Система CRISPR-Cas12 для выявления гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 в ультранизких концентрациях Российский патент 2025 года по МПК C12N15/11 C12N15/113 C12N9/22 C12Q1/6876 

Изобретение относится к области генной инженерии и биотехнологии, а именно к числу средств направляющих РНК, которые могут быть использованы в системе CRISPR-Cas12 в составе рибонуклеопротеиновых комплексов для выявления (обнаружения, детекции) гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1.

Изобретение позволяет in vitro выявлять единичные копии гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1.

Направляющие РНК, описанные в настоящей заявке, могут быть использованы для детекции гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 после проведения специфической амплификации фрагментов гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1. Амплификация при этом может быть проведена различными способами, среди которых полимеразная цепная реакция (PCR); петлевая изотермическая амплификация (LAMP); геликаза-зависимая амплификация (HDA); рекомбиназа-опосредованная амплификация (RPA); амплификация со смещением цепи (SDA); амплификация, основанная на последовательности нуклеиновых кислот (NASBA); опосредованная транскрипцией амплификация (ТМА); амплификация, опосредованная никирующим ферментом (NEAR); круговая амплификация (RCA) и многие другие виды амплификации.

Направляющие РНК, описанные в настоящей заявке, могут быть использованы для разработки высокочувствительных и высокотехнологичных диагностических систем нового поколения на основе CRISPR технологий для совершенствования методов диагностики инфекционных заболеваний.

Для решения эпидемиологических задач по расшифровке вспышек инфекционных болезней, выявления и идентификации возбудителя, а также детекции специфических бактериальных генов необходимы разработка и внедрение в практику работы надзорных и мониторинговых служб современных технологий молекулярной эпидемиологии. Одной из таких технологий является использование элементов генетического редактирования системы CRISPR-Cas. Данная технология развивается достаточно эффективно в отношении создания средств лечения некоторых болезней, несмотря на ряд трудностей, связанных с возникновением непредвиденных мутаций. При углубленных исследованиях в области применения CRISPR-Cas системы, было выяснено, что она может быть использована для тонких диагностических процедур при выявлении возбудителя/ей инфекции у человека, а также их генотипирования.

В 2018 году было показано, что один из ферментов CRISPR системы - Cas12 после распознавания своей целевой ДНК-мишени начинает неспецифически гидролизовать одноцепочечную ДНК. Такое свойство Cas12 можно использовать в качестве индикатора присутствия определенной мишени, например, генома вируса или бактерии. Исследователи использовали это открытие для создания технологической платформы обнаружения нуклеиновых кислот, известной как DETECTR (DNA Endonuclease Targeted CRISPR Trans Reporter - ДНК-нацеленная эндонуклеаза CRISPR транс репортер). Впервые DETECTR была использована для выявления и генотипирования вируса папилломы человека (HPV). Предложенная платформа объединяет нуклеазу Cas12a, ее направляющую РНК, специфичную к нуклеиновой кислоте HPV, флуоресцентную репортерную молекулу. Технология DETECTR используется для обнаружения целевой ДНК-мишени после предварительной амплификации [J.S. Chen, Е. Ma, L.B. Harrington, М. Da Costa, X. Tian, J.M. Palefsky, J.A. Doudna, CRISPR-Cas 12a target binding unleashes indiscriminate single-stranded DNase activity, Science 360(6387) (2018) 436-439].

He менее важным приложением системы CRISPR-Cas является идентификация бактериальных патогенов и детекция специфических бактериальных генов. Так, например, с помощью платформы SHERLOCK удалось корректно генотипировать ряд штаммов Escherichia coli и Pseudomonas aeruginosa при низкой перекрестной реактивности. Кроме того, платформа SHERLOCK использована для дифференциации клинических изолятов Klebsiella pneumoniae с двумя различными генами антибиотикоустойчивости, что открывает значительные перспективы к созданию мультиплексных систем для одновременной идентификации бактеральных патогенов и выявления у них генов антибиотикоустойчивости.

В связи с этим крайне актуальной является задача разработки новых эффективных методик выявления генов антибиотикоустойчивости у бактериальных патогенов, основанных на генетических технологиях, таких как CRISPR-Cas.

Из уровня техники известны научные статьи, описывающие обнаружение гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 в биологическом материале [Shin J, Kim SR, Xie Z, Jin YS, Wang YC. A CRISPR/Cas12a-Based System for Sensitive Detection of Antimicrobial - Resistant Genes in Carbapenem-Resistant Enterobacterales. Biosensors (Basel). 2024; 14(4): 194. Published 2024 Apr 16. doi:10.3390/bios14040194; Xu H, Tang H, Li R, et al. A New Method Based on LAMP-CRISPR-Cas 12a-Lateral Flow Immunochromatographic Strip for Detection. Infect Drug Resist. 2022;15:685-696. Published 2022 Feb 27. doi:10.2147/IDR.S348456]. Однако, предел обнаружения гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 в приведенных публикациях в пересчете на количество копий ДНК в реакции достаточно низкий и составляет 2,7-2,9×10⁹ копий/реакция и 6×10³ копий/реакция, соответственно [Shin J, Kim SR, Xie Z, Jin YS, Wang YC. A CRISPR/Cas12a-Based System for Sensitive Detection of Antimicrobial-Resistant Genes in Carbapenem-Resistant Enterobacterales. Biosensors (Basel). 2024;14(4):194. Published 2024 Apr 16. doi:10.3390/bios 14040194; Xu H, Tang H, Li R, et al. A New Method Based on LAMP-CRISPR-Cas 12a-Lateral Flow Immunochromatographic Strip for Detection. Infect Drug Resist. 2022;15:685-696. Published 2022 Feb 27. doi:10.2147/IDR.S348456].

До сих пор большинство наборов для обнаружения бета-лактамаз расширенного спектра, к которым в том числе относится бета-лактамаза, кодируемая геном bla-NDM-1, основаны на методологии диффузионного теста в агаре и определении изоэлектрической точки, которая обычно считается достаточной для идентификации штаммов, продуцирующих бета-лактамазы расширенного спектра. Однако из-за появления большого количества различных бета-лактамаз bla-SHV, bla-TEM и bla-CTX-M изоэлектрофокусирование, по-видимому, не является подходящим методом для установления фенотипа бета-лактамаз расширенного спектра. Кроме того, описанные методы требуют продолжительного времени, специализированного оборудования, а также квалифицированного персонала (микробиология).

Ближайшими аналогами заявляемого решения являются изобретения по патентам RU 2743861, RU 2782314 и RU 2791879, направленные на получение направляющих РНК, предназначенных для разработки высокочувствительных и высокотехнологичных диагностических систем нового поколения для выявления гена антибиотикоустойчивости blaVIM-2 (металло-бета-лактамаза класс В VIM-2) Pseudomonas aeruginosa, гена антибиотикоустойчивости mecA Staphylococcus aureus и гена exoU, кодирующего экзотоксин системы секреции третьего типа, Pseudomonas aeruginosa на основе CRISPR технологий. Однако, для расширения спектра подобных диагностических систем и совершенствования методов диагностики инфекционных заболеваний, эпидемиологического надзора и контроля за распространением антибиотикоустойчивых микроорганизмов необходимо разрабатывать новые методы для выявления генов антибиотикоустойчивости патогенных микроорганизмов.

Исходя из этого, возникает техническая проблема, заключающаяся в необходимости разработки и получения направляющих РНК для выявления единичных (3,48) копий гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 in vitro.

Предложенная технология перспективна для разнообразных применений, включая количественное определение ДНК/РНК, быструю мультиплексную детекцию экспрессии, другие виды чувствительной детекции, например, выявление загрязнения образцов нуклеиновыми кислотами. Технология, основанная на CRISPR-Cas, является многофункциональной, устойчивой к ошибкам технологией детекции ДНК, пригодной для быстрой постановки диагнозов, включая инфекционные заболевания, генотипирование инфекционных агентов и выявление генов антибиотикоустойчивости бактериальных патогенов.

Применение предложенной технологии делает возможным создание диагностических систем нового поколения, которые будут обладать следующими свойствами:

• высокая чувствительность;

• возможность проведения диагностики у постели больного;

• возможность проведения диагностики в полевых условиях без применения специализированного высокотехнологичного оборудования;

• скорость и простота анализа;

• сниженная стоимость анализа;

• отсутствие необходимости оснащения диагностической лаборатории дорогостоящим оборудованием;

• отсутствие необходимости проведения выделения нуклеиновых кислот возбудителя.

Изобретение относится к новым средствам направляющим РНК, которые могут быть использованы в системе CRISPR-Cas 12 для ультрачувствительного выявления, идентификации, обнаружения или детекции гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 в биологических образцах.

Технической задачей предложенного изобретения является разработка новых средств - направляющих РНК, которые могут быть использованы в системе CRISPR-Cas 12 с белками Cas12, например, LbCpf1 из Lachnospiraceae, для ультрачувствительного выявления гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1.

При осуществлении настоящего изобретения, согласно приведенной в формуле изобретения совокупности существенных признаков, достигается неожиданный технический результат возможность ультрачувствительного выявления гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 до единичных (3,48) копий гена в одной реакции. Изобретение обеспечивает повышение эффективности выявления гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 как минимум в 5 раз.

Технический результат достигается за счет:

• разработки молекул направляющих РНК, которые могут быть использованы в системах CRISPR-Cas12 для ультра чувствительного выявления гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, где указанные направляющие РНК выбраны из последовательностей SEQ ID NO: 1-8, способны связываться с целевыми высоко консервативными участками гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, содержат РНК-шпильку, которая распознается РНК-направляемой ДНК-эндонуклеазой LbCpf1 из Lachnospiraceae, с обеспечением выявления единичных копий гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1,

• применения РНК-направляемой ДНК-эндонуклеазы LbCpf1 из Lachnospiraceae, полученной согласно способу, разработанному авторами ранее (Патент РФ №2707542, дата приоритета 28.03.2019), для создания рибонуклеопротеиновых комплексов (РПК) системы CRISPR-Cas, пригодных для детекции гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 в ультра низких концентрациях (единичные копии),

• разработки набора специфических олигонуклеотидов, выбранных из SEQ ID NO: 9-14, для предварительной амплификации фрагментов гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1,

• оптимизации условий проведения предварительной амплификации фрагментов гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1,

• определения условий проведения ультрачувствительной детекции гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 и установления последовательности стадий метода.

Предложена молекула направляющей РНК системы CRISPR-Cas, которая способна связываться с целевыми высококонсервативными участками гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1. Нуклеотидная последовательность, раскрытой в настоящей заявке, направляющей РНК выбрана из последовательностей SEQ ID NO: 1-8.

Молекула направляющей РНК содержит в своем составе РНК-шпильку, которая распознается РНК-направляемой ДНК-эндонуклеазой LbCpf1 из Lachnospiraceae.

Молекула направляющей РНК обеспечивает выявление единичных копий гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1.

Направляющие РНК, согласно настоящему изобретению, соответствуют высоко консервативным фрагментам гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1. Наиболее предпочтительны направляющие РНК, распознающиеся РНК-направляемой ДНК-эндонуклеазой LbCpf1 из Lachnospiraceae, характеризующиеся, имеющие или содержащие нуклеотидную последовательность, выбранную из:

• SEQ ID NO: 1;

• SEQ ID NO: 2;

• SEQ ID NO: 3;

• SEQ ID NO: 4;

• SEQ ID NO: 5;

• SEQ ID NO: 6;

• SEQ ID NO: 7;

• SEQ ID NO: 8;

• или идентичной любой из них по меньшей мере на 80%, 81%, 82%, 83%, 84%, 85%, 86%, 87%, 88%, 89%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98% или 99%,

• или комплементарной любой из них,

• или гибридизующейся с любой из них в строгих условиях.

Согласно предложенному изобретению, получают рибонуклеопротеиновые комплексы (РПК), состоящие из по меньшей мере одной направляющей РНК и РНК-направляемой ДНК-эндонуклеазы системы CRISPR-Cas LbCpf1 из Lachnospiraceae, пригодные для использования для выявления гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 в ультранизких концентрациях (единичные копии).

Рибонуклеопротеиновый комплекс системы CRISPR-Cas для выявления гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, сформированный из РНК-направляемой ДНК-эндонуклеазы LbCpf1 из Lachnospiraceae, и по меньшей мере одной направляющей РНК.

Предложенный рибонуклеопротеиновый комплекс системы CRISPR-Cas пригоден для выявления единичных копий гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1.

Препараты РПК представляют собой растворы, содержащие направляющую РНК, выбранную из SEQ ID NO: 1-8, объединенную с белком системы CRISPR-Cas (LbCpf1 из Lachnospiraceae) или лиофильно высушенные РПК.

Специфические олигонуклеотиды для проведения предварительной амплификации фрагментов гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, согласно настоящему изобретению, соответствуют высоко консервативным участкам гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1. Наиболее предпочтительны олигонуклеотиды, характеризующиеся, имеющие или содержащие нуклеотидную последовательность, выбранную из:

• SEQ ID NO: 9;

• SEQ ID NO: 10;

• SEQ ID NO: 11;

• SEQ ID NO: 12;

• SEQ ID NO: 13;

• SEQ ID NO: 14;

• или идентичной любой из них по меньшей мере на 80%, 81%, 82%, 83%, 84%, 85%, 86%, 87%, 88%, 89%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98% или 99%,

• или комплементарной любой из них,

или гибридизующейся с любой из них в строгих условиях.

Предложенная технология позволяет определить единичные копии гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, в биологических образцах пациента, выбранных из жидкости и/или ткани, предположительно содержащих ген антибиотикоустойчивости bla-NDM-1. Биологическим образцом может быть образец крови, сыворотки или плазмы крови, клеток крови, слюны, мокроты, лимфоидных тканей, тканей кроветворных органов и других биологических материалов от пациента, которые могут быть использованы для анализа на наличие гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1.

Краткое описание чертежей

Фиг. 1. Визуализация амплифицированного фрагмента гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 (размером 680 п.о.) после предварительной амплификации с использованием олигонуклеотидов NDM-1_for_1 и NDM-1_rev_1 при помощи электрофореза в агарозном геле, где цифрами 1-8 обозначены:

1 - Продукт, полученный в ходе амплификации 3,48×10⁶ копий модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1;

2 - Продукт, полученный в ходе амплификации 3,48×10⁵ копий модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1;

3 - Продукт, полученный в ходе амплификации 3,48×10⁴ копий модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1;

4 - Продукт, полученный в ходе амплификации 3480 копий модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1;

5 - Продукт, полученный в ходе амплификации 348 копий модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1;

6 - Продукт, полученный в ходе амплификации 34,8 копии модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1;

7 - Продукт, полученный в ходе амплификации 3,48 копии модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1;

8 - отрицательный контроль, не содержащий модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1;

М - стандарты молекулярных масс: снизу вверх 100, 200, 300, 400, 500, 600, 700, 800, 900, 1000, 1200, 1500, 2000, 3000 пар нуклеотидов (GeneRuler 100 bp Plus, Thermo Fisher Scientific, США).

Фиг. 2. Профиль флуоресценции в реальном времени для предварительно амплифицированного фрагмента гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, обработанного рибонуклеопортеиновым комплексом, содержащим направляющую РНК crRNA blaNDM №100 и белок LbCpf1, на котором посредством графика визуализировано выявление фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с помощью рибонуклеопротеиновых комплексов LbCpf1 из Lachnospiraceae, содержащих направляющую РНК crRNA blaNDM №100, где:

- по вертикали указаны значения нормализированного флуоресцентного сигнала, создаваемого красителем;

- по горизонтали указано время флуоресценции, в минутах;

- на кривых 9-16 показано количество копий нуклеиновой кислоты на реакцию, а именно:

9 - 3480000 копий/реакция;

10 - 348000 копий/реакция;

11 - 34800 копий/реакция;

12 - 3480 копий/реакция;

13 - 348 копий/реакция;

14 - 34,8 копий/реакция;

15 - 3,48 копий/реакция;

16 - К- (отрицательный контроль).

Фиг. 3. Профиль флуоресценции в реальном времени для предварительно амплифицированного фрагмента гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, обработанного рибонуклеопортеиновым комплексом, содержащим направляющую РНК crRNA blaNDM №124 и белок LbCpf1, на котором посредством графика визуализировано выявление фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с помощью рибонуклеопротеиновых комплексов LbCpf1 из Lachnospiraceae, содержащих направляющую РНК crRNA blaNDM №124, где:

- по вертикали указаны значения нормализированного флуоресцентного сигнала, создаваемого красителем;

- по горизонтали указано время флуоресценции, в минутах;

- на кривых 17-24 показано количество копий нуклеиновой кислоты на реакцию, а именно:

17 - 3480000 копий/реакция;

18 - 348000 копий/реакция;

19 - 34800 копий/реакция;

20 - 3480 копий/реакция;

21 - 348 копий/реакция;

22 - 34,8 копий/реакция;

23 - 3,48 копий/реакция;

24 - К- (отрицательный контроль).

Фиг. 4. Профиль флуоресценции в реальном времени для предварительно амплифицированного фрагмента гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, обработанного рибонуклеопортеиновым комплексом, содержащим направляющую РНК crRNA blaNDM №204 и белок LbCpf1, на котором посредством графика визуализировано выявление фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с помощью рибонуклеопротеиновых комплексов LbCpf1 из Lachnospiraceae, содержащих направляющую РНК crRNA blaNDM №204, где:

- по вертикали указаны значения нормализированного флуоресцентного сигнала, создаваемого красителем;

- по горизонтали указано время флуоресценции, в минутах;

- на кривых 25-32 показано количество копий нуклеиновой кислоты на реакцию, а именно:

25 - 3480000 копий/реакция;

26 - 348000 копий/реакция;

27 - 34800 копий/реакция;

28 - 3480 копий/реакция;

29 - 348 копий/реакция; 30 - 34,8 копий/реакция;

31 - 3,48 копий/реакция;

32 - К- (отрицательный контроль).

Фиг. 5. Профиль флуоресценции в реальном времени для предварительно амплифицированного фрагмента гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, обработанного рибонуклеопортеиновым комплексом, содержащим направляющую РНК crRNA blaNDM №285 и белок LbCpf1, на котором посредством графика визуализировано выявление фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с помощью рибонуклеопротеиновых комплексов LbCpf1 из Lachnospiraceae, содержащих направляющую РНК crRNA blaNDM №285, где:

- по вертикали указаны значения нормализированного флуоресцентного сигнала, создаваемого красителем;

- по горизонтали указано время флуоресценции, в минутах;

- на кривых 33-40 показано количество копий нуклеиновой кислоты на реакцию, а именно:

33- 3480000 копий/реакция;

34 - 348000 копий/реакция;

35 - 34800 копий/реакция;

36 - 3480 копий/реакция;

37 - 348 копий/реакция;

38 - 34,8 копий/реакция;

39 - 3,48 копий/реакция;

40 - К- (отрицательный контроль).

Фиг. 6. Профиль флуоресценции в реальном времени для предварительно амплифицированного фрагмента гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, обработанного рибонуклеопортеиновым комплексом, содержащим направляющую РНК crRNA blaNDM №540 и белок LbCpf1, на котором посредством графика визуализировано выявление фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с помощью рибонуклеопротеиновых комплексов LbCpf1 из Lachnospiraceae, содержащих направляющую РНК crRNA blaNDM №540, где:

- по вертикали указаны значения нормализированного флуоресцентного сигнала, создаваемого красителем;

- по горизонтали указано время флуоресценции, в минутах;

- на кривых 41-48 показано количество копий нуклеиновой кислоты на реакцию, а именно:

41 - 3480000 копий/реакция;

42 - 348000 копий/реакция;

43 - 34800 копий/реакция;

44 - 3480 копий/реакция;

45 - 348 копий/реакция;

46 - 34,8 копий/реакция;

47 - 3,48 копий/реакция;

48 - К- (отрицательный контроль).

Фиг. 7. Профиль флуоресценции в реальном времени для предварительно амплифицированного фрагмента гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, обработанного рибонуклеопортеиновым комплексом, содержащим направляющую РНК crRNA blaNDM №583 и белок LbCpf1, на котором посредством графика визуализировано выявление фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с помощью рибонуклеопротеиновых комплексов LbCpf1 из Lachnospiraceae, содержащих направляющую РНК crRNA blaNDM №583, где:

- по вертикали указаны значения нормализированного флуоресцентного сигнала, создаваемого красителем;

- по горизонтали указано время флуоресценции, в минутах;

- на кривых 49-56 показано количество копий нуклеиновой кислоты на реакцию, а именно:

49 - 3480000 копий/реакция;

50 - 348000 копий/реакция;

51 - 34800 копий/реакция;

52 - 3480 копий/реакция;

53 - 348 копий/реакция; 54 - 34,8 копий/реакция;

55 - 3,48 копий/реакция;

56 - К- (отрицательный контроль).

Фиг. 8. Профиль флуоресценции в реальном времени для предварительно амплифицированного фрагмента гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, обработанного рибонуклеопортеиновым комплексом, содержащим направляющую РНК crRNA blaNDM №666 и белок LbCpf1, на котором посредством графика визуализировано выявление фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с помощью рибонуклеопротеиновых комплексов LbCpf1 из Lachnospiraceae, содержащих направляющую РНК crRNA blaNDM №666, где:

- по вертикали указаны значения нормализированного флуоресцентного сигнала, создаваемого красителем;

- по горизонтали указано время флуоресценции, в минутах;

- на кривых 57-64 показано количество копий нуклеиновой кислоты на реакцию, а именно:

57 - 3480000 копий/реакция;

58 - 348000 копий/реакция;

59 - 34800 копий/реакция;

60 - 3480 копий/реакция;

61 - 348 копий/реакция;

62 - 34,8 копий/реакция;

63 - 3,48 копий/реакция;

64 - К- (отрицательный контроль).

Фиг. 9. Профиль флуоресценции в реальном времени для предварительно амплифицированного фрагмента гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, обработанного рибонуклеопортеиновым комплексом, содержащим направляющую РНК crRNA blaNDM №760 и белок LbCpf1, на котором посредством графика визуализировано выявление фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с помощью рибонуклеопротеиновых комплексов LbCpf1 из Lachnospiraceae, содержащих направляющую РНК crRNA blaNDM №760, где:

- по вертикали указаны значения нормализированного флуоресцентного сигнала, создаваемого красителем;

- по горизонтали указано время флуоресценции, в минутах;

- на кривых 65-72 показано количество копий нуклеиновой кислоты на реакцию, а именно:

65 - 3480000 копий/реакция;

66 - 348000 копий/реакция;

67 - 34800 копий/реакция;

68 - 3480 копий/реакция;

69 - 348 копий/реакция;

70 - 34,8 копий/реакция;

71 - 3,48 копий/реакция;

72 - К- (отрицательный контроль).

Фиг. 10. Значения флуоресценции в конечной точке (60 цикл анализа, 60 минут) для предварительно амплифицированного фрагмента гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, обработанного рибонуклеопортеиновыми комплексами, содержащим направляющие РНК crRNA blaNDM №100, crRNA blaNDM №124, crRNA blaNDM №204, crRNA blaNDM №285, crRNA blaNDM №540, crRNA blaNDM №583, crRNA blaNDM №666 и crRNA blaNDM №760, где посредством графика визуализировано выявление фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с помощью рибонуклеопротеиновых комплексов LbCpf1 из Lachnospiraceae, при этом:

- по вертикали указаны значения нормализированного флуоресцентного сигнала, создаваемого красителем;

- по горизонтали указано количество копий модельной матрицы в реакции;

- столбцом визуализирована эффективность выявления единичных копий фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с использованием crRNA blaNDM №100;

- столбцом визуализирована эффективность выявления единичных копий фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с использованием crRNA blaNDM №124;

- столбцом визуализирована эффективность выявления единичных копий фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с использованием crRNA blaNDM №204;

- столбцом визуализирована эффективность выявления единичных копий фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с использованием crRNA blaNDM №285;

- столбцом визуализирована эффективность выявления единичных копий фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с использованием crRNA blaNDM №540;

- столбцом визуализирована эффективность выявления единичных копий фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с использованием crRNA blaNDM №583;

- столбцом визуализирована эффективность выявления единичных копий фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с использованием crRNA blaNDM №666;

- столбцом визуализирована эффективность выявления единичных копий фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с использованием crRNA blaNDM №760.

Фиг. 11. Значения флуоресценции в конечной точке (60 цикл анализа, 60 минут) для предварительно амплифицированного фрагмента гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, обработанного рибонуклеопортеиновыми комплексами, содержащим направляющие РНК crRNA blaNDM №124, crRNA blaNDM №204, crRNA blaNDM №285, crRNA blaNDM №583, crRNA blaNDM №666 и crRNA blaNDM №760, где посредством графика визуализировано выявление фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с помощью рибонуклеопротеиновых комплексов LbCpf1 из Lachnospiraceae, при этом:

- по вертикали указаны значения нормализированного флуоресцентного сигнала, создаваемого красителем;

- по горизонтали указано количество копий модельной матрицы в реакции;

- столбцом визуализирована эффективность выявления единичных копий фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с использованием crRNA blaNDM №124;

- столбцом визуализирована эффективность выявления единичных копий фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с использованием crRNA blaNDM №204;

- столбцом визуализирована эффективность выявления единичных копий фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с использованием crRNA blaNDM №285;

- столбцом визуализирована эффективность выявления единичных копий фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с использованием crRNA blaNDM №583;

- столбцом визуализирована эффективность выявления единичных копий фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с использованием crRNA blaNDM №666;

- столбцом визуализирована эффективность выявления единичных копий фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с использованием crRNA blaNDM №760.

Фиг. 12. Визуализация амплифицированного с клинических образцов фрагмента гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 (размером 680 п.о.) после предварительной амплификации с использованием олигонуклеотидов NDM-1_for_l и NDM-1_rev_1 при помощи электрофореза в агарозном геле.

Фиг. 13. Значения флуоресценции в конечной точке (60 цикл анализа, 60 минут) для предварительно амплифицированного с клинических образцов фрагмента гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, обработанного рибонуклеопортеиновыми комплексами, содержащим направляющие РНК crRNA blaNDM №100, crRNA blaNDM №124, crRNA blaNDM №204, crRNA blaNDM №285, crRNA blaNDM №540, crRNA blaNDM №583, crRNA blaNDM №666 и crRNA blaNDM №760, где посредством графика визуализировано выявление фрагмента гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 с помощью рибонуклеопротеиновых комплексов LbCpf1 из Lachnospiraceae на ограниченной панели клинических образцов, при этом:

- по вертикали указаны значения нормализированного флуоресцентного сигнала, создаваемого красителем;

- по горизонтали указаны идентификаторы образца;

- столбцом визуализирована эффективность выявления единичных копий фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с использованием crRNA blaNDM №100;

- столбцом визуализирована эффективность выявления единичных копий фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с использованием crRNA blaNDM №124;

- столбцом визуализирована эффективность выявления единичных копий фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с использованием crRNA blaNDM №204;

- столбцом визуализирована эффективность выявления единичных копий фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с использованием crRNA blaNDM №285;

- столбцом визуализирована эффективность выявления единичных копий фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с использованием crRNA blaNDM №540;

- столбцом визуализирована эффективность выявления единичных копий фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с использованием crRNA blaNDM №583;

- столбцом визуализирована эффективность выявления единичных копий фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с использованием crRNA blaNDM №666;

- столбцом визуализирована эффективность выявления единичных копий фрагмента модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 с использованием crRNA blaNDM №760.

Примеры осуществления изобретения

ПРИМЕР 1: ПОДБОР ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЕЙ-МИШЕНЕЙ В ГЕНЕ АНТИБИОТИКОУСТОЙЧИВОСТИ BLA-NDM-1 ДЛЯ СОЗДАНИЯ НАПРАВЛЯЮЩИХ РНК

Для подбора последовательностей-мишеней в гене антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 для создания направляющих РНК были использованы современные алгоритмы in silico анализа нуклеотидных последовательностей и программы, находящиеся в открытом доступе, включая Benchling (https://www.benchling.com/molecular-biology/). Был составлен перечень участков гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 с теоретически рассчитанной вероятностью их расщепления в высоко консервативных участках (Таблица 1). Направляющие РНК, специфически узнающие высоко консервативные участки гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, представлены уникальными последовательностями SEQ ID NO: 1-8.

ПРИМЕР 2: ПОДГОТОВКА МАТЕРИАЛА ДЛЯ ОБНАРУЖЕНИЯ ГЕНА АНТИБИОТИКОУСТОЙЧИВОСТИ BLA-NDM-1 МЕТОДОМ ПРЕДВАРИТЕЛЬНОЙ АМПЛИФИКАЦИИ

Подготовку материала для обнаружения гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 проводили методом предварительной амплификации. В качестве модельной матрицы, содержащей фрагмент гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, использовали плазмидную ДНК pGEM-T-bla-NDM-1, содержащую в своем составе фрагмент гена антибиотикоустойчивости антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 размером 720 п.о.

Предварительную амплификацию участка, соответствующего фрагменту гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, проводили с использованием специфических олигонуклеотидов с SEQ ID NO: 9 и SEQ ID NO: 10.

Продукт, кодирующий фрагмент гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, получали при проведении ПЦР с использованием специфических олигонуклеотидов NDM-1_for_1 и NDM-1_rev_1 (ГенТерра, Россия) и полимеразы TaqF (ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора, Россия). Размер амплифицированного фрагмента составлял 680 пар нуклеотидов.

Температурный профиль амплификации для получения ПЦР-продуктов фрагментов гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1:

1. денатурация: 95°С в течение 3 минут;

2. 40 циклов амплификации: 95°С - 15 сек, 55°С - 45 сек, 72°С - 30 сек;

3. финальная элонгация: 72°С в течение 5 минут.

В ходе подготовки материала для обнаружения гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 методом предварительной амплификации проводили титрование модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1 путем приготовления серийных разведений (Таблица 2).

Для оценки эффективности предварительной амплификации полученный фрагмент гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 визуализировали при помощи электрофореза в агарозном геле (фиг. 1).

Подготовленный описанным способом материал использовали для экспериментов по выявлению гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 с помощью рибонуклеопротеиновых комплексов LbCpf1 из Lachnospiraceae, содержащих направляющие РНК crRNA blaNDM №100, crRNA blaNDM №124, crRNA blaNDM №204, crRNA blaNDM №285, crRNA blaNDM №540, crRNA blaNDM №583, crRNA blaNDM №666 и crRNA blaNDM №760, без предварительной очистки.

ПРИМЕР 3: СОЗДАНИЕ РИБОНУКЛЕОПРОТЕИНОВЫХ КОМПЛЕКСОВ ДЛЯ ОБНАРУЖЕНИЯ ГЕНА АНТИБИОТИКОУСТОЙЧИВОСТИ BLA-NDM-1

В качестве направляющих РНК для обнаружения гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 были использованы специфические РНК-олигонуклеотиды, приведенные в Таблице 3.

Создание готового рибонуклеопротеинового комплекса, содержащего белок семейства CRISPR-Cas 12 LbCpf1 из Lachnospiraceae, и направляющую РНК авторы проводили по стандартному протоколу с некоторыми модификациями [С.Anders, М. Jinek, In vitro enzymology of Cas9, Methods Enzymol. 546 (2014) 1-20, https://doi.org/10.1016/B978-0-12-801185-0.00001-5]. Для формирования готового рибонуклеопротеинового комплекса 250 нг Cas-белка LbCpf1 из Lachnospiraceae и направляющую РНК смешивали и инкубировали 10 минут при комнатной температуре. Полученный таким способом рибонуклеопротеиновый комплекс готов для выявления гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1.

ПРИМЕР 4: ОБНАРУЖЕНИЕ ЕДИНИЧНЫХ КОПИЙ ГЕНА АНТИБИОТИКОУСТОЙЧИВОСТИ BLA-NDM-1 С ПОМОЩЬЮ РИБОНУКЛЕОПРОТЕИНОВЫХ КОМПЛЕКСОВ CRISPR/CAS НА ПРИМЕРЕ МОДЕЛЬНОЙ МАТРИЦЫ

Предварительно амплифицированный материал, полученный способом, описанным в Примере 2, использовали в качестве матрицы для обнаружения гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 с помощью рибонуклеопротеиновых комплексов CRISPR-Cas, полученных способом, описанным в Примере 3.

Для обнаружения гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 с помощью рибонуклеопротеиновых комплексов CRISPR-Cas готовили реакционную смесь, содержащую следующие компоненты:

• 10 × буфер (100 mM TrisHCl рН 8,0, 1 М NaCl);

• 50 mM MgCl2 (конечная концентрация в реакционной смеси 10 mM);

• 250 нг рибонуклеопротеинового комплекса (LbCpf1 из Lachnospiraceae и направляющие РНК crRNA blaNDM №100, crRNA blaNDM №124, crRNA blaNDM №204, crRNA blaNDM №285, crRNA blaNDM №540, crRNA blaNDM №583, crRNA blaNDM №666 и crRNA blaNDM №760);

• 10 pmol флуоресцентный зонд (6FAM-TTATT-BHQ1);

• Мишень (предварительно амплифицированный фрагмент гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1);

• вода mQ.

Реакционные смеси, содержащие все необходимые компоненты, помещали в амплификатор QuantStudio 5 (Thermo Fisher Scientific, США) и задавали следующие параметры реакции:

30-60 циклов:

1. 37°С - 35 сек,

2. 37°С - 25 сек, съемка флуоресценции.

В первую очередь были проведены эксперименты по обнаружению единичных копий гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 с помощью рибонуклеопротеиновых комплексов CRISPR-Cas, сформированных на основе LbCpf1 из Lachnospiraceae, с использованием в качестве мишени модельной матрицы - плазмидной ДНК pGEM-T-bla-NDM-1, содержащую в своем составе фрагмент гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 размером 720 п.о. На Фиг. 2-9 приведены типичные результаты анализа на примерах профилей флуоресценции в реальном времени для предварительно амплифицированного фрагмента гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, обработанного рибонуклеопортеиновыми комплексами, содержащими направляющие РНК crRNA blaNDM №100, crRNA blaNDM №124, crRNA blaNDM №204, crRNA blaNDM №285, crRNA blaNDM №540, crRNA blaNDM №583, crRNA blaNDM №666 и crRNA blaNDM №760 и белок LbCpf1. Наилучший результат выявление 348 копий модельной матрицы в реакционной смеси был показан для всех использованных направляющих РНК.

Для обнаружения единичных копий гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 с помощью рибонуклеопротеиновых комплексов CRISPR-Cas было принято решение оптимизировать процесс предварительной амплификации. Для этого были разработаны дополнительные олигонуклеотиды с SEQ ID NO: 11, SEQ ID NO: 12, SEQ ID NO: 13 и SEQ ID NO: 14 для амплификации фрагмента гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, входящего в состав модельной матрицы pGEM-T-bla-NDM-1. Полученные с помощью оптимизированных условий продукты амплификации использовали в качестве матрицы для обнаружения единичных копий гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 с помощью рибонуклеопротеиновых комплексов CRISPR-Cas, полученных способом, описанным в Примере 3.

В ходе проведенного анализа было показано, что рибонуклеопротеиновые комплексы CRISPR-Cas, сформированные на основе LbCpf1 из Lachnospiraceae и направляющих РНК crRNA blaNDM №124, crRNA blaNDM №204, crRNA blaNDM №285, crRNA blaNDM №583, crRNA blaNDM №666 и crRNA blaNDM №760 обладают способностью выявлять единичные копии гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 (3,48 копии/реакция). Применение оптимизированных олигонуклеотидов позволило обнаруживать до 3,48 копий ДНК, внесенных в реакцию предварительной амплификации (фиг. 11). При этом в среднем уже на 25 цикле (25 минут) анализа значение сигнала превышало значение «шума» (неспецифической флуоресценции контрольного образца, не содержащего мишени) в 5 раз, а к 35 циклу - более чем в 10 раз.

Таким образом, разработанные направляющие РНК позволяют ультрачувствительно выявлять единичные копии гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 в образце после предварительной амплификации в составе рибонуклеопротеиновых комплексов CRISPR-Cas.

В ходе работ была оценена эффективность выявления гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, содержащегося в составе модельной матрицы, с использованием различных направляющих РНК. Было показано, что рибонуклеопротеиновые комплексы CRISPR-Cas, сформированные на основе LbCpf1 из Lachnospiraceae и направляющих РНК, выявляют ген антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 с различной эффективностью, и их можно расположить в следующем порядке по уменьшению активности: crRNA blaNDM №760>crRNA blaNDM №285>crRNA blaNDM №583>crRNA blaNDM №666>crRNA blaNDM №124>crRNA blaNDM №204 (Фиг. 11).

ПРИМЕР 5: ОБНАРУЖЕНИЕ ГЕНА АНТИБИОТИКОУСТОЙЧИВОСТИ BLA-NDM-1 С ПОМОЩЬЮ РИБОНУКЛЕОПРОТЕИНОВЫХ КОМПЛЕКСОВ CRISPR/CAS НА ОГРАНИЧЕННОЙ ПАНЕЛИ КЛИНИЧЕСКИХ ОБРАЗЦОВ

Разработанные направляющие РНК были апробированы на ограниченной панели клинических образцов (10 шт.), содержащих ген антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 (ранее подтверждено методом секвенирования следующего поколения).

Для обнаружения гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 с помощью рибонуклеопротеиновых комплексов CRISPR-Cas была проведена предварительная амплификация фрагмента гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1. Для проведения предварительной амплификации из клинических образцов 10 пациентов с помощью коммерчески доступного набора «РИБО-преп» (ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора, Россия) согласно инструкции производителя были выделены препараты ДНК.

Продукт, кодирующий фрагмент гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, получали с помощью ПЦР с использованием специфических олигонуклеотидов NDM-1_for_1 и NDM-1_rev_1 (ГенТерра, Россия) и визуализировали при помощи электрофореза в агарозном геле (Фиг. 12).

Полученный таким способом материал использовали в качестве матрицы для обнаружения гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 с помощью рибонуклеопротеиновых комплексов CRISPR-Cas, полученных способом, описанным в Примере 3.

Обнаружение гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 с помощью рибонуклеопротеиновых комплексов CRISPR-Cas проводили способом, описанным в Примере 4.

В ходе проведенного анализа было показано, что рибонуклеопротеиновые комплексы CRISPR-Cas обладают способностью выявлять ген антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 в препаратах ДНК, выделенных из клинических образцов. При этом в среднем уже на 10 цикле (10 минут) анализа значение сигнала превышало значение «шума» (неспецифической флуоресценции контрольного образца, не содержащего мишени) более чем в 5 раз, а к 16 циклу (16 минут) анализа более чем в 10 раз (Таблица 4).

Типичные результаты анализа приведены на примерах значений флуоресценции в конечной точке (60 цикл анализа, 60 минут) для предварительно амплифицированного фрагмента гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 (10 независимых клинических образцов), обработанных рибонуклеопортеиновыми комплексами, содержащими направляющие РНК crRNA blaNDM №100, crRNA blaNDM №124, crRNA blaNDM №204, crRNA blaNDM №285, crRNA blaNDM №540, crRNA blaNDM №583, crRNA blaNDM №666 и crRNA blaNDM №760 и белок LbCpf1, на Фиг. 13.

Эффективность выявления гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, содержащегося в составе препаратов ДНК, выделенных из клинических образцов, с использованием различных направляющих РНК в составе рибонуклеопротеиновых комплексов CRISPR-Cas, сформированных на основе LbCpf1 из Lachnospiraceae, оцененная по соотношению значений сигнала к значению «шума» при детекции, можно представить в следующем порядке по убыванию: crRNA blaNDM №760 ≥ crRNA blaNDM №204 ≥ crRNA blaNDM №583 ≥ crRNA blaNDM №540 ≥ crRNA blaNDM №124 ≥ crRNA blaNDM №285 > crRNA blaNDM №666 > crRNA blaNDM №100 (Таблица 4).

Таким образом, разработанные направляющие РНК позволяют ультрачувствительно выявлять единичные копии гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, и способны обнаруживать его препаратах ДНК, выделенных из клинических образцов, после предварительной амплификации в составе рибонуклеопротеиновых комплексов CRISPR-Cas.

--->

<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>

<!DOCTYPE ST26SequenceListing PUBLIC "-//WIPO//DTD Sequence Listing

1.2//EN" "ST26SequenceListing_V1_2.dtd">

<ST26SequenceListing dtdVersion="V1_2" fileName="Sistema CRISPR-Cas12

dlya vyyavleniya gena antibiotikoustojchivosti bla-NDM-1 v

ul&apos;tranizkih koncentraciyah" softwareName="WIPO Sequence"

softwareVersion="1.0.0" productionDate="2024-09-26">

<ApplicationIdentification>

<IPOfficeCode>RU</IPOfficeCode>

<ApplicationNumberText>nn</ApplicationNumberText>

<FilingDate>2024-09-25</FilingDate>

</ApplicationIdentification>

<ApplicantFileReference>nn</ApplicantFileReference>

<EarliestPriorityApplicationIdentification>

<IPOfficeCode>RU</IPOfficeCode>

<ApplicationNumberText>nn</ApplicationNumberText>

<FilingDate>2024-09-25</FilingDate>

</EarliestPriorityApplicationIdentification>

<ApplicantName languageCode="ru">ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии

Роспотребнадзора</ApplicantName>

<ApplicantNameLatin>FBUN CRIE</ApplicantNameLatin>

<InventionTitle languageCode="ru">Система CRISPR-Cas12 для выявления

гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 в ультранизких

концентрациях</InventionTitle>

<SequenceTotalQuantity>14</SequenceTotalQuantity>

<SequenceData sequenceIDNumber="1">

<INSDSeq>

<INSDSeq_length>40</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>RNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..40</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>other RNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>blaNDM</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

</INSDFeature_quals>

</INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>aatttctactaagtgtagataccgggcatgcacccgctca</INSDSeq

_sequence>

</INSDSeq>

</SequenceData>

<SequenceData sequenceIDNumber="2">

<INSDSeq>

<INSDSeq_length>40</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>RNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..40</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>other RNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>blaNDM</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

</INSDFeature_quals>

</INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>aatttctactaagtgtagatctggccaatcgtcgggcgga</INSDSeq

_sequence>

</INSDSeq>

</SequenceData>

<SequenceData sequenceIDNumber="3">

<INSDSeq>

<INSDSeq_length>40</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>RNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..40</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>other RNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>blaNDM</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

</INSDFeature_quals>

</INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>aatttctactaagtgtagatcgccagctcgcaccgaatgt</INSDSeq

_sequence>

</INSDSeq>

</SequenceData>

<SequenceData sequenceIDNumber="4">

<INSDSeq>

<INSDSeq_length>40</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>RNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..40</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>other RNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>blaNDM</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

</INSDFeature_quals>

</INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>aatttctactaagtgtagatatcgtcagggatggcggccg</INSDSeq

_sequence>

</INSDSeq>

</SequenceData>

<SequenceData sequenceIDNumber="5">

<INSDSeq>

<INSDSeq_length>40</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>RNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..40</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>other RNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>blaNDM</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

</INSDFeature_quals>

</INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>aatttctactaagtgtagatgccgccaatggctgggtcga</INSDSeq

_sequence>

</INSDSeq>

</SequenceData>

<SequenceData sequenceIDNumber="6">

<INSDSeq>

<INSDSeq_length>40</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>RNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..40</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>other RNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>blaNDM</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

</INSDFeature_quals>

</INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>aatttctactaagtgtagatgcccgctcaaggtattttac</INSDSeq

_sequence>

</INSDSeq>

</SequenceData>

<SequenceData sequenceIDNumber="7">

<INSDSeq>

<INSDSeq_length>40</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>RNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..40</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>other RNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>blaNDM</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

</INSDFeature_quals>

</INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>aatttctactaagtgtagatggtggctgcctgatcaagga</INSDSeq

_sequence>

</INSDSeq>

</SequenceData>

<SequenceData sequenceIDNumber="8">

<INSDSeq>

<INSDSeq_length>40</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>RNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..40</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>other RNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>blaNDM</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

</INSDFeature_quals>

</INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>aatttctactaagtgtagatgtgcggcgttccccaaggcc</INSDSeq

_sequence>

</INSDSeq>

</SequenceData>

<SequenceData sequenceIDNumber="9">

<INSDSeq>

<INSDSeq_length>20</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..20</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>other DNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>NDM-1</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

</INSDFeature_quals>

</INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>gctgcattgatgctgagcgg</INSDSeq_sequence>

</INSDSeq>

</SequenceData>

<SequenceData sequenceIDNumber="10">

<INSDSeq>

<INSDSeq_length>20</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..20</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>other DNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>NDM-1</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

</INSDFeature_quals>

</INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>atgctggccttggggaacgc</INSDSeq_sequence>

</INSDSeq>

</SequenceData>

<SequenceData sequenceIDNumber="11">

<INSDSeq>

<INSDSeq_length>32</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..32</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>other DNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>NDM-1</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

</INSDFeature_quals>

</INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>agctgagcaccgcattagccgctgcattgatg</INSDSeq_sequenc

e>

</INSDSeq>

</SequenceData>

<SequenceData sequenceIDNumber="12">

<INSDSeq>

<INSDSeq_length>34</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..34</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>other DNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>NDM-1</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

</INSDFeature_quals>

</INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>gtcgcgctggcggtggtgactcacgcgcatcagg</INSDSeq_seque

nce>

</INSDSeq>

</SequenceData>

<SequenceData sequenceIDNumber="13">

<INSDSeq>

<INSDSeq_length>36</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..36</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>other DNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>NDM-1</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

</INSDFeature_quals>

</INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>gctggttcgacaacgcattggcataagtcgcaatcc</INSDSeq_seq

uence>

</INSDSeq>

</SequenceData>

<SequenceData sequenceIDNumber="14">

<INSDSeq>

<INSDSeq_length>33</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..33</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>other DNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

<INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>NDM-1</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier>

</INSDFeature_quals>

</INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>cggaatggctcatcacgatcatgctggccttgg</INSDSeq_sequen

ce>

</INSDSeq>

</SequenceData>

</ST26SequenceListing>

<---

Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к молекуле направляющей РНК системы CRISPR-Cas, которая способна связываться с целевыми высококонсервативными участками гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 и содержит последовательность, выбранную из последовательностей SEQ ID NO: 1-8. Кроме того, изобретение также относится к рибонуклеопротеиновому комплексу системы CRISPR-Cas для выявления гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, сформированному из РНК-направляемой ДНК-эндонуклеазы LbCpf1 из Lachnospiraceae, и по меньшей мере одной указанной направляющей РНК. Настоящее изобретение обеспечивает значительное повышение эффективности выявления гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1. 2 н. и 3 з.п. ф-лы, 13 ил., 4 табл., 5 пр.

1. Молекула направляющей РНК системы CRISPR-Cas, которая способна связываться с целевыми высококонсервативными участками гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, где нуклеотидная последовательность направляющей РНК выбрана из последовательностей SEQ ID NO: 1-8.

2. Молекула направляющей РНК по п.1, отличающаяся тем, что содержит в своем составе РНК-шпильку, которая распознается РНК-направляемой ДНК-эндонуклеазой LbCpf1 из Lachnospiraceae.

3. Молекула направляющей РНК по п.1 или 2, отличающаяся тем, что обеспечивает выявление единичных копий гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, где для предварительной амплификации высококонсервативных фрагментов гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 применяют специфические олигонуклеотиды, выбранные из SEQ ID NO: 9-14.

4. Рибонуклеопротеиновый комплекс системы CRISPR-Cas для выявления гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, сформированный из РНК-направляемой ДНК-эндонуклеазы LbCpf1 из Lachnospiraceae, и по меньшей мере одной из направляющих РНК из пп.1-3.

5. Рибонуклеопротеиновый комплекс системы CRISPR-Cas по п.4, пригодный для выявления единичных копий гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1, где для предварительной амплификации высококонсервативных фрагментов гена антибиотикоустойчивости bla-NDM-1 применяют специфические олигонуклеотиды, выбранные из SEQ ID NO: 9-14.