00
С
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Способ снижения численности бактерий-оппортунистов в средах выращивания личинок морских рыб и их кормов | 2015 |
|
RU2614604C1 |
СПОСОБ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ ПЛАНКТОННОЙ ХЛОРЕЛЛЫ | 2018 |
|
RU2685955C1 |
ТЕРМОФИЛЬНЫЙ ПЛАНКТОННЫЙ ШТАММ CHLORELLA SOROKINIANA - ПРОДУЦЕНТ ПИЩЕВОЙ БИОМАССЫ | 2018 |
|
RU2680704C1 |
Способ получения биомассы микроводорослей Chlorella vulgaris | 2022 |
|
RU2797012C1 |
СПОСОБ ПЕРЕРАБОТКИ ПОСЛЕСПИРТОВОЙ БАРДЫ | 2014 |
|
RU2556122C1 |
ПЛАНКТОННЫЙ ШТАММ Chlorella kessleri, ПРЕДНАЗНАЧЕННЫЙ ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ БИОМАССЫ | 2016 |
|
RU2613424C1 |
ПЛАНКТОННЫЙ ШТАММ CHLORELLA VULGARIS, ПРЕДНАЗНАЧЕННЫЙ ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ ПИЩЕВОЙ БИОМАССЫ | 2017 |
|
RU2644653C1 |
Кормовая добавка | 2023 |
|
RU2826305C1 |
Способ культивирования микроводоросли Chlorella | 2016 |
|
RU2644261C2 |
СПОСОБ УТИЛИЗАЦИИ ОТХОДОВ ЖИВОТНОВОДЧЕСКИХ КОМПЛЕКСОВ | 2015 |
|
RU2595401C2 |
Изобретение относится к культивированию микроводорослей в качестве добавки в корм птицам, рыбам и пр. с/х животным. Целью изобретения является упрощение способа. Способ заключается в том. что при культивировании микроводорослей в качестве питательной среды используют отход рыбоводного производства в виде воды из рециркуляционной системы. Упрощение способа осуществляется за счет исключения трудоемких процессов приготовления питательных сред из отходов производства (разделение, нейтрализация, разбавление и пр.). При этом способ обеспечивает выход биомассы, сопоставимый с выходами биомассы микроводорослей, культивируемых на минеральных питательных средах. 3 табл.
Изобретение относится к способам культивирования микроводорослей.используемых в качестве добавок в корма животных, птиц, в сельском хозяйстве и в рыбоводстве для получения дополнительного количества белково-витаминных продуктов и живых кормов,
Известна питательная среда для культивирования микроводорослей содержащая калий кислый фосфорнокислый магний сернокислый, аммоний углекислый натрий хлористый и бурый сок - отход переработки люцерны на корм, использование которой повышает скорость роста и выход биомассы микроводорослей.
Недостатком известного решения является необходимость применения специальных питательных сред, которые готовятся из химических компонентов, имеющих высокую стоимость Кроме того, не являясь химически чистыми соединениями, они вносят в
питательную среду чужеродные элементы. Поскольку указанные компоненты питательной среды аккумулируются клетками и накапливаются в пределах, превышающих предельно допустимые концентрации (ПДК)для пищевого и кормового использования биомассы, возникает необходимость их отделения от клеток путем сепарации, а также последующей отмывки. Кроме того, наряду с набором минеральных соединений, известная питательная среда содержит .экстракт люцерны. Добавление последнего в среду вызывает усиленный рост бактериоф- лоры. что приводит к загрязнению биомассы водорослей за счет дополнительного обсеменения бактериями и грибами, т.е. ухудшает ее качество как возможного кормового продукта.
Наиболее близким к предлагаемому техническим решением является способ выращивания микроводорослей на сточных
$ со
о
00
Ю
водах с сельскохозяйственного производства (птицефабрик, животноводческих комплексов).
Недостатками способа является необходимость предварительной обработки этих вод и неудовлетворительное качество целевого продукта, требующего дополнительной комплексной обработки.
Многие стоки сельскохозяйственных комплексов в связи с содержанием токсических соединений метаболической природы являются экстремальными для микроводорослей и тормозят их рост. В частности, сточные воды свиноводческих комплексов не могут непосредственно использоваться для культивирования микроводорослей, а требуют дополнительного разведения (в 10-100 раз), осветления и другой обработки, т.е. имеют зловонный запах, значительное бактериологическое загрязнение, высокую концентрацию солей, аммиака. Сточные воды ферм крупного рогатого скота в ряде случаев лишены отдельных указанных недостатков (например, не содержат столь высокого количества солей - натрия хлористого), но требуют дополнительного внесения отдельных биогенных элементов (фосфора).
Получаемая на указанных отходах биомасса водорослей во многих случаях имеет неудовлетворительное качество из-за бактериального загрязнения, запахов. Для предотвращения указанных отрицательных последствий при использовании натуральной биомассы микроводорослей, выращенных на сточных водах, ее необходимо подвергать комплексной обработке.
Цель изобретения - упрощение способа.
Способ заключается в том. что воду из рециркуляционной системы рыбоводного производства подают в фотореактор, засевают микроводорослями и культивируют при освещении 10000 лк и температуре 30- 35°С.
Вода рециркуляционной системы (в.р.с.), содержащая продукты жизнедеятельности гидробионтов, представляет собой речную воду, используемую длительное время в замкнутой системе для выращивания рыбы. Состав воды из рециркуляционной системы и ее гидрохимические показатели при температурном режиме 23-28°С и рН 6,5-7,5 следующие.
Концентрация веществ в воде рыбоводных емкостей, мг/л: О 10-15; NhU 4-6; N02 0,3-0,5- NOa 100-120; Ре0бщ 0-0,1; Са2 49- 70; Мд2+ 24-32; СГ 40-60; 4,0-8,5.
Количество органических загрязнений, выделяемых 1 т рыбы, кг/сут: NhU
1-4; БПКй (биологическая потребность в кислороде в течение 5 сут) 3-13.
Вода рыбоводных комплексов, используемая для культивирования водорослей, не
требует дополнительной обработки, не стимулирует дополнительный рост микроорганизмов, не свойственных гидробион- там, в том числе и микроводорослям. Рост микроводорослей на рыбоводных стоках
0 происходит за счет утилизации азота (аммонийного) и нитратов, фосфора, углерода и других элементов, попадающих в рециркуляционную воду из продуктов жизнедеятельности растущих в ней водных организ5 мое.
В воде рециркуляционной системы в результате накопления метаболитов рыбы, при высоком содержании растворенного органического вещества по ХПК. БПКг не
0 повышается из-за их высокого бактерицидного эффекта. Поэтому ХПК колеблется в пределах 90-150 мг/л и выше при низких величинах ВПК. В большом количестве в воде содержатся углеводы, аминокислоты и
5 другие вещества, легко усваиваемые клетками водорослей. Например, содержание аминокислот достигало 1-2 мг/л а учитывая миксотрофность используемых водорослей растворенные в воде вещества являются до0 полнительным источником биогенных элементов.
Продукты жизнедеятельности рыбы об падают, с одной стороны, ростостимулирую щей активностью, с другой стороны
5 благодаря присущему водорослям миксотр физму при наличии растворенных органнче ских веществ рост водорослей усиливается i 4-6 раз.
Вода из рециркуляционной системы, ко
0 торая является отходом рыбоводного про изводства, по сравнению со CTOK.-IMI сельскохозяйственного производств не об ладает неприятным запахом, интенсивно окраской и практически не содержит пптс
5 генной микрофлоры. Это дает возмож ность получать биомассу значительн лучшего качества, которую можно исполь зовать сразу в качестве живого корма дл гидробионтов.
0 Объект культивирования - два штамм хлореллы (Chlorella vulgaris Beji - приро/ ный штамм и Chlorella vulgaris Beji - шт.чм ЛАРГ-3), сценедесмус и анкистродесму (Scenedesmus obliquus, AnKistrodesmu
5 fusiformis).
Указанные виды организмов относятс к зеленым водорослям.
Использовались также синезеленые BI доросли - микроцистис и спирулин (Microcystis aeruginosa, Spirulina plateusis
П р и м е р 1. Объект выращивания - зеленая водоросль Chlorella vulgaris(uuTaMM ЛАРГ-3). В контрольном варианте культуру водоросли хлореллы выращивали на классической минеральной питательной среде Та- мия следующего состава, г/л: мочевина 3.0: MgSOi 2,5: КН2Р04 1.25: FeSCU 7H20 0,003: ЭДТА 0,037, а также микроэлементы 1 мл.
Раствор микроэлементов, г/л: НзВОз 2.860; MnCl2-4H2d 1.81: ZnSfVTHaO 0,222; а также МоОз 176.4 мг/10 л, МН/Л/Оз 229,6мг/10л.
В опытном варианте в качестве питательной среды использовалась вода из рециркуляционной системы для выращивания рыбы.
Культивирование хлореллы проводили в плоскостенном фотореакторе при температуре 30-35°С и освещенности 8-10 тыс. лк при постоянной продувке через суспензию водорослей газовоздушной смесью, содержащей до 3% С02. Длительность эксперимента 5-7 сут.
После заполнения соответствующих камер фотореактора минеральной питательной средой (контроль) и водой из рециркуляционной системы в обе камеры (опытную и контрольную) инокулировали маточную культуру микроводоросли хлорелла и отбирали исходные образцы для контроля. Конт- ролировались следующие параметры: численность клеток, биомасса, и физиологическое состояние культуры. Учет численности микроводорослей проводили с помощью камеры Горяева под микроскопом. Биомассу (а.с.в.) определяли стандартным весовым методом. О физиологическом состоянии культуры судили по соотношению живых и мертвых клеток, определяемому с помощью люминесцентной микроскопии.
Как свидетельствуют данные табл. 1. наиболее интенсивное увеличение биомассы хлореллы наблюдалось в опытном варианте, т.е. на воде из рециркуляционной системы.
В опытном варианте (на воде из рециркуляционной системы) выход биомассы (а.с.в.) хлореллы за 5 сут эксперимента составлял 246% от исходной биомассы (принята за 100%), тогда как в контрольном варианте (на минеральной питательной среде) этот прирост составил соответственно 150%.
Физиологическое состояние культуры также было лучшим в опытном варианте, т.е. процент живых клеток выше.
Таким образом, интенсивность развития микроводорослей по предложенному способу выше, чем при культивировании на стандартной минеральной питательной среде (Тамия).
Сравнение результатов роста водо..ос- лей, полученных по известному способу (в среднем 0,7-1,0 г/л сухого вещества) и по предложенному способу (0.85-1 04 г/л сухого вещества) показывает, что по предложенному способу прирост биомассы водорослей не ниже, а иногда и выше, чем по известному.
П р и м е р 2. Условия культивирования, аналогичные описанным в примере 1. Объект культивирования - зеленые микроводоросли An Klstrodesmus f uslformis. Полученные данные сведены в табл. 2.
П р и м е р 3. Для культивирования использовали синезеленые водоросли Microcystis aeruginosa. Результаты приведены в табл. 3. Контроль выращивали на минеральной среде Фитцжеральда (источник по примеру 1).
Прирост другого представителя синозе- леных водорослей Spirulina plateusis за сутки составлял на минеральной питательной среде 0.06-0,07 г/л, а на воде рециркуляционной системы - 0.05 - 0.10 г/л, т.е. был не ниже, чем в контроле (на минеральной питательной среде).
Однако, более охотное потребление хлореллы некоторыми гидробионтами (коловратками, моинами), являющимися жи вым кормом для мальков рыбы, сыграло определяющую роль е ее культивировании и последующем использовании.
Предлагаемый способ позволяет за счет биогенных элементов и органического вещества, накапливаемых в рециркуляционной системе при выращивании рыбы, получать биомассу микроводорослей, являющуюся ценным кормовым продуктом для других гидробионтов - живых кормов (коловратки, дафнии, инфузории и др.), и молоди рыб. Получаемый живой корм не требует дополнительной обработки, что упрощает его технологическое использование. Кроме того, вода после отделения биомассы водорослей может повторно использоваться в рециркуляционных системах.
Упрощение предлагаемого способа осуществляется за счет исключения трудоемкого процесса приготовления питательных сред, последующей сепарации и отмывки получаемой биомассы от механических и бактериальных примесей, содержащихся в жидких отходах.
Формула изобретения
Способ культивирования микроводорослей на отходах производства, отличающийся тем, что, с целью упрощения способа, из отходов производства используют отходы рыбоводного производства в виде воды из рециркуляционной системы.
Таблица 1
Таблица 2
Таблица 3
Питательная среда для культивирования микроводорослей | 1982 |
|
SU1034663A1 |
Печь для непрерывного получения сернистого натрия | 1921 |
|
SU1A1 |
Устройство для видения на расстоянии | 1915 |
|
SU1982A1 |
Музафаров A.M | |||
ВасиговТ.В | |||
Культивирование и применение микроводорослей в народном хозяйстве Ташкент: ФАН | |||
Шеститрубный элемент пароперегревателя в жаровых трубках | 1918 |
|
SU1977A1 |
с | |||
Прибор для очистки паром от сажи дымогарных трубок в паровозных котлах | 1913 |
|
SU95A1 |
Авторы
Даты
1992-01-07—Публикация
1989-02-20—Подача