Способ отбора веществ-адаптогенов Советский патент 1983 года по МПК A61B10/00 

(54) СПОСОБ ОТБОРА ВЕЩЕСТВ-АДАПТОГЕНОВ

1

Изобретение относится к фармакологии, а именно к отбору биохимически активнь1Х. препаратов медицинского и ветеринарного назначения, которые повышают защитноприспособительные возможности организма.5

Известно ряд способов отбора биохимически активных препаратов, обладающих биохимической активностью, скрининг ведут на зеленых одноклеточных водорослях.

. Определённое количество химического , соединения смешивают с культурой зеленых одноклеточных водорослей. Рост и размножение клеток в опыте сравнивают с тако-выми в контроле. При применении данного способа установлено, что вещества, обладающие совершенно различными видами биохимического воздействия, такие как инсектициденты, акрициды, фунгициды или фармацевтические препараты, проявляют актив- 20 ность, которая может быть применена к исследуемому объекту с тем, чтобы определить активность химических веществ по отношению к ферментам, ферментативным системам и генам 1.

Известен также способ отбора биологически активных веществ, предусматривающий биохимическую активность таких соединений как гербициды, инсектициды, фунгициды, фармакологические препараты путем контактирования определенного количества химического соединения с культурой одноклеточных зеленых водорослей, сравнивается с помощью электронного счетчика, электроколориметра или нефелометра рост клеток или скорость размножения их с аналогичными величинами для контрольной

культуры. Условия развития культуры МО:

гут быть изменения за счет изменения состава среды, температуры, подачи газа или интенсивности и продолжительности освещения 2.

Наиболее близким к предлагаемому является способ отвора веществ заключающийся в том, что белых мышей, которым вводят определенные дозы испытуемого вещества (10 животных на дозу и столько же в контроле), подвергают неблагоприятному воздействию (бег, плавание и др.) до и после применения препарата. Контрольным животным вводят растворитель и подвергают тому же воздействию. Препарат оценивается сравнением выживаемости или работоспособности опытных и контрольных животных 3.

Основными недостатками этих способов являются следующие: способы отбора биохимически активных веществ (1,2) предусматривают только выявление общей стимулирующей или ингибирующей активности неизвестных или известных веществ. Оценка только на культуре клеток водорослей не может быть безоговорочно перенесена на млекопитающих животных. Изменение условий развития культуры на протяжении всего периода контролирования вещества с клетками может изменить интенсивность их роста, но не выявляет действие препарата на защитно-приспособительные возможности.

Способ оценки и изыскания растительных препаратов, повыщающих защитноприспособительные возможности организма, не отвечает задачам массового отбора химических веществ. Он требует больщих затрат времени (на отбор 100 препаратов не менее 100 человеко-дней рабочего времени) и средств (на отбор 100 препаратов около 5000 белых мышей). В этом способе применяют одно какое-либо специфическое повреждение, поэтому трудно выявить препараты с неспецифической активностью.

Целью изобретения является повышение эффективности отбора веществ-адаптогенов.

Поставленная цель достигается тем, что согласно-способу отбора веществ-адаптогенов, включающему введение испытуемого вещества лабораторному животному с последующим определением выносливости организма животного путем сравнения с контрольным животным, перед введением лабораторным животным испытуемых веществ проводят скриминг последних на средах с микроорганизмами с отбором обладающих наибольшим защитным действием веществ.

Причем в качестве среды с микроорганизмами используют среду с инфузориями при концентрации испытуемого вещества 1..10 на мл при культивировании, в течение 12-24 ч при 10-22°С.

Кроме того, в качестве среды с микроорганизмами используют среду с.дрожжами при концен-дзации испытуемого вещества 1..10 на мл при культивировании в течение 24-48 ч при 28-30°С.

Пример. В жидкой культуре инфузорий дрожжевых клеток или других свободно живущих клеток делают разведения испытуемого препарата от 1. 1.10 и культивируют, например, инфузории в течение 12-24ч при 10-22°С, дрожжи в течение 24-48ч при 28-30°С. Для контроля культивируют клетки без препарата. После этого культуру подвергают повреждающему воздействию и через определенный промежуток времени измеряют время жизни или степень роста и размножения- с поМОЩЬЮ нефелометрии. По отношению показателей опыта к контролю вычисляют коэффициент защиты. Препараты, показывающие достоверный коэффициент защиты больше 1,000, оставляют для отбора на 5 уровне целого организма.

Отобранные препараты вводят белым мыщам или другим лабораторным животным внутрь, подкожно, внутримышечно в дозах от 0,1 до 100 мг на 1 кг веса (по 10 животных на дозу). Контрольным

О животным вводят растворитель. Через 1-6 ч животных подвергают воздействию неблагоприятного фактора, например, плаванию .или усыплению наркотиком и другому. Определяют показатель, характеризующий жизнеспособность (гибель и ее время, время работы до утомления, степень изменения показателей гомеостата и др.). Отношением этого показателя в опыте к контрольному вычисляют коэффициент защиты. Для изучения токсичности отбирают препараты,

0 показавщие наибольший коэффициент защиты среди тех, которые дали его больще единицы. Отобранные на уровне целого организма препараты вводят белым мышам или другим лабораторным животным (по 10 животных на дозу) парентерально в возрастающих концентрациях и определяют минимальную смертельную дозу. Отношением минимальной дозы, дающей макси мальный коэффициент защиты, к минимальной смертельной дозе вычисляют коэффициф ент токсичности. Чем меньше коэффициент токсичности, тем, предпочтительнее препарат для дальнейших испытаний.

Для- оценки препаратов выделяют три показателя сравнительного отбора: 1-минимальную концентрацию, дающую макси5 мальный коэффициент защиты на клеточном уровне; 2 - то же, на организменном уровне; 3 - коэффициент токсичности. Наиболее эффективные препараты подвергают дальнейшему изучению известными способами.

Отбор на клеточном уровне. На сенной среде общепринятым методом выращиваем трехнедельную культуру инфузорий Рагаmecium Caudatum (методы исследований в ветеренарной микологии.. М., 1971). Взвешивают 30 мг высушенного вакуумированием экстракта элеутерококка и растворяют его в 3 мл профилированной через 2 слоя марли среды с инфузориями. Отсюда в три пробирки переносят по мл жидкости и добавляют в них по 2,7 мл среды с инфу0 зориями. Получают концентрацию препарата 1.10 Две пробирки оставляют для опыта, а из одной в три следуюшие пробирки переносят по 0,3 мл жидкости и добавляют в них по 2,7 мл среды с инфузориями. Получают концентрацию препарата 1.10. Повторяя описанную операцию, получают разведения препарата до 1.10Т К каждому разведению препарата ставят по одной контрольной пробирке с инфузориями. Все гГробирки оставляют на 24 ч при 25°С. Затем в пробирки первого разведения и кон троля осторожно и равномерно приливают по 0,3 мл 8%-ного раствора хлористого натрия. Жидкость переливают в микроаквариумы диаметром 1,0 см с прозрачным дном и под микроскопом MSt 130 при увеличении в 100 раз с помощью секундомера определяют время жизни контрольных и опытных инфузорий по прекращению активных хаотических движений и лизису клеток. То же самое повторяют с остальными разведениями. Среднее время жизни контрольных инфузорий принимают за единицу. Отношением среднего времени жизни инфузорий, контактировавщих с каждым разведением препарата, к контрольному определяют коэффициент защиты (КЗ). Результаты опытов с элеутерококком и расчетов коэффициентов защиты приведены в-табл. 1. Из табл. 1 видно, что элеутерококк в разведении МО- почти в два раза удлиняет время жизни инфузорий, подвергнутых неблагоприятному действию соли. Это говорит о проявлении его защитного эффекта. Отбор на организменном уровне. V.X J.J.t V/| ItJXI(,I. , Подбирают 4 группы белых мышей по 10 животных, с весом 30-32 г каждая. г каждая. Контрольным животным вводят подкожно по О; мл. дистиллированной воды. Мышам подопытных групп вводят в том же объеме и тем же путем водные растворы предварительно высущенного вакуумированием экстракта элеутерококка в дозах 0,1, 1,0 и 10,0 мг на 1 кг веса. Через 1 ч животным к хвосту прикрепляют свинцовый грузик в 5% от веса тела и заставляют плавать в стеклянном сосуде с водой при 23°С. По секундомеру отмечают время (в с) утопления каждой мыши по группам. Момент утопления характерен определенными признаками (круговые движения в толще воды без выныривания, тело вытянуто., . голова откинута назад, рот открыт, крнечности оттопырены). Среднее время плавания для контрольных мышей пр:ини1«ают за единицу. Отношением среднего времени плавания опытных мышей в каждой до контрольного определяют коэффициент защиты (КЗ) Достоверность коэффициентов защиты определяют одним из принятых методов статистическбй обработки данных. Результаты опытов с элеутерококком и расчетов коэффициентов защиты приведены в хабл. 2. Из табл. 2 видно, что во всех испытаниях элеутерококк стимулировал выносливость животных. Отбор по токсичности. Общепринятыми методами определяют смертельную дозу элеутерококка при внутрибрюи1ном введении. Она равняется 10000 мг на 1 кг веса. Отношением минимальной дозы, дающей максимальный коэффициент защиты в опытах на организменном уровне (1,0 мг) к минимальной смертельной дозе (10000 мг) определяют коэффициент токсичности элеутерококка. Он составляет 0,0001. Таким образом, для элеутерококка показателями сравнительного отбора, установленными данным способом, по которым оценивается препарат, будут: 1 - 1.,88б 2-1,0 мк/кг 1,578; 3-0,0001. .Результаты . . эффективности элеутерококка, полученные предлагаемым способом, соответствуют данным, установленным И. И, Брехманом и другими исследователями. Использование предлагаемого изобретения позволит повысить эффективность .и результативность изыскания препаратов, повышающих защитно-приспособительные возможности организма. Становится возможным массовый отбор химических веществ. Например, для отбора 100 химических веществ на клеточном уровне необходимо затратить всего 25 человеко-дней. Опыт показал, что из 100 веществ для -отбора на организменном уровне остается не более 10. Значит, вместо 5000 белых мышей, необходимых для отбора существующим. образом, будет затрачено 500 животных и соответственно в 10 раз сократятся сроки отбора. Таблица 1

Таблицу 2