутствие возникновения эрозивно-язвенного заболевания желудочно-кишечного тракта.

Согласно первому независимому пункту формулы изобретения заявлен способ применения композиции, включающей действующее вещество энисамия йодид в эффективном его количестве, до блокирования оксидантной активности макрофагов, путем воздействия на ферменты, при сохранении клеток пациента от разрушения и гибели.

Согласно второму зависимому пункту формулы заявленного изобретения заявлен способ применения композиции, включающей действующее вещество энисамия йодид в эффективном его количестве, при котором до блокирования оксидантной активности макрофагов, путем воздействия на ферменты, стимулируют супероксиддисмутазу, ингибируют NO-синтазу, при сохранении клеток пациента от разрушения и гибели.

Графические материалы.

Рисунок 1. Влияние ФГА 0,1 мг/мл на уровень экспрессии мРНК генов сох-1, сох-2, NFkB, TGFlb в МНФК при инкубации 48 ч. Достоверное отличие от контроля при Р<0,05. Представлены данные 6 независимых экспериментов значения относительного уровня экспрессии генов сох-1, сох-2, NFkB, TGF1b при инкубации с энисамия йодидом в течение 48 час.

Рисунок 2. Влияние энисамия йодида в концентрациях 10 мкМ, 50 мкМ и 100 мкМ на уровень экспрессии мРНК генов сох-1, сох-2, NFkB, TGF1b в МНФК, стимулированных ФГА, при инкубации 48 ч. Представлены данные 6 независимых экспериментов.

Рисунок 3. Влияние энисамия йодида в концентрациях 10 мкМ, 50 мкМ и 100 мкМ на уровень экспрессии мРНК генов сох-1, сох-2, NFkB, TG1b в МНФК, нестимулированных ФГА, при инкубации 48 ч. Представлены данные 6 независимых экспериментов.

Рисунок 4. Влияние энисамия йодида в концентрациях 10 мкМ, 50 мкМ и 100 мкМ на экспрессию интерлейкинов 1,6,10 в ФГА-стимулированных МНФК при инкубации 48 часов. Представлены данные 6 независимых экспериментов.

Рисунок 5. Калибровочный график для определения концентрации ИЛ-1 в МНФК.

Рисунок 6. Концентрация ИЛ-1 после инкубации МНФК с энисамия йодидом 10, 50 и 100 мкМ в течение 72 часов. Представлены значения трех экспериментов.

Рисунок 7. Калибровочный график для определения концентрации ИЛ-8 в МНФК.

Рисунок 8. Концентрация ИЛ-8 после инкубации МНФК с энисамия йодидом 10, 50 и 100 мкМ в течение 72 часов. Представлены значения трех экспериментов.

Рисунок 9. Калибровочный график для определения концентрации ФНОальфа в МНФК.

Рисунок 10. Концентрация ФНО-альфа после инкубации МНФК с энисамия йодидом 10, 50 и 100 мкМ в течение 72 ч. Представлены значения трех экспериментов.

Рисунок 11. Калибровочный график для определения концентрации ИЛ-4 в МНФК.

Рисунок 12. Концентрация ИЛ-4 после инкубации МНФК с энисамия йодидом 10, 50 и 100 мкМ в течение 72 ч. Представлены значения трех экспериментов.

Рисунок 13. Калибровочный график для определения концентрации ИЛ-10 в МНФК.

Рисунок 14. Концентрация ИЛ-10 после инкубации МНФК с энисамия йодидом 10, 50 и 100 мкМ и мелоксикамом в течение 72 ч. Представлены значения трех экспериментов.

Рисунок 15. Изменение интенсивности стимулированной люминол-зависимой хемилюминесценции МНФК при добавлении энисамия йодида и препарата сравнения мелоксикама.

Рисунок 16. Максимальные амплитуды интенсивности стимулированной люминол-зависимой хемилюминесценции МНФК при добавлении энисамия йодида и мелоксикама. Представлены значения трех независимых экспериментов.

Рисунок 17. Жизнеспособность МНФК (количество клеток), инкубированных с ФГА (0,1 мг/мл), энисамия йодидом (10,50 и 100 мкМ) в течение 48 ч. Представлены значения трех независимых экспериментов, в одном эксперименте на экспериментальные лунки по 4 повтора, на контрольные 12 повторов.

Таблица 1. Состав изученной мононуклеарной фракции периферической крови.

Таблица 2. Провоспалительные и противовоспалительные цитокины.

Сущность заявленной группы изобретений.

Для подтверждения возможности осуществления каждого из решений группы были проведены исследования с использованием цельной донорской крови.

В качестве доноров крови использовались здоровые женщины в возрасте 26-43 года.

Из полученной донорской крови впоследствии выделяли мононуклеарную фракцию по методу Boyum (1968), основанному на седиментации в одноступенчатом градиенте плотности фиколла.

Таким образом, объектом исследования являлась мононуклеарная фракция периферической крови здоровых доноров 26-43 лет (далее - МНФК).

Состав фракции составил в среднем Т-лимфоциты 52,8±3,5%, В-лимфоциты 5,7±1,02%, моноциты 8,1±0,8%, что находится в пределах референсных значений.

Одним из наиболее информативных методов оценки показателей клеточного иммунитета является исследование функционального состояния лимфоцитов, которое определяют по пролиферативному ответу клеток на митогены или антигены.

Мононуклеарные клетки выделяли из периферической крови человека по методу Boyum (1968), основанному на седиментации в одноступенчатом градиенте плотности фиколла.

Гепаринизированную кровь разводили 1:1 физическим раствором и наслаивали на фиколл (р=1,077 г/см3, производитель ООО НПП «ПанЭко»).

Центрифугировали при 1,6 тыс.об. 45 минут. Далее отбирали кольцо МНФК в пластиковую пробирку, разводили питательной средой RPMI 1640 с глутамином (производитель ООО НПП «ПанЭКО») до 7 мл.

Помещали пробирки в центрифугу на 15 минут при 1,6 тыс. об.

Повторяли отмывку 2 раза питательной средой RPMI 1640 с глутамином (производитель ООО НПП «ПанЭКО»).

Далее разводили осадок приготовленной средой (4,5 мл питательной среды (далее DMEM) + Амфотерицин В + Гентамицин (производитель ООО НПП «ПанЭКО») + 0,5 мл эмбриональной бычей сыворотки (производитель ООО НПП «ПанЭКО»).

Полученную суспензию клеток разливали в эппендорфы по 500 мкл.

В графических материалах, в таблице 1 приведен состав изученной мононуклеарной фракции периферической крови.

Из представленных результатов в таблице 1 следует, что полученные данные находятся в пределах референсных значений состава мононуклеарной фракции периферической крови. Разведение фитогемагглютинина (далее ФГА).

Разводили 1 мг ФГА (серия 88/4, производитель ООО НПП «ПанЭКО») в 1 мл среды питательной среды DMEM при добавлении Амфотерицина В (производитель ООО «Биохимик», Саранск, Россия) и Гентамицина (производитель ООО НПП «ПанЭКО»).

Добавляли по 50 мкл в пробы с МНФК общего объема 500 мкл, для достижения конечной концентрации 0,1 мг/мл.

Разведение Мелоксикама.

Мелоксикам разводили до конечной концентрации 0,0015 мг/мл в среде DMEM+Амфотерицин В+Гентамицин.

На 0,5 мкл раствора (1,5 мг/мл) вносили в 500 мкл пробы с МНФК.

Так как средняя суточная доза мелоксикама для человека составляет 7,5 мг, в экспериментах использовали конечную концентрацию 0,0015 мг/мл, а также в 10 и 100 раз большую концентрации.

Разведение Энисамия йодида.

Базовая концентрация составляла 10 мМ (взвешивали 35,4 мг энасмия йодида и разводили в 10 мл среды DMEM + Амфотерицин В + Гентамицин.

Разведения проводили непосредственно перед экспериментами. Конечные концентрации в пробах составляли 10 мкМ, 50 мкМ, 100 мкМ. Для проб с дальнейшей постановкой ПЦР использовали пробирки по 1,5 мл:

0 контроль не стимулированный ФГА;

1 контроль стимулированный ФГА;

2 - энисамия йодид 10 мкМ;

3 - энисамия йодид 50 мкМ;

4 - энисамия йодид 100 мкМ.

Пробы ставили в инкубатор на 48 часов при температуре 37°С и 10% CO2.

По прошествии 48 часов верхний супернатант 250 мкл отбирали в эппендорфы по 1,5 мл на ИФА - определение интерлейкинов.

Остаток 250 мкл пипетировали и отбирали в пробирки по 1,5 мл для постановки РЕАЛ-ТАЙМ ПЦР (экспрессия мРНК генов).

Эксперимент проводили по следующей схеме:

- Из цельной крови выделяли МНФК методом центрифугирования в градиенте плотности фиколла по Boyum.

- Инкубация в течение 48 часов МНФК с энисамия йодидом следующим образом.

0 - контроль не стимулированный

1 - контроль стимулированный ФГА

2 - энисамия йодид 10 мкМ

3 - энисамия йодид 50 мкМ

4 - энисамия йодид 100 мкМ.

- Выделение мРНК из МНФК.

- Обратная транскрипция.

- ПЦР в реальном времени - определение относительного изменения экспрессии мРНК.

За единицу принимали контрольную экспрессию мРНК, то есть в отсутствие какого-либо препарата.

Влияние энисамия йодида на уровень экспрессии генов: ЦОГ1, ЦОГ2 и NF-κB в мононуклеарных клетках периферической крови in vitro.

Одной из задач данного исследования являлась оценка экспрессии ЦОГ1, ЦОГ2, NF-κB, TGFb при инкубации с энисамия йодидом, как возможных медиаторов его противовоспалительного действия.

В качестве контролей использовали МНФК: стимулированные ФГА и нестимулированные ФГА.

Следует отметить, что экспрессия гена сох-2 (ЦОГ-2) не увеличивалась при воздействии ФГА -Рис.1.

На Рис. 1 приведены значения влияние ФГА 0,1 мг/мл на уровень экспрессии мРНК генов сох-1, сох-2, NFkB, TGF1b в МНФК при инкубации 48 ч.

Как видно из представленных данных, ФГА увеличивло экспрессию мРНК генов сох-1, NFkB, TGF1b в МНФК при инкубации 48 ч на 79, 71 и 89% соответственно. Однако, при этом ФГА 0,1 мг/мл снижало экспрессию сох-2 на 42%.

При этом известно, что разница в уровнях мРНК ЦОГ-2 в нестимулированной ФГА и стимулированной ФГА крови доноров может не наблюдаться.

Однако, зачастую, у доноров, повергшихся стрессу, уровень мРНК ЦОГ-2 повышается.

Кроме того, у лиц, повергшихся стрессу уровни, уровни экспрессии генов, участвующих во внутриклеточной передаче сигналов и активации мРНК ЦОГ-2 также увеличиваются: это субъединицы A, D и Akt- киназы С, фосфатидилинозитолмонофосфат, митоген-активированная протеинкиназа (МАРК) Erkl, а также несколько факторов транскрипции, обнаруженных на промоторе ЦОГ-2 ССААТ / энхансер-связывающем белке альфа и бета (СЕВРА и СЕВРВ) и два транскрипционных фактора CREB1 и Est1.

Влияние исследуемого препарата - энисамия йодида на экспрессию генов сох-1, сох-2, NFkB, TGF1b оценивали в МНФК, стимулированных ФГА и в МНФК без стимуляции ФГА.

Как видно из представленных на Рис. 2, Рис. 3 данных в МНФК, стимулированных ФГА, энисамия йодид снижал экспрессию мРНК сох-1, сох-2, NFkB, TGF1b в концентрации 10 мкМ и 50 мкМ.

В концентрации 100 мкМ энисамия йодид снижал экспрессию сох-2 и TGF1b, но увеличивал - сох-1 и NFkB, белков, экспрессирующихся на начальных стадиях воспалительного процесса, то есть с увеличением концентрации происходила активация медиаторов воспаления.

В МНФК без стимуляции ФГА энисамия йодид подавлял экспрессию мРНК сох-1, сох-2, NFkB, TGF1b во всех трех концентрациях.

Была выявлена обратная концентрационная зависимость данного эффекта: в наибольшей степени экспрессия подавлялась в концентрации 10 мкМ: сох-1 на 55%, сох-2 на 54%, NFkB на 46%, TGFlb на 31%.

Энисамия йодид в меньшей степени подавлял экспрессию циклооксигеназ в концентрации 50 мкМ: сох-1 на 36%, сох-2 на 40, и в концентрации 100 мкМ на 21 и 34% соответственно.

Из уровня техники известно, что НПВС индометацин в концентрации 10 мкМ подавляет экспрессию мРНК интерлейкина-6 на 83 и 73% соответственно в МНФК, обработанных ЛПС, что свидетельствует об одинаковом порядке концентрации и степени ингибирования экспрессии медиаторов воспаления энисамия йодидом и индометацином.

Таким образом, была выявлена обратная концентрационная зависимость действия энисамия йодида на экспрессию сох-1, сох-2, NF-κB, TGF1b в МНФК. Как без стимуляции, так и с одновременной стимуляцией ФГА, в МНФК энисамия йодид подавлял экспрессию сох-1, сох-2, NFkB, TGF1b в концентрациях 10 и 50 мкМ.

В концентрации 100 мкМ проявлялась индукция экспрессии NF-κB.

Данный эффект наблюдался в модельной системе, когда высокая концентрация энисамия йодида (превышала терапевтические) сохранялась длительное время.

По избирательности действия в отношении ингибирования обеих изоформ ЦОГ выделяют селективные и неселективные НПВС.

Неселективные в одинаковой степени подавляют оба изофермента, селективные преимущественно угнетают ЦОГ-2.

Причем селективные ингибиторы ЦОГ-2 менее эффективны при боли, связанной с воспалительными поражениями суставов и позвоночника, чем неселективные НПВС.

Ингибирование ЦОГ-2 рассматривается как один из важных механизмов противовоспалительной и анальгетической активности НПВС.

IKKβ также является мишенью действия НПВС.

Подавляя IKKβ (Inhibitor of kappa В kinase β), салицилаты угнетают фосфорилирование I кВ (ингибитора нуклеарного фактора транскрипции NF-κВ) и тем самым препятствуют его транслокации в ядро клетки, что в результате подавляет продукцию провоспалительных цитокинов.

Неацитилированные салицилаты имеют меньше побочных эффектов, но сохраняют способность ингибировать NF-κB путем прямого подавления IKKβ.

Согласно полученным в исследованиях данным, энисамия йодид ингибирует экспрессию циклооксигеназы и NF-κB, что приводит к снижению воспалительных реакций.

Определение экспрессии мРНК интерлейкиное в МНФК при инкубации с энисамия йодидом в концентрациях 10, 50, 100 мкМ в течение 48 часов.

В дополнение к исследованию действия энисамия йодида на продукцию интерлейкинов методом ИФА, было протестировано его влияние на экспрессию мРНК провоспалительных интерлейкинов 1 и 6 и противовоспалительного интерлейкина 10.

Влияние энисамия йодида на экспрессию генов интерлейкинов 1,6, 10 было изучено методом реал-тайм ПЦР.

Анализ проводили на ФГА-стимулированных МНФК, то есть инкубированных в присутствии 0,1 мг/мл ФГА.

Данные представлены на Рис. 4.

Как видно из Рис. 4, экспрессия ИЛ-1 и ИЛ-6 подавлялась при действии энисамия йодида. В концентрации 10 мкМ энисамия йодид подавлял экспрессию ИЛ-1 на 62%, в 50 мкМ 67%, в 100 мкМ - на 53%.

В концентрации 10 мкМ энисамия йодид подавлял экспрессию ИЛ-6 на 72%, в 50 мкМ - 73%, в 100 мкМ - на 70%.

Экспрессия ИЛ-10 повышалась в присутствии энисамия йодида в концентрации 10 мкМ на 73%.

В более высоких концентрациях 50 и 100 мкМ энисамия йодид незначительно снижал экспрессию ИЛ-10 - на 21 и 12% соответственно, отличия от контроля недостоверны.

Исследование влияния энисамия-йодида на продукцию мононуклеарными клетками периферической крови провоспалительных цитокинов: ИЛ-1, ИЛ-8, ФИО-альфа и противовоспалительных цитокинов: ИЛ-4, ИЛ-10.

Исследование влияния энисамия-йодида на уровень провоспалительных цитокинов: ИЛ-1, ИЛ-8, ФИО-альфа и противовоспалительных цитокинов: ИЛ-4, ИЛ-10 в среде с инкубируемыми мононуклеарными клетками периферической крови проводилось методом ИФА с использованием наборов АО «Вектор-бест-Европа», Россия.

В качестве препарата сравнения использовали мелоксикам. Мелоксикам добавляли в концентрации 1,5 мг/мл по 5 мкл в пробу с МНФК 500 мкл.

В данном эксперименте требуется более длительная инкубация с МНФК, так как измеряли собственно белок, а не его мРНК, то изменения концентрации регистрировали после 72-часовой инкубации, а не 48-часовой инкубации, как при определении экспрессии мРНК.

Определение концентрации ИЛ-1 после инкубации с энисамия йодидом в концентрации 10,50 и 100 мкМ с МНФК в течение 72 часов.

Как видно из Рис. 6, энисамия йодида в трех исследованных концентрациях 10, 50 и 100 мкМ, как и препарат сравнения мелоксикам в концентрации 0,015 мг/мл, не оказывают достоверно значимого влияния на уровень ИЛ-1 МНФК крови. При этом ФГА, 0,1 мг/мл, незначительно (на 9%) стимулировал продукцию ИЛ-1.

Определение концентрации ИЛ-8 после инкубации с энисамия йодидом в концентрации 10, 50 и 100 мкМ с МНФК в течение 72 ч.

В эксперименте по определению влияния энисамия йодида на уровень ИЛ-8 было обнаружено, что ФГА не влиял на него (Рис. 8).

При этом ни энисамия йодид во всех исследованных концентрациях, ни препарат сравнения мелоксикам в концентрации 0,015 мг/мл, статистически достоверно не влияли на концентрацию ИЛ-8 при инкубации с МНФК.

Определение концентрации ФНОα после инкубации с энисамия йодидом в концентрации 10, 50 и 100 мкМ с МНФК в течение 72 часов.

Иммуномодулирующее действие ФГА впервые проявилось в значительной степени при исследовании действия энисамия на продукцию ФНО-альфа мононуклеарами, где ФГА простимулировал выработку ФНОα на 28,08% - Рис. 10.

На фоне стимуляции МНФК с помощью ФГА, ни энисамия йодид во всех трех изученных концентрациях, ни препарат сравнения мелоксикам, не влияли на продукцию ФНО-альфа.

Определение концентрации ИЛ-4 после инкубации с энисамия йодидом в концентрации 10, 50 и 100 мкМ с МНФК в течение 72 часов.

На рис. 12 представлены значения трех экспериментов, которые демонстрируют увеличение ФГА уровень ИЛ-4 почти в 10 раз.

В целом количества ИЛ-4 в МНФК были невысоки - в диапазоне 26-37 пкг/мл.

На фоне индукции ФГА мелоксикам и энисамия йодид в трех тестированных концентрациях достоверно не влияли на концентрацию ИЛ-4.

Определение концентрации ИЛ-10 после инкубации с энисамия йодидом в концентрации 10, 50 и 100 мкМ с МНФК в течение 72 ч.

Данные, представленные на рис. 14 демонстрируют, что ФГА вызвал повышение уровня ИЛ-10 почти в 10 раз.

На фоне индукции ФГА мелоксикам вызывал достоверно значимое снижение уровня ИЛ-10 почти в 4 раза.

Энисамия йодид достоверно значимо увеличивал уровень ИЛ-10 в концентрации 50 мкМ в 1,5 раза.

Использованный в работе индуктор выработки интерлейкинов - ФГА, 0,1 мг/мл, незначительно (на 9%) стимулировал продукцию ИЛ-1 в МНФК и не влиял на продукцию ИЛ-8.

Так как задача эксперимента состояла в исследовании действия энисамия йодида на выработку интерлейкинов, а не ФГА, то контрольная экспрессия интерлейкинов при стимуляции ФГА была принята за 100%, относительно нее оценивали влияние собственно энисамия йодида.

Действие изучаемых препаратов на уровень цитокинов оценивалось при одновременной инкубации МНФК с ФГА и препаратами, то есть увеличение или снижение их выработки оценивалось относительно ФГА-стимулированных МНФК.

В исследовании показано, что ни энисамия йодид во всех исследованных концентрациях, ни препарат сравнения мелоксикам в концентрации 0,015 мг/мл, статистически достоверно не влияли на концентрацию ИЛ-1, ИЛ-8 и ФНО-альфа при инкубации с ФГА- стимулированными МНФК.

В научной литературе имеются некоторые сведения о влиянии НПВС на экспрессию мРНК цитокинов и количественном определении цитокинов в МНФК.

Известно, что НПВС индометацин, аспирин, ибупрофен, фенилбутазон снижают концентрацию провоспалительного цитокина ИЛ-6 в МНФК после 40-часовой инкубации на 50% в концентрациях 0,09 мкМ, 0,18 мкМ, 6,29 мкМ и 0,22 мкМ соответственно.

Эти цифры соотносились с IC50 для выработки ПГЕ2: самым эффективным в этом ряду оказался индометацин.

Что касается действия энисамия йодида на продукцию противовоспалительных цитокинов, то в исследовании была обнаружена стимуляция выработки ИЛ-10 в МНФК, максимально в 1,5 раза в присутствии 50 мкМ энисамия йодида.

Приведенные выше данные о вероятных медиаторах противоспалительной активности энисамия также свидетельствует о том, что энисамия йодид стимулирует ИЛ-10.

Условно цитокины можно подразделить на провоспалительные и противовоспалительные. Их перечень приведен в таблице 1.

Несмотря на условное разделение, изменение экспрессии ключевых цитокинов может служить критерием оценки противовоспалительного действия новых соединений.

Таким образом, согласно полученным в исследовании данным, механизмы противовоспалительного действия энисамия йодида связаны с ингибированием экспрессии ИЛ-1, ИЛ-6, TGFb и увеличением экспрессии и продукции ИЛ-10.

Исследование влияния энисамия-йодида на оксидантную активность макрофагов и их жизнеспособность.

Используемая в исследовании активированная хемилюминесценция является очень ценным показателем, позволяющим оценивать важные виды активности лекарственных препаратов -антиоксидантную, противовоспалительную и противоаллергическую.

По изменению интенсивности стимулированной люминол-зависимой хемилюминесценции МНФК при добавлении энисамия йодида и препарата сравнения мелоксикама было оценено их действие на оксидантную активность макрофагов.

Данные, представленные на Рис. 15 и 16, свидетельствуют о подавлении интенсивности стимулированной люминол-зависимой хемилюминесценции МНФК в присутствии энисамия йодида, зависящем от его концентрации: с увеличением концентрации до 100 мкМ кривая приближается к изолинии (Рис. 15).

Максимальные амплитуды интенсивности стимулированной люминол-зависимой хемилюминесценции МНФК снижались в присутствии энисамия йодида и мелоксикама.

Если принять контрольную хемилюминесценцию МНФК, то есть в отсутствие препаратов, за 100%, то в присутствии 10 мкМ энисамия этот показатель составил 82%, в присутствии 50 мкМ энисамия 79%, а в присутствии 100 мкМ энисамия йодида 5% (Рис. 16).

Препарат сравнения мелоксикам в концентрации 0,0015 мг/мл, соответствующей средней терапевтической дозе для человека (7,5 мг в сутки), практически не влиял на стимулированную люминол-зависимую хемилюминесценцию МНФК незначительно.

В присутствии 0,015 мг/мл, в 10 раз более высокой концентрации мелоксикама, максимальная амплитуда СЛХЛ составила 58% от контрольной, а в присутствии 0,15 мг/мл мелоксикама - 1% от контрольной: было обнаружено практически полное, 100% ингибирование СЛХЛ.

Полученные данные свидетельствуют о подавлении окислительных реакций в МНФК в присутствии как энисамия йодида, так и мелоксикама, а также о наличии антиоксидантной и противовоспалительной активности у этих препаратов.

Исследование влияния энисамия-йодида на жизнеспособность МНФК методом МТТ

МНФК выделяли из свежей донорской крови и вносили в лунки 96-луночного планшета с добавлением во все лунки, кроме контрольной, ФГА 0,1 мг/мл и энисамия йодида в концентрация 10, 50 и 100 мкМ.

Через 48 ч оценивали жизнеспособность клеток методом МТТ.

На Рис. 17 представлены данные о влиянии энисамия-йодида на жизнеспособность МНФК, где оптическая плотность лунок характеризует жизнеспособность клеток.

Сведения, приведенные на рис. 17 демонстрируют, что статистически значимого влияния энисамия йодида на жизнеспособность МНФК не выявлено.

Это обстоятельство свидетельствовало об отсутствии цитотоксического действия энисамия йодида на МНФК в диапазоне исследованных концентраций и подтверждало обусловленность их антиоксидантного действия вследствие развития специфических эффектов, в том числе подавления образования радикалов.

Похожие патенты RU2827811C1

название год авторы номер документа
Способ применения композиции, включающей действующее вещество энисамия йодид 2023
  • Ременяко Денис Владимирович
  • Ткаченко Елена Васильевна
RU2827810C1
Применение композиции, включающей действующее вещество энисамия йодид 2022
  • Ткаченко Е.В.
  • Ременяко Д.В.
RU2815779C1
ПРИМЕНЕНИЕ СОЕДИНЕНИЙ МЫШЬЯКА ДЛЯ ЛЕЧЕНИЯ ОТТОРЖЕНИЯ ТКАНИ ИЛИ ОРГАНА 2013
  • Хванг Майкл
  • Ян Юн-Цзинь
RU2665362C2
ПРИМЕНЕНИЕ СОЕДИНЕНИЙ МЫШЬЯКА ДЛЯ ЛЕЧЕНИЯ БОЛИ И ВОСПАЛЕНИЯ 2008
  • Хванг Майкл
  • Ян Юн-Цзинь
RU2630574C2
РАСТВОРЫ И СПОСОБЫ ИНГИБИРОВАНИЯ БОЛИ, ВОСПАЛЕНИЯ И РАЗРУШЕНИЯ ХРЯЩА 2000
  • Демопулос Грегори А.
  • Палмер Памела П.
  • Херц Джеффри М.
RU2271825C2
НОВОЕ ПРИМЕНЕНИЕ 2010
  • Цорцис Георгиос
  • Вулевич Елена
  • Аттанасио Франческо
RU2530567C2
МОДУЛЯЦИЯ ПУТЕЙ ОБМЕНА ПРОСТАГЛАНДИНА/ЦИКЛООКСИГЕНАЗЫ 2007
  • Вюльферт Эрнст
RU2448712C2
Применение энисамия йодида для профилактики и/или лечения острого респираторного дистресс-синдрома (ОРДС) 2022
  • Ткаченко Елена Васильевна
RU2799328C1
Лекарственное средство, обладающее противовоспалительной активностью 2016
  • Покровский Андрей Георгиевич
  • Покровский Михаил Андреевич
  • Чересиз Сергей Владимирович
  • Якушин Андрей Сергеевич
  • Попов Сергей Александрович
  • Шпатов Александр Владимирович
  • Шульц Эльвира Эдуардовна
RU2617123C1
СПОСОБ МОДУЛИРОВАНИЯ МЕТАБОЛИЗМА ЭЙКОЗАНОИДОВ 2006
  • Ньюмарк Томас
  • Шалик Пол
  • Ньюман Роберт
  • Аггавал Бхарат
RU2438684C2

Иллюстрации к изобретению RU 2 827 811 C1

Реферат патента 2024 года Способ применения композиции, включающей действующее вещество энисамия йодид

Изобретение относится к области биохимии, фармацевтики, медицины, а именно к применению энисамия йодида для снижения воспалительных реакций. Раскрыто применение композиции, включающей действующее вещество энисамия йодид в эффективном его количестве, для блокирования оксидантной активности макрофагов, путем воздействия на ферменты, стимулирующие супероксиддисмутазу и ингибирующие NO-синтазу. Изобретение обеспечивает ингибирование воспалительных реакций. 17 ил., 2 табл., 1 пр.

Формула изобретения RU 2 827 811 C1

Применение композиции, включающей действующее вещество энисамия йодид в эффективном его количестве, для блокирования оксидантной активности макрофагов, путем воздействия на ферменты, стимулирующие супероксиддисмутазу и ингибирующие NO-синтазу.

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 2024 года RU2827811C1

Сифонный аппарат 1929
  • Потураев Я.А.
SU17006A1
WO 2019112483 A1, 13.06.2019
Краткий курс молекулярной фармакологии
Под ред
П.В.Сергеева, М., 1975, с.10
ХОЛОДОВ Л.Е
и др
Клиническая фармакокинетика
М., "Медицина", 1985, с
Пуговица 0
  • Эйман Е.Ф.
SU83A1

RU 2 827 811 C1

Авторы

Ременяко Денис Владимирович

Ткаченко Елена Васильевна

Даты

2024-10-02Публикация

2023-07-10Подача