СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ТЕСТ-СИСТЕМЫ "ХАНТА-N" ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ СПЕЦИФИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТИ ВАКЦИНЫ ПРОТИВ ГЕМОРРАГИЧЕСКОЙ ЛИХОРАДКИ С ПОЧЕЧНЫМ СИНДРОМОМ Российский патент 2016 года по МПК G01N33/551 

Описание патента на изобретение RU2590606C2

Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом - острое, вирусное заболевание зоонозной природы, характеризующееся системным поражением мелких кровеносных сосудов, геморрагическим диатезом и своеобразным поражением почек, высоким уровнем заболеваемости, тяжелым течением (нередко с летальным исходом) и стойкой потерей трудоспособности. Отсутствие специфических средств лечения и профилактики обусловливают высокую социальную и медицинскую значимость ГЛПС как в России, так и во многих странах мира. Случаи заболевания ГЛПС выявлены в 57 административных регионах Российской Федерации и составляют ежегодно 8-10 тысяч больных, при этом 98% заболеваемости регистрируется в Европейской части России.

Наиболее эффективным методом борьбы с ГЛПС является вакцинопрофилактика, что было продемонстрировано в Китае и Южной Корее. В настоящее время коммерческие вакцины против ГЛПС производятся только в Китае, однако ни одна из этих вакцин не может применяться в европейских регионах России, так как не обеспечивает защиты от вирусов Пуумала и Добрава - возбудителей ГЛПС в этих регионах.

Для изготовления и контроля вакцины против вирусов, возбудителей ГЛПС, необходимо решить проблему разработки эффективных методов контроля содержания специфических антигенов - индукторов иммунного ответа в вакцинных препаратах, в том числе на технологических этапах их производства. Одним из способов иммунохимического определения вирусных белков является метод иммуноферментного анализа. Для повышения специфичности и чувствительности анализа в качестве основы такого метода было решено использовать моноклональные антитела.

Целью предлагаемого изобретения является получение универсальной иммуноферментной тест-системы определения иммуногенных белков хантавирусов - возбудителей ГЛПС.

Процесс конструирования иммуноферментной тест-системы «XAHTA-N» включает:

получение очищенных моноклональных антител к хантавирусам Пуумала и Добрава, отбор антител, перекрестно-реагирующих с вирусами Пуумала, Добрава, Хантаан, Сеул, и приготовление конъюгата моноклональных антител с пероксидазой хрена (далее пероксидазный конъюгат), комплектация набора тест-системы.

Более подробно получение тест-системы осуществляют следующим образом.

I. Получение моноклональных антител. Мышей линии BALB/c иммунизируют очищенными препаратами инактивированных вирусов (Пуумала, штамм К-27/Уфа-85 и Добрава, штамм Аа 1854/Липецк-06) в дозе 100мкг/мышь. Иммунизацию проводят в подушечки задних лап дважды с двухнедельным интервалом. Клетки подколенных лимфоузлов иммунных мышей гибридизуют с клетками мышиной миеломы линии SP2/0 по стандартной методике, используя полиэтиленгликоль 4000. Гибридомные клетки, продуцирующие специфические антитела, подвергают 2-4-кратному клонированию методом предельных разведений. Клоны гибридомы с устойчивой продукцией антител нарабатывают в культуре в среде DMEM (HyClone) с добавлением 5% фетальной телячьей сыворотки. Для наработки антител гибридомные клетки вводят в перитонеальную полость мышей, через 7-14 дней регистрируют развитие асцитных опухолей.

Асцитные жидкости проверяют на содержание специфических антител методом иммуноферментного анализа. Для этого образцы, содержащие очищенные антигены хантавирусов в концентрации 100 нг/мл в фосфатносолевом буфере (ФСБ), вносят в лунки иммунопанели (Costar, 3018), с последующей инкубацией при 6±2°С - 18 часов. Далее в лунки вносят 3% бычий сывороточный альбумин (БСА) (Sigma, 8159) и панели оставляют в течение 1 ч при комнатной температуре (22±3°С). После отмывания панели (здесь и далее: 5 раз по 5 мин раствором 0,01 М ФСБ+0,05% Tween-20) в лунки вносят культуральную жидкость гибридомы. После 1 ч контакта при 37°С лунки отмывают и вносят меченные пероксидазой хрена IgG против иммуноглобулинов мыши (Sigma, A 4416). В качестве индикатора используют тетраметиленбензидин (ТМБ, Sigma, T8665). Антитела (IgG) выделяют из асцитных жидкостей аффинной хроматографией на колонке с HiTeap ProteinG (GE Healthcare, 17-0405-03). Очищенные моноклональные антитела стандартизуют по белку (до 1 мг/мл) и далее определяют их специфическую активность методом иммунофлюоресценции.

II. Отбор перекрестно-реагирующих антител проводят методом непрямой иммунофлюоресценции с использованием моновалентных культуральных антигенов хантавирусов Пуумала, Добрава, Хантаан и Сеул. Антигены хантавирусов Пуумала, Добрава, Хантаан и Сеул для метода иммунофлюоресценции получают путем заражения культуры клеток VеrоЕ6 с множественностью 0,1-0,5 ФОЕ/кл при объеме инокулята 15 мл на 1-литровую роллерную бутыль. Сбор клеток, содержащих вирусные антигены, проводят на 10-11 сутки инкубации зараженных клеток при 37±1°С. Клетки снимают со стекла смесью 0,02% версена и 0,5% трипсина, 5-кратно отмывают 0,85% раствором NaCl, готовят суспензию инфицированных клеток (450-550 тыс.кл/мл) и наносят ее по 0,005 мл на предметные стекла для иммунофлюоресценции. После высушивания стекла помещают на 30 минут в охлажденный ацетон для фиксации клеток и инактивации вируса и затем высушивают при комнатной температуре. Аналогично готовят контрольные антигены из незараженных клеток VеrоЕ6. Образцы мАТ титруют на 0,85% растворе NaCl и наносят на антигенные препараты. Для индикации мАТ, связавшихся с антигеном, используют антитела к иммуноглобулинам мыши, конъюгированные с флюоресцеинизотиоционатом. Опыт учитывают с помощью люминесцентного микроскопа под водно-иммерсионным объективом (×60 или ×65).

Отбирают клоны антител Пуумала и Добрава, в равной степени перекрестно реагирующие с антигенами вирусов Пуумала, Добрава, Хантаан и Сеул. Нами использованы 2 клона антител, соответствующие этим характеристикам: моноклональные антитела к вирусу Пуумала - ПУУ/Н6 и к вирусу Добрава - ДОБ/А4.

Таблица 1 Характеристики моноклональных антител мАТ Субизотип АНТИГЕНЫ ПУУ ХАН СЕУЛ ДОБ Vero-Е6 ПУУ/Н6 IgG1 4096 4096 4096 4096 <32 ДОБ/А4 IgG2a 1024 512 512 4096 <32

III. Конъюгация моноклональных антител ДОБ/А4 с пероксидазой хрена. Растворяют 5 мг пероксидазы хрена с RZ 3,0 в 1 мл 0,3 М бикарбонатного раствора и после полного растворения пероксидазы добавляют 0,025 мл 0,32% раствора формальдегида (1:100). Осторожно перемешивают на магнитной мешалке в течение 30 минут при температуре от 15 до 25°С, затем к смеси добавляют 1 мл 0,04 М раствора периодата натрия. По истечении 30 минут перемешивания цвет смеси (коричневый) приобретает зеленоватый оттенок. Добавляют 1 мл 0,16 М раствора этиленгликоля, перемешивают в течение 1 часа. Смесь диализуют против 1 л 0,01 М карбонатно-бикарбонатного буферного раствора (КББ) в течение 16-20 час при температуре (6±2)°С. Параллельно диализуют против 1 л КББ мАТ ДОБ/А4 (1,5 мл) в концентрации 10 мг/мл в тех же условиях. После диализа активированную пероксидазу переносят в тот же флакон, добавляют 1 мл мАТ ДОБ/А4, диализованных против КББ, смесь осторожно перемешивают при температуре 18-25°С в течение 2 часов. Добавляют 5 мг NaBH4 и оставляют на 2 часа при температуре (6±2)°С. Смесь диализуют против 1 л 0,01М ФСБ в течение 16-20 час при температуре 18-25°С. После диализа коньюгат извлекают из мешка и наносят на колонку (1,6×90 см) с сефадексом G-100, уравновешенную 1М ФСБ. Элюируют тем же буфером (скорость элюции свободная) при температуре (6±2)°С, собирая фракции по 3 мл. Окрашенные фракции фотометрируют при 280 нм и 403 нм. Определяют отношение оптической плотности (ОП) каждой фракции при 403 нм к 280 нм (показатель RZ - ОП 403/ОП 280) и отбирают 1-2 пиковые фракции с RZ 0,45-0,6 (оптимум - 0,5). Коньюгат разводят 1:10 в 1%-ном растворе бычьего сывороточного альбумина на 0,1 М ФСБ, для хранения в жидком виде разводят 1:2 в глицерине и разливают в зависимости от величины рабочего разведения в инсулиновые флаконы.

Определение специфических вирусных белков вирусов Пуумала, Добрава, Хантаан и Сеул с помощью иммуноферментной системы «XAHTA-N». В лунки иммунопанели вносят мАТ ПУУ/Н6 в концентрации 1 мкг/мл в КББ. После контакта в течение 12-18 часов при температуре (6±2)°С или 3-х часов при 37°С в лунки вносят 3% БСА и панели оставляют в течение 1 ч при комнатной температуре. После отмывания панели (здесь и далее 5 раз по 5 мин раствором 0,01 М ФСБ+0,05% Tween-20) в лунки вносят исследуемые образцы. После 2-часового контакта при 37°С лунки отмывают и вносят пероксидазный конъюгат мАТ ДОБ/А4 и инкубируют панели 1 ч при 37°С. В качестве индикаторной системы используют тетраметиленбензидин (ТМБ) по инструкции производителя (Sigma, T8665). Положительной считают пробу, для которой отношение оптической плотности в лунке со специфическим иммуноглобулином превышает показатель оптической плотности с нормальным иммуноглобулином в 2,1 раза (индекс P/N).

Предлагаемый способ позволяет получить иммуноферментную тест-систему, обладающую следующими достоинствами:

1) универсальностью, проявляющейся в том, что ИФ тест-система «XAHTA-N» выявляет антигены всех 4-х хантавирусов - возбудителей ГЛПС, что позволяет унифицировать методы контроля специфической активности поливалентных вакцинных препаратов против ГЛПС;

2) с одинаковой чувствительностью (в соответствии с титром вируса) определяются антигены каждого из 4-х хантавирусов - возбудителей ГЛПС, что обеспечивается использованием моноклональных антител, полученных к 2-м филогенетически различным хантавирусам Пуумала и Добрава (для сенсибилизации панели и приготовления конъюгата) и отобранных по принципу перекрестного реагирования с вирусами Пуумала, Добрава, Хантаан, Сеул.

3) с одинаковой чувствительностью выявляются антигены как живого, так и инактивированного формалином вируса, что важно с точки зрения их применения для оценки специфической и протективной активности инактивированных вакцинных

препаратов на технологических этапах их производства.

Пример 1.

Для определения хантавирусных антигенов в образцах культуральной жидкости после

заражения вирусами Пуумала, Добрава, Хантаан и Сеул применяют тест-систему «XAHTA-N». В лунки иммунопанели вносят мАТ ПУУ/Н6 в концентрации 1 мкг/мл в КББ. После контакта в течение 12-18 часов при температуре (6±2)°С в лунки вносят 3% БСА и панели оставляют в течение 1 ч при комнатной температуре. Во вспомогательной панели готовят двукратные разведения исследуемых образцов на ФСБ. После отмывания панели (как описано выше) в лунки вносят исследуемые образцы. После 2-часового контакта при 37°С лунки отмывают, вносят пероксидазный конъюгат мАТ ДОБ/А4 и инкубируют панели 1 ч при 37°С. После отмывки в лунки панели вносится ТМБ и через 20 мин проводят учет опыта, определяя оптическую плотность в лунках панели с помощью спектрофотометра (при длине волны 450). За титр антигена принимают конечное разведение образца, для которого отношение оптической плотности в лунке со специфическим иммуноглобулином превышает показатель оптической плотности с нормальным иммуноглобулином в 2,1. С целью определения чувствительности метода приводятся данные по содержанию живого вируса в образцах. Для контроля специфичности тест-системы использована культуральная жидкость клеток VеrоЕ6, являющихся субстратом для размножения вируса. Результаты, приведенные в таблице 1, свидетельствуют о том, что антигены каждого из 4-х хантавирусов - возбудителей ГЛПС определяются с одинаковой чувствительностью, в соответствии с титром вируса.

Таблица 2. Определение хантавирусных антигенов в первичных и очищенных концентратах культуральной жидкости. материал общий белок по Лоури в мкг/мл титр вируса в lg ФОЕ/мл титр антигена ПУУ-I* 6800 6,6 8192 ПУУ-II** 0,086 6,4 4096 ДОБ-I 9400 7,2 8192 ДОБ-II 0,056 6,8 4096 XTH-I 10120 7,1 4096 ХТН-II 0,072 6,6 2048 СЕУЛ-I 9800 6,2 2048

СЕУЛ -II 0,048 5,8 512 VeroE6-I 12800 0,0 <64 VeroE6-II 0,101 0,0 <8

Примечание. * - неочищенный концентрат культуральной жидкости; ** - очищенный гельфильтрацией концентрат культуральной жидкости.

Пример 2.

Проводят определение хантавирусных антигенов во фракциях культуральной жидкости после заражения вирусами Пуумала, Добрава, Хантаан и Сеул, очищенных в результате гельфильтрации, и в этих же образцах после инактивирования в них вируса 0,25% формалином при температуре 8±2°С в течение 20 суток. Тест-систему «XAHTA-N» используют, как описано в примере №1. Результаты этого опыта, представленные в таблице 2, показывают, что инактивирование вируса формалином (0,25%) не влияет на чувствительность и специфичность определения хантавирусных антигенов.

Похожие патенты RU2590606C2

название год авторы номер документа
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ИММУНОФЕРМЕНТНОЙ ТЕСТ-СИСТЕМЫ ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ЭПИТОПОВ ОБОЛОЧЕЧНОГО БЕЛКА ВИРУСА ПУУМАЛА ПРОТЕКТИВНОЙ НАПРАВЛЕННОСТИ В ВАКЦИННЫХ ПРЕПАРАТАХ ПРОТИВ ГЕМОРРАГИЧЕСКОЙ ЛИХОРАДКИ С ПОЧЕЧНЫМ СИНДРОМОМ 2013
  • Дзагурова Тамара Казбековна
  • Ткаченко Евгений Александрович
  • Коротина Наталья Александровна
  • Свешников Петр Георгиевич
  • Солопова Ольга Николаевна
  • Варламов Николай Евгеньевич
  • Малкин Геннадий Андреевич
  • Баловнева Мария Владимировна
  • Соцкова Светлана Евгеньевна
  • Михайлов Михаил Иванович
RU2565543C2
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ "ДИАГНОСТИКУМА ГЕМОРРАГИЧЕСКОЙ ЛИХОРАДКИ С ПОЧЕЧНЫМ СИНДРОМОМ КУЛЬТУРАЛЬНОГО, ПОЛИВАЛЕНТНОГО ДЛЯ НЕПРЯМОГО МЕТОДА ИММУНОФЛЮОРЕСЦЕНЦИИ" 2010
  • Ткаченко Евгений Александрович
  • Дзагурова Тамара Казбековна
  • Михайлов Михаил Иванович
RU2431148C1
ШТАММ ВИРУСА - ВОЗБУДИТЕЛЯ ГЕМОРРАГИЧЕСКОЙ ЛИХОРАДКИ С ПОЧЕЧНЫМ СИНДРОМОМ ДЛЯ ИЗГОТОВЛЕНИЯ ВАКЦИННЫХ ПРЕПАРАТОВ (ВАРИАНТЫ) 2009
  • Ткаченко Евгений Александрович
  • Дзагурова Тамара Казбековна
  • Михайлов Михаил Иванович
RU2423520C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ РЕКОМБИНАНТНОГО АНТИГЕНА G2 ХАНТАВИРУСА ДОБРАВА В КЛЕТКАХ E. coli 2011
  • Смирнова Мария Сергеевна
  • Леонович Оксана Александровна
  • Баловнева Мария Владимировна
  • Казеева Тамара Николаевна
  • Белякова Алла Владимировна
  • Дзагурова Тамара Казбековна
  • Филимонова Нина Александровна
  • Ткаченко Евгений Александрович
  • Шевелев Алексей Борисович
RU2495938C2
ШТАММ ВИРУСА ДЛЯ ИЗГОТОВЛЕНИЯ ВАКЦИННЫХ ПРЕПАРАТОВ ПРОТИВ ГЕМОРРАГИЧЕСКОЙ ЛИХОРАДКИ С ПОЧЕЧНЫМ СИНДРОМОМ (ВАРИАНТЫ) 2018
  • Дзагурова Тамара Казбековна
  • Ткаченко Евгений Александрович
  • Ишмухаметов Айдар Айратович
  • Соцкова Светлана Евгеньевна
RU2683508C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ КОМБИНИРОВАННОЙ БИВАЛЕНТНОЙ, КУЛЬТУРАЛЬНОЙ, ИНАКТИВИРОВАННОЙ, КОНЦЕНТРИРОВАННОЙ, ОЧИЩЕННОЙ ВАКЦИНЫ ДЛЯ ПРОФИЛАКТИКИ ГЕМОРРАГИЧЕСКОЙ ЛИХОРАДКИ С ПОЧЕЧНЫМ СИНДРОМОМ 2009
  • Ткаченко Евгений Александрович
  • Дзагурова Тамара Казбековна
  • Набатников Павел Алексеевич
  • Малкин Андрей Евгеньевич
  • Шевелёв Алексей Борисович
  • Воробьёва Мая Сергеевна
  • Белова Галина Андреевна
  • Киктенко Александр Васильевич
  • Михайлов Михаил Иванович
  • Коротина Наталья Александровна
  • Хапчаев Юсуф Хаджи-Бекович
RU2445117C2
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ РЕКОМБИНАНТНОГО АНТИГЕНА G2 ХАНТАВИРУСА ДОБРАВА В КЛЕТКАХ E.coli 2012
  • Смирнова Мария Сергеевна
  • Леонович Оксана Александровна
  • Казеева Тамара Николаевна
  • Мутных Елена Сергеевна
  • Папуниди Константин Христофорович
  • Маракасова Екатерина Семеновна
  • Филимонова Нина Александровна
  • Осипенкова Ольга Валерьевна
  • Белякова Алла Владимировна
  • Зылькова Марина Валерьевна
  • Шевелев Алексей Борисович
RU2509805C2
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ДИАГНОСТИКУМА ХАНТАВИРУСОВ 2000
  • Кушнарева Т.В.
  • Слонова Р.А.
  • Компанец Г.Г.
RU2180754C2
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ РЕКОМБИНАНТНОГО ФЕРМЕНТАТИВНО-МЕЧЕННОГО АНТИГЕНА G2 ХАНТАВИРУСА В КЛЕТКАХ E.coli С ЦЕЛЬЮ ЕГО ПРИМЕНЕНИЯ В ИММУНОФЕРМЕНТНОМ АНАЛИЗЕ ПРИ ДИАГНОСТИКЕ ГЛПС 2012
  • Смирнова Мария Сергеевна
  • Леонович Оксана Александровна
  • Казеева Тамара Николаевна
  • Кузьмин Владимир Александрович
  • Дурандин Никита Александровна
  • Шибаева Анна Валерьевна
  • Гра Ольга Алексеевна
  • Елагина Елена Михайловна
  • Маракасова Екатерина Семеновна
  • Белякова Алла Владимировна
  • Зылькова Марина Валерьевна
  • Шевелев Алексей Борисович
RU2539836C2
Рекомбинантная плазмида pET21-GST-ND, обеспечивающая синтез и секрецию эктодомена Gn гликопротеина вируса Хантаан, и рекомбинантный штамм Escherichia coli BL21(DE3)pLysE pET21-GST-ND - продуцент белка Gn - эктодомена гликопротеина вируса Хантаан 2023
  • Исаева Анастасия Александровна
  • Щербаков Дмитрий Николаевич
  • Яшина Людмила Николаевна
RU2809199C1

Реферат патента 2016 года СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ТЕСТ-СИСТЕМЫ "ХАНТА-N" ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ СПЕЦИФИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТИ ВАКЦИНЫ ПРОТИВ ГЕМОРРАГИЧЕСКОЙ ЛИХОРАДКИ С ПОЧЕЧНЫМ СИНДРОМОМ

Изобретение относится к области биотехнологии. Описан способ получения иммуноферментной тест-системы для оценки содержания иммуноспецифических белков хантавирусов Пуумала, Добрава, Хантаан и Сеул в вакцинных препаратах против геморрагической лихорадки с почечным синдромом (ГЛПС). Способ предусматривает получение моноклональных антител к вирусам Пуумала и Добрава с одинаковой чувствительностью, в соответствии с титром вируса, выявляющих антигены каждого из 4-х хантавирусов - возбудителей ГЛПС, и их последующую сорбцию на поверхность полистироловой панели. 3 табл., 2 пр.

Формула изобретения RU 2 590 606 C2

Способ получения иммуноферментной тест-системы «ХАНТА-N» для оценки содержания иммуноспецифических белков хантавирусов Пуумала, Добрава, Хантаан и Сеул в вакцинных препаратах против геморрагической лихорадки с почечным синдромом (ГЛПС), отличающийся тем, что получают моноклональные антитела к вирусам Пуумала и Добрава с одинаковой чувствительностью, в соответствии с титром вируса, выявляющие антигены каждого из 4-х хантавирусов - возбудителей ГЛПС (Пуумала, Добрава, Хантаан, Сеул), сорбируют их на поверхность полистироловой панели, а также используют для приготовления конъюгата с пероксидазой хрена.

RU 2 590 606 C2

Авторы

Дзагурова Тамара Казбековна

Ткаченко Евгений Александрович

Коротина Наталья Александровна

Свешников Петр Георгиевич

Солопова Ольга Николаевна

Варламов Николай Евгеньевич

Малкин Геннадий Андреевич

Баловнева Мария Владимировна

Соцкова Светлана Евгеньевна

Шевелев Алексей Борисович

Михайлов Михаил Иванович

Даты

2016-07-10Публикация

2012-04-12Подача