ШТАММ ГИБРИДНЫХ КУЛЬТИВИРУЕМЫХ КЛЕТОК ЖИВОТНЫХ mus musculus α-ПРОДУЦЕНТ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ, СПЕЦИФИЧНЫХ К ГРАНУЛОЦИТАРНОМУ КОЛОНИЕСТИМУЛИРУЮЩЕМУ ФАКТОРУ (GCSF) ЧЕЛОВЕКА Российский патент 2015 года по МПК C12N5/18 C12N15/02 C12N5/71 

Изобретение относится к области биотехнологии, в частности, к гибридомной технологии, и касается получения штамма гибридных клеток, продуцирующих моноклональные антитела, специфичные к гранулоцитарному колониестимулирующему фактору (GCSF) человека.

Моноклональные антитела (МКА) являются высокоспецифичными антителами, образованными одной гибридной антителообразующей клеткой, иммортализованной путем слияния с миеломной линией, к определенному антигену, которые синтезируются специально создаваемыми линиями клеток-продуцентов [Кеннет Р.Г., Мак-Керн Т.Дж., Бехтол К.Б. Моноклональные антитела: Гибридомы: новый уровень биологического анализа. М.: Медицина, 1983; Ройт А., Бростофф Дж., Мейл Д. Иммунология. М.: Мир, 2000; Köhler G., Milstein С. Continuous cultures of fused cells secreting antibody of predefined specificity. Nature 256, 495-497, 1975]. В онкологии МКА широко применяются для изучения опухолевых антигенов, иммунодиагностики и иммунотерапии опухолей [Барышников А.Ю., Тоневицкий А.Г. Моноклональные антитела в лаборатории и клинике. М.: Медицина, 1997]. Следовательно, получение новых гибридов актуально.

МКА, продуцируемые гибридомами, используются для выявления основных структурно-функциональных свойств белков, в том числе и GCSF человека, который является одним из ключевых цитокинов, применяемых в онкологии [Avalos B.R. Molecular analysis of the granulocyte colony-stimulating factor receptor // Blood, 88(3). - P.761-77, 1996; Xiao BG, Lu CZ, Link H. Cell biology and clinical promise of G-CSF immunomodulation and neuroprotection. J Cell Mol Med.; 11 (6), P.1272-90, 2007]. Мониторинг концентрации GCSF в биологических жидкостях человека позволяет выявить тип иммунного ответа организма на конкретное заболевание - инфекционное, атопическое, аутоиммунное. Одним из важных подходов определения GCSF в биологических жидкостях является использование МКА, продуцируемых гибридомами.

Аналогов заявляемого штамма гибридомы не обнаружено.

Задачей изобретения является расширение арсенала штамма гибридных клеток, продуцирующих МКА, специфичных к GCSF человека.

Поставленная задача решается тем, что предложен новый штамм гибридных культивируемых клеток животных mus musculus α-продуцент моноклональных антител, специфичных к GCSF человека.

Технический результат заявляемого изобретения состоит в расширении арсенала штаммов гибридом, продуцирующих МКА, специфичных к GCSF, используемых для научно-исследовательских и медицинских целей.

Заявляемому штамму гибридных культивируемых клеток животных mus musculus α присвоено название ICO 220. Полученная новая гибридома ICO-220 - продуцент МКА, специфичных к GCSF человека, обладает стабильными культуральными и морфологическими характеристиками, хранится в Специализированной коллекции клеточных культур Института цитологии РАН под номером РККК (П) 662 Д. Полученная гибридома ICO 220 может использоваться при создании диагностических тест-систем с целью мониторинга при проводимой терапии и характеризуется следующими свойствами.

Штамм ICO 220 получали путем слияния клеток мышиной миеломы NS-1 с клетками селезенки мышей линии Balb/C, иммунизированных внутрибрюшинно рекомбинантным аналогом GCSF - препаратом граноцит. Слияние проводили с помощью полиэтиленгликоля ПЭГ-1500. Селекцию гибридных клеток проводили с помощью среды ГАТ (гипоксантин - аминоптерин - тимидин). Штамм прошел 3 клонирования, позитивных клонов не менее 85%. Штамм ICO 220 синтезирует МКА, специфически взаимодействующие в твердофазном иммуноферментном анализе с GCSF человека.

Гибридные клетки штамма ICO 220 росли в виде суспензии in vitro или в виде асцитной опухоли в перитонеальной полости после внутрибрюшинного введения гибридных клеток штамма ICO 220 сингенным мышам Balb/C.

Для культивирования использовали культуральные флаконы (25 и 75 см²), среду RPMI-1640, содержащую 20% эмбриональную телячью сыворотку (ЭТС), 5,96 г/л HEPES, 3 мМ глутамина, 0,11 г/л пирувата натрия, 40 мкг/л гентамицина. Гибридные клетки штамма ICO 220 в количестве 1×10⁶ культивировали при температуре 37°C в атмосфере, содержащей 5% CO₂. Частота пассирования - 2-3 суток. Кратность пересева - 1:2-1:4.

За 14 дней до введения гибридных клеток штамма ICO 220 мышам линии Balb/C предварительно внутрибрюшинно вводили пристан - 2,6,10,14-тетраметилпентадекан в дозе 0,3-0,5 мл, затем гибридные клетки штамма ICO 220 в дозе 5-10×10⁶ клеток на одну мышь. Асцитную жидкость, содержащую МКА-продуценты GCSF, забирали через 9-12 дней после введения.

Секрецию МКА штамма ICO 220 определяли методом иммуноферментного анализа (ИФА). На 7 день культивирования in vitro секреция МКА-продуцентов GCSF составляла 9-5 мкг/мл. При пассировании in vivo секреция МКА в асцитной жидкости составила 5-10 мг/мл.

Получено МКА класса IgG1, легкая цепь - каппа, специфичность - GCSF.

Штамм ICO 220 сохраняли криоконсервацией 24 часа при температуре -70°C, а при длительном хранении гибридные клетки штамма ICO 220 хранили при температуре -196°C.

Для восстановления штамма ICO 220 проводили его быстрое размораживание. Жизнеспособность определяли по дифференциальной окраске гибридных клеток штамма ICO 220 с использованием 0,4% раствора трипанового синего, при pH 7,2-7,3, восстановление гибридных клеток штамма ICO 220 составляло 70-80%.

Стабильность продуцирования антител гибридными клетками штамма ICO 220 сохранялась на протяжении 30 пассажей в культуре клеток и 5 пассажей на мышах линии Balb/C.

При исследовании на контаминацию штамма ICO 220 в культуре штамма бактерий и грибов, а также заражения микоплазмой не обнаружено.

При кариологическом исследовании штамма ICO 220 модальное число хромосом составило 76. Маркерных хромосом не выявлено.

Для оценки сохранения реактивности МКА штамма ICO 220 с GCSF проводили иммуноферментный тест на связывание полученных МКА с GCSF: Стенки лунок полистиролового планшета покрывали граноцитом, вносили МКА штамма ICO 220, затем конъюгат антимышиного иммуноглобулина с пероксидазой хрена и субстрат - перекись водорода с тимедин - 3,3, 5,5 тетраметилбензидином (ТМБ). При положительной реакции появлялось голубое окрашивание.

Изобретение иллюстрируется фиг.1 и 2 и табл.1 и 2.

На фиг.1 представлена микроскопия гибридизации клеток мышиной миеломы NS-1 с клетками селезенки мышей линии Balb/C, иммунизированных внутрибрюшинно препаратом граноцит: А - клетки селезенки (спленоциты), Б - клетки миеломы, В - гибридизация спленоцитов с клетками миеломы.

На фиг.2 показана полученная гибридома ICO 220. Гибридные клетки представляют собой крупные округлые клетки с узким ободком базофильной цитоплазмы, растут в виде конгломератов по типу «гроздьев винограда». Ядра гиперхромные, неправильно-овальной формы, крупные, с грубой структурой ядерного хроматина.

В табл.1 представлены результаты оценки связывания антител гибридомы ICO 220 с антигеном GCSF в культуральной жидкости (супернатант) методом твердофазного ИФА.

В табл.2 представлены результаты оценки связывания антител гибридомы ICO 220 с антигеном GCSF в асцитной жидкости методом твердофазного ИФА, где в качестве отрицательного контроля была использована асцитная жидкость гибридомы, специфичная к раку молочной железы (РМЖ).

Пример 1. Получение штамма гибридомы ICO 220:

Мышей линии Balb/C в возрасте 3-4 месяцев трехкратно иммунизировали препаратом граноцит по схеме: внутрибрюшинно вводили 50 мкг граноцита в полном адъюванте Фрейнда; через 28 суток повторно внутрибрюшинно вводили 40 мкг граноцита в неполном адъюванте Фрейнда; через 28 суток внутривенно вводили 60 мкг граноцита в физиологическом растворе. На третий день после последней инъекции у иммуннизированных мышей исследовали кровь для проверки на специфическую активность. Титры специфических антител в сыворотках крови определяли с помощью непрямого твердофазного ИФА, используя в качестве отрицательного контроля сыворотку крови неиммунизированной мыши в титре 1:1000.

На 4-й день после последней внутривенной инъекции извлекали селезенку мыши и проводили гибридизацию спленоцитов в количестве 10⁷ с клетками миеломной линии в количестве 10⁶ в присутствии 1 мл 50% раствора полиэтиленгликоля в течение 1 минуты. Для слияния использовали перевиваемую клеточную линию мышиной миеломы NS-1, дефектную по гену гипоксантин-гунинфосфорибозилтрансфераза. Миелома NS-1 синтезирует, но не секретирует легких цепей иммуноглобулинов. В результате слияния с родительскими лимфоцитами этот дефект устраняется. Только гибридные клетки способны расти в среде ГАТ. Гибридизацию проводили по методу Kohler G., Milstain С. [Kohler G., Milstain С., 1975]. Миеломные клетки дважды отмывали средой RPMI-1640 и смешивали с клетками селезенки в соотношении 1:10. Полученную смесь клеток отмывали средой RPMI-1640 и помещали в 20 мл среды RPMI-640, центрифугировали при 800 об/мин в течение 3 минут и инкубировали при температуре 37°C в течение 20 мин. Затем среду RPMI-1640 удаляли и к осажденным клеткам добавляли медленно, по каплям, в течение 1 минуты 1 мл 50% полиэтиленгликоля, предварительно прогретого при температуре 37°С и также медленно добавляли 20 мл среды RPMI-1640. Далее клетки два раза отмывали, не встряхивая, при 800 об/мин в течение 3 мин, добавляли среду ГАТ в культуральную среду с 20% ЭТС и оставляли при температуре 37°C в течение 2 часов. После этого клетки ресуспендировали и разливали по 0,2 мл в концентрации 1-1,5×10⁵ клеток в лунки 96-луночного планшета (фиг.1). На 8-й день из среды удаляли ГАТ и далее культивировали в среде с 20% ЭТС, 2 мМ/L-глутамина, 50 мкг/мл гентамицина. Полученные гибридные клетки (гибридомы) инкубировали при температуре 37°C в атмосфере 5% CO₂. Замену среды в лунках с гибридомными клонами штамма ICO 220 проводили каждые 2-3 дня. Видимые колонии появлялись через 10-14 дней.

Для отбора положительных гибридомных клонов, продуцирующих МКА штамма ICO 220, использовали непрямой твердофазный ИФА. В лунки 96-луночного полистиролового планшета вносили по 100 нг граноцита, приготовленного на 0,01 М карбонатном буфере, pH 9,6, в объеме 100 мкл, и затем выдерживали при температуре 4°C в темноте в течение 16-18 ч. Лунки отмывали фосфатно-солевым буферным раствором, содержащим 0,1% Твина-20 (ФСБ-Т) и 3% бычьего сывороточного альбумина (БСА), затем вносили по 100 мкл культуральной жидкости (супернатант) МКА и инкубировали при температуре 37°C в течение 2 часов, отмывали ФСБ-Т, добавляли пероксидазный конъюгат антител к IgG мыши в разведении 1:1000. Инкубировали при температуре 37°C в течение 1 часа. После каждого этапа несвязавшиеся реагенты отмывали ФСБ-Т. В качестве хромогена использовали ТМБ. Интенсивность окраски в лунках определяли после остановки реакции H₂SO₄ на спектрофотометре при длине волны 450 нм (табл.1).

Клонирование гибридом состояло из 2-х этапов: приготовление питательного слоя (фидер) с использованием тимоцитов; клонирование гибридом методом лимитирующих разведений.

Из одной вилочковой железы мыши выделяли около 10⁶ клеток. Вносили по 100 мкл тимоцитов в концентрации 5×10⁴ в лунки 96-луночного планшета, кроме краевых лунок. В краевые лунки вносили по 200 мкл среды RPMI-1640, содержащей антибиотики. Инкубировали клетки с фидером в CO₂-инкубаторе в течение 24 часов. На 2-й день, после исключения контаминации, проводили клонирование гибридных клеток методом лимитирующих разведений. На 10-й, 14-й день проверяли надосадочную жидкость полученных гибридомных клонов на специфическую активность методом ИФА (табл.1). Отбирали колонии, выросшие в лунках, с наименьшим количеством гибридных клеток на лунку (фиг.2). Клонирование проводили дважды для стабилизации полученных гибридомных клонов. Далее гибридные клетки штамма ICO 220 переносили в флаконы (75 см²) с культуральной средой, содержащей 10% ЭТС, и помещали в CO₂-инкубатор для последующего культивирования.

Пример 2. Получение МКА ICO 220

За 1-2 недели до введения гибридных клеток штамма ICO 220, выращенных в культуре, мышам линии Balb/C (возраст 3-4 мес) вводили внутрибрюшинно 0,3-0,5 мл минерального масла (пристана). Концентрация антител в асцитной жидкости составляла 7-10 мг/мл. Через 7-10 дней после введения гибридных клеток штамма ICO 220 у мышей забирали асцитную жидкость и определяли антигенсвязывающую активность полученных МКА штамма ICO 220 методом твердофазного ИФА (табл.2). Часть полученной асцитной жидкости замораживали и хранили при температуре -30°C, а осадок гибридных клеток замораживали или вводили мышам для дальнейшего пассирования и получения антител.

Таблица 1 Исследуемые образцы титр оптическая плотность (450 нм) 1. Отрицательные контроли:     А) лунка, содержащая только буфер - 0,056 Б) лунка, содержащая культуральную среду для гибридом - 0,071 В) лунка, содержащая супернатант иммунных лимфоцитов, не подвергшихся гибридизации - 0,075 2. лунка, содержащая супернатант полученных гибридных клеток ICO 220 - 1,866

Таблица 2 Исследуемые образцы титр оптическая плотность (450 нм) 1. Отрицательные контроли:     А) лунка, содержащая только буфер - 0,060 Б) лунка, содержащая асцитную жидкость гибридомы, специфичную к РМЖ 1:100 тыс. 0,069 2. лунка, содержащая асцитную жидкость полученной гибридомы ICO 220 1:100 тыс 2,791

Изобретение относится к области биотехнологии и медицины. Предложен штамм гибридных культивируемых клеток животных mus musculus α-продуцент моноклональных антител, специфичных к гранулоцитарному колониестимулирующему фактору (GCSF) человека, депонированный в Специализированной коллекции клеточных культур Института цитологии РАН под номером РККК (П) 662 Д. Изобретение позволяет расширить арсенал штаммов, продуцирующих моноклональные антитела, специфичные к GCSF, используемые для научно-исследовательских и медицинских целей. 2 ил., 2 табл., 2 пр.

Штамм гибридных культивируемых клеток животных mus musculus α-продуцент моноклональных антител, специфичных к гранулоцитарному колониестимулирующему фактору (GCSF) человека, депонированный в Специализированной коллекции клеточных культур Института цитологии РАН под номером РККК (П) 662 Д.