Применение средства для индукции специфического иммунитета против вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 у детей Российский патент 2021 года по МПК C12N15/86 A61K39/215 A61P31/14 C12N7/00 

Область техники

Изобретение относится к биотехнологии, иммунологии и вирусологии. Предложенное средство может применяться для профилактики заболеваний, вызванных вирусом тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2.

Уровень техники

В декабре 2019 года в провинции Хубэй Китайской Народной Республики распространился новый коронавирус зоонозного происхождения, который получил название SARS-CoV-2. Эпидемическое заболевание, вызванное SARS-CoV-2, называется коронавирусная болезнь-19 (coronavirus disease-19), сокращенно COVID-19. Данное заболевание может протекать как в бессимптомной или легкой форме, так и в тяжелой форме, которая может сопровождаться сепсисом и полиорганной недостаточностью. В течение нескольких месяцев заболевание распространилось по всему миру, затронув более 200 стран. В январе 2020 года Всемирная организация здравоохранения объявила эпидемию, связанную с SARS-CoV-2, чрезвычайной ситуацией в области здравоохранения международного значения, а в марте 2020 года охарактеризовала распространение болезни как пандемию. К 28 июля 2021 года количество заболевших превысило 195 млн человек, а количество погибших - 4 млн человек.

Продолжающаяся вспышка COVID-19 представляет исключительную угрозу для общественного здравоохранения. Разработка безопасной и эффективной вакцины против SARS-CoV-2 в настоящее время является важнейшим глобальным приоритетом.

В течение года после начала пандемии различные фармацевтические компании предложили свои варианты кандидатной вакцины против COVID-19.

Фармацевтическая компания Pfizer при сотрудничестве с биотехнологической компанией BioNTech разработала вакцину BNT162b2 (tozinameran). Данная вакцина представляет собой липидные наночастицы, внутрь которых инкапсулирована модифицированная мРНК, кодирующая мутантную форму S белка SARS-CoV-2. В данный момент разрешено использование данной вакцины у взрослых и детей с 12 лет (F.P. Polacketal. Safety and Efficacy of the BNT162b2 mRNA Covid-19 Vaccine. N Engl J Med 2020; 383: 2603-2615; www.cdc.gov/coronavirus/2019-ncov/vaccines/recommendations/adolescents.html).

Фармацевтическая компания Moderna в сотрудничестве с Национальным Институтом здоровья (США) разработала вакцину mRNA-1273. Активным компонентом данной вакцины является мРНК, кодирующая S белок SARS-CoV-2, которая окружена липидной оболочкой. Сейчас вакцина разрешена для экстренного применения у взрослых от 18 лет. Также Moderna провела исследование для детей от 12 до 17 лет, которое сейчас находится на рассмотрении. В настоящий момент проходит клиническое исследование KidCOVE, в ходе которого проводится иммунизация детей от 6 месяцев до 12 лет (L. A. Jackson etal. An mRNA Vaccine against SARS-CoV-2 - Preliminary Report. N Engl J Med 2020; 383:1920-1931;https://penntoday.upenn.edu/news/covid-vaccine-kids; https://clinicaltrials.gov/ct2/show/NCT04796896).

Оксфордский университет в сотрудничестве с фармацевтической компанией AstraZeneca разработал векторную вакцину ChAdOx1 nCoV-19 (AZD1222). Активным компонентном данной вакцины является аденовирус шимпанзе ChAdOx1, содержащий кодон-оптимизированную кодирующую последовательность полноразмерного S белка вируса SARS-CoV-2 (GenBank MN908947) с лидерной последовательностью тканевого активатора плазминогена. Схема вакцинации предполагает двукратную иммунизацию с интервалом в 28 дней (M. Voysey et al. Safety and efficacy of the ChAdOx1 nCoV-19 vaccine (AZD1222) against SARS-CoV-2: an interim analysis of four randomised controlled trials in Brazil, South Africa, and the UK. TheLancet. Vol. 397, Issue 10269, P99-111, 2021).

Компания CanSino разработала векторную вакцину против COVID-19, в основе которой репликативно-дефектный аденовирус человека 5 серотипа (Ad5), экспрессирующий полноразмерный S гликопротеин SARS-CoV-2. В настоящее время вакцина разрешена для экстренного использования у взрослых людей старше 18 лет. (GenBankYP_009724390) (Feng-Cai Zhu et al. Immunogenicity and safety of a recombinant adenovirus type-5-vectored COVID-19 vaccine in healthy adults aged 18 years or older: a randomised, double-blind, placebo-controlled, phase 2 trial. The Lancet. Vol. 369, Issue 10249, P479-488, 2020).

Исследовательские группы JohnsonandJohnson и JanssenPharmaceutical в сотрудничестве с Медицинским центром BethIsraelDeaconess, с помощью технологии JanssenAdVac® создали несколько кандидатных вакцин. После проведенных исследований безопасности и эффективности была выбрана кандидатная вакцина Ad26.COV2.S (Ad26COVS1). Активным компонентном данной вакцины является рекомбинантный аденовирусный вектор 26 серотипа с делецией Е1 и Е3 области, содержащий ген S белка SARS-CoV-2, с мутацией сайта расщепления фурина и с двумя пролин-стабилизирующими мутациями. Вакцина разрешена для экстренного применения у взрослых старше 18 лет. В настоящий момент проводятся исследования для использования вакцины у подростков и детей с рождения. (J. Sadoff et al. Interim Results of a Phase 1-2a Trial of Ad26.COV2.S Covid-19 Vaccine. N Engl J Med, 2021 Jan 13.DOI: 10.1056/ NEJMoa2034201; https://www.janssenmd.com/janssen-covid19-vaccine/special-populations/pediatrics/use-of-janssen-covid19-vaccine-in-pediatric-participants).

В Beijing Institute of Biological Products Co. была разработана инактивированная вакцина против COVID-19. Вакцина одобрена для экстренного применения у взрослых с 18 лет. Также опубликована информация о клиническом исследовании данной вакцины на детях в возрастных группах 3-6 лет, 7-12 лет, 13-17 лет. В настоящий момент исследование продолжается (https://www.who.int/news/item/07-05-2021-who-lists-additional-covid-19-vaccine-for-emergency-use-and-issues-interim-policy-recommendations; https://clinicaltrials.gov /ct2/show/NCT04917523?cond=covid-19+vaccine&age_v=5&draw=2&rank=10).

Таким образом, в настоящее время, для применения у детей одобрена всего одна вакцина против COVID-19 на базе мРНК (Pfizer). Между тем, наблюдения врачей показывают, что количество молодых пациентов, госпитализированных в стационары с диагнозом COVID-19, возрастает. Также увеличивается смертность среди молодого населения (https://www.paho.org/en/news/5-5-2021-hospitalizations-and-deaths-younger-people-soar-due-covid-19-paho-director-reports), а вместе с этим увеличивается потребность в вакцинах для профилактики COVID-19 у детей.

Защитный иммунитет против коронавируса SARS-CoV-2 задействует несколько звеньев иммунной системы. Эффективная вакцина против COVID-19, по-видимому, должна индуцировать как гуморальный, так и клеточный иммунный ответ. Кроме того, важным элементом защитного иммунитета может служить активация мукозального иммунитета (например, реализуемого через экспрессию IgA антител) в носоглотке, которая является воротами проникновения вируса.

Таким образом, в уровне техники существует потребность в разработке новых средств, которые способны индуцировать у детей иммунный ответ против SARS-CoV-2, в том числе на слизистых оболочках дыхательных путей, которые являются основными воротами инфекции.

Осуществление изобретения

Технической задачей заявленной группы изобретений является создание средств, обеспечивающих эффективную индукцию иммунного ответа (в том числе мукозального иммунного ответа) против вируса SARS-CoV-2 у детей старше 1 месяца.

Технический результат заключается в создании безопасного и эффективного средства, которое обеспечивает развитие реакций гуморального и клеточного иммунного ответа против вируса SARS-CoV-2 у детей старше 1 месяца.

Ребенок рождается с незрелой врожденной и адаптивной иммунной системой, которая развивается и приобретает память по мере его роста. От рождения до периода полового созревания человека, его иммунная система проходит в своем развитии ряд этапов.

Иммунная система новорожденного находится в супрессии. Система фагоцитоза не развита. Неонатальные Т-клетки значительно отличаются от взрослых клеток, что является следствием внутриутробной жизни плода, где воздействие чужеродных антигенов в значительной степени ограничивается материнскими аллоантигенами. Поэтому очень ранний адаптивный Т-клеточный иммунитет характеризуется толерогенной реактивностью, сниженным распознаванием аллоантигена и слабыми ответами на чужеродные антигены. В-клетки новорожденных также сильно отличаются от В-клеток взрослого человека. Известно, что неонатальные В-клетки имеют пониженную экспрессию TACI, BCMA и BAFF-R, а также сниженную продукцию IgG и IgA вответна CD40L и IL-10 (Kaur K, Chowdhury S, Greenspan NS, Schreiber JR. Decreased expression of tumor necrosis factor family receptors involved in humoral immune responses in preterm neonates. Blood. 2007 Oct 15; 110(8):2948-54. doi: 10.1182/blood-2007-01-069245. Epub 2007 Jul 18. PMID: 17634409). Вместе эти особенности способствуют притуплению гуморальных иммунных ответов с неполным переключением класса иммуноглобулинов. В-клетки новорожденных и младенцев в возрасте до 2 месяцев демонстрируют снижение соматической гипермутации по сравнению со взрослыми, что ограничивает созревание аффинности антител. Также, стромальные клетки костного мозга на ранних этапах жизни неспособны поддерживать долгосрочную выживаемость плазмобластов и дифференцировку в плазматические клетки, так что любые антитела IgG, вырабатываемые после иммунизации, быстро снижаются, в отличие от детей старшего возраста и взрослых (Pihlgren M, Friedli M, Tougne C, Rochat AF, Lambert PH, Siegrist CA. Reduced ability of neonatal and early-life bone marrow stromal cells to support plasmablast survival. J Immunol. 2006 Jan 1; 176(1):165-72. doi: 10.4049/jimmunol.176.1.165. PMID: 16365407). Следовательно, эффективность адаптивной иммунной системы по раннему ответу на Т-клеточно-зависимые антигены заметно снижена у новорожденных по сравнению с детьми старшего возраста и взрослыми (A.K. Simon, G.A. Hollander, A. McMichael. Evolution of the immune system in humans from infancy to old age. Proc Biol Sci. 2015 Dec 22; 282(1821): 20143085. doi: 10.1098/rspb.2014.3085, PMCID: PMC4707740, PMID: 26702035).

В младенчестве иммунная система постепенно созревает. Критически важная ранняя защита от многих инфекционных заболеваний, ранее перенесенных матерью, обеспечивается пассивными антителами IgG, передаваемыми от матери трансплацентарно и с молоком.

Следующий этап развития обусловлен разрушением материнских антител. Первичный иммунный ответ на проникновение инфекции развивается за счет синтеза иммуноглобулинов класса М и не оставляет иммунологической памяти. Такой тип иммунного ответа наступает также при вакцинации против инфекционных заболеваний, и только ревакцинация формирует вторичный иммунный ответ с продукцией антител класса IgG.

С ростом ребенка расширяются его контакты с внешним миром. Постепенно начинается переключение иммунных реакций на образование антител класса IgG. Однако на многие антигены сохраняется первичный иммунный ответ (синтез IgM). Система местного иммунитета все еще остается незрелой. Постепенно средняя концентрация IgG и IgM в крови увеличивается и достигает уровня, соответствующего взрослым, однако уровень IgA в крови еще не достигает окончательных значений.

Последний этап развития иммунной системы наступает в период полового созревания. На фоне повышения секреции половых стероидов уменьшается объем лимфоидных органов. Секреция половых гормонов ведет к подавлению клеточного звена иммунитета (Щеплягина Л.А., Круглова И.В. Возрастные особенности иммунитета у детей, Русский медицинский журнал №23 от 11.11.2009 стр. 1564).

Таким образом, разработка средства для применения у детей, обеспечивающего эффективную индукцию иммунного ответа против вируса SARS-CoV-2, включающую развитие реакций гуморального и клеточного иммунного ответа против вируса SARS-CoV-2, является сложной научной задачей.

Когда ребенок сталкивается с SARS-CoV-2, вирус в первую очередь поражает слизистые оболочки дыхательных путей. Это означает, что взаимодействия вируса с иммунной системой сначала происходят преимущественно на слизистых оболочках дыхательных путей и полости рта. Поэтому индукция мукозального иммунитета является важным фактором, влияющим на протективные свойства фармацевтического средства.

Исходя из уровня техники можно предположить, что введение детям вакцины, которая используется у взрослых, приведет к уменьшению ее эффективности вследствие незрелости детской иммунной системы. Однако проведенные исследования показали, что введение детям 1/10 взрослой дозы разработанного средства индуцирует гуморальный иммунный ответ сравнимый с иммунным ответом взрослого человека. В данном случае это является неожиданным результатом.

Также, на молодых животных было показано, что введение разработанного средства индуцирует повышение уровня IgG антител на слизистой оболочке респираторного тракта. При этом, если в схему иммунизации включается интраназальный способ введения средства, это приводит к секреции на слизистой оболочке IgA антител. Таким образом, в результате проведенной работы были разработаны схемы введения средства, обеспечивающие усиленный мукозальный ответ в респираторном тракте.

Указанный технический результат достигается тем, что предложено:

Применение средства, содержащего компонент в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus 26-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области, а область ORF6-Ad26 заменена на ORF6-Ad5 со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3 для индукции специфического иммунитета против вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 у детей старше 1 месяца.

Применение средства, содержащего компонент в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus 5-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3 для индукции специфического иммунитета против вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 у детей старше 1 месяца.

Применение средства, содержащего комбинацию, представляющую собой компонент 1 в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus 26-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области, а область ORF6-Ad26 заменена на ORF6-Ad5 со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3, и компонент 2 в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus 5-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3 для индукции специфического иммунитета против вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 у детей старше 1 месяца.

Применение средства, содержащего компонент в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма simian adenovirus 25-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 4, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3 для индукции специфического иммунитета против вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 у детей старше 1 месяца.

Применение средства, содержащего комбинацию, представляющую собой компонент 1 в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus 26-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области, а область ORF6-Ad26 заменена на ORF6-Ad5 со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3, и компонент 2 в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма simian adenovirus 25-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 4, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3 для индукции специфического иммунитета против вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 у детей старше 1 месяца.

Применение средства, содержащего комбинацию, представляющую компонент 1 в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма simian adenovirus 25-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 4, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3, а также содержащего компонент 2 в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus 5-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3 для индукции специфического иммунитета против вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 у детей старше 1 месяца.

В частных случаях осуществления:

Средство обеспечивает индукцию мукозального иммунного ответа на слизистых оболочках дыхательных путей;

Средство выполнено в жидкой или лиофилизированной форме.

При этом жидкая форма средства содержит буферный раствор, масс %:

трис от 0,1831 до 0,3432 хлорид натрия от 0,3313 до 0,6212 сахароза от 3,7821 до 7,0915 магния хлорида гексагидрат от 0,0154 до 0,0289 ЭДТА от 0,0029 до 0,0054 полисорбат-80 от 0,0378 до 0,0709 этанол 95% от 0,0004 до 0,0007 вода остальное

При этом восстановленная лиофилизированная форма средства содержит буферный раствор, масс %:

трис
хлорид натрия
сахароза
магния хлорида гексагидрат
ЭДТА
полисорбат-80
вода от 0,0180 до 0,0338
от 0,1044 до 0,1957
от 5,4688 до 10,2539
от 0,0015 до 0,0028
от 0,0003 до 0,0005
от 0,0037 до 0,0070
остальное

В частном случае, компонент и/или компоненты средства предназначены для интраназального и/или внутримышечного введения.

В частном случае, средство предназначено для введения в дозе 5*10⁹- 5*10¹⁰ вирусных частиц.

В частном случае, компоненты средства предназначены для последовательного введения с интервалом более 1 недели или предназначены для одновременного введения.

При этом компоненты средства могут находиться в индивидуальных упаковках.

Краткое описание фигур

На фиг. 1

представлен процент пролиферирующих CD4+ (А) и CD8+ (Б) Т лимфоцитов до иммунизации (1 день) и на 14 день исследования, после иммунизации мышей разработанным фармацевтическим средством Ad26-CMV-S-CoV2. Точками обозначены значения по каждому животному, участвующему в исследовании. Медиана значений представлена в виде черной черты для каждой группы данных. Отклонения обозначают 95% доверительный интервал. Символ **, обозначает статистически достоверную разницу между значениями 1 и 14 дня (p<0.01, по критерию Манн-Уитни).

Ось ординат - количество пролиферирующих клеток, %

Ось абсцисс - время, дни

На фиг. 2

представлен процент пролиферирующих CD4+ (А) и CD8+ (Б) Т лимфоцитов до иммунизации (1 день) и на 14 день исследования, после иммунизации мышей разработанным фармацевтическим средством Ad5-CMV-S-CoV2. Точками обозначены значения по каждому животному, участвующему в исследовании. Медиана значений представлена в виде черной черты для каждой группы данных. Отклонения обозначают 95% доверительный интервал. Символы * (p<0.05) и ** (p<0.01), обозначают статистически достоверную разницу между значениями 1 и 14 дня по критерию Манн-Уитни.

Ось ординат - количество пролиферирующих клеток, %

Ось абсцисс - время, дни

На фиг. 3

представлены титры IgG антител, специфичных к RBD-домену S белка вируса SARS-Cov2, до вакцинации (1 день) и на 21, 28 и 42 дни исследования, после иммунизации добровольцев разработанным фармацевтическим средством в дозе 1×10¹⁰ вирусных частиц. Точками обозначены значения по каждому добровольцу, участвующему в исследовании. Среднее геометрическое значение титра антител представлено в виде черной черты для каждой группы данных. Отклонения обозначают 95% доверительный интервал. Статистически достоверная разница между значениями на 21, 28 и 42 день обозначена скобкой, над которой указано значение р по Т-критерию Вилкоксона (#### - p<0.0001). НД обозначает недостоверные различия между указанным выборками данных. Статистически достоверная разница между значениями 21, 28 и 42 день в сравнении со значениями до вакцинации (1 день) определено по Т-критерию Вилкоксона (**** - p<0.0001).

Ось ординат - титр антигенспецифических IgG антител;

Ось абсцисс - время, дни.

На фиг. 4

представлены титры IgG антител, специфичных к RBD-домену S белка вируса SARS-Cov2, до вакцинации (1 день) и на 21, 28 и 42 дни исследования, после иммунизации добровольцев разработанным фармацевтическим средством в дозе 2×10¹⁰ вирусных частиц. Точками обозначены значения по каждому добровольцу, участвующему в исследовании. Среднее геометрическое значение титра антител представлено в виде черной черты для каждой группы данных. Отклонения обозначают 95% доверительный интервал. Статистически достоверная разница между значениями на 21, 28 и 42 день обозначена скобкой, над которой указано значение р по Т-критерию Вилкоксона (#### - p<0.0001). НД обозначает недостоверные различия между указанным выборками данных. Статистически достоверная разница между значениями 21, 28 и 42 день в сравнении со значениями до вакцинации (1 день) определено по Т-критерию Вилкоксона (**** - p<0.0001).

Ось ординат - титр антигенспецифических IgG антител;

Ось абсцисс - время, дни.

На фиг. 5

представлен процент пролиферирующих CD4+ (А) и CD8+ (Б) Т лимфоцитов до иммунизации (1 день) и на 28 день исследования, после иммунизации добровольцев разработанным фармацевтическим средством в дозе 1×10¹⁰ вирусных частиц. Точками обозначены значения по каждому добровольцу, участвующему в исследовании. Медиана значений представлена в виде черной черты для каждой группы данных. Отклонения обозначают 95% доверительный интервал. Символ ****, обозначает статистически достоверную разницу между значениями 1 и 28 дня (p<0.0001, по критерию Вилкоксона).

Ось ординат - количество пролиферирующих клеток, %

Ось абсцисс - время, дни

На фиг. 6

представлен процент пролиферирующих CD4+ (А) и CD8+ (Б) Т лимфоцитов до иммунизации (1 день) и на 28 день исследования, после иммунизации добровольцев разработанным фармацевтическим средством в дозе 2×10¹⁰ вирусных частиц. Точками обозначены значения по каждому добровольцу, участвующему в исследовании. Медиана значений представлена в виде черной черты для каждой группы данных. Отклонения обозначают 95% доверительный интервал. Символ ****, обозначает статистически достоверную разницу между значениями 1 и 28 дня (p<0.0001, по критерию Вилкоксона).

Ось ординат - количество пролиферирующих клеток, %.

Ось абсцисс - время, дни.

Реализация изобретения

Первым этапом в разработке средства для индукции специфического иммунитета против вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 являлся выбор вакцинного антигена. В ходе работы был проведен литературный поиск, который показал, что наиболее перспективным антигеном для создания кандидатной вакцины является S белок коронавируса. Это трансмембранный гликопротеин I типа, который отвечает за связывание, слияние и проникновение вирусных частиц в клетку. Было показано, что он является индуктором нейтрализующих антител (Liang M et al, SARS patients-derived human recombinant antibodies to S and M proteins efficiently neutralize SARS-coronavirus infectivity. BiomedEnvironSci. 2005 Dec; 18(6):363-74).

Для достижения максимально эффективной индукции иммунных реакций против S белка SARS-CoV-2 авторы разработали различные варианты экспрессионных кассет.

Экспрессионная кассета SEQ ID NO: 1 состоит из CMV промотора, гена S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнала полиаденилирования. CMV промотор - это промотор ранних генов цитомегаловируса, который обеспечивает конститутивную экспрессию во множестве типов клеток. Однако сила экспрессии гена-мишени, управляемая промотором CMV, варьируется в зависимости от типов клеток. Кроме того, было показано, что уровень экспрессии трансгена под контролем CMV-промотора уменьшается с увеличением времени культивирования клеток из-за подавления экспрессии генов, которое связано с метилированием ДНК [Wang W., Jia YL., Li YC., Jing CQ., Guo X., Shang XF., Zhao CP., Wang TY. Impact of different promoters, promoter mutation, and an enhancer on recombinant protein expression in CHO cells. // Scientific Reports - 2017. - Vol. 8. - P. 10416].

Экспрессионная кассета SEQ ID NO: 2 состоит из CAG промотора, гена S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнала полиаденилирования. CAG-промотор - синтетический промотор, который включает ранний энхансер промотора CMV, промотор β-актина курицы и химерный интрон (β-актина курицы и β-глобин кролика). Экспериментально показано, что транскрипционная активность промотора CAG выше, чем у промотора CMV.[Yang C.Q., Li X.Y., Li Q., Fu S.L., Li H., Guo Z.K., Lin J.T., Zhao S.T. Eval-uation of three different promoters driving gene expression in developing chicken embryo by using in vivo electroporation. // Genet. Mol. Res. - 2014. - Vol. 13. - P. 1270-1277].

Экспрессионная кассета SEQ ID NO: 3 состоит из EF1 промотора, гена S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнала полиаденилирования. Промотор EF1 - промотор человеческого эукариотического фактора элонгации трансляции 1β (EF-1α). Промотор является конститутивно активным в широком диапазоне типов клеток [PMID: 28557288. The EF-1α promoter maintains high-level transgene expression from episomal vectors in transfected CHO-K1 cells]. Ген EF-1α кодирует фактор элонгации-1α, который является одним из наиболее распространенных белков в эукариотических клетках и экспрессируется почти во всех типах клеток млекопитающих. Данный промотор EF-1α часто активен в клетках, в которых вирусные промоторы не способны экспрессировать контролируемые гены, и в клетках, в которых вирусные промоторы постепенно заглушаются.

Экспрессионная кассета SEQ ID NO: 4 состоит из CMV промотора, гена S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнала полиаденилирования.

Для эффективной доставки гена S белка коронавируса SARS-CoV-2 в организм человека была выбрана векторная система на основе аденовирусов. Аденовирусные векторы обладают целым рядом преимуществ: они не способны размножаться в клетках человека, проникают как в делящиеся, так и неделящиеся клетки, способны индуцировать клеточный и гуморальный иммунный ответ, обеспечивают высокий уровень экспрессии целевого антигена.

Авторы разработали варианты средства, содержащие два компонента, а также варианты средств, содержащие один компонент на основе аденовирусов различных серотипов. Таким образом, иммунный ответ на векторную часть аденовируса, который может возникать после введения первого компонента средства или однокомпонентного средства, в дальнейшем не бустируется и не влияет на генерацию антиген-специфических иммунных ответов против вакцинного антигена в случае использования двухкомпонентного средства или при необходимости повторного введения однокомпонентного средства, так как в последнем случае может быть введено средство на основе иного аденовируса.

Кроме того, разработанные средства расширяют арсенал средств для индукции иммунного ответа против коронавируса SARS-CoV-2, что обеспечит преодоление трудностей, связанных проблемой наличия у части населения предсуществующего иммунного ответа к некоторым серотипам аденовирусов.

Таким образом, в результате проведенной работы были разработаны следующие технические решения.

Применение средства, содержащего компонент в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus 26-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области, а область ORF6-Ad26 заменена на ORF6-Ad5 со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3 для индукции специфического иммунитета против вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 у детей старше 1 месяца.

Применение средства, содержащего компонент в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus 5-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3 для индукции специфического иммунитета против вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 у детей старше 1 месяца.

Применение средства, содержащего комбинацию, представляющую собой компонент 1 в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus 26-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области, а область ORF6-Ad26 заменена на ORF6-Ad5 со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3, и компонент 2 в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus 5-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3 для индукции специфического иммунитета против вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 у детей старше 1 месяца.

Применение средства, содержащего компонент в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма simian adenovirus 25-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 4, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3 для индукции специфического иммунитета против вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 у детей старше 1 месяца.

Применение средства, содержащего комбинацию, представляющую собой компонент 1 в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus 26-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области, а область ORF6-Ad26 заменена на ORF6-Ad5 со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3, и компонент 2 в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма simian adenovirus 25-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 4, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3 для индукции специфического иммунитета против вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 у детей старше 1 месяца.

Применение средства, содержащего комбинацию, представляющую компонент 1 в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма simian adenovirus 25-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 4, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3, а также содержащего компонент 2 в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus 5-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3 для индукции специфического иммунитета против вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 у детей старше 1 месяца.

В частных случая осуществления:

Средство обеспечивает индукцию мукозального иммунного ответа на слизистых оболочках дыхательных путей;

Средство выполнено в жидкой или лиофилизированной форме.

При этом жидкая форма средства содержит буферный раствор, масс %:

трис от 0,1831 до 0,3432 хлорид натрия от 0,3313 до 0,6212 сахароза от 3,7821 до 7,0915 магния хлорида гексагидрат от 0,0154 до 0,0289 ЭДТА от 0,0029 до 0,0054 полисорбат-80 от 0,0378 до 0,0709 этанол 95% от 0,0004 до 0,0007 вода остальное

При этом восстановленная лиофилизированная форма средства содержит буферный раствор, масс %:

трис
хлорид натрия
сахароза
магния хлорида гексагидрат
ЭДТА
полисорбат-80
вода от 0,0180 до 0,0338
от 0,1044 до 0,1957
от 5,4688 до 10,2539
от 0,0015 до 0,0028
от 0,0003 до 0,0005
от 0,0037 до 0,0070
остальное

В частном случае, компонент и/или компоненты средства предназначены для интраназального и/или внутримышечного введения.

В частном случае, средство предназначено для введения в дозе 5*10⁹- 5*10¹⁰ вирусных частиц.

В частном случае, компоненты средства предназначены для последовательного введения с интервалом более 1 недели или предназначены для одновременного введения.

При этом компоненты средства могут находиться в индивидуальных упаковках.

Кроме того, авторами изобретения были подобраны варианты буферного раствора, которые позволяют хранить разработанное средство как в замороженном виде при температуре ниже -18°С, так и в виде лиофилизата при температуре от +2°С до +8°С.

Также был разработано применение средства для индукции специфического иммунитета против вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 у детей старше 1 месяца, путем его введения в организм в эффективном количестве.

Было показано, что разработанное средство обеспечивает индукцию мукозального иммунного ответа на слизистых оболочках дыхательных путей.

Кроме того, средство, в том числе состоящее из одного компонента, может применяться однократно.

Для ревакцинации может быть использовано любое из предложенных средств, независимо от того, каким средством проводили вакцинацию.

Осуществление изобретения подтверждается следующими примерами.

Пример 1

Получение экспрессионного вектора, содержащего геном рекомбинантного штамма human adenovirus 26-го серотипа.

На первом этапе работы был разработан дизайн плазмидной конструкции pAd26-Ends, несущей два участка, гомологичных геному аденовируса человека 26 серотипа (два плеча гомологии), и ген устойчивости к ампициллину. Одно плечо гомологии представляет собой начало генома аденовируса человека 26-го серотипа (от левого инвертированного концевого повтора до Е1-области) и последовательность вирусного генома, включающую pIX белок. Второе плечо гомологии содержит последовательность нуклеотидов после ORF3 Е4 области до конца генома. Синтез конструкции pAd26-Ends осуществлялся компанией ЗАО «Евроген» (Москва).

Выделенную из вирионов ДНК аденовируса человека 26-го серотипа смешивали с pAd26-Ends. В результате гомологичной рекомбинации между pAd26-Ends и вирусной ДНК была получена плазмида pAd26-dlE1, несущая геном аденовируса человека 26-го серотипа с делетированной E1-областью.

Затем, в полученной плазмиде pAd26-dlE1 с использованием стандартных методов клонирования была заменена последовательность, содержащая открытую рамку считывания 6 (ORF6-Ad26), на аналогичную последовательность из генома аденовируса человека 5-го серотипа для того, чтобы аденовирус человека 26-го серотипа был способен эффективно размножаться в культуре клеток HEK293. В результате была получена плазмида pAd26-dlE1-ORF6-Ad5.

Далее с использованием стандартных генно-инженерных методов в сконструированной плазмиде pAd26-dlE1-ORF6-Ad5 была удалена E3-область генома аденовируса (примерно 3321 п.о. между генами pVIII и U-exon) для увеличения пакующей емкости вектора. В результате этого был получен рекомбинантный вектор pAd26-only-null на основе генома аденовируса человека 26-го серотипа с открытой рамкой считывания ORF6 аденовируса человека 5-го серотипа и с делецией E1 и Е3-областей.

Кроме того, авторами было разработано несколько дизайнов экспрессионной кассеты:

- экспрессионная кассета SEQ ID NO: 1 состоит из CMV промотора, гена S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнала полиаденилирования;

- экспрессионная кассета SEQ ID NO: 2 состоит из CAG промотора, гена S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнала полиаденилирования;

- экспрессионная кассета SEQ ID NO: 3 состоит из EF1 промотора, гена S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнала полиаденилирования.

На основе плазмидной конструкции pAd26-Ends генно-инженерным методом были получены конструкции pArms-26-CMV-S-CoV2, pArms-26-CAG-S-CoV2, pArms-26-EF1-S-CoV2, содержащие экспрессионные кассеты SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2 или SEQ ID NO: 3, соответственно, а также несущие плечи гомологии генома аденовируса 26-го серотипа. После этого, конструкции pArms-26-CMV-S-CoV2, pArms-26-CAG-S-CoV2, pArms-26-EF1-S-CoV2 линеаризовали по уникальному сайту гидролиза между плечами гомологии, каждую плазмиду смешивали с рекомбинантным вектором pAd26-only-null. В результате гомологичной рекомбинации были получены плазмиды pAd26-only-CMV-S-CoV2, pAd26-only-CAG-S-CoV2, pAd26-only-EF1-S-CoV2, несущие геном рекомбинантного аденовируса человека 26 серотипа с открытой рамкой считывания ORF6 аденовируса человека 5-го серотипа и с делецией E1 и Е3-областей, с экспрессионной кассетой SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2 или SEQ ID NO: 3, соответственно.

На четвертом этапе, плазмиды pAd26-only-CMV-S-CoV2, pAd26-only-CAG-S-CoV2, pAd26-only-EF1-S-CoV2 гидролизовали специфическими эндонуклеазами рестрикции для удаления векторной части. Полученными препаратами ДНК трансфицировали клетки культуры НЕК293.

Таким образом, был получен экспрессионный вектор, содержащий геном рекомбинантного штамма human adenovirus26-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области, а область ORF6-Ad26 заменена на ORF6-Ad5 со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3.

Пример 2

Получение средства в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus26-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области, а область ORF6-Ad26 заменена на ORF6-Ad5 со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3.

На данном этапе работы экспрессионные векторы, полученные в примере 1, очищали методом анионообменной и эксклюзионной хроматографии. Готовая суспензия содержала аденовирусные частицы в буферном растворе для жидкой формы средства или в буферном растворе для лиофилизированной формы средства.

Таким образом, были получены следующие иммунобиологические средства на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus 26-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области, а область ORF6-Ad26 заменена на ORF6-Ad5:

1. Иммунобиологическое средство на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus26-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области, а область ORF6-Ad26 заменена на ORF6-Ad5 с экспрессионной кассетой, содержащей CMV промотор, ген S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнал полиаденилирования, SEQ ID NO: 1 (Ad26-CMV-S-CoV2) в буферном растворе для жидкой формы средства.

2. Иммунобиологическое средство на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus26-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области, а область ORF6-Ad26 заменена на ORF6-Ad5 с экспрессионной кассетой, содержащей CMV промотор, ген S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнал полиаденилирования, SEQ ID NO: 1 (Ad26-CMV-S-CoV2) в буферном растворе для лиофилизированной формы средства.

3. Иммунобиологическое средство на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus26-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области, а область ORF6-Ad26 заменена на ORF6-Ad5 с экспрессионной кассетой, содержащей CAG промотор, ген S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнал полиаденилирования, SEQ ID NO: 2 (Ad26-CAG-S-CoV2) в буферном растворе для жидкой формы средства.

4. Иммунобиологическое средство на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus26-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области, а область ORF6-Ad26 заменена на ORF6-Ad5 с экспрессионной кассетой, содержащей CAG промотор, ген S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнал полиаденилирования, SEQ ID NO: 2 (Ad26-CAG-S-CoV2) в буферном растворе для лиофилизированной формы средства.

5. Иммунобиологическое средство на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus26-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области, а область ORF6-Ad26 заменена на ORF6-Ad5 с экспрессионной кассетой, содержащей EF1 промотор, ген S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнал полиаденилирования, SEQ ID NO: 3 (Ad26-EF1-S-CoV2) в буферном растворе для жидкой формы средства.

6. Иммунобиологическое средство на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus26-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области, а область ORF6-Ad26 заменена на ORF6-Ad5 с экспрессионной кассетой, содержащей EF1 промотор, ген S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнал полиаденилирования, SEQ ID NO: 3 (Ad26-EF1-S-CoV2) в буферном растворе для лиофилизированной формы средства.

Каждое из представленных иммунобиологических средств является компонентом 1 в варианте 1 и в варианте 2 разработанного средства.

Пример 3

Получение экспрессионного вектора, содержащего геном рекомбинантного штамма simian adenovirus 25-го серотипа.

На первом этапе работы был разработан дизайн плазмидной конструкции pSim25-Ends, несущей два участка, гомологичных геному аденовируса обезьян 25-го серотипа (два плеча гомологии). Одно плечо гомологии представляет собой начало генома аденовируса обезьян 25-го серотипа (от левого инвертированного концевого повтора до Е1-области) и последовательность от конца Е1-области до pIVa2 белка. Второе плечо гомологии содержит последовательность конца генома аденовируса, включая правый инвертированный концевой повтор. Синтез конструкции pSim25-Ends осуществлялся компанией ЗАО «Евроген» (Москва).

Выделенную из вирионов ДНК аденовируса обезьян 25-го серотипа смешивали с pSim25-Ends. В результате гомологичной рекомбинации между pSim25-Ends и вирусной ДНК была получена плазмида pSim25-dlE1, несущая геном аденовируса обезьян 25-го серотипа с делетированной E1-областью.

Далее с использованием стандартных генно-инженерных методов в сконструированной плазмиде pSim25-dlE1 была удалена E3 область генома аденовируса (3921 п.о. от начала гена 12,5К до гена 14,7К) для увеличения пакующей емкости вектора. В результате была получена плазмидная конструкция pSim25-null, кодирующая полный геном аденовируса обезьян 25-го серотипа с делецией Е1 и Е3-областей.

Кроме того, авторы разработали несколько дизайнов экспрессионной кассеты:

- экспрессионная кассета SEQ ID NO: 4 состоит из CMV промотора, гена S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнала полиаденилирования;

- экспрессионная кассета SEQ ID NO: 2 состоит из CAG промотора, гена S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнала полиаденилирования;

- экспрессионная кассета SEQ ID NO: 3 состоит из EF1 промотора, гена S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнала полиаденилирования.

Далее генно-инженерным методом на основе плазмидной конструкции pSim25-Ends были получены конструкции pArms-Sim25-CMV-S-CoV2, pArms-Sim25-CAG-S-CoV2, pArms-Sim25-EF1-S-CoV2, содержащие экспрессионные кассеты SEQ ID NO: 4, SEQ ID NO: 2 или SEQ ID NO: 3, соответственно, а также несущие плечи гомологии из генома аденовируса обезьян 25-го серотипа. После этого конструкции pArms-Sim25-CMV-S-CoV2, pArms-Sim25-CAG-S-CoV2, pArms-Sim25-EF1-S-CoV2 линеаризовали по уникальному сайту гидролиза между плечами гомологии, каждую плазмиду смешивали с рекомбинантным вектором pSim25-null. В результате гомологичной рекомбинации были получены рекомбинантные плазмидные векторы pSim25-CMV-S-CoV2, pSim25-CAG-S-CoV2, pSim25-EF1-S-CoV2, содержащие полный геном аденовируса обезьян 25-го серотипа с делецией Е1 и Е3-областей и экспрессионную кассету SEQ ID NO: 4, SEQ ID NO: 2 или SEQ ID NO: 3, соответственно.

На третьем этапе плазмиды pSim25-CMV-S-CoV2, pSim25-CAG-S-CoV2, pSim25-EF1-S-CoV2 гидролизовали специфической эндонуклеазой рестрикции для удаления векторной части. Полученными препаратами ДНК трансфицировали клетки культуры НЕК293. Полученный материал был использован для накопления препаративных количеств рекомбинантных аденовирусов.

В результате были получены рекомбинантные аденовирусы человека 25 серотипа, содержащие ген S белка вируса SARS-CoV-2: simAd25-CMV-S-CoV2 (содержащий экспрессионную кассету SEQ ID NO: 4), simAd25-CAG-S-CoV2 (содержащий экспрессионную кассету SEQ ID NO: 2), simAd25-EF1-S-CoV2 (содержащий экспрессионную кассету SEQ ID NO: 3).

Таким образом, был получен экспрессионный вектор, содержащий геном рекомбинантного штамма simian adenovirus 25-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 4, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3.

Пример 4

Получение средства в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма simian adenovirus 25-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 4, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3.

На данном этапе работы экспрессионные векторы, полученные в примере 3, очищали методом анионообменной и эксклюзионной хроматографии. Готовая суспензия содержала аденовирусные частицы в буферном растворе для жидкой формы средства или в буферном растворе для лиофилизированной формы средства.

Таким образом, были получены следующие иммунобиологические средства на основе генома рекомбинантного штамма simian adenovirus 25-го серотипа серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области:

1. Иммунобиологическое средство на основе генома рекомбинантного штамма simian adenovirus 25-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области с экспрессионной кассетой, содержащей CMV промотор, ген S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнал полиаденилирования, SEQ ID NO: 4 (simAd25-CMV-S-CoV2) в буферном растворе для жидкой формы средства.

2. Иммунобиологическое средство на основе генома рекомбинантного штамма simian adenovirus 25-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области с экспрессионной кассетой, содержащей CMV промотор, ген S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнал полиаденилирования, SEQ ID NO: 4 (simAd25-CMV-S-CoV2) в буферном растворе для лиофилизированной формы средства.

3. Иммунобиологическое средство на основе генома рекомбинантного штамма simian adenovirus 25-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области с экспрессионной кассетой, содержащей CAG промотор, ген S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнал полиаденилирования, SEQ ID NO: 2 (simAd25-CAG-S-CoV2) в буферном растворе для жидкой формы средства.

4. Иммунобиологическое средство на основе генома рекомбинантного штамма simian adenovirus 25-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области с экспрессионной кассетой, содержащей CAG промотор, ген S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнал полиаденилирования, SEQ ID NO: 2 (simAd25-CAG-S-CoV2) в буферном растворе для лиофилизированной формы средства.

5. Иммунобиологическое средство на основе генома рекомбинантного штамма simian adenovirus 25-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области с экспрессионной кассетой, содержащей EF1 промотор, ген S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнал полиаденилирования, SEQ ID NO: 3 (simAd25-EF1-S-CoV2) в буферном растворе для жидкой формы средства.

6. Иммунобиологическое средство на основе генома рекомбинантного штамма simian adenovirus 25-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области с экспрессионной кассетой, содержащей EF1 промотор, ген S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнал полиаденилирования, SEQ ID NO: 3 (simAd25-EF1-S-CoV2) в буферном растворе для лиофилизированной формы средства.

Каждое из представленных иммунобиологических средств является компонентом 2 в варианте 1 разработанного средства и компонентом 1 в варианте 3 разработанного средства.

Пример 5

Получение экспрессионного вектора, содержащего геном рекомбинантного штамма human adenovirus 5-го серотипа.

На первом этапе работы был разработан дизайн плазмидной конструкции pAd5-Ends, несущей два участка, гомологичных геному аденовируса человека 5-го серотипа (два плеча гомологии). Одно плечо гомологии представляет собой начало генома аденовируса человека 5-го серотипа (от левого инвертированного концевого повтора до Е1-области) и последовательность вирусного генома, включающую pIX белок. Второе плечо гомологии содержит последовательность нуклеотидов после ORF3 Е4-области до конца генома. Синтез конструкции pAd5-Ends осуществлялся компанией ЗАО «Евроген» (Москва).

Выделенную из вирионов ДНК аденовируса человека 5-го серотипа смешивали с pAd5-Ends. В результате гомологичной рекомбинации между pAd5-Ends и вирусной ДНК была получена плазмида pAd5-dlE1, несущая геном аденовируса человека 5-го серотипа с делетированной E1-областью.

Далее с использованием стандартных генно-инженерных методов в сконструированной плазмиде pAd5-dlE1 была удалена E3 область генома аденовируса (2685 п.о. от конца гена 12,5К до начала последовательности U-exon) для увеличения пакующей емкости вектора. В результате этого был получен рекомбинантный плазмидный вектор pAd5-too-null на основе генома аденовируса человека 5-го серотипа с делецией E1 и Е3 областей генома. Кроме того, авторы разработали несколько дизайнов экспрессионной кассеты:

- экспрессионная кассета SEQ ID NO: 1 состоит из CMV промотора, гена S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнала полиаденилирования;

- экспрессионная кассета SEQ ID NO: 2 состоит из CAG промотора, гена S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнала полиаденилирования;

- экспрессионная кассета SEQ ID NO: 3 состоит из EF1 промотора, гена S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнала полиаденилирования.

Далее генно-инженерным методом на основе плазмидной конструкции pAd5-Ends были получены конструкции pArms-Ad5-CMV-S-CoV2, pArms-Ad5-CAG-S-CoV2, pArms-Ad5-EF1-S-CoV2, содержащие экспрессионные кассеты SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2 или SEQ ID NO: 3, соответственно, а также несущие плечи гомологии из генома аденовируса 5-го серотипа.

После этого, конструкции pArms-Ad5-CMV-S-CoV2, pArms-Ad5-CAG-S-CoV2, pArms-Ad5-EF1-S-CoV2 лианеризовали по уникальному сайту гидролиза между плечами гомологи, каждую плазмиду смешивали с рекомбинантным вектором pAd5-too-null. В результате гомологичной рекомбинации были получены плазмиды pAd5-too-CMV-S-CoV2, pAd5-too-GAC-S-CoV2, pAd5-too-EF1-S-CoV2, несущие геном рекомбинантного аденовируса человека 5-го серотипа с делецей Е1 и Е3 областей и экспрессионные кассеты SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2 или SEQ ID NO: 3, соответственно.

На четвертом этапе плазмиды pAd5-too-CMV-S-CoV2, pAd5-too-GAC-S-CoV2, pAd5-too-EF1-S-CoV2 гидролизовали специфической эндонуклеазой рестрикции для удаления векторной части. Полученным препаратом ДНК трансфицировали клетки культуры НЕК293. Полученный материал был использован для накопления препаративных количеств рекомбинантного аденовируса.

В результате были получены рекомбинантные аденовирусы человека 5-го серотипа, содержащие ген S белка вируса SARS-CoV-2: Ad5-CMV-S-CoV2 (содержащий экспрессионную кассету SEQ ID NO: 1), Ad5-CAG-S-CoV2 (содержащий экспрессионную кассету SEQ ID NO: 2), Ad5-EF1-S-CoV2 (содержащий экспрессионную кассету SEQ ID NO: 3).

Таким образом, был получен экспрессионный вектор, содержащий геном рекомбинантного штамма human adenovirus5-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3.

Пример 6

Получение средства в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus 5-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3.

На данном этапе работы экспрессионные векторы, полученные в примере 5, очищали методом анионообменной и эксклюзионной хроматографии. Готовая суспензия содержала аденовирусные частицы в буферном растворе для жидкой формы средства или в буферном растворе для лиофилизированной формы средства.

Таким образом, были получены следующие иммунобиологические средства на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus 5-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области:

1. Иммунобиологическое средство на основе генома рекомбинантного human adenovirus5-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области с экспрессионной кассетой, содержащей CMV промотор, ген S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнал полиаденилирования, SEQ ID NO: 1 (Ad5-CMV-S-CoV2) в буферном растворе для жидкой формы средства.

2. Иммунобиологическое средство на основе генома рекомбинантного human adenovirus5-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области с экспрессионной кассетой, содержащей CMV промотор, ген S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнал полиаденилирования, SEQ ID NO: 1 (Ad5-CMV-S-CoV2) в буферном растворе для лиофилизированной формы средства.

3. Иммунобиологическое средство на основе генома рекомбинантного human adenovirus5-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области с экспрессионной кассетой, содержащей CAG промотор, ген S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнал полиаденилирования, SEQ ID NO: 2 (Ad5-CAG-S-CoV2) в буферном растворе для жидкой формы средства.

4. Иммунобиологическое средство на основе генома рекомбинантного human adenovirus5-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области с экспрессионной кассетой, содержащей CAG промотор, ген S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнал полиаденилирования, SEQ ID NO: 2 (Ad5-CAG-S-CoV2) в буферном растворе для лиофилизированной формы средства.

5. Иммунобиологическое средство на основе генома рекомбинантного human adenovirus5-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области с экспрессионной кассетой, содержащей EF1 промотор, ген S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнал полиаденилирования, SEQ ID NO: 3 (Ad5-EF1-S-CoV2) в буферном растворе для жидкой формы средства.

6. Иммунобиологическое средство на основе генома рекомбинантного human adenovirus5-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области с экспрессионной кассетой, содержащей EF1 промотор, ген S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнал полиаденилирования, SEQ ID NO: 3 (Ad5-EF1-S-CoV2) в буферном растворе для лиофилизированной формы средства.

Каждое из представленных иммунобиологических средств является компонентом 2 в варианте 1 и в варианте 3 разработанного средства.

Пример 7

Получение буферного раствора.

Каждый компонент разработанного средства представляет собой средство на основе рекомбинантного аденовируса с экспрессионной кассетой в буферном растворе.

Авторами изобретения был подобран состав буферного раствора, обеспечивающий стабильность рекомбинантных аденовирусных частиц. Данный раствор включает:

1. Трис(гидроксиметил)аминометан (Трис), который необходим для поддержания рН раствора.

2. Хлорид натрия, который добавляют для достижения необходимой ионной силы и осмолярности.

3. Сахарозу, которая используется в качестве криопротектора.

4. Магния хлорида гексагидрат, который необходим в качестве источника двухвалентных катионов.

5. ЭДТА, который используется в качестве ингибитора свободно-радикального окисления.

6. Полисорбат-80, который используется в качестве поверхностно-активного вещества.

7. Этанол 95%, который применяют в качестве ингибитора свободно-радикального окисления.

8. Воду, которая используется в качестве растворителя.

Авторами изобретения было разработано 2 варианта буферного раствора: для жидкой формы средства и для лиофилизированной формы фармацевтического средства.

Для определения концентрации веществ, входящих в состав буферного раствора для жидкой формы средства, было получено несколько вариантов экспериментальных групп (таблица 1). В каждый из полученных буферных растворов добавляли один из компонентов средства:

1. Иммунобиологическое средство на основе рекомбинантного аденовируса человека 26-го серотипа с экспрессионной кассетой, содержащей CMV промотор, ген S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнал полиаденилирования, 1*10¹⁰ вирусных частиц.

2. Иммунобиологическое средство на основе рекомбинантного аденовируса человека 5-го серотипа с экспрессионной кассетой, содержащей CMV промотор, ген S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнал полиаденилирования, 1*10¹⁰ вирусных частиц.

3. Иммунобиологическое средство на основе рекомбинантного аденовируса обезьяны 25-го серотипа с экспрессионной кассетой, содержащей CMV промотор, ген S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнал полиаденилирования, 1*10¹⁰ вирусных частиц.

Таким образом, была проверена стабильность каждого из серотипов аденовирусов, входящих в состав средства. Полученные средства хранили при температуре -18°С и -70°С в течение 3 месяцев, затем размораживали и оценивали изменение титрарекомбинантных аденовирусов.

Таблица 1. Состав экспериментальных буферных растворов для жидкой формы средства.

№ группы Состав буферного раствора Трис (мг) Хлорид натрия (мг) Сахароза (мг) Магния хлорида гексагидрат (мг) ЭДТА (мг) Полисорбат-80 (мг) Этанол 95% (мг) Вода 1 0,968 2,19 25 0,102 0,019 0,25 0,0025 до 0,5 мл 2 1,815 2,19 25 0,102 0,019 0,25 0,0025 до 0,5 мл 3 1,21 1,752 25 0,102 0,019 0,25 0,0025 до 0,5 мл 4 1,21 3,285 25 0,102 0,019 0,25 0,0025 до 0,5 мл 5 1,21 2,19 20 0,102 0,019 0,25 0,0025 до 0,5 мл 6 1,21 2,19 37,5 0,102 0,019 0,25 0,0025 до 0,5 мл 7 1,21 2,19 25 0,0816 0,019 0,25 0,0025 до 0,5 мл 8 1,21 2,19 25 0,153 0,019 0,25 0,0025 до 0,5 мл 9 1,21 2,19 25 0,102 0,0152 0,25 0,0025 до 0,5 мл 10 1,21 2,19 25 0,102 0,0285 0,25 0,0025 до 0,5 мл 11 1,21 2,19 25 0,102 0,019 0,2 0,0025 до 0,5 мл 12 1,21 2,19 25 0,102 0,019 0,375 0,0025 до 0,5 мл 13 1,21 2,19 25 0,102 0,019 0,25 0,002 до 0,5 мл 14 1,21 2,19 25 0,102 0,019 0,25 0,00375 до 0,5 мл 15 1,21 2,19 25 0,102 0,019 0,25 0,0025 до 0,5 мл

Результаты проведенного эксперимента показали, что титр рекомбинантных аденовирусов после их хранения в буферном растворе для жидкой формы средства при температурах -18°С и -70°С в течение 3 месяцев не изменялся.

Таким образом, разработанный буферный раствор для жидкой формы средства обеспечивает стабильность всех компонентов разработанного средства в следующем диапазоне действующих веществ (масс %):

Трис: от 0,1831 масс. % до 0,3432 масс. %;

Хлорид натрия: от 0,3313 масс. % до 0,6212 масс. %;

Сахароза: от 3,7821 масс. % до 7,0915 масс. %;

Магния хлорида гексагидрат: от 0,0154 масс. % до 0,0289 масс. %;

ЭДТА: от 0,0029 масс. % до 0,0054 масс. %;

Полисорбат-80: от 0,0378 масс. % до 0,0709 масс. %;

Этанол 95%: от 0,0004 масс. % до 0,0007 масс. %;

Растворитель: остальное.

Для определения концентрации веществ, входящих в состав буферного раствора для лиофилизированной формы средства, было получено несколько вариантов экспериментальных групп (таблица 2). В каждый из полученных буферных растворов добавляли один из компонентов средства:

1. Иммунобиологическое средство на основе рекомбинантного аденовируса человека 26-го серотипа с экспрессионной кассетой, содержащей CMV промотор, ген S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнал полиаденилирования, 1*10¹⁰ вирусных частиц.

2. Иммунобиологическое средство на основе рекомбинантного аденовируса человека 5-го серотипа с экспрессионной кассетой, содержащей CMV промотор, ген S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнал полиаденилирования, 1*10¹⁰ вирусных частиц.

3. Иммунобиологическое средство на основе рекомбинантного аденовируса обезьяны 25-го серотипа с экспрессионной кассетой, содержащей CMV промотор, ген S белка вируса SARS-CoV-2 и сигнал полиаденилирования, 1*10¹⁰ вирусных частиц.

Таким образом, была проверена стабильность каждого из серотипов аденовирусов, входящих в состав средства. Полученные средства хранили при температуре +2 и +8°С в течение 3 месяцев, затем размораживали и оценивали изменение титра рекомбинантных аденовирусов.

Таблица 2. Состав экспериментальных буферных растворов.

№ группы Состав буферного раствора Трис (мг) Хлорид натрия (мг) Сахароза (мг) Магния хлорида гексагидрат (мг) ЭДТА (мг) Полисорбат-80 (мг) Вода 1 0,1936 1,403 73,5 0,0204 0,0038 0,05 до 1 мл 2 0,363 1,403 73,5 0,0204 0,0038 0,05 до 1 мл 3 0,242 1,1224 73,5 0,0204 0,0038 0,05 до 1 мл 4 0,242 2,1045 73,5 0,0204 0,0038 0,05 до 1 мл 5 0,242 1,403 58,8 0,0204 0,0038 0,05 до 1 мл 6 0,242 1,403 110,25 0,0204 0,0038 0,05 до 1 мл 7 0,242 1,403 73,5 0,01632 0,0038 0,05 до 1 мл 8 0,242 1,403 73,5 0,0306 0,0038 0,05 до 1 мл 9 0,242 1,403 73,5 0,0204 0,00304 0,05 до 1 мл 10 0,242 1,403 73,5 0,0204 0,0057 0,05 до 1 мл 11 0,242 1,403 73,5 0,0204 0,0038 0,04 до 1 мл 12 0,242 1,403 73,5 0,0204 0,0038 0,075 до 1 мл 13 0,242 1,403 73,5 0,0204 0,0038 0,05 до 1 мл

Результаты проведенного эксперимента показали, что титр рекомбинантных аденовирусов после их хранения в буферном растворе для лиофилизированной формы средства при температуре +2°С и +8°С в течение 3 месяцев не изменялся.

Таким образом, разработанный буферный раствор для лиофилизированной формы вакцины обеспечивает стабильность всех компонентов разработанного средства в следующем диапазоне действующих веществ:

Трис: от 0,0180 масс. % до 0,0338 масс. %;

Хлорид натрия: от 0,1044 масс. % до 0,1957 масс. %;

Сахароза: от 5,4688 масс. % до 10,2539 масс. %;

Магния хлорида гексагидрат: от 0,0015 масс. % до 0,0028 масс. %;

ЭДТА: от 0,0003 масс. % до 0,0005 масс. %;

Полисорбат-80: от 0,0037 масс. % до 0,0070 масс. %;

Растворитель: остальное.

Пример 8 Оценка способности разработанного средства индуцировать мукозальный иммунный ответ при внутримышечном введении.

Для данного исследования использовали молодых мышей линии BALB/c (возраст 21-28 дней). Животные были распределены на группы по 10 шт, которым вводили следующие средства:

Ad26-CMV-S-CoV2, внутримышечно (в/м), в дозе 5×10⁹ в.ч./100 мкл; через 21 день Ad26-CMV-S-CoV2, внутримышечно (в/м), в дозе 5×10⁹ в.ч./100 мкл.

Ad5-CMV-S-CoV2, в/м, в дозе 5×10⁹в.ч./100 мкл; через 21 день Ad5-CMV-S-CoV2, в/м, в дозе 5×10⁹ в.ч./100 мкл.

simAd25-CMV-S-CoV2, в/м, в дозе 5×10⁹в.ч./100 мкл; через 21 день simAd25-CMV-S-CoV2, в/м, в дозе 5×10⁹ в.ч./100 мкл

Ad26-null, в/м, в дозе 5×10⁹в.ч./100 мкл; через 21 день Ad26-null, в/м, в дозе 5×10⁹ в.ч./100 мкл

Ad5-null, в/м, в дозе 5×10⁹в.ч./100 мкл; через 21 день Ad5-null, в/м, в дозе 5×10⁹ в.ч./100 мкл

simAd25-null, в/м, в дозе 5×10⁹в.ч./100 мкл; через 21 день simAd25-null, в/м, в дозе 5×10⁹ в.ч./100 мкл

Ad26-CMV-S-CoV2, интраназально (ин), в дозе 5x10⁹ в.ч./100 мкл; через 21 день Ad26-CMV-S-CoV2 ин, в дозе 5×10⁹ в.ч./100 мкл.

Ad5-CMV-S-CoV2, ин, в дозе 5×10⁹ в.ч./100 мкл; через 21 день Ad5-CMV-S-CoV2, ин, в дозе 5×10⁹ в.ч./100 мкл.

Ad26-CMV-S-CoV2, в/м, в дозе 5×10⁹ в.ч./100 мкл; через 21 день Ad26-CMV-S-CoV2 ин, в дозе 5×10⁹ в.ч./100 мкл.

Ad5-CMV-S-CoV2, в/м, в дозе 5×10⁹ в.ч./100 мкл; через 21 день Ad5-CMV-S-CoV2, ин, в дозе 5×10⁹ в.ч./100 мкл.

Буферный раствор

Через 14 дней после последней иммунизации определяли титр IgG и IgA антител методом ИФА в смывах бронхоавеолярного лаважа (БАЛ) экспериментальных животных.

Для этого:

Антиген (рекомбинантный RBD) адсорбировали на лунках 96-луночного планшета для ИФА в течение 16 часов при температуре +4°С.

Далее для избавления от неспецифического связывания в лунки планшета добавляли 5 % молоко в TPBS 100 мкл/лунку. Инкубировали на шейкере при температуре 37°C на протяжении часа.

Образцы БАЛ разводили в 25 раз и далее методом 2-х кратных разведений.

Добавляли по 50 мкл каждого разведенного образца сыворотки в лунки планшета.

Далее проводили инкубацию в течение 1 часа при 37°С.

После инкубации проводилась трехкратная промывка лунок фосфатным буфером.

Затем добавляли вторичные антитела против иммуноглобулинов мыши, конъюгированные с пероксидазой хрена.

Далее проводили инкубацию в течение 1 часа при 37°С.

После инкубации проводилась трехкратная промывка лунок фосфатным буфером

Затем добавили раствор тетраметилбензидина (ТМВ), который является субстратом пероксидазы хрена и в результате реакции превращается в окрашенное соединение. Реакцию останавливали через 15 минут добавлением серной кислоты. Далее с помощью спектрофотометра измеряли оптическую плотность раствора (OD) в каждой лунке при длине волны 450 нм.

Титр антител определяли, как последнее разведение, в котором оптическая плотность раствора была достоверно выше, чем в группе отрицательного контроля. Полученные результаты (среднее геометрическое значение) представлены в таблице 3.

Таблица 3. Среднее геометрическое титра IgG и IgA антител к S белку вируса SARS-CoV-2 в смывах БАЛ экспериментальных животных.

Название группы Титр IgG антител Титр IgA антител 1 Ad26-CMV-S-CoV2 в/м; Ad26-CMV-S-CoV2 в/м 162 3 2 Ad5-CMV-S-CoV2 в/м, Ad5-CMV-S-CoV2 в/м 325 4 3 simAd25-CMV-S-CoV2 в/м, simAd25-CMV-S-CoV2 в/м 214 3 4 Ad26-CMV-S-CoV2 ин; Ad26-CMV-S-CoV2 ин 123 76 5 Ad5-CMV-S-CoV2 ин, Ad5-CMV-S-CoV2 ин 264 81 6 Ad26-CMV-S-CoV2 в/м; Ad26-CMV-S-CoV2 ин 373 283 7 Ad5-CMV-S-CoV2 в/м, Ad5-CMV-S-CoV2 ин 348 303 8 Ad26-null в/м; Ad26-null в/м 0 0 9 Ad5-null в/м; Ad5-null в/м 0 0 10 simAd25-null в/м; simAd25-null в/м 0 0 11 Ad26-null ин; Ad26-null ин 0 0 12 Ad5-null ин; Ad5-null ин 0 0 13 Буферный раствор 0 0

Как видно из представленных результатов, все варианты разработанного средства приводят к повышению титра IgG антител на поверхности слизистой оболочки дыхательных путей. Экспрессия IgA антител зависит от способа введения средства. Максимальные титры IgA антител индуцируются, когда иммунизация животных проводится последовательно: внутримышечно, а затем интраназально.

Таким образом, в результате проведенной работы было разработано иммунобиологическое средство, способное индуцировать мукозальный иммунный ответ против вируса SARS-CoV-2 на слизистой оболочке дыхательных путей у детей, а также схема введения данного средства, приводящая к потенцированию мукозального иммунного ответа.

Пример 9. Оценка способности разработанного средства индуцировать иммунный ответ у млекопитающих разного возраста.

Для данного исследования использовали молодых мышей линии BALB/c различного возраста. Животные были распределены на группы по 5 шт:

Мыши возраста 15-18 дней

Мыши возраста 28 -35 дней

Мыши возраста 50-60 дней

Всех животных однократно иммунизировали разработанным иммунобиологическим средством на основе аденовируса человека 5 серотипа (Ad5-CMV-S-CoV2) в дозе 10⁸ вч/50 мкл. Через 21 день после иммунизации измеряли титр IgG антител в сыворотке крови животных. Для этого:

Антиген (рекомбинантный RBD) адсорбировали на лунках 96-луночного планшета для ИФА в течение 16 часов при температуре +4°С.

Далее для избавления от неспецифического связывания в лунки планшета добавляли 5 % молоко в TPBS 100 мкл/лунку. Инкубировали на шейкере при температуре 37°C на протяжении часа.

Образцы сыворотки разводили в 50 раз и далее методом 2-х кратных разведений.

Добавляли по 50 мкл каждого разведенного образца сыворотки в лунки планшета.

Далее проводили инкубацию в течение 1 часа при 37°С.

После инкубации проводилась трехкратная промывка лунок фосфатным буфером.

Затем добавляли вторичные антитела против иммуноглобулинов мыши, конъюгированные с пероксидазой хрена.

Далее проводили инкубацию в течение 1 часа при 37°С.

После инкубации проводилась трехкратная промывка лунок фосфатным буфером

Затем добавили раствор тетраметилбензидина (ТМВ), который является субстратом пероксидазы хрена и в результате реакции превращается в окрашенное соединение. Реакцию останавливали через 15 минут добавлением серной кислоты. Далее с помощью спектрофотометра измеряли оптическую плотность раствора (OD) в каждой лунке при длине волны 450 нм.

Титр антител определяли, как последнее разведение, в котором оптическая плотность раствора была достоверно выше, чем в группе отрицательного контроля. Полученные результаты (среднее геометрическое значение) представлены в таблице 4.

Таблица 4. Среднее геометрическое титра IgG антител к S белку вируса SARS-CoV-2 в сыворотке крови экспериментальных животных в зависимости от их возраста.

№ Возраст животных Титр IgG антител 1 15-18 дней 6400 2 28-35 дней 5572 3 50-60 дней 4222

Таким образом, как видно из представленных данных разработанное иммунобиологическое средство индуцирует развитие гуморального иммунного ответа как у взрослых, так и у молодых мышей различного возраста. Это позволяет предположить, что средство будет эффективно для использования у людей различных возрастных категорий.

Пример 10. Исследование иммуногенности разработанного средства на молодых мышах по оценке клеточного иммунного ответа после однократной вакцинации.

Для исследования иммуногенности разработанного средства были использованы молодые мыши BALB/c (21-28 дней.). Животные были распределены на группы по 5 шт, которым вводили однократно следующие средства:

Ad26-CMV-S-CoV2, внутримышечно (в/м), в дозе 10¹⁰ вч/100 мкл;

Ad5-CMV-S-CoV2, внутримышечно (в/м), в дозе 10¹⁰ вч/100 мкл.

Напряженность клеточного иммунитета определяли путем оценки количества пролиферирующих CD4+ и CD8+ лимфоцитов выделенных из селезенки мыгей в культуре in vitro после повторной рестимуляции клеток рекомбинантным S белком SARS-CoV-2. Перед иммунизацией, а также через 14 дней, у животных отбирали селезенки, из которых выделяли мононуклеарные клетки методом центрифугирования в градиенте плотности раствора фиколла (1,09 g/mL; ПанЭко). Далее выделенные клетки окрашивали флуоресцентным красителем CFSE (Invivogen, США) и высевали на лунки 96л планшета (2*10⁵ кл/лунку). Затем проводили повторную стимуляцию лимфоцитов в условиях in vitro добавлением в культуральную среду S белка коронавируса (конечная концентрация белка 1мкг/мл). В качестве отрицательного контроля использовали интактные клетки, к которым не добавляли антиген.

Для определения % пролиферирующих клеток проводили их окрашивание антителами против маркерных молекул Т лимфоцитов CD3, CD4, CD8 (BDBioscienses, США). Пролиферирующие (с меньшим количеством красителя CFSE клеток) CD4+ и CD8+ Т лимфоциты определяли в клеточной смеси с использованием проточного цитофлюориметра BD FACS AriaIII (BD Biosciences, США). Результирующий процент пролиферирующих клеток в каждом образце определяли путем вычитания результата, полученного при анализе интактных клеток из результата, полученного при анализе клеток рестимулированных антигеном S коронавируса.

Результаты (с проведенной статистической обработкой) определения процента пролиферирующих CD4+ и CD8+ Т лимфоцитов на 1 день (до иммунизации) и на 14 день исследования представлены на фиг. 1 (Ad26-CMV-S-CoV2) и фиг. 2 (Ad5-CMV-S-CoV2).

Полученные данные показали, что однократная иммунизация мышей разработанным средством позволяет достоверно повысить процент пролиферирующих CD4+ и CD8+ Т лимфоцитов после антигенной рестимуляции на 14 день после иммунизации.

Таким образом, можно заключить, что однократная иммунизация мышей разработанным иммунобиологическим средством способна приводить к формированию напряженного поствакцинального клеточного иммунитета.

Пример 11. Исследование иммуногенности разработанного средства на молодых мышах при различных способах введения.

Для исследования иммуногенности разработанного средства были использованы молодые мыши BALB/c(21-28 дней.). Животные были распределены на группы по 5 шт, которым вводили следующие средства:

Ad26-CMV-S-CoV2,внутримышечно (в/м), в дозе 10⁹ вч/100 мкл

Ad26-CAG-S-CoV2,внутримышечно, в дозе 10⁹ вч/100 мкл

Ad26-EF1-S-CoV2,внутримышечно, в дозе 10⁹ вч/100 мкл

Ad5-CMV-S-CoV2,внутримышечно, в дозе 10⁹ вч/100 мкл

Ad5-CAG-S-CoV2,внутримышечно, в дозе 10⁹ вч/100 мкл

Ad5-EF1-S-CoV2,внутримышечно, в дозе 10⁹ вч/100 мкл

simAd25-CMV-S-CoV2,внутримышечно, в дозе 10⁹ вч/100 мкл

simAd25-CAG-S-CoV2,внутримышечно, в дозе 10⁹ вч/100 мкл

simAd25-EF1-S-CoV2,внутримышечно, в дозе 10⁹ вч/100 мкл

Ad26-CMV-S-CoV2,интраназально (ин), в дозе 10⁹ вч/100 мкл

Ad26-CAG-S-CoV2,интраназально, в дозе 10⁹ вч/100 мкл

Ad26-EF1-S-CoV2,интраназально, в дозе 10⁹ вч/100 мкл

Ad5-CMV-S-CoV2,интраназально, в дозе 10⁹ вч/100 мкл

Ad5-CAG-S-CoV2,интраназально, в дозе 10⁹ вч/100 мкл

Ad5-EF1-S-CoV2,интраназально, в дозе 10⁹ вч/100 мкл

simAd25-CMV-S-CoV2,интраназально, в дозе 10⁹ вч/100 мкл

simAd25-CAG-S-CoV2,интраназально, в дозе 10⁹ вч/100 мкл

simAd25-EF1-S-CoV2,интраназально, в дозе 10⁹ вч/100 мкл.

Через 21 день у животных отбирали кровь, выделяли сыворотку крови и определяли титр IgG антител к Sбелку вируса SARS-CoV-2 методом иммуноферментного анализа. Для этого:

Антиген адсорбировали на лунках 96-луночного планшета для ИФА в течение 16 часов при температуре +4°С.

Далее для избавления от неспецифического связывания в лунки планшета добавляли 5 % молоко в TPBS 100 мкл/лунку. Инкубировали на шейкере при температуре 37°C на протяжении часа.

Методом 2-кратных разведений разводили образцы сыворотки иммунизированных мышей. Всего было приготовлено 12 разведений каждого образца.

Добавляли по 50 мкл каждого разведенного образца сыворотки в лунки планшета.

Далее проводили инкубацию в течение 1 часа при 37°С.

После инкубации проводилась трехкратная промывка лунок фосфатным буфером.

Затем добавляли вторичные антитела против иммуноглобулинов мыши, конъюгированные с пероксидазой хрена.

Далее проводили инкубацию в течение 1 часа при 37°С.

После инкубации проводилась трехкратная промывка лунок фосфатным буфером

Затем добавили раствор тетраметилбензидина (ТМВ), который является субстратом пероксидазы хрена и в результате реакции превращается в окрашенное соединение. Реакцию останавливали через 15 минут добавлением серной кислоты. Далее с помощью спектрофотометра измеряли оптическую плотность раствора (OD) в каждой лунке при длине волны 450 нм.

Титр IgG антител определяли, как последнее разведение, в котором оптическая плотность раствора была достоверно выше, чем в группе отрицательного контроля. Полученные результаты (среднее геометрическое значение) представлены в таблице 5.

Таблица 5. Титр IgG антител к белку S в сыворотке крови мышей (среднее геометрическое значение титра антител).

Группа животных Титр IgG антител 1 Ad26-CMV-S-CoV2, в/м 696 2 Ad26-CAG-S-CoV2, в/м 528 3 Ad26-EF1-S-CoV2 в/м 459 4 Ad5-CMV-S-CoV2, в/м 9701 5 Ad5-CAG-S-CoV2, в/м 11143 6 Ad5-EF1-S-CoV2, в/м 14703 7 simAd25-CMV-S-CoV2, в/м 3676 8 simAd25-CAG-S-CoV2, в/м 5572 9 simAd25-EF1-S-CoV2, в/м 3676 10 Ad26-CMV-S-CoV2, ин 230 11 Ad26-CAG-S-CoV2, ин 200 12 Ad26-EF1-S-CoV2, ин 174 13 Ad5-CMV-S-CoV2, ин 606 14 Ad5-CAG-S-CoV2, ин 459 15 Ad5-EF1-S-CoV2, ин 459 16 simAd25-CMV-S-CoV2, ин 459 17 simAd25-CAG-S-CoV2, ин 400 18 simAd25-EF1-S-CoV2, ин 303

Как видно из представленных данных, однократная иммунизация разработанным средством индуцирует гуморальный иммунный ответ к гликопротеину SARS-CoV-2.

Пример 12. Исследование иммуногенности разработанного средства при введении молодым животным в различных дозах.

Целью данного исследования являлось оценка гуморального иммунного ответа к Sбелку SARS-CoV-2 при введении разработанного средства в различных дозах молодым животным.

Для исследования иммуногенности разработанного средства были использованы молодые мыши линии С57/Bl6 (3-4 нед). Животные были распределены на группы по 5 шт, которым вводили следующие средства внутримышечно, двукратно с интервалом 28 дней:

Ad5-CMV-S-CoV2, 5*10⁹ вч/100 мкл,

Ad5-CMV-S-CoV2, 10¹⁰ вч/100 мкл,

Ad5-CMV-S-CoV2, 5*10¹⁰ вч/100 мкл.

Через 21 день у животных отбирали кровь, выделяли сыворотку крови и определяли титр IgG антител к Sбелку вируса SARS-CoV-2 методом иммуноферментного анализа. Для этого:

Антиген адсорбировали на лунках 96-луночного планшета для ИФА в течение 16 часов при температуре +4°С.

Далее для избавления от неспецифического связывания в лунки планшета добавляли 5% молоко в TPBS 100 мкл/лунку. Инкубировали на шейкере при температуре 37°C на протяжении часа.

Образцы сыворотки иммунизированных мышей разводили в 100 раз и далее методом 2-кратных разведений. Всего было приготовлено 12 разведений каждого образца.

Добавляли по 50 мкл каждого разведенного образца сыворотки в лунки планшета.

Далее проводили инкубацию в течение 1 часа при 37°С.

После инкубации проводилась трехкратная промывка лунок фосфатным буфером.

Затем добавляли вторичные антитела против иммуноглобулинов мыши, конъюгированные с пероксидазой хрена.

Далее проводили инкубацию в течение 1 часа при 37°С.

После инкубации проводилась трехкратная промывка лунок фосфатным буфером

Затем добавили раствор тетраметилбензидина (ТМВ), который является субстратом пероксидазы хрена и в результате реакции превращается в окрашенное соединение. Реакцию останавливали через 15 минут добавлением серной кислоты. Далее с помощью спектрофотометра измеряли оптическую плотность раствора (OD) в каждой лунке при длине волны 450 нм.

Титр антител определяли, как последнее разведение, в котором оптическая плотность раствора была достоверно выше, чем в группе отрицательного контроля. Полученные результаты (среднее геометрическое значение) представлены в таблице 6.

Таблица 6. ТитрIgG антител к белку S в сыворотке крови мышей (среднее геометрическое значение титра антител).

Группа животных Титр IgG антител 1 Ad5-CMV-S-CoV2, 5*10⁹ вч/100 мкл 22286 2 Ad5-CMV-S-CoV2, 10¹⁰ вч/100 мкл 44572 3 Ad5-CMV-S-CoV2, 5*10¹⁰ вч/100 мкл 117627

Как видно из представленных данных, разработанное средство проявляет иммуногенность во всем диапазоне выбранных доз.

Пример 13. Исследование иммуногенности разработанного средства на молодых мышах при различных схемах введения.

Для исследования иммуногенности разработанного средства были использованы молодые мыши (3-4 нед.). Животные были распределены на группы по 5 шт, которым вводили следующие средства:

Ad26-CMV-S-CoV2, в/м, 10⁹вч/100 мкл; через 3 неделиAd26-CMV-S-CoV2в/м, 10⁹вч/100 мкл;

Ad26-CMV-S-CoV2, в/м, 10⁹вч/100 мкл; через 3 неделиAd5-CMV-S-CoV2в/м, 10⁹вч/100 мкл;

Ad26-CMV-S-CoV2, ин, 10⁹вч/100 мкл; через 3 неделиAd5-CMV-S-CoV2в/м, 10⁹вч/100 мкл;

Ad26-CMV-S-CoV2, в/м, 10⁹вч/100 мкл; через 3 недели simAd5-CMV-S-CoV2в/м, 10⁹вч/100 мкл;

Ad5-CMV-S-CoV2, в/м, 10⁹вч/100 мкл; через 3 неделиAd5-CMV-S-CoV2 в/м, 10⁸вч/100 мкл;

Ad5-CMV-S-CoV2, в/м, 10⁹вч/100 мкл; через 3 неделиAd26-CMV-S-CoV2в/м, 10⁹вч/100 мкл;

Ad5-CMV-S-CoV2, ин, 10⁹вч/100 мкл; через 3 неделиAd26-CMV-S-CoV2в/м, 10⁹вч/100 мкл;

Ad5-CMV-S-CoV2, в/м, 10⁹вч/100 мкл;через 3 неделиsimAd5-CMV-S-CoV2в/м, 10⁹вч/100 мкл;

simAd25-CMV-S-CoV2, в/м, 10⁹вч/100 мкл; через 3 неделиsimAd5-CMV-S-CoV2в/м, 10⁹вч/100 мкл;

simAd25-CMV-S-CoV2, в/м, 10⁹вч/100 мкл; через 3 недели Ad5-CMV-S-CoV2 в/м, 10⁹вч/100 мкл;

simAd25-CMV-S-CoV2, в/м, 10⁹вч/100 мкл; через 3 недели Ad26-CMV-S-CoV2, в/м, 10⁹вч/100 мкл.

Через 21 день у животных отбирали кровь, выделяли сыворотку крови и определяли титр IgG антител к S белку вируса SARS-CoV-2 методом иммуноферментного анализа. Для этого:

Антиген адсорбировали на лунках 96-луночного планшета для ИФА в течение 16 часов при температуре +4°С.

Далее для избавления от неспецифического связывания в лунки планшета добавляли 5% молоко в TPBS 100 мкл/лунку. Инкубировали на шейкере при температуре 37°C на протяжении часа.

Методом 2-х кратных разведений разводили образцы сыворотки иммунизированных мышей. Всего было приготовлено 12 разведений каждого образца.

Добавляли по 50 мкл каждого разведенного образца сыворотки в лунки планшета.

Далее проводили инкубацию в течение 1 часа при 37°С.

После инкубации проводилась трехкратная промывка лунок фосфатным буфером.

Затем добавляли вторичные антитела против иммуноглобулинов мыши, конъюгированные с пероксидазой хрена.

Далее проводили инкубацию в течение 1 часа при 37°С.

После инкубации проводилась трехкратная промывка лунок фосфатным буфером

Затем добавили раствор тетраметилбензидина (ТМВ), который является субстратом пероксидазы хрена и в результате реакции превращается в окрашенное соединение.

Реакцию останавливали через 15 минут добавлением серной кислоты. Далее с помощью спектрофотометра измеряли оптическую плотность раствора (OD) в каждой лунке при длине волны 450 нм.

Титр антител определяли, как последнее разведение, в котором оптическая плотность раствора была достоверно выше, чем в группе отрицательного контроля. Полученные результаты (среднее геометрическое значение) представлены в таблице 7.

Таблица 7. Титр IgGантител к белку S в сыворотке крови мышей (среднее геометрическое значение титра антител).

Группа животных Титр IgG антител 1 Ad26-CMV-S-CoV2 в/м, Ad26-CMV-S-CoV2 в/м 11143 2 Ad26-CMV-S-CoV2, в/м, Ad5-CMV-S-CoV2 в/м 29407 3 Ad26-CMV-S-CoV2, ин, Ad5-CMV-S-CoV2 в/м 22286 4 Ad26-CMV-S-CoV2, в/м, simAd5-CMV-S-CoV2 в/м 14703 5 Ad5-CMV-S-CoV2, в/м, Ad5-CMV-S-CoV2 в/м 16890 6 Ad5-CMV-S-CoV2, в/м, Ad26-CMV-S-CoV2 в/м 33779 7 Ad5-CMV-S-CoV2, ин, Ad26-CMV-S-CoV2 в/м 25600 8 Ad5-CMV-S-CoV2, в/м, simAd5-CMV-S-CoV2 в/м 14703 9 simAd5-CMV-S-CoV2, в/м, simAd5-CMV-S-CoV2 в/м 12800 10 simAd5-CMV-S-CoV2, в/м, Ad5-CMV-S-CoV2 в/м 16890 11 simAd5-CMV-S-CoV2, в/м, Ad26-CMV-S-CoV2, в/м 14703

Полученные результаты показывают, что разработанное средство обеспечивает развитие гуморального иммунного ответа против SARS-CoV-2 у молодых животных при различных схемах введения.

Пример 14. Исследование безопасности использования разработанного средства для индукции специфического иммунитета против вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 для детей.

В данном исследовании приняли участие 100 добровольцев в возрасте от 12 до 17 лет. Предполагаемая схема иммунизации включала последовательное внутримышечное введение компонента 1 и компонента 2 фармацевтического средства по варианту 1 (Ad26-CMV-S-CoV2, Ad5-CMV-S-CoV2).Один доброволец выбыл до введения компонента 1 по причине впервые диагностированной артериальной гипертензии, соответственно 99 добровольцев начали исследуемую терапию. Так же компонент 2 не получили: 1 человек - по причине неявки, 1 человек - по причине нежелательного явления (лейкопения), 1 человек - по причине кишечной инфекции неустановленной этиологии (по типу энтеровирусной), 1 человек - по причине госпитализации с гнойным фурункулом через 5 дней после введения компонента, 1 человек - по причине госпитализации (кишечная инфекция) и 1 человек - по причине заболевание ковидом, 2 человека - отказались от участия. Соответственно, оба компонента вакцины получил 91 доброволец.

Было зарегистрировано 205 НЯ, развившихся у 73 добровольцев (73,0%) после введения вакцины. В таблице 8 приведено число (доля) добровольцев с наличием НЯ в каждой группе по классу системы органов (SOC) и предпочтительному термину (PT) в соответствии со словарем MedDRA, а также по связи с исследуемым препаратом и степени тяжести. Межгрупповое сравнение частоты развития НЯ было проведено с помощью χ2-критерия и при необходимости точного тест Фишера, если ожидаемая частота в какой-либо из ячеек была менее 5. Анализ не выявил статистически значимых отличий по частоте возникновения отдельных НЯ между группами.

Таблица 8. Нежелательные явления, зарегистрированные в анализируемый период, по классам систем органов, предпочтительным терминам и группам (FAS-популяция)

Описание Группа 1 (дозировка 1/10)
N=50 Группа 2 (дозировка 1/5)
N=50 Всего
N = 100 p-value N % N % N % Любой PT 37 74,0 36 72,0 73 73,0 0,822 Общие нарушения и реакции в месте введения (78 эпизодов НЯ) Боль в месте инъекции 15 30,0 11 22,0 26 26,0 0,362 Болезненные ощущения (1) 7 14,0 7 14,0 14 14,0 1,000 Гипертермия 5 10,0 3 6,0 8 8,0 0,715 Гриппоподобное заболевание 3 6,0 5 10,0 8 8,0 0,715 Эритема в месте инъекции 4 8,0 0 0,0 4 4,0 0,117 Зуд в месте инъекции 1 2,0 0 0,0 1 1,0 1,000 Местное повышение температуры в месте введения 1 2,0 0 0,0 1 1,0 1,000 Озноб 1 2,0 0 0,0 1 1,0 1,000 Отек в месте инъекции 1 2,0 0 0,0 1 1,0 1,000 Пирексия 0 0,0 1 2,0 1 1,0 1,000 Всего в системе органов 29 58,0 23 46,0 52 52,0 0,230 Лабораторные и инструментальные данные (76 эпизодов НЯ) Снижение числа нейтрофилов 17 34,0 18 36,0 35 35,0 0,834 Положительный результат анализа мочи на эритроциты 8 16,0 5 10,0 13 13,0 0,372 Повышение уровня билирубина в крови 3 6,0 2 4,0 5 5,0 1,000 Наличие белка в моче 1 2,0 2 4,0 3 3,0 1,000 Снижение уровня гемоглобина 1 2,0 2 4,0 3 3,0 1,000 Наличие лейкоцитов в моче 1 2,0 1 2,0 2 2,0 1,000 Повышение уровня щелочной фосфатазы в крови 1 2,0 1 2,0 2 2,0 1,000 Снижение числа лимфоцитов 1 2,0 1 2,0 2 2,0 1,000 Снижение числа тромбоцитов 1 2,0 1 2,0 2 2,0 1,000 Исследование на бактерии (2) 0 0,0 1 2,0 1 1,0 1,000 Наличие глюкозы в моче 1 2,0 0 0,0 1 1,0 1,000 Наличие цилиндров в моче 0 0,0 1 2,0 1 1,0 1,000 Повышение скорости оседания эритроцитов 1 2,0 0 0,0 1 1,0 1,000 Повышение уровня лактатдегидрогеназы в крови 0 0,0 1 2,0 1 1,0 1,000 Повышение уровня холестерина в крови 1 2,0 0 0,0 1 1,0 1,000 Повышение числа лейкоцитов 0 0,0 1 2,0 1 1,0 1,000 Повышение числа эритроцитов 1 2,0 0 0,0 1 1,0 1,000 Всего в системе органов 25 50,0 23 46,0 48 48,0 0,689 Нарушения со стороны нервной системы (18 эпизодов НЯ) Головная боль 5 10,0 4 8,0 9 9,0 1,000 Сомнолентность 4 8,0 1 2,0 5 5,0 0,362 Головокружение 1 2,0 1 2,0 2 2,0 1,000 Всего в системе органов 9 18,0 5 10,0 14 14,0 0,249 Нарушения со стороны мышечной, скелетной и соединительной ткани (9 эпизодов НЯ) Боль в конечности 0 0,0 3 6,0 3 3,0 0,242 Миалгия 2 4,0 1 2,0 3 3,0 1,000 Артралгия 0 0,0 1 2,0 1 1,0 1,000 Всего в системе органов 2 4,0 5 10,0 7 7,0 0,436 Желудочно-кишечные нарушения (6 эпизодов НЯ) Боль в животе 0 0,0 3 6,0 3 3,0 0,242 Рвота 1 2,0 1 2,0 2 2,0 1,000 Сухость во рту 1 2,0 0 0,0 1 1,0 1,000 Всего в системе органов 2 4,0 3 6,0 5 5,0 1,000 Нарушения со стороны дыхательной системы, органов грудной клетки и средостения (5 эпизодов НЯ) Заложенность носа 3 6,0 0 0,0 3 3,0 0,242 Боль в ротоглотке (орофарингеальная) 0 0,0 1 2,0 1 1,0 1,000 Ринорея 1 2,0 0 0,0 1 1,0 1,000 Всего в системе органов 3 6,0 1 2,0 4 4,0 0,617 Инфекции и инвазии (3 эпизода НЯ) Ротавирусная инфекция 1 2,0 0 0,0 1 1,0 1,000 Фурункул (3) 1 2,0 0 0,0 1 1,0 1,000 Энтеровирусная инфекция 0 0,0 1 2,0 1 1,0 1,000 Всего в системе органов 2 4,0 1 2,0 3 3,0 1,000 Нарушения со стороны сосудов (3 эпизода НЯ) Влагалищное кровоизлияние (4) 1 2,0 0 0,0 1 1,0 1,000 Геморрой 1 2,0 0 0,0 1 1,0 1,000 Гиперемия 1 2,0 0 0,0 1 1,0 1,000 Всего в системе органов 3 6,0 0 0,0 3 3,0 0,242 Нарушения метаболизма и питания (1 эпизод НЯ) Снижение аппетита 1 2,0 0 0,0 1 1,0 1,000 Нарушения со стороны кожи и подкожной клетчатки (1 эпизод НЯ) Сыпь 0 0,0 1 2,0 1 1,0 1,000 Нарушения со стороны крови и лимфатической системы (1 эпизод НЯ) Лейкопения 0 0,0 1 2,0 1 1,0 1,000 Нарушения со стороны органа слуха и лабиринта (1 эпизод НЯ) Ушная боль 1 2,0 0 0,0 1 1,0 1,000 Нарушения со стороны почек и мочевыводящих путей (1 эпизод НЯ) Поллакиурия 0 0,0 1 2,0 1 1,0 1,000 Психические расстройства (1 эпизод НЯ) Паническая атака 0 0,0 1 2,0 1 1,0 1,000 Травмы, интоксикации и осложнения процедур (1 эпизод НЯ) Пищевое отравление 1 2,0 0 0,0 1 1,0 1,000 Примечания:
Результаты представлены в форме: число субъектов, у которых зарегистрировано нежелательные явления (НЯ), процент от популяции безопасности в данной группе.
1 Повышенная чувствительность в месте инъекции. PT «Болезненные ощущения» соответствует PT «Tenderness [10043224]».
2 PT «Исследование на бактерии» соответствует LLT «Наличие бактерий в моче [10060857]».
3 PT «Фурункул» соответствует LLT «Фурункул уха [10017556]», НЯ - «Фурункул ушной раковины слева».
4 PT «Влагалищное кровоизлияние» соответствует LLT «Кровянистые выделения из влагалища [10049851]».

В ходе исследования отмечались нежелательные явления (НЯ) в следующих категориях:

1) Общие нарушения и реакции в месте введения - 76 НЯ:

1/10 дозы: 35 случаев

1/5 дозы: 22 случая

2) Системные реакции - 54 НЯ

1/10 дозы: 29 случаев

1/5 дозы: 25 случаев

3) Лабораторные отклонения - 76 НЯ

1/10 дозы: 44 случая

1/5 дозы: 32 случая.

При этом связанными с исследуемым препаратом (т.к. оценка связи «возможная», «вероятная» или «определенная») были следующие НЯ: болезненность в месте инъекции, гриппоподобный синдром, утомляемость, субфебрильная температура, чувство жара, заложенность носа возникла сразу после инъекции вакцины, головная боль, боль в горле, кашель, ломота в суставах, общая слабость, боль в животе, паническая атака, снижение нейтрофилов, повышение уровня билирубин.

Для остальных НЯ связь была указана как «сомнительная» или «нет связи». Аллергические реакции на исследуемый препарат не отмечались.

В целом можно сказать, что выявленные в ходе исследования нежелательные явления характерны для большинства вакцинных лекарственных препаратов. Случаев развития нежелательных явлений, угрожающих жизни не было зарегистрировано.

Пример 16. Определение эффективности иммунизации детей разработанным фармацевтическим средством, по оценке напряженности гуморального иммунитета.

В данном исследовании приняло участие 95 детей в возрасте от 12 до 18 лет. Напряженность гуморального иммунитета определяли путем оценки титра IgG антител, специфичных к RBD домену S белка вируса SARS-CoV-2. Участники исследования были разделены на две группы:

последовательное внутримышечное введение компонента 1 и компонента 2 фармацевтического средства по варианту 1 (Ad26-CMV-S-CoV2, Ad5-CMV-S-CoV2) в дозе 1×10¹⁰ вирусных частиц/1 мл, 47 человек.

последовательное внутримышечное введение компонента 1 и компонента 2 фармацевтического средства по варианту 1 (Ad26-CMV-S-CoV2, Ad5-CMV-S-CoV2) в дозе 2×10¹⁰ вирусных частиц/1 мл, 48 человек.

В качестве референса использовались образцы тех же добровольцев, взятые на 1 день исследования до вакцинации.

Оценка титра антиген-специфичного IgG в первой группе проводили на 21, 28 и 42 дни исследования, а во второй группе на 21 и 28 дни исследования.

Титр антител определяли с помощью тест-системы для иммуноферментного анализа, которая позволяет определять титр IgG к RBD домену S антигена вируса SARS-CoV-2.

Планшеты с предварительно адсорбированным RBD (100 нг/лунку) промывали 5 раз промывочным буфером. Далее в лунки планшета вносили в 2 повторах по 100 мкл положительного контроля, а также в 2 повторах по 100 мкл отрицательного контроля. В остальные лунки планшета добавляли серию двукратных разведений исследуемых образцов (по два повтора на каждый образец). Планшет заклеивали пленкой и инкубировали в течение 1 ч при температуре +37°С при перемешивании со скоростью 300 об/минуту. Далее лунки промывали 5 раз рабочим раствором буфера для промывания. Затем в каждую лунку добавляли по 100 мкл рабочего раствора конъюгата моноклональных антител, планшет закрывали липкой пленкой и инкубировали в течение 1 часа при температуре +37°С при перемешивании со скоростью 300 об/минуту. Далее лунки промывали 5 раз рабочим раствором буфера для промывания. Затем в каждую лунку вносили по 100 мкл хромоген-субстратного раствора и инкубировали в течение 15 минут в темном месте при температуре от +20°С. После этого останавливали реакцию добавлением в каждую лунку по 50 мкл стоп-реагента (1М раствор серной кислоты). Результат учитывали в течение 10 мин после остановки реакции путем измерения на спектрофотометре оптической плотности при длине волны 450 нм.

Титр IgG определяли как максимальное разведение сыворотки, при котором значение OD450 сыворотки иммунизированного участника превышает значение контрольной сыворотки (сыворотка участника до иммунизации) более чем в 2 раза.

Результаты определения титра RBD-специфичных IgG антител в первой группе (1×10¹⁰ вирусных частиц/дозу) представлено на Фиг. 3. Как видно из представленных данных, титр антител, специфичных к RBD-домену S белка вируса SARS-Cov2, постепенно нарастает после проведения вакцинации, достигая максимального значения на 42 день. Реципроктное среднее геометрическое в данной точке 13192.К 42 дню исследования сероконверсия наблюдалась у всех 47 добровольцев, составляющих данную группу.

Результаты определения титра RBD-специфичных IgG антител во второй группе (2×10¹⁰ вирусных частиц/дозу) представлено на Фиг. 4. Как видно из представленных данных, титр антител, специфичных к RBD-домену S белка вируса SARS-Cov2, постепенно нарастает после проведения вакцинации 1/5 полной терапевтической дозой вакцины для взрослых, достигая максимального значения на 42 день. Реципроктное среднее геометрическое в данной точке 19292. К 42 дню исследования сероконверсия наблюдалась у всех 49 добровольцев, составляющих данную группу.

Таким образом, результаты проведенного исследования показали, что вакцинация детей разработанным иммунобиологическим средством способна приводить к формированию напряженного поствакцинального гуморального иммунитета.

Пример 15. Определение эффективности иммунизации детей разработанным фармацевтическим средством, по оценке напряженности клеточного иммунитета.

В данном исследовании приняло участие 95 детей в возрасте от 12 до 18 лет. Участники исследования были разделены на две группы:

последовательное внутримышечное введение компонента 1 и компонента 2 фармацевтического средства по варианту 1 (Ad26-CMV-S-CoV2, Ad5-CMV-S-CoV2) в дозе 1×10¹⁰ вирусных частиц/1 мл, 47 человек.

последовательное внутримышечное введение компонента 1 и компонента 2 фармацевтического средства по варианту 1 (Ad26-CMV-S-CoV2, Ad5-CMV-S-CoV2) в дозе 2×10¹⁰ вирусных частиц/1 мл, 48 человек.

Напряженность клеточного иммунитета определяли путем оценки количества пролиферирующих CD4+ и CD8+ лимфоцитов периферической крови добровольцев в культуре in vitro после повторной рестимуляции клеток рекомбинантным S белком SARS-CoV-2. Перед иммунизацией, а также через 28 дней, у пациентов отбирали образцы крови, из которых выделяли мононуклеарные клетки методом центрифугирования в градиенте плотности раствора фиколла (1,077 g/mL; ПанЭко). Далее выделенные клетки окрашивали флуоресцентным красителем CFSE (Invivogen, США) и высевали на лунки 96л планшета (2*10⁵ кл/лунку). Затем проводили повторную стимуляцию лимфоцитов в условиях in vitro добавлением в культуральную среду S белка коронавируса (конечная концентрация белка 1мкг/мл). В качестве отрицательного контроля использовали интактные клетки, к которым не добавляли антиген. Через 72 часа после добавления антигена проводили измерение % пролиферирующих клеток, а культуральную среду отбирали для измерения количества гамма-интерферона.

Для определения % пролиферирующих клеток проводили их окрашивание антителами против маркерных молекул Т лимфоцитов CD3, CD4, CD8 (anti-CD3 Pe-Cy7 (BDBiosciences, клон SK7), anti-CD4 APC (BDBiosciences, клон SK3), anti-CD8 PerCP-Cy5.5 (BDBiosciences, клон SK1)). Пролиферирующие (с меньшим количеством красителя CFSE клеток) CD4+ и CD8+ Т лимфоциты определяли в клеточной смеси с использованием проточного цитофлюориметра BD FACS AriaIII (BDBiosciences, США). Результирующий процент пролиферирующих клеток в каждом образце определяли путем вычитания результата, полученного при анализе интактных клеток из результата, полученного при анализе клеток рестимулированных антигеном S коронавируса.

Результаты (с проведенной статистической обработкой) определения процента пролиферирующих CD4+ и CD8+ Т лимфоцитов на 1 день (до иммунизации) и на 28 день исследования представлены на фиг. 5 и фиг. 6.

Полученные данные показали, что иммунизация детей разработанным средством в обеих выбранных дозах позволяет достоверно повысить процент пролиферирующих CD4+ и CD8+ Т лимфоцитов после антигенной рестимуляции на 28 день после вакцинации.

Исходя из полученных данных, можно заключить, что двукратная вакцинация детей разработанным иммунобиологическим средством способна приводить к формированию напряженного поствакцинального клеточного иммунитета.

Таким образом, представленные примеры подтверждают, что в результате проведенной работы было создано безопасное и эффективное средство, которое обеспечивает развитие реакций гуморального и клеточного иммунного ответа против вируса SARS-CoV-2 у детей старше 1 месяца.

Промышленная применимость

Все приведенные примеры подтверждают эффективность разработанных средств, обеспечивающих эффективную индукцию иммунного ответа против вируса SARS-CoV-2 у детей старше 1 месяца и промышленную применимость.

--->

ПЕРЕЧЕНЬ ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЕЙ

<110> ФГБУ "НИЦЭМ им. Н.Ф.Гамалеи" Минздрава России

<120> Применение средства для индукции специфического иммунитета против

вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 у детей.

<160> 4

<170> BISSAP1.3.6

<210> 1

<211> 4711

<212> DNA

<213> Artificial Sequence

<220>

<400> 1

atagtaatca attacggggt cattagttca tagcccatat atggagttcc gcgttacata 60

acttacggta aatggcccgc ctggctgacc gcccaacgac ccccgcccat tgacgtcaat 120

aatgacgtat gttcccatag taacgccaat agggactttc cattgacgtc aatgggtgga 180

gtatttacgg taaactgccc acttggcagt acatcaagtg tatcatatgc caagtacgcc 240

ccctattgac gtcaatgacg gtaaatggcc cgcctggcat tatgcccagt acatgacctt 300

atgggacttt cctacttggc agtacatcta cgtattagtc atcgctatta ccatggtgat 360

gcggttttgg cagtacatca atgggcgtgg atagcggttt gactcacggg gatttccaag 420

tctccacccc attgacgtca atgggagttt gttttggcac caaaatcaac gggactttcc 480

aaaatgtcgt aacaactccg ccccattgac gcaaatgggc ggtaggcgtg tacggtggga 540

ggtctatata agcagagctg gtttagtgaa ccgtcagatc cgctagagat ctggtaccgt 600

cgacgcggcc gctcgagcct aagcttggta ccatgtttgt gttccttgtg ttattgccac 660

tagtctctag tcagtgtgtg aacctgacca caagaaccca gctgcctcca gcctacacca 720

acagctttac cagaggcgtg tactaccccg acaaggtgtt cagatccagc gtgctgcact 780

ctacccagga cctgttcctg cctttcttca gcaacgtgac ctggttccac gccatccacg 840

tgtccggcac caatggcacc aagagattcg acaaccccgt gctgcccttc aacgacgggg 900

tgtactttgc cagcaccgag aagtccaaca tcatcagagg ctggatcttc ggcaccacac 960

tggacagcaa gacccagagc ctgctgatcg tgaacaacgc caccaacgtg gtcatcaaag 1020

tgtgcgagtt ccagttctgc aacgacccct tcctgggcgt ctactatcac aagaacaaca 1080

agagctggat ggaaagcgag ttccgggtgt acagcagcgc caacaactgc accttcgagt 1140

acgtgtccca gcctttcctg atggacctgg aaggcaagca gggcaacttc aagaacctgc 1200

gcgagttcgt gttcaagaac atcgacggct acttcaagat ctacagcaag cacaccccta 1260

tcaacctcgt gcgggatctg cctcagggct tctctgctct ggaacccctg gtggatctgc 1320

ccatcggcat caacatcacc cggtttcaga cactgctggc cctgcacaga agctacctga 1380

cacctggcga tagcagcagc ggatggacag ctggtgccgc cgcttactat gtgggctacc 1440

tgcagcctag aaccttcctg ctgaagtaca acgagaacgg caccatcacc gacgccgtgg 1500

attgtgctct ggatcctctg agcgagacaa agtgcaccct gaagtccttc accgtggaaa 1560

agggcatcta ccagaccagc aacttccggg tgcagcccac cgaatccatc gtgcggttcc 1620

ccaatatcac caatctgtgc cccttcggcg aggtgttcaa tgccaccaga ttcgcctctg 1680

tgtacgcctg gaaccggaag cggatcagca attgcgtggc cgactactcc gtgctgtaca 1740

actccgccag cttcagcacc ttcaagtgct acggcgtgtc ccctaccaag ctgaacgacc 1800

tgtgcttcac aaacgtgtac gccgacagct tcgtgatccg gggagatgaa gtgcggcaga 1860

ttgcccctgg acagacaggc aagatcgccg actacaacta caagctgccc gacgacttca 1920

ccggctgtgt gattgcctgg aacagcaaca acctggactc caaagtcggc ggcaactaca 1980

attacctgta ccggctgttc cggaagtcca atctgaagcc cttcgagcgg gacatctcca 2040

ccgagatcta tcaggccggc agcacccctt gtaacggcgt ggaaggcttc aactgctact 2100

tcccactgca gtcctacggc tttcagccca caaatggcgt gggctatcag ccctacagag 2160

tggtggtgct gagcttcgaa ctgctgcatg cccctgccac agtgtgcggc cctaagaaaa 2220

gcaccaatct cgtgaagaac aaatgcgtga acttcaactt caacggcctg accggcaccg 2280

gcgtgctgac agagagcaac aagaagttcc tgccattcca gcagtttggc cgggatattg 2340

ccgataccac agacgccgta cgagatcccc agacactgga aatcctggac atcacccctt 2400

gcagcttcgg cggagtgtct gtgatcaccc ctggcaccaa caccagcaat caggtggcag 2460

tgctgtacca ggacgtgaac tgtaccgaag tgcccgtggc cattcacgcc gatcagctga 2520

cacctacatg gcgggtgtac tccaccggca gcaatgtgtt tcagaccaga gccggctgtc 2580

tgatcggagc cgagcacgtg aacaatagct acgagtgcga catccccatc ggcgctggca 2640

tctgtgccag ctaccagaca cagacaaaca gccccagacg ggccagatct gtggccagcc 2700

agagcatcat tgcctacaca atgtctctgg gcgccgagaa cagcgtggcc tactccaaca 2760

actctatcgc tatccccacc aacttcacca tcagcgtgac cacagagatc ctgcctgtgt 2820

ccatgaccaa gaccagcgtg gactgcacca tgtacatctg cggcgattcc accgagtgct 2880

ccaacctgct gctgcagtac ggcagcttct gcacccagct gaatagagcc ctgacaggga 2940

tcgccgtgga acaggacaag aacacccaag aggtgttcgc ccaagtgaag cagatctaca 3000

agacccctcc tatcaaggac ttcggcggct tcaatttcag ccagattctg cccgatccta 3060

gcaagcccag caagcggagc ttcatcgagg acctgctgtt caacaaagtg acactggccg 3120

acgccggctt catcaagcag tatggcgatt gtctgggcga cattgccgcc agggatctga 3180

tttgcgccca gaagtttaac ggactgacag tgctgccacc actgctgacc gatgagatga 3240

tcgcccagta cacatctgcc ctgctggccg gcacaatcac aagcggctgg acatttggag 3300

ctggcgccgc tctgcagatc ccctttgcta tgcagatggc ctaccggttc aacggcatcg 3360

gagtgaccca gaatgtgctg tacgagaacc agaagctgat cgccaaccag ttcaacagcg 3420

ccatcggcaa gatccaggac agcctgagca gcacagcaag cgccctggga aagctgcagg 3480

acgtggtcaa ccagaatgcc caggcactga acaccctggt caagcagctg tcctccaact 3540

tcggcgccat cagctctgtg ctgaacgaca tcctgagcag actggacaag gtggaagccg 3600

aggtgcagat cgacagactg atcaccggaa ggctgcagtc cctgcagacc tacgttaccc 3660

agcagctgat cagagccgcc gagattagag cctctgccaa tctggccgcc accaagatgt 3720

ctgagtgtgt gctgggccag agcaagagag tggacttttg cggcaagggc taccacctga 3780

tgagcttccc tcagtctgcc cctcacggcg tggtgtttct gcacgtgaca tacgtgcccg 3840

ctcaagagaa gaatttcacc accgctccag ccatctgcca cgacggcaaa gcccactttc 3900

ctagagaagg cgtgttcgtg tccaacggca cccattggtt cgtgacccag cggaacttct 3960

acgagcccca gatcatcacc accgacaaca ccttcgtgtc tggcaactgc gacgtcgtga 4020

tcggcattgt gaacaatacc gtgtacgacc ctctgcagcc cgagctggac agcttcaaag 4080

aggaactgga taagtacttt aagaaccaca caagccccga cgtggacctg ggcgacatca 4140

gcggaatcaa tgccagcgtc gtgaacatcc agaaagagat cgaccggctg aacgaggtgg 4200

ccaagaatct gaacgagagc ctgatcgacc tgcaagaact ggggaagtac gagcagtaca 4260

tcaagtggcc ctggtacatc tggctgggct ttatcgccgg actgattgcc atcgtgatgg 4320

tcacaatcat gctgtgttgc atgaccagct gctgtagctg cctgaagggc tgttgtagct 4380

gtggcagctg ctgcaagttc gacgaggacg attctgagcc cgtgctcaaa ggagtcaaat 4440

tacattacac ataagatatc cgatccaccg gatctagata actgatcata atcagccata 4500

ccacatttgt agaggtttta cttgctttaa aaaacctccc acacctcccc ctgaacctga 4560

aacataaaat gaatgcaatt gttgttgtta acttgtttat tgcagcttat aatggttaca 4620

aataaagcaa tagcatcaca aatttcacaa ataaagcatt tttttcactg cattctagtt 4680

gtggtttgtc caaactcatc aatgtatctt a 4711

<210> 2

<211> 5984

<212> DNA

<213> Artificial Sequence

<220>

<400> 2

gacattgatt attgactagt tattaatagt aatcaattac ggggtcatta gttcatagcc 60

catatatgga gttccgcgtt acataactta cggtaaatgg cccgcctggc tgaccgccca 120

acgacccccg cccattgacg tcaataatga cgtatgttcc catagtaacg ccaataggga 180

ctttccattg acgtcaatgg gtggagtatt tacggtaaac tgcccacttg gcagtacatc 240

aagtgtatca tatgccaagt acgcccccta ttgacgtcaa tgacggtaaa tggcccgcct 300

ggcattatgc ccagtacatg accttatggg actttcctac ttggcagtac atctacgtat 360

tagtcatcgc tattaccatg gtcgaggtga gccccacgtt ctgcttcact ctccccatct 420

ccccccctcc cacccccaat tttgtattta tttatttttt aattattttg tgcagcgatg 480

ggggcggggg gggggggcgc gcgccaggcg gggcggggcg gggcgagggg cggggcgggg 540

cgaggcggag aggtgcggcg gcagccaatc agagcggcgc gctccgaaag tttcctttta 600

tggcgaggcg gcggcggcgg cggccctata aaaagcgaag cgcgcggcgg gcgggagtcg 660

ctgcgcgctg ccttcgcccc gtgccccgct ccgccgccgc ctcgcgccgc ccgccccggc 720

tctgactgac cgcgttactc ccacaggtga gcgggcggga cggcccttct cctccgggct 780

gtaattagcg cttggtttaa tgacggcttg tttcttttct gtggctgcgt gaaagccttg 840

aggggctccg ggagggccct ttgtgcgggg ggagcggctc ggggggtgcg tgcgtgtgtg 900

tgtgcgtggg gagcgccgcg tgcggctccg cgctgcccgg cggctgtgag cgctgcgggc 960

gcggcgcggg gctttgtgcg ctccgcagtg tgcgcgaggg gagcgcggcc gggggcggtg 1020

ccccgcggtg cgggggggct gcgaggggaa caaaggctgc gtgcggggtg tgtgcgtggg 1080

gggtgagcag ggggtgtggg cgcgtcggtc gggctgcaac cccccctgca cccccctccc 1140

cgagttgctg agcacggccc ggcttcgggt gcggggctcc gtacggggcg tggcgcgggg 1200

ctcgccgtgc cgggcggggg gtggcggcag gtgggggtgc cgggcggggc ggggccgcct 1260

cgggccgggg agggctcggg ggaggggcgc ggcggccccc ggagcgccgg cggctgtcga 1320

ggcgcggcga gccgcagcca ttgcctttta tggtaatcgt gcgagagggc gcagggactt 1380

cctttgtccc aaatctgtgc ggagccgaaa tctgggaggc gccgccgcac cccctctagc 1440

gggcgcgggg cgaagcggtg cggcgccggc aggaaggaaa tgggcgggga gggccttcgt 1500

gcgtcgccgc gccgccgtcc ccttctccct ctccagcctc ggggctgtcc gcggggggac 1560

ggctgccttc ggggggacgg ggcagggcgg ggttcggctt ctggcgtgtg accggcggct 1620

ctagaaagct tggtaccatg tttgtgttcc ttgtgttatt gccactagtc tctagtcagt 1680

gtgtgaacct gaccacaaga acccagctgc ctccagccta caccaacagc tttaccagag 1740

gcgtgtacta ccccgacaag gtgttcagat ccagcgtgct gcactctacc caggacctgt 1800

tcctgccttt cttcagcaac gtgacctggt tccacgccat ccacgtgtcc ggcaccaatg 1860

gcaccaagag attcgacaac cccgtgctgc ccttcaacga cggggtgtac tttgccagca 1920

ccgagaagtc caacatcatc agaggctgga tcttcggcac cacactggac agcaagaccc 1980

agagcctgct gatcgtgaac aacgccacca acgtggtcat caaagtgtgc gagttccagt 2040

tctgcaacga ccccttcctg ggcgtctact atcacaagaa caacaagagc tggatggaaa 2100

gcgagttccg ggtgtacagc agcgccaaca actgcacctt cgagtacgtg tcccagcctt 2160

tcctgatgga cctggaaggc aagcagggca acttcaagaa cctgcgcgag ttcgtgttca 2220

agaacatcga cggctacttc aagatctaca gcaagcacac ccctatcaac ctcgtgcggg 2280

atctgcctca gggcttctct gctctggaac ccctggtgga tctgcccatc ggcatcaaca 2340

tcacccggtt tcagacactg ctggccctgc acagaagcta cctgacacct ggcgatagca 2400

gcagcggatg gacagctggt gccgccgctt actatgtggg ctacctgcag cctagaacct 2460

tcctgctgaa gtacaacgag aacggcacca tcaccgacgc cgtggattgt gctctggatc 2520

ctctgagcga gacaaagtgc accctgaagt ccttcaccgt ggaaaagggc atctaccaga 2580

ccagcaactt ccgggtgcag cccaccgaat ccatcgtgcg gttccccaat atcaccaatc 2640

tgtgcccctt cggcgaggtg ttcaatgcca ccagattcgc ctctgtgtac gcctggaacc 2700

ggaagcggat cagcaattgc gtggccgact actccgtgct gtacaactcc gccagcttca 2760

gcaccttcaa gtgctacggc gtgtccccta ccaagctgaa cgacctgtgc ttcacaaacg 2820

tgtacgccga cagcttcgtg atccggggag atgaagtgcg gcagattgcc cctggacaga 2880

caggcaagat cgccgactac aactacaagc tgcccgacga cttcaccggc tgtgtgattg 2940

cctggaacag caacaacctg gactccaaag tcggcggcaa ctacaattac ctgtaccggc 3000

tgttccggaa gtccaatctg aagcccttcg agcgggacat ctccaccgag atctatcagg 3060

ccggcagcac cccttgtaac ggcgtggaag gcttcaactg ctacttccca ctgcagtcct 3120

acggctttca gcccacaaat ggcgtgggct atcagcccta cagagtggtg gtgctgagct 3180

tcgaactgct gcatgcccct gccacagtgt gcggccctaa gaaaagcacc aatctcgtga 3240

agaacaaatg cgtgaacttc aacttcaacg gcctgaccgg caccggcgtg ctgacagaga 3300

gcaacaagaa gttcctgcca ttccagcagt ttggccggga tattgccgat accacagacg 3360

ccgtacgaga tccccagaca ctggaaatcc tggacatcac cccttgcagc ttcggcggag 3420

tgtctgtgat cacccctggc accaacacca gcaatcaggt ggcagtgctg taccaggacg 3480

tgaactgtac cgaagtgccc gtggccattc acgccgatca gctgacacct acatggcggg 3540

tgtactccac cggcagcaat gtgtttcaga ccagagccgg ctgtctgatc ggagccgagc 3600

acgtgaacaa tagctacgag tgcgacatcc ccatcggcgc tggcatctgt gccagctacc 3660

agacacagac aaacagcccc agacgggcca gatctgtggc cagccagagc atcattgcct 3720

acacaatgtc tctgggcgcc gagaacagcg tggcctactc caacaactct atcgctatcc 3780

ccaccaactt caccatcagc gtgaccacag agatcctgcc tgtgtccatg accaagacca 3840

gcgtggactg caccatgtac atctgcggcg attccaccga gtgctccaac ctgctgctgc 3900

agtacggcag cttctgcacc cagctgaata gagccctgac agggatcgcc gtggaacagg 3960

acaagaacac ccaagaggtg ttcgcccaag tgaagcagat ctacaagacc cctcctatca 4020

aggacttcgg cggcttcaat ttcagccaga ttctgcccga tcctagcaag cccagcaagc 4080

ggagcttcat cgaggacctg ctgttcaaca aagtgacact ggccgacgcc ggcttcatca 4140

agcagtatgg cgattgtctg ggcgacattg ccgccaggga tctgatttgc gcccagaagt 4200

ttaacggact gacagtgctg ccaccactgc tgaccgatga gatgatcgcc cagtacacat 4260

ctgccctgct ggccggcaca atcacaagcg gctggacatt tggagctggc gccgctctgc 4320

agatcccctt tgctatgcag atggcctacc ggttcaacgg catcggagtg acccagaatg 4380

tgctgtacga gaaccagaag ctgatcgcca accagttcaa cagcgccatc ggcaagatcc 4440

aggacagcct gagcagcaca gcaagcgccc tgggaaagct gcaggacgtg gtcaaccaga 4500

atgcccaggc actgaacacc ctggtcaagc agctgtcctc caacttcggc gccatcagct 4560

ctgtgctgaa cgacatcctg agcagactgg acaaggtgga agccgaggtg cagatcgaca 4620

gactgatcac cggaaggctg cagtccctgc agacctacgt tacccagcag ctgatcagag 4680

ccgccgagat tagagcctct gccaatctgg ccgccaccaa gatgtctgag tgtgtgctgg 4740

gccagagcaa gagagtggac ttttgcggca agggctacca cctgatgagc ttccctcagt 4800

ctgcccctca cggcgtggtg tttctgcacg tgacatacgt gcccgctcaa gagaagaatt 4860

tcaccaccgc tccagccatc tgccacgacg gcaaagccca ctttcctaga gaaggcgtgt 4920

tcgtgtccaa cggcacccat tggttcgtga cccagcggaa cttctacgag ccccagatca 4980

tcaccaccga caacaccttc gtgtctggca actgcgacgt cgtgatcggc attgtgaaca 5040

ataccgtgta cgaccctctg cagcccgagc tggacagctt caaagaggaa ctggataagt 5100

actttaagaa ccacacaagc cccgacgtgg acctgggcga catcagcgga atcaatgcca 5160

gcgtcgtgaa catccagaaa gagatcgacc ggctgaacga ggtggccaag aatctgaacg 5220

agagcctgat cgacctgcaa gaactgggga agtacgagca gtacatcaag tggccctggt 5280

acatctggct gggctttatc gccggactga ttgccatcgt gatggtcaca atcatgctgt 5340

gttgcatgac cagctgctgt agctgcctga agggctgttg tagctgtggc agctgctgca 5400

agttcgacga ggacgattct gagcccgtgc tcaaaggagt caaattacat tacacataat 5460

tcactcctca ggtgcaggct gcctatcaga aggtggtggc tggtgtggcc aatgccctgg 5520

ctcacaaata ccactgagat ctttttccct ctgccaaaaa ttatggggac atcatgaagc 5580

cccttgagca tctgacttct ggctaataaa ggaaatttat tttcattgca atagtgtgtt 5640

ggaatttttt gtgtctctca ctcggaagga catatgggag ggcaaatcat ttaaaacatc 5700

agaatgagta tttggtttag agtttggcaa catatgccca tatgctggct gccatgaaca 5760

aaggttggct ataaagaggt catcagtata tgaaacagcc ccctgctgtc cattccttat 5820

tccatagaaa agccttgact tgaggttaga tttttttata ttttgttttg tgttattttt 5880

tctttaacat ccctaaaatt ttccttacat gttttactag ccagattttt cctcctctcc 5940

tgactactcc cagtcatagc tgtccctctt ctcttatgga gatc 5984

<210> 3

<211> 5314

<212> DNA

<213> Artificial Sequence

<220>

<400> 3

ggtgaggctc cggtgcccgt cagtgggcag agcgcacatc gcccacagtc cccgagaagt 60

tggggggagg ggtcggcaat tgaaccggtg cctagagaag gtggcgcggg gtaaactggg 120

aaagtgatgt cgtgtactgg ctccgccttt ttcccgaggg tgggggagaa ccgtatataa 180

gtgcagtagt cgccgtgaac gttctttttc gcaacgggtt tgccgccaga acacaggtaa 240

gtgccgtgtg tggttcccgc gggcctggcc tctttacggg ttatggccct tgcgtgcctt 300

gaattacttc cacctggctg cagtacgtga ttcttgatcc cgagcttcgg gttggaagtg 360

ggtgggagag ttcgaggcct tgcgcttaag gagccccttc gcctcgtgct tgagttgagg 420

cctggcctgg gcgctggggc cgccgcgtgc gaatctggtg gcaccttcgc gcctgtctcg 480

ctgctttcga taagtctcta gccatttaaa atttttgatg acctgctgcg acgctttttt 540

tctggcaaga tagtcttgta aatgcgggcc aagatctgca cactggtatt tcggtttttg 600

gggccgcggg cggcgacggg gcccgtgcgt cccagcgcac atgttcggcg aggcggggcc 660

tgcgagcgcg gccaccgaga atcggacggg ggtagtctca agctggccgg cctgctctgg 720

tgcctggcct cgcgccgccg tgtatcgccc cgccctgggc ggcaaggctg gcccggtcgg 780

caccagttgc gtgagcggaa agatggccgc ttcccggccc tgctgcaggg agctcaaaat 840

ggaggacgcg gcgctcggga gagcgggcgg gtgagtcacc cacacaaagg aaaagggcct 900

ttccgtcctc agccgtcgct tcatgtgact ccacggagta ccgggcgccg tccaggcacc 960

tcgattagtt ctcgagcttt tggagtacgt cgtctttagg ttggggggag gggttttatg 1020

cgatggagtt tccccacact gagtgggtgg agactgaagt taggccagct tggcacttga 1080

tgtaattctc cttggaattt gccctttttg agtttggatc ttggttcatt ctcaagcctc 1140

agacagtggt tcaaagtttt tttcttccat ttcaggtgtc gtgaggaatt agcttggtac 1200

taatacgact cacaagcttg gtaccatgtt tgtgttcctt gtgttattgc cactagtctc 1260

tagtcagtgt gtgaacctga ccacaagaac ccagctgcct ccagcctaca ccaacagctt 1320

taccagaggc gtgtactacc ccgacaaggt gttcagatcc agcgtgctgc actctaccca 1380

ggacctgttc ctgcctttct tcagcaacgt gacctggttc cacgccatcc acgtgtccgg 1440

caccaatggc accaagagat tcgacaaccc cgtgctgccc ttcaacgacg gggtgtactt 1500

tgccagcacc gagaagtcca acatcatcag aggctggatc ttcggcacca cactggacag 1560

caagacccag agcctgctga tcgtgaacaa cgccaccaac gtggtcatca aagtgtgcga 1620

gttccagttc tgcaacgacc ccttcctggg cgtctactat cacaagaaca acaagagctg 1680

gatggaaagc gagttccggg tgtacagcag cgccaacaac tgcaccttcg agtacgtgtc 1740

ccagcctttc ctgatggacc tggaaggcaa gcagggcaac ttcaagaacc tgcgcgagtt 1800

cgtgttcaag aacatcgacg gctacttcaa gatctacagc aagcacaccc ctatcaacct 1860

cgtgcgggat ctgcctcagg gcttctctgc tctggaaccc ctggtggatc tgcccatcgg 1920

catcaacatc acccggtttc agacactgct ggccctgcac agaagctacc tgacacctgg 1980

cgatagcagc agcggatgga cagctggtgc cgccgcttac tatgtgggct acctgcagcc 2040

tagaaccttc ctgctgaagt acaacgagaa cggcaccatc accgacgccg tggattgtgc 2100

tctggatcct ctgagcgaga caaagtgcac cctgaagtcc ttcaccgtgg aaaagggcat 2160

ctaccagacc agcaacttcc gggtgcagcc caccgaatcc atcgtgcggt tccccaatat 2220

caccaatctg tgccccttcg gcgaggtgtt caatgccacc agattcgcct ctgtgtacgc 2280

ctggaaccgg aagcggatca gcaattgcgt ggccgactac tccgtgctgt acaactccgc 2340

cagcttcagc accttcaagt gctacggcgt gtcccctacc aagctgaacg acctgtgctt 2400

cacaaacgtg tacgccgaca gcttcgtgat ccggggagat gaagtgcggc agattgcccc 2460

tggacagaca ggcaagatcg ccgactacaa ctacaagctg cccgacgact tcaccggctg 2520

tgtgattgcc tggaacagca acaacctgga ctccaaagtc ggcggcaact acaattacct 2580

gtaccggctg ttccggaagt ccaatctgaa gcccttcgag cgggacatct ccaccgagat 2640

ctatcaggcc ggcagcaccc cttgtaacgg cgtggaaggc ttcaactgct acttcccact 2700

gcagtcctac ggctttcagc ccacaaatgg cgtgggctat cagccctaca gagtggtggt 2760

gctgagcttc gaactgctgc atgcccctgc cacagtgtgc ggccctaaga aaagcaccaa 2820

tctcgtgaag aacaaatgcg tgaacttcaa cttcaacggc ctgaccggca ccggcgtgct 2880

gacagagagc aacaagaagt tcctgccatt ccagcagttt ggccgggata ttgccgatac 2940

cacagacgcc gtacgagatc cccagacact ggaaatcctg gacatcaccc cttgcagctt 3000

cggcggagtg tctgtgatca cccctggcac caacaccagc aatcaggtgg cagtgctgta 3060

ccaggacgtg aactgtaccg aagtgcccgt ggccattcac gccgatcagc tgacacctac 3120

atggcgggtg tactccaccg gcagcaatgt gtttcagacc agagccggct gtctgatcgg 3180

agccgagcac gtgaacaata gctacgagtg cgacatcccc atcggcgctg gcatctgtgc 3240

cagctaccag acacagacaa acagccccag acgggccaga tctgtggcca gccagagcat 3300

cattgcctac acaatgtctc tgggcgccga gaacagcgtg gcctactcca acaactctat 3360

cgctatcccc accaacttca ccatcagcgt gaccacagag atcctgcctg tgtccatgac 3420

caagaccagc gtggactgca ccatgtacat ctgcggcgat tccaccgagt gctccaacct 3480

gctgctgcag tacggcagct tctgcaccca gctgaataga gccctgacag ggatcgccgt 3540

ggaacaggac aagaacaccc aagaggtgtt cgcccaagtg aagcagatct acaagacccc 3600

tcctatcaag gacttcggcg gcttcaattt cagccagatt ctgcccgatc ctagcaagcc 3660

cagcaagcgg agcttcatcg aggacctgct gttcaacaaa gtgacactgg ccgacgccgg 3720

cttcatcaag cagtatggcg attgtctggg cgacattgcc gccagggatc tgatttgcgc 3780

ccagaagttt aacggactga cagtgctgcc accactgctg accgatgaga tgatcgccca 3840

gtacacatct gccctgctgg ccggcacaat cacaagcggc tggacatttg gagctggcgc 3900

cgctctgcag atcccctttg ctatgcagat ggcctaccgg ttcaacggca tcggagtgac 3960

ccagaatgtg ctgtacgaga accagaagct gatcgccaac cagttcaaca gcgccatcgg 4020

caagatccag gacagcctga gcagcacagc aagcgccctg ggaaagctgc aggacgtggt 4080

caaccagaat gcccaggcac tgaacaccct ggtcaagcag ctgtcctcca acttcggcgc 4140

catcagctct gtgctgaacg acatcctgag cagactggac aaggtggaag ccgaggtgca 4200

gatcgacaga ctgatcaccg gaaggctgca gtccctgcag acctacgtta cccagcagct 4260

gatcagagcc gccgagatta gagcctctgc caatctggcc gccaccaaga tgtctgagtg 4320

tgtgctgggc cagagcaaga gagtggactt ttgcggcaag ggctaccacc tgatgagctt 4380

ccctcagtct gcccctcacg gcgtggtgtt tctgcacgtg acatacgtgc ccgctcaaga 4440

gaagaatttc accaccgctc cagccatctg ccacgacggc aaagcccact ttcctagaga 4500

aggcgtgttc gtgtccaacg gcacccattg gttcgtgacc cagcggaact tctacgagcc 4560

ccagatcatc accaccgaca acaccttcgt gtctggcaac tgcgacgtcg tgatcggcat 4620

tgtgaacaat accgtgtacg accctctgca gcccgagctg gacagcttca aagaggaact 4680

ggataagtac tttaagaacc acacaagccc cgacgtggac ctgggcgaca tcagcggaat 4740

caatgccagc gtcgtgaaca tccagaaaga gatcgaccgg ctgaacgagg tggccaagaa 4800

tctgaacgag agcctgatcg acctgcaaga actggggaag tacgagcagt acatcaagtg 4860

gccctggtac atctggctgg gctttatcgc cggactgatt gccatcgtga tggtcacaat 4920

catgctgtgt tgcatgacca gctgctgtag ctgcctgaag ggctgttgta gctgtggcag 4980

ctgctgcaag ttcgacgagg acgattctga gcccgtgctc aaaggagtca aattacatta 5040

cacataagat ctagagtcgg ggcggccggc cgctcgctga tcagcctcga ctgtgccttc 5100

tagttgccag ccatctgttg tttgcccctc ccccgtgcct tccttgaccc tggaaggtgc 5160

cactcccact gtcctttcct aataaaatga ggaaattgca tcgcattgtc tgagtaggtg 5220

tcattctatt ctggggggtg gggtggggca ggacagcaag ggggaggatt gggaagacaa 5280

tagcaggcat gctggggatc cgagtgtcga taag 5314

<210> 4

<211> 4678

<212> DNA

<213> Artificial Sequence

<220>

<400> 4

atagtaatca attacggggt cattagttca tagcccatat atggagttcc gcgttacata 60

acttacggta aatggcccgc ctggctgacc gcccaacgac ccccgcccat tgacgtcaat 120

aatgacgtat gttcccatag taacgccaat agggactttc cattgacgtc aatgggtgga 180

gtatttacgg taaactgccc acttggcagt acatcaagtg tatcatatgc caagtacgcc 240

ccctattgac gtcaatgacg gtaaatggcc cgcctggcat tatgcccagt acatgacctt 300

atgggacttt cctacttggc agtacatcta cgtattagtc atcgctatta ccatggtgat 360

gcggttttgg cagtacatca atgggcgtgg atagcggttt gactcacggg gatttccaag 420

tctccacccc attgacgtca atgggagttt gttttggcac caaaatcaac gggactttcc 480

aaaatgtcgt aacaactccg ccccattgac gcaaatgggc ggtaggcgtg tacggtggga 540

ggtctatata agcagagctg gtttagtgaa ccgtcagatc cgctagagat ctggtaccat 600

gtttgtgttc cttgtgttat tgccactagt ctctagtcag tgtgtgaacc tgaccacaag 660

aacccagctg cctccagcct acaccaacag ctttaccaga ggcgtgtact accccgacaa 720

ggtgttcaga tccagcgtgc tgcactctac ccaggacctg ttcctgcctt tcttcagcaa 780

cgtgacctgg ttccacgcca tccacgtgtc cggcaccaat ggcaccaaga gattcgacaa 840

ccccgtgctg cccttcaacg acggggtgta ctttgccagc accgagaagt ccaacatcat 900

cagaggctgg atcttcggca ccacactgga cagcaagacc cagagcctgc tgatcgtgaa 960

caacgccacc aacgtggtca tcaaagtgtg cgagttccag ttctgcaacg accccttcct 1020

gggcgtctac tatcacaaga acaacaagag ctggatggaa agcgagttcc gggtgtacag 1080

cagcgccaac aactgcacct tcgagtacgt gtcccagcct ttcctgatgg acctggaagg 1140

caagcagggc aacttcaaga acctgcgcga gttcgtgttc aagaacatcg acggctactt 1200

caagatctac agcaagcaca cccctatcaa cctcgtgcgg gatctgcctc agggcttctc 1260

tgctctggaa cccctggtgg atctgcccat cggcatcaac atcacccggt ttcagacact 1320

gctggccctg cacagaagct acctgacacc tggcgatagc agcagcggat ggacagctgg 1380

tgccgccgct tactatgtgg gctacctgca gcctagaacc ttcctgctga agtacaacga 1440

gaacggcacc atcaccgacg ccgtggattg tgctctggat cctctgagcg agacaaagtg 1500

caccctgaag tccttcaccg tggaaaaggg catctaccag accagcaact tccgggtgca 1560

gcccaccgaa tccatcgtgc ggttccccaa tatcaccaat ctgtgcccct tcggcgaggt 1620

gttcaatgcc accagattcg cctctgtgta cgcctggaac cggaagcgga tcagcaattg 1680

cgtggccgac tactccgtgc tgtacaactc cgccagcttc agcaccttca agtgctacgg 1740

cgtgtcccct accaagctga acgacctgtg cttcacaaac gtgtacgccg acagcttcgt 1800

gatccgggga gatgaagtgc ggcagattgc ccctggacag acaggcaaga tcgccgacta 1860

caactacaag ctgcccgacg acttcaccgg ctgtgtgatt gcctggaaca gcaacaacct 1920

ggactccaaa gtcggcggca actacaatta cctgtaccgg ctgttccgga agtccaatct 1980

gaagcccttc gagcgggaca tctccaccga gatctatcag gccggcagca ccccttgtaa 2040

cggcgtggaa ggcttcaact gctacttccc actgcagtcc tacggctttc agcccacaaa 2100

tggcgtgggc tatcagccct acagagtggt ggtgctgagc ttcgaactgc tgcatgcccc 2160

tgccacagtg tgcggcccta agaaaagcac caatctcgtg aagaacaaat gcgtgaactt 2220

caacttcaac ggcctgaccg gcaccggcgt gctgacagag agcaacaaga agttcctgcc 2280

attccagcag tttggccggg atattgccga taccacagac gccgtacgag atccccagac 2340

actggaaatc ctggacatca ccccttgcag cttcggcgga gtgtctgtga tcacccctgg 2400

caccaacacc agcaatcagg tggcagtgct gtaccaggac gtgaactgta ccgaagtgcc 2460

cgtggccatt cacgccgatc agctgacacc tacatggcgg gtgtactcca ccggcagcaa 2520

tgtgtttcag accagagccg gctgtctgat cggagccgag cacgtgaaca atagctacga 2580

gtgcgacatc cccatcggcg ctggcatctg tgccagctac cagacacaga caaacagccc 2640

cagacgggcc agatctgtgg ccagccagag catcattgcc tacacaatgt ctctgggcgc 2700

cgagaacagc gtggcctact ccaacaactc tatcgctatc cccaccaact tcaccatcag 2760

cgtgaccaca gagatcctgc ctgtgtccat gaccaagacc agcgtggact gcaccatgta 2820

catctgcggc gattccaccg agtgctccaa cctgctgctg cagtacggca gcttctgcac 2880

ccagctgaat agagccctga cagggatcgc cgtggaacag gacaagaaca cccaagaggt 2940

gttcgcccaa gtgaagcaga tctacaagac ccctcctatc aaggacttcg gcggcttcaa 3000

tttcagccag attctgcccg atcctagcaa gcccagcaag cggagcttca tcgaggacct 3060

gctgttcaac aaagtgacac tggccgacgc cggcttcatc aagcagtatg gcgattgtct 3120

gggcgacatt gccgccaggg atctgatttg cgcccagaag tttaacggac tgacagtgct 3180

gccaccactg ctgaccgatg agatgatcgc ccagtacaca tctgccctgc tggccggcac 3240

aatcacaagc ggctggacat ttggagctgg cgccgctctg cagatcccct ttgctatgca 3300

gatggcctac cggttcaacg gcatcggagt gacccagaat gtgctgtacg agaaccagaa 3360

gctgatcgcc aaccagttca acagcgccat cggcaagatc caggacagcc tgagcagcac 3420

agcaagcgcc ctgggaaagc tgcaggacgt ggtcaaccag aatgcccagg cactgaacac 3480

cctggtcaag cagctgtcct ccaacttcgg cgccatcagc tctgtgctga acgacatcct 3540

gagcagactg gacaaggtgg aagccgaggt gcagatcgac agactgatca ccggaaggct 3600

gcagtccctg cagacctacg ttacccagca gctgatcaga gccgccgaga ttagagcctc 3660

tgccaatctg gccgccacca agatgtctga gtgtgtgctg ggccagagca agagagtgga 3720

cttttgcggc aagggctacc acctgatgag cttccctcag tctgcccctc acggcgtggt 3780

gtttctgcac gtgacatacg tgcccgctca agagaagaat ttcaccaccg ctccagccat 3840

ctgccacgac ggcaaagccc actttcctag agaaggcgtg ttcgtgtcca acggcaccca 3900

ttggttcgtg acccagcgga acttctacga gccccagatc atcaccaccg acaacacctt 3960

cgtgtctggc aactgcgacg tcgtgatcgg cattgtgaac aataccgtgt acgaccctct 4020

gcagcccgag ctggacagct tcaaagagga actggataag tactttaaga accacacaag 4080

ccccgacgtg gacctgggcg acatcagcgg aatcaatgcc agcgtcgtga acatccagaa 4140

agagatcgac cggctgaacg aggtggccaa gaatctgaac gagagcctga tcgacctgca 4200

agaactgggg aagtacgagc agtacatcaa gtggccctgg tacatctggc tgggctttat 4260

cgccggactg attgccatcg tgatggtcac aatcatgctg tgttgcatga ccagctgctg 4320

tagctgcctg aagggctgtt gtagctgtgg cagctgctgc aagttcgacg aggacgattc 4380

tgagcccgtg ctcaaaggag tcaaattaca ttacacataa gatatcgcgg ccgctcgagt 4440

ctagataact gatcataatc agccatacca catttgtaga ggttttactt gctttaaaaa 4500

acctcccaca cctccccctg aacctgaaac ataaaatgaa tgcaattgtt gttgttaact 4560

tgtttattgc agcttataat ggttacaaat aaagcaatag catcacaaat ttcacaaata 4620

aagcattttt ttcactgcat tctagttgtg gtttgtccaa actcatcaat gtatctta 4678

<---

Группа изобретений относится к биотехнологии, иммунологии и вирусологии. Описано применение средства для профилактики заболеваний, вызванных вирусом тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 у детей старше 1 месяца. Представлено 6 вариантов применения средства, включающего компонент 1 в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus 26-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области, а область ORF6-Ad26 заменена на ORF6-Ad5 со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3, и/или компонент 2 в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus 5-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3, и/или компонент 3 в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма simian adenovirus 25-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 4, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3. Заявленные компоненты применяются как в отдельности, так и совместно. Группа изобретений обеспечивает создание безопасного и эффективного средства, которое обеспечивает развитие реакций гуморального и клеточного иммунного ответа против вируса SARS-CoV-2 у детей старше 1 месяца. Также средство обеспечивает индукцию гуморального иммунного ответа, сравнимую с иммунным ответом взрослого человека, и обеспечивает усиленный мукозальный ответ в респираторном тракте. 6 н. и 9 з.п. ф-лы, 6 ил., 8 табл., 16 пр.

1. Применение средства, содержащего компонент в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus 26-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области, а область ORF6-Ad26 заменена на ORF6-Ad5 со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3, для индукции специфического иммунитета против вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 у детей старше 1 месяца.

2. Применение средства, содержащего компонент в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus 5-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3, для индукции специфического иммунитета против вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 у детей старше 1 месяца.

3. Применение средства, содержащего комбинацию, представляющую собой компонент 1 в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus 26-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области, а область ORF6-Ad26 заменена на ORF6-Ad5 со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3, и компонент 2 в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus 5-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3, для индукции специфического иммунитета против вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 у детей старше 1 месяца.

4. Применение средства, содержащего компонент в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма simian adenovirus 25-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 4, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3, для индукции специфического иммунитета против вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 у детей старше 1 месяца.

5. Применение средства, содержащего комбинацию, представляющую собой компонент 1 в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus 26-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области, а область ORF6-Ad26 заменена на ORF6-Ad5 со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3, и компонент 2 в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма simian adenovirus 25-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 4, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3, для индукции специфического иммунитета против вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 у детей старше 1 месяца.

6. Применение средства, содержащего комбинацию, представляющую компонент 1 в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма simian adenovirus 25-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 4, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3, а также содержащего компонент 2 в виде экспрессионного вектора на основе генома рекомбинантного штамма human adenovirus 5-го серотипа, в котором делетированы Е1 и Е3 области со встроенной экспрессионной кассетой, выбранной из SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3, для индукции специфического иммунитета против вируса тяжелого острого респираторного синдрома SARS-CoV-2 у детей старше 1 месяца.

7. Применение по пп.1-6, где средство обеспечивает индукцию мукозального иммунного ответа на слизистых оболочках дыхательных путей.

8. Применение по пп.1-6, отличающееся тем, что средство выполнено в жидкой или лиофилизированной форме.

9. Применение по п.8, отличающееся тем, что жидкая форма средства содержит буферный раствор, мас.%:

трис от 0,1831 до 0,3432 хлорид натрия от 0,3313 до 0,6212 сахароза от 3,7821 до 7,0915 магния хлорида гексагидрат от 0,0154 до 0,0289 ЭДТА от 0,0029 до 0,0054 полисорбат-80 от 0,0378 до 0,0709 этанол 95% от 0,0004 до 0,0007 вода остальное

10. Применение по п.8, отличающееся тем, что восстановленная лиофилизированная форма средства содержит буферный раствор, масс %:

трис
хлорид натрия
сахароза
магния хлорида гексагидрат
ЭДТА
полисорбат-80
вода от 0,0180 до 0,0338
от 0,1044 до 0,1957
от 5,4688 до 10,2539
от 0,0015 до 0,0028
от 0,0003 до 0,0005
от 0,0037 до 0,0070
остальное

11. Применение по пп.1-10, где компонент и/или компоненты средства предназначены для интраназального и/или внутримышечного введения.

12. Применение по пп.1-10, где средство предназначено для введения в дозе 5*10⁹- 5*10¹⁰ вирусных частиц.

13. Применение по пп.3, 5, 6, 9, 10, где компоненты средства предназначены для последовательного введения с интервалом более 1 недели.

14. Применение по пп.3, 5, 6, 9, 10, где компоненты средства предназначены для одновременного введения.

15. Применение по пп.3, 5, 6, 9, 10, отличающееся тем, что компоненты находятся в разных упаковках.