Морфологические признаки.
На агаризированной питательной среде Хсйфлика колонии развиваются на 5-й день. Они имеют плотный зернистый центр и прозрачную периферию. Клетки полиморфные в виде слабо ветвящихся нитей, шаров, зерен, что является типичным для культур мико- плазмы пневмонии,
Культуральные и биохимические свойства,
Растет в аэробных и анаэробных условиях, Метиленовый синий в концентрации 0,001-0,005% и ацетат тал- ЛИЯ в концентрации 0,05% рост не ин- гибирует. Разлагает в аэробных условиях глюкозу, мальтозу, ксилозу, ман нозу до кислоты, не разлагает аргинин и мочевины при росте на питатель ных средах. Вызьшает быстрый бета- гемолиз эритроцитов морской свинки, обладает способностью к гемадсорбции В отсутствии лошадиной сыворотки и дрожжевого экстракта не растет на среде Хейфлика.
Антигенная структура.
Штамм перекрестно реагирует с ан- тисьшороткой к штаммам FH, № 13В и 780 в реакции ингибиции метаболизма и реакции нейтрализации до титра. Меченая иммунная сыворотка в реакции эпифлюоресценции реагирует со штаммом 1 до тирра. Антисьшоротка к штамму FH реагирует с диагностикумами из штамма 1 до титра в реакции связывания комплемента и непрямой гемагглю- тинации. При обратной постановке реакций, т.е. когда диаГностикумы для рек и РИГА готовят из штамма FH и используют для их проверки антисьшо- ротку к штамму 1, они также идут до титра сьшоротки.
Использование штамма иллюстрируется следующими примерами.
Пример 1. Использование штамма № 1 для приготовления диагности- кума из микоплазмы пневмонии для РСК
Производственный штамм микоплазмы пневмонии, предварительно прошедший контроль на бактериальную стерильность, специфичность, отсутствие посторонних микоплазм, биологическую активность, засевают в литровые матрацы -(типа бутыли Новицкого) с 75 мл среды Хейфлика (200 мл бульона из триптического перевара говяжьего сердца, 20 мл дрожжевого экстракта, 50 мл лошадиной сьшоротки, глюкозы
10
25
15 - 20
.
- ,
365614
до 1%, фенолового красного до 0,002%, хлорида натрия до 0,5%, насьпценного спиртового раствора холестерола до 0,1%, пенициллина до 1000 ед/мл, пН 7,8). Инкубируют при , подщелачивая среду до рН 7,8 раствором гидроокиси натрия каждые 6-18 ч. Культуру выращивают 5 дней до образования равномерного слоя микоплазмы ,на стеклянном дне матраца под слоем питательной среды. Стерильньм резиновым шпаделам снимают слой микоплазм со дна матраца в жидкую фазу культуры и используют в качестве посевного материала для получения серии антигена. Посевной материал вносят в объеме 6 мл в 300 мл среды Хейфлика,которую затем распределяют по 75-80 мл в литровые матрацы. Посевы выращивают, как описано ранее. После образования достаточного слоя микоплазм на дне матраца питательную среду отсасьшают. Слой отмьшают от остатков питательной -среды 3-кратным споласкиванием буферным изотоническим раствором рН 7,6 и снимают со дна матраца резиновым шпаделем в свежую порцию такого же раствора. Полученный материал контролируют на бактериальную стерильность, содержание микоплазм (по мутности и биологической активности). Он имел мутность 170 ед.П СК, биоло30
35
40
45
50
гическую активность КОЕ,, мл
JO
и был бактериологически стерильным. Клетки микоплазмы пневмонии разрушают ультразвуком при 16 кГц в течение 20 мин. Полученный антиген в разведении 1:10 не обладает антикомплементарными и гемолитич€1скими свойствами, при определении антигенной активности методом шахматного титрования она составляет 220 ед.Антиген смешивают в соотношении 1:1 с 2%-ным раствором желатина на 20%-ной Ccixa- розе, фасуют в ампулы, лиофильно высушивают и запаивают под вакуумом. Готовый препарат имеет антигенную активность ПО ед., в разведении 1:5 не гемолитичен и антикомплементарен, не содержит жизнеспособных микоплазм в объеме 5 мл...
П р и м е р 2, Использование штамма № 1 для приготовления диагностику- ма из микоплазмы пневмонии для РИГА.
Дпя получения серии антигена про- изводственньй штамм засевают, вьфащи- вают в жидкой питательной среде Хейфлика, получают взвесь отмытых от
5
среды клеток, контролируют ее и обр батьшают ультразвуком, как в пример 1. Взвесь клеток обладает мутностью 190 ед. стандарта ГИСК, биологической активностью 1-0 . Антиген в разведении 1:10 не обладает гемолитическими и антикомплементарными свойствами, антигенная активность его составляет 250 ед. Антиген не содержит жизнеспособных ми- коплазм (определено посевом 5 мл на 50 мл среды Хейфлика). Сенсибилизируют акролеинизированные. эритроциты антигеном в присутствии бидиазотиро ванного бензидина и лиофильно высушивают в ампулах в растворе пептона после чего запаивают под вакуумом. Полученный препарат выявляет в ре- ферес-сьшоротке антитела в том же титре, что и предшествующие серии (:2560), специфичен при постановке контрольных опытов с сьшоротками крови иммунизированных и интактных животных, не содержит жизнеспособны микоплазм в объеме 2 мл. Эритроциты оседают за ч при постановке реагсции с неспецифической сьшоротко
П р и м е р 3. Приготовление анти- гена из штамма № 1 для получения диагностических иммунных сывороток.
Взвесь отмытых клеток микоплазмы пневмонии получают с использованием приемов, описанных в примере 1. Полученная взвесь содержит мл микоплазмы пневмонии и имеет мутность 160 ед. ГИСК, не содержит бактерий в объеме 2 мл, Для инактивации
40Штамм Mycoplasma pneumoniae 1
(коллекция микроорганизмов НИИЭМ им. Н.Ф. Гамалеи), используемый для получения диагностикумов и диагностических иммунных сывороток.
Таблица
Результаты перекрестного взаимодействия различных штаммов микоплазмы пневмонии с антисывороткамн к гомо- и г етерологичным штаммам в различных реакциях
вьиерживают взвесь отмытых клеток при -5-10 течение 14 дней, после чего вторично контролируют на бакте- риальну1а стерильность и наличие жизнеспособных микоплазм в объеме 2 мл.
Штаммы
Титры реакций при постановке их с антисьшоротками к штаммамг I I FH 1 780 1 ЗВ I I FH I 780 | 13В FH 1 FH I FH
Р. ингибидаи метабо- Р. нейтрализащ1и РИГА
Примечание. - типовой штамм (АТСС 15331);
- свежевьщеленный штамм
0
5
0
5
D
5
Серии, прошедшие соответствующий контроль, используют для получения Ш мунных сывороток. Полученные И1 5мун- ные сьшоротки вызывают появлет е зо-j ны задержки роста 4 -S 2 ьш в реакции ингибиции роста миколлазмы, в реакции ингибиции метаболизма 1:3200- 1:12800, в реакции эпифлюоресценцин 1;8-1:16 и в реакции связьшания комплемента 1:1280-1:5 20, Для получения длительно хранящегося препарата антител сыворотки в ампулах лиофильно высушивают и запаивают под вакуумом .
Диагностику1.1ы и диагностические сыворотки пол чениые с использованием штамма 1, стабильны при хранении при в течение 2 лет (срок наблюдения).
Результаты сравнительного испытания диагностикумов i-i диагностических сьшороток представлены в табл. 1-5. Штамм i отличается низкой вирулентностью для человека. При инфицировании людей через дыхательные пути в массивной дозе вызывает у высокочувствительных людей лишь слабо выраженные кратковременные симптомы заболевания.
Штамм обладает высокой репродукционной активностью: через 5 дней культивирования дает урожай в 300 раз , чем известный штамм, в условиях выращивания на поверхности матраца под слоем питательной среды.
Формула изобретения
РСК Р. эпифлюТаблица 2
Результаты испытания специфичности иммунных сьгоороток, полученных к штамму 1
Серологические реакции
Титры реакций при постановке их с антигенами, приготовленными из штаммов:
1
FH 78013В I М.
Таблица
Результаты сравнительных испытаний диагностикумов, приготовленньтх из штаммов 1 и FH, при исследовании сьшороток крови лабораторных животных
FH
Незараженные кролики
Таблица 4
Результаты сравнительных испытаний диагностикумов, приготоаленных из штаммов 1 и FH, в серологических реакциях (РСК и РИГА)
гоминис Н-37
Таблица 5
Результаты сравнительных испытаний диагностикумов, приготовленных из штаммов 1 и FH, при обследовании парных сывороток людей, больных ОРЗ и острой пневмонией
FH 1
FH I
Дети Взрослые
3.3 3.5 3 3
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
ШТАММ БАКТЕРИЙ YERSINIA PSEUDOTUBER CULOSIS 7А, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ В КАЧЕСТВЕ АНТИГЕНА ДЛЯ СЕРДОДИАГНОСТИКИ ПСЕВДОТУБЕРКУЛЕЗА | 1995 |
|
RU2084522C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ АНТИГЕНА ДЛЯ ДИАГНОСТИКИ САПА В РЕАКЦИИ АГГЛЮТИНАЦИИ | 1997 |
|
RU2111763C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЭРИТРОЦИТАРНОГО ДИАГНОСТИКУМА ДЛЯ РЕАКЦИИ НЕПРЯМОЙ ГЕМАГГЛЮТИНАЦИИ (РНГА) ПРИ МИКОПЛАЗМОЗЕ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА | 2007 |
|
RU2342155C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЭРИТРОЦИТАРНОГО ДИАГНОСТИКУМА ДЛЯ РЕАКЦИИ НЕПРЯМОЙ ГЕМАГГЛЮТИНАЦИИ (РНГА) ПРИ МИКРОПЛАЗМОЗЕ СВИНЕЙ | 2007 |
|
RU2361218C1 |
Способ изготовления бруцеллезного эритроцитарного антигена для реакции непрямой гемагглютинации (РНГА) | 2019 |
|
RU2714305C1 |
СРЕДСТВО ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ ПРЕПАРАТОВ ДЛЯ ДИАГНОСТИКИ РИККЕТСИОЗА, ВЫЗЫВАЕМОГО RICKETTSIA SIBIRICA subsp. SIBIRICA BJ-90 | 2013 |
|
RU2560581C2 |
Штамм @ @ 19131 серовара 58,используемый для получения моноспецифической диагностической сыворотки | 1984 |
|
SU1172260A1 |
Штамм бактерий YeRSINIa еNтеRосоLIтIса серовара 03, используемый в качестве антигена для серодиагностики иерсиниоза | 1991 |
|
SU1751196A1 |
ШТАММ Burkholderia cepacia B-7518, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ АНТИГЕНА ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АНТИТЕЛ К Burkholderia cepacia В БИОЛОГИЧЕСКИХ СРЕДАХ | 2014 |
|
RU2566555C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ДИАГНОСТИЧЕСКОЙ СЫВОРОТКИ ПРОТИВ БРУЦЕЛЛ В L-ФОРМЕ | 2003 |
|
RU2268748C2 |
Изобретение относится к медицинской микробиологии и может найти применение при получении диагностических препаратов. Цель изобретения - новый антигенноспецифический, со сниженной вирулентностью, высокоурожайный штамм Mycoplasraa pneumoniae. Штамм получен методом клонироваШ1я исходного штамма FH-MO, депонирован в коллекции микроорганизмов НШ ЭМ им. Н.Ф. Гамалеи под номером К Штамм № I используют для получения антигенов, применяемых для-приготовления диагностикумов, для постановки РСК и PHrAs получения иммунньк диагностических сьшороток. 5 табл. колонии, .высевают их на жидкие среды. Культуры из отдельных колоний вторично фильтруют, сеют на плотные среды и вторично полученные из отдельных колоний культуры считают клоном. Среди них отбирают такие, которые отличаются слабой выраженностью цилиостатического действия и высокой репродуктивной активностью при росте на поверхности стекла под слоем жидкой питательной среды. Полученный штамм Mycoplasma pneumoniae депонирован в коллекции культур ВНИИЭМ им. Н.Ф. Гамалеи /лаборатория микоплазм и L-форм ) под № 1 и .характеризуется следующими признаками. 00 со
Колесников Л.В | |||
и др | |||
в сб.: Проблемы гриппа и вирусных ОРЗ | |||
Л., 1974, т | |||
Способ восстановления хромовой кислоты, в частности для получения хромовых квасцов | 1921 |
|
SU7A1 |
Способ получения нерастворимых лаков основных красителей в субстанции и на волокнах | 1923 |
|
SU132A1 |
Bergey s manhual of determinative bacteriology, 8 ed Eds Buchman R, at al | |||
Baltimore, 1975, Лисин В.В., Демяник И.В., Радчен- ко Н.А | |||
в кн.: Иммунология вирусньрс и микоплазмеиных инфекций | |||
Сб | |||
тр | |||
Казахского НИИЭМБ | |||
Алма-Ата, 1983, 136-139 | |||
Изобретение относится к медицинской микробиологии и может быть использовано в вакцинно-сыворотном деле для получения диагностикумов и специфических диагностических сывороток | |||
Цель изобретения - создание штамма Мусорiasma pneumoniae, обладающего высокой урожайностью, антигеноспе- цифичностью, сниженной вирулентностью | |||
Прибор, автоматически записывающий пройденный путь | 1920 |
|
SU110A1 |
Печь для непрерывного получения сернистого натрия | 1921 |
|
SU1A1 |
Авторы
Даты
1989-10-30—Публикация
1986-01-14—Подача