Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии, а именно к способу титрования вируснейтрализующих антител против бешенства в сыворотке крови вакцинированных животных, основанному на ингибиции цитопатического действия (ЦПД) вируса бешенства в культуре клеток, и может быть использовано в научно-исследовательских институтах и ветеринарных лабораториях.
Наиболее распространенным тестом определения антирабических вируснейтрализующих антител в крови животных является реакция нейтрализации на мышах, разработанная еще в 1935 г. (Webster L., Dawson J. Diagnosis of rabies by mouse inoculation. Measurement of humoral immunity to rabies by mouse protection test // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. - 1935. - Vol.32. - P.570-573). Однако несмотря на доказанные временем и практикой преимущества данного теста, он имеет некоторые недостатки: проведение исследования в течение 15-21 суток, относительно дорогая стоимость животных и использование живого вируса, что связано с опасностью для исследователя.
В настоящее время для титрования антирабических антител in vitro разработаны и применяются различные методы.
Для мониторинга уровня специфических антител в сыворотке крови привитых животных, в частности, применяется твердофазный иммуноферментный анализ (ТФ ИФА) (Nicholson K.G., Prestage H. Enzyme-linked immunosorbent assay: A rapid reproducible test for the measurement of rabies antibody // J.Med.Virol. - 1982. - Vol.9, №1. - P.43-49; Smith J.S., Karamany R.M., Kazar J., Malik S.A., Badriya M. Rapid quantitative assay of rabies post-vaccination antibody by ELISA //APMIS. - 1988. - Vol.96, №3. - P.40-43.; Ботвинкин А.Д. Обнаружение антител к вирусу бешенства с помощью ИФА в пробах крови собранных на бумажные диски// Лабораторное дело. - 1988. - №3. - С.73-75; Сазанова Э.Я., Кузнецова С.В., Маслов Е.В., Боцко А.А. Иммуноферментный анализ при индикации вируса бешенства и определение уровня антител // Ветеринария. - 1991. - №8. - С.62-64). Данный тест может выполняться в практических условиях, и результаты могут быть получены в течение нескольких часов. Однако, кроме вируснейтрализующих антител, этот метод определяет также различные антитела других типов, при этом отсутствует корреляция результатов с данными реакции нейтрализации на мышах.
Для определения вируснейтрализующих антирабических антител применяется реакция ингибиции фокусов флуоресценции, выполненная на перевиваемых культурах клеток ВНК-21, почки сайги (ПС) с использованием вируса бешенства, штаммы ERA, CVS, Внуково-32/107, ТС-80 (Zaian E. et. al. A microtest for the quantitation of rabies virus neutralising antibodies // J. Biol. Stand. - 1979. - №7. - P.213-220; Lyng J. Potency assay of antibodies agains rabies. A report on a collaborative study// J.Biol. Stand. - 1989. - Vol.17, №3. - P.267-280; Сологуб Т.В. Разработка и совершенствование средств и методов диагностики бешенства// дисс. канд. биол. наук. - Покров, 1993; Zavadova J. et. al. Titration of antibodies by rapid fluorescent focus inhibition test (RFFIT)// Veter. Med. (Praha). - 1996. - Vol. 41, №.7. - P.225-230; Недосеков В.В. с соавт. Титрование антирабических антител с помощью теста ингибиции фокусов флуоресценции //Ветеринария. - 1998. - N. 7. - 28-30 и др.).
Принцип постановки реакции в приведенных источниках практически идентичен и заключается в том, что разведения сывороток смешивают с равным объемом вируса и инкубируют при 37°С в течение 90 минут, после чего реакционную смесь вносят в соответствующую культуру клеток и инкубируют 72 часа при 37°С. Затем культуру клеток фиксируют, обрабатывают антирабическими иммуноглобулинами конъюгированными с флуоресцеинизотиоционатом (ФИТЦ-конъюгат) и посредством люминесцентной микроскопии проводят учет реакции.
Предложенные методы предполагают фиксацию клеток формалином или ацетоном, которые представляют собой токсичные препараты, и использование высокоспецифичных антирабических иммуноглобулинов, конъюгированных с флуоресцеинизотиоционатом, что несколько усложняет технологию тестирования сывороток крови животных и повышает себестоимость анализа.
Прототипом настоящего изобретения является разработанный нами ранее тест ингибиции фокусов флуоресценции, включающий взаимодействие компонентов реакционной смеси (вируса бешенства, штамм ТС-80, со специфической сывороткой) в течение 90 мин, оцениваемое по ингибиции фокусов флуоресценции в культуре клеток ПС (Недосеков В.В. с сотр. Титрование антирабических антител с помощью теста ингибиции фокусов флуоресценции // Ветеринария. - 1998. - №7. - С.28-30. Пат. №2130187 RU).
Целью предлагаемого изобретения является разработка чувствительного, более технологичного и экономически обоснованного способа титрования антирабических вируснейтрализующих антител, имеющего корреляцию с результатами титрования антител в тесте ингибиции фокусов флуоресценции.
Поставленная цель достигается тем, что используется вакцинный штамм 71БелНИИЭВ-ВГНКИ (РБ-71), адаптированный к культуре клеток ПС, в которой проводится инкубирование реакционной смеси вирус-сыворотка в течение 60 мин, с последующим определением, на 5-7 сутки, титра вируснейтрализующих антител по ингибиции цитопатического действия вируса в культуре клеток ПС.
В отечественной литературе материалов и результатов подобных исследований нет.
ПРИМЕРЫ КОНКРЕТНОГО ВЫПОЛНЕНИЯ
ПРИМЕР 1.
Испытуемые сыворотки, полученные от вакцинированных животных, инактивировали при 56°С в течение 30 мин, затем в 96-луночных панелях для микрокультивирования готовили двукратные разведения на среде Игла (MEM) в объеме 50 мкл. Разведенные сыворотки смешивали с равным объемом культурального вируса бешенства, шт. РБ-71, содержащим 50-100 ККИД50 (рабочее разведение). Приготовленные таким образом реакционные смеси инкубировали в течение 60 мин при 37°С, после чего вносили в односуточную интактную культуру клеток ПС, выращенную в 96-луночных панелях, предварительно удалив из лунок культуральную среду.
Панели помещали в СО2-инкубатор (при 37°С с содержанием 5% углекислого газа и 95% влажности). Контролями служили лунки с используемой дозой вируса, смесью вируса с заведомо положительной (специфической) и отрицательной (нормальной) сыворотками, а также интакной культурой клеток.
Начиная с 4 суток культуру клеток в панелях просматривали при помощи инвертированного светового микроскопа Olympus, увеличение х40-80. В лунках с контролем вируса и нормальной сывороткой наблюдалось ярко выраженное ЦПД, которое характеризовалось набуханием пораженных клеток ПС, их округлением с появлением зернистости в цитоплазме, последующим разрушением и отделением от стекла, в то же время в лунках со специфической сывороткой ЦПД не проявлялось (нейтрализация вируса), что указывает на наличие в испытуемых сыворотках антирабических вируснейтрализующих антител.
ПРИМЕР 2.
Подготовку испытуемых сывороток с последующим приготовлением смеси вирус-сыворотка проводили аналогично схеме, описанной в примере 1. По истечении срока инкубирования реакционных смесей (60 мин при 37°С) в каждую лунку панелей вносили 100 мкл суспензии культуры клеток ПС в концентрации 300-500 тыс. клеток/см3, после чего планшеты помещали в СO2-инкубатор (при 37°С с содержанием 5% углекислого газа и 95% влажности). Последующие этапы осуществляли согласно предыдущей методике.
Учет результатов реакции проводили на 5-7 сутки. Титром антирабических антител в испытуемом материале являлось предельное разведение сыворотки, при котором наблюдалось 50%-ное подавление цитопатического действия вируса на культуру клеток, т.е. нейтрализация вируса. При проведении исследований результаты определения антител в обоих примерах были аналогичны.
Результаты исследования сывороток крови тестом ингибиции фокусов флуоресценции и предлагаемой нами реакцией нейтрализации в культуре клеток ПС приведены ниже (табл. 1).
Результаты титрования вируснейтрализующих антител в тесте ингибиции фокусов флуоресценции и реакции нейтрализации в культуре клеток ПС
п\п
фокусов флуоресценции
ПС
Как видно из данных, приведенных в табл. 1, результаты тестирования сывороток двумя методами были идентичны.
С целью сокращения времени и оптимизации условий постановки реакции нами проведены исследования по влиянию времени инкубирования смеси вирус-сыворотка на результаты реакции (табл. 2).
Изучение влияния времени инкубации реакционной смеси на результаты титрования вируснейтрализующих антител
По данным табл. 2 видно, что оптимальным временем инкубирования смеси вирус-сыворотка является 60 мин (в отличие от традиционных 90 мин).
Таким образом, результаты титрования антирабических антител предложенным нами способом соответствуют результатам теста ингибиции фокусов флуоресценции. Предложенный способ титрования антирабических вируснейтрализующих антител прост в исполнении, высокочувствителен и является технологичным и экономически обоснованным, в связи с отсутствием необходимости использования токсичных фиксаторов и ФИТЦ-конъюгата и может быть использован при оценке иммунного статуса у животных, вакцинированных против бешенства.
| название | год | авторы | номер документа |
|---|---|---|---|
| СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АНТИРАБИЧЕСКИХ ВИРУСНЕЙТРАЛИЗУЮЩИХ АНТИТЕЛ | 1997 |
|
RU2130187C1 |
| СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ СПЕЦИФИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТИ АНТИРАБИЧЕСКОГО ИММУНОГЛОБУЛИНА НА КЛЕТОЧНОЙ КУЛЬТУРЕ С ПРИМЕНЕНИЕМ АТОМНО-СИЛОВОЙ МИКРОСКОПИИ | 2018 |
|
RU2688334C1 |
| СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ГИПЕРИММУННОЙ АНТИРАБИЧЕСКОЙ СЫВОРОТКИ | 2001 |
|
RU2196607C2 |
| ДИАГНОСТИКУМ И ТЕСТ-СИСТЕМА ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АКТИВНОСТИ АНТИРАБИЧЕСКИХ СЫВОРОТОК И ПРЕПАРАТА ГЕТЕРОЛОГИЧНОГО АНТИРАБИЧЕСКОГО ИММУНОГЛОБУЛИНА IN VITRO МЕТОДОМ ДОТ-ИММУНОАНАЛИЗА | 2008 |
|
RU2360252C1 |
| ФАРМАЦЕВТИЧЕСКАЯ КОМПОЗИЦИЯ ДЛЯ ПАССИВНОЙ ИММУНИЗАЦИИ ПРОТИВ БЕШЕНСТВА, ФАРМАЦЕВТИЧЕСКИЙ НАБОР, СПОСОБ ПРИМЕНЕНИЯ ФАРМАЦЕВТИЧЕСКОГО НАБОРА | 2016 |
|
RU2661028C2 |
| Генетическая конструкция на основе оптимизированного гена консенсусного гликопротеина вируса бешенства для профилактики бешенства | 2018 |
|
RU2707544C1 |
| Вакцина антирабическая инактивированная эмульсионная культуральная для профилактической иммунизации домашних плотоядных и сельскохозяйственных животных | 2019 |
|
RU2722868C1 |
| Бессывороточная среда "ВНИИЗЖ" для культивирования клеток почки сирийского хомячка ВНК-21 и получения иммуногенных компонентов культуральных вирусов ящура и бешенства для изготовления вакцин | 2021 |
|
RU2770814C1 |
| ПРЕПАРАТ НА ОСНОВЕ НЕЙТРАЛИЗУЮЩИХ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ, СВЯЗЫВАЮЩИХСЯ С ГЛИКОПРОТЕИНОМ ВИРУСА БЕШЕНСТВА | 2018 |
|
RU2711553C1 |
| ТРИМЕРИЗОВАННОЕ ОДНОДОМЕННОЕ АНТИТЕЛО, СПЕЦИФИЧЕСКИ СВЯЗЫВАЮЩЕЕСЯ С ГЛИКОПРОТЕИНОМ G ВИРУСА БЕШЕНСТВА, НЕЙТРАЛИЗУЮЩЕЕ ВИРУС БЕШЕНСТВА | 2013 |
|
RU2533802C1 |
Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии, конкретно к способу титрования вируснейтрализующих антител против бешенства в сыворотке крови вакцинированных животных. Сущность способа состоит в том, что проводят взаимодействие вакцинного вируса бешенства штамма 71 БелНИИЭВ-ВГНКИ с исследуемыми сыворотками, реакционную смесь вирус-сыворотка инкубируют 60 мин при 37°С, вносят суточную интактную культуру клеток почки сайги и помещают в СО2 инкубатор с последующим определением на 5-7 сутки титра вирус-нейтрализующих антител по предельному разведению сыворотки, при котором наблюдалось 50% подавление цитопатического действия вируса на культуру клеток. Техническим результатом является разработка чувствительного, более технологичного и экономически обоснованного способа титрования антирабических вируснейтрализующих антител. 2 табл.
Способ титрования антирабических вируснейтрализующих антител, включающий взаимодействие вакцинного вируса бешенства с исследуемыми сыворотками, отличающийся тем, что используют штамм 71 БелНИИЭВВГНКИ, реакционную смесь вирус - сыворотка инкубируют 60 мин при 37°С, вносят суточную интактную культуру клеток почки сайги и помещают в СО2-инкубатор с последующим определением на 5-7 сутки титра вируснейтрализующих антител по предельному разведению сыворотки, при котором наблюдалось 50%-ное подавление цитопатического действия вируса на культуру клеток.
| СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АНТИРАБИЧЕСКИХ ВИРУСНЕЙТРАЛИЗУЮЩИХ АНТИТЕЛ | 1997 |
|
RU2130187C1 |
| СПОСОБ ИЗГОТОВЛЕНИЯ АНТИРАБИЧЕСКОЙ ВАКЦИНЫ ИНАКТИВИРОВАННОЙ КУЛЬТУРАЛЬНОЙ | 1994 |
|
RU2077338C1 |
| СОЛОГУБ Т.В | |||
| Разработка и совершенствование средств и методов диагностики бешенства, Автореф | |||
| канд | |||
| дисс | |||
| Покров, 1993 | |||
| ZALAN E et al A microtest for quantitation of rabies virus neutralising antibodies, J Biol | |||
| Stand, 1979, №7, p.213-220. | |||
