Изобретение относится к химико-фармацевтической промышленности и может быть использовано в центрах контроля качества лекарственных средств и контрольно-аналитических лабораториях при проведении количественного определения суммы флавоноидов в траве аврана лекарственного (Gratiola officinalis L.).
В медицинской практике применяются не только фармакопейные, но и другие растения, которые издавна используются в народной медицине. Одним из перспективных является Авран лекарственный (Gratiola officinalis L.) – растение семейства подорожниковые, достаточно широко распространен в Европейской части Российской Федерации и является компонентом противоопухолевого сбора Здренко. Известно также, что трава аврана лекарственного обладает противоглистным, противотуберкулезным, противомутагенным, антиоксидантным и противоопухолевым действиями. [Куркин В.А. Фармакогнозия: учебник для студентов фармацевтических вузов (факультетов). – Самара, 2016. – 1279 с.; Большой энциклопедический словарь лекарственных растений: учебное пособие под ред. Г. П. Яковлева. – Санкт-Петербург: СпецЛит, 2015. – 759 с.]. Качество сырья аврана лекарственного ранее было регламентировано временной фармакопейной статьей 42-2358-85. Однако растение до сих пор является малоизученным. В настоящее время действующей ФС на Авран лекарственный не существует, что создаёт необходимость создания нормативной документации.
Известны способы количественного определения флавоноидов в лекарственных травах [патенты RU №№ 2806035, 2696770, 2806047, 2786835, 2786440], включающие в себя экстракцию сырья лекарственной травы этиловым спиртом на кипящей водяной бане с последующей пробоподготовкой и определение оптической плотности методом дифференциальной спектрофотометрии. Проводят реакцию комплексообразования с хлоридом алюминия. Затем определяют количественное содержание суммы флавоноидов в траве лекарственного растения в пересчете стандартный образец СО на лютеолин-7-глюкозида.
Однако особенность химического состава аврана лекарственного, содержащего несколько групп биологически активных соединений (алкалоиды, тритерпеновые сапонины, флавоноиды), с различной фармакологической активностью не позволяет применять унифицированные методики количественного определения отдельных групп биологически активных соединений.
Наиболее близким аналогом к заявляемому изобретению является способ определения флавоноидов в густом экстракте аврана лекарственного [Фомина Ю.А., Шестопалова Н.Б. Разработка и валидация методики количественного определения содержания суммы флавоноидов в густом экстракте аврана лекарственного // Week of Russian science (WeRuS-2023): сб. материалов ХII Всероссийской недели науки с международным участием, посвященной году педагога и наставника. Саратов, 2023.– С. 893-896] методом дифференциальной спектрофотометрии при аналитической длине волны 398 нм по реакции комплексообразования в течение 40 минут. Способ включает растворение густого экстракта аврана лекарственного этиловым спиртом в концентрации 70%. Затем проводят реакцию комплесообразования с соотношением объемов раствора густого экстракта и 5% спиртового раствора хлорида алюминия 1:2. Определение суммы флавоноидов в густом экстракте аврана лекарственного в пересчете на лютеолин-7-глюкозид производят по формуле: где A – оптическая плотность испытуемого раствора А; Aо – оптическая плотность раствора СО лютеолин-7-глюкозида; а – навеска густого экстракта, г; ао – навеска СО лютеолин-7-глюкозида, г; P – содержание основного вещества в СО лютеолин-7-глюкозида, %; W – потеря в массе при высушивании, %.
Однако способ определения суммы флавоноидов, представленный для густого экстракта не может быть непосредственно применен для разработки способа содержания флавоноидов в траве аврана лекарственного. Ключевой стадией является процедура получения флавоноидсодержащего извлечения из сырья и приготовление растворов, пригодных для спектрофотометрирования. Для этого необходимо подобрать оптимальные условия экстракции: выбор экстрагента, его концентрацию, продолжительность проведения экстракции, температуру, степень измельченности сырья, соотношение «сырье:экстрагент».
Задачей заявляемого изобретения является разработка способа количественного определения суммы флавоноидов в траве аврана лекарственного, обладающего высокой специфичностью и точностью за счет обработки многомерных спектральных данных.
Сущность заявляемого изобретения заключается в том, что в способе количественного определения суммы флавоноидов в траве аврана лекарственного, включающем экстракцию сырья этиловым спиртом в концентрации 70%, с последующим определением суммы флавоноидов методом дифференциальной спектрофотометрии при аналитической длине волны 398 нм по реакции комплексообразования в течение 40 минут с 5% спиртовым раствором хлорида алюминия в пересчете на лютеолин-7-глюкозид, при этом для реакции комплексообразования используют соотношение объемов извлечения из сырья травы аврана лекарственного и 5% спиртового раствора хлорида алюминия 1:2, для получения водно-спиртового извлечения из травы аврана лекарственного проводят экстракцию на кипящей водяной бане в течение 60 минут, сырье предварительно подготавливают путем измельчения травы аврана лекарственного до 2 мм, соотношение «сырье-экстрагент» составляет 1:100, содержание суммы флавоноидов в пересчете на лютеолин-7-глюкозид и абсолютно сухое сырье вычисляют по формуле:
где A – оптическая плотность испытуемого раствора Б;
Aо – оптическая плотность раствора СО лютеолин-7-глюкозида;
А – навеска сырья, г;
ао – навеска СО лютеолин-7-глюкозида, г;
P – содержание основного вещества в СО лютеолин-7-глюкозида, %;
W – влажность сырья, %;
в случае отсутствия стандартного образца лютеолин-7-глюкозида для расчета целесообразно использовать теоретическое значение удельного показателя поглощения при 398 нм - 318:
где A – оптическая плотность испытуемого раствора Б;
– удельный показатель поглощения комплекса лютеолин-7-глюкозида с алюминия хлоридом при длине волны 398 нм, равный 318;
А – навеска сырья, г;
W – влажность сырья, %.
Технический результат заявляемого изобретения.
Точность положения длины волны максимума спектров поглощения достигается обработкой многомерных данных, включающих набор значений оптической плотности растворов в диапазоне 200-550 нм с шагом сканирования минимум 0,5 нм. Совпадение дифференциальных спектров с максимумами поглощения при аналитической длине волны 398 нм комплексов водно-спиртовых растворов лютеолин-7-глюкозида и извлечений из травы аврана лекарственного с добавкой хлорида алюминия подтверждает, что сопутствующие вещества, переходящие в раствор при экстрагировании сырья, не искажают результат, что подтверждает специфичность методики.
Оптимальным условием реакции комплексообразования, удовлетворяющим специфичности методики выбран 5% раствор хлорида алюминия в 70% спирте этиловом при соотношении объемов извлечения и хлорида алюминия – 1:2. Определение точного соотношения компонентов к 5% раствору хлорида алюминия позволяет выбрать в качестве СО лютеолин-7-глюкозид с обеспечением высокой специфичности методики.
Заявляемое изобретение поясняется с помощью фиг. 1-4, на которых изображено:
на фиг. 1 - электронные спектры поглощения водно-спиртового извлечения из травы аврана лекарственного (1) и водно-спиртового извлечения из травы аврана лекарственного с добавлением хлорида алюминия (2);
на фиг. 2 - электронные спектры поглощения водно-спиртового раствора СО-7-глюкозида (1) и водно-спиртового раствора СО лютеолин-7-глюкозида с добавлением хлорида алюминия (2);
на фиг. 3 - дифференциальные спектры поглощения комплексов: а) водно-спиртовых растворов СО лютеолин-7-глюкозида и извлечения из травы аврана лекарственного с добавлением хлорида алюминия б) водно-спиртового раствора извлечения и водно-спиртового раствора извлечения с добавлением 75 мкг СО лютеолина-7-глюкозида;
на фиг. 4 - дифференциальные спектры поглощения комплексов водно-спиртовых извлечений из травы аврана лекарственного при добавлении различного количества 5% раствора хлорида алюминия.
Определение суммы флавоноидов в растительном сырье основано на реакции комплексообразования флавоноидов с хлоридом трехвалентного алюминия, в результате чего происходит батохромный сдвиг полосы поглощения с 330-350 нм до 390=410 нм, что позволяет проводить количественное определение искомых соединений в растворе по разнице аналитического сигнала тех же растворов без добавления солей алюминия. [Природные флавоноиды / Д.Ю. Корулькин, Ж.А. Абилов, Р.А. Музычкина, Г.А. Толстиков – Рос. акад. наук, Сиб. отд., Новосиб. ин-т органической химии. – Новосибирск: Академическое изд-во "Тео", 2007. – 232 c.].
Погрешность спектрофотометрического определения зависит от концентрации веществ в растворе, минимальная погрешность соответствует значению оптической плотности раствора 0,43. Растворы для спектрофотометрирования должны быть приготовлены таким образом, чтобы их оптическая плотность находилась в диапазоне от 0,12 до 1,2.
При изучении спектральных характеристик было установлено, что характер кривой поглощения водно-спиртового извлечения в области от 250 до 500 нм имеет максимум поглощения при длине волны (333±2) нм и плечо от 280 нм до 310 нм (фиг. 1). При добавлении хлорида алюминия наблюдается батохромный сдвиг длинноволновой полосы, характерный для комплексообразования флавоноидов с хлоридом алюминия. Изучение спектров поглощения водно-спиртовых растворов СО лютеолина-7-глюкозида с хлоридом алюминия и без него показало батохромный сдвиг длинноволновой полосы на 35-40 нм с уменьшением интенсивности поглощения (фиг. 2). Максимальное поглощение наблюдается при длине волны, не превышающей 400 нм. В связи с этим, лютеолин-7-глюкозид может быть применен в качестве СО, на который производится расчет суммарного содержания флавоноидов в траве аврана лекарственного.
Изучение дифференциальных спектров поглощения водно-спиртового раствора лютеолин-7-глюкозида и водно-спиртового извлечения из травы аврана лекарственного показало, что формы спектров в длинноволновой области совпадают, максимумы поглощения наблюдаются при длине волны 398 нм, что может быть использовано для выбора аналитической длины волны (фиг. 3а). Для подтверждения специфичности использовали метод добавки СО и установили совпадение спектральных характеристик комплексов водно-спиртовых растворов лютеолин-7-глюкозида и извлечений из травы аврана лекарственного с добавкой хлорида алюминия (фиг. 3б).
Изучено влияние добавления разных количеств хлорида алюминия на спектральные характеристики. При увеличении концентрации хлорида алюминия в спектрах поглощения наблюдаются батохромный (от 391 нм до 405 нм) и гипохромный сдвиги (фиг. 4).
Для разработки способа количественного определения суммы флавоноидов установлены следующие параметры: концентрация экстрагента; продолжительность, кратность и температурный режим экстракции; степень измельченности сырья; соотношение «сырье-экстрагент»; время реакции комплексообразования.
Нами было изучено влияние экстрагента на процесс экстракции (табл. 1,). В результате эксперимента оптимальным экстрагентом, обеспечивающим наиболее высокий выход флавоноидов, и удовлетворяющим требованиям специфичности методики (по положению максимума поглощения), является 70% спирт этиловый.
Таблица 1 – Зависимость выхода флавоноидов из травы аврана лекарственного от концентрации экстрагента
Проанализированы образцы травы с размером частиц 1, 2 и 3 мм. Максимальный выход суммы флавоноидов достигался при экстракции сырья, измельченного до размера частиц, проходящих через сито с диаметром отверстий 2 мм (табл. 2).
Таблица 2 – Зависимость выхода флавоноидов из травы аврана лекарственного от степени измельченности сырья
Из таблицы 3 видно, что максимальный выход действующих веществ наблюдается при соотношении «сырье-экстрагент» 1:100, по этой причине данное соотношение было выбрано нами в качестве оптимального.
Таблица 3 – Зависимость выхода флавоноидов из травы аврана лекарственного от соотношения «сырье-экстрагент»
«сырье-экстрагент»
Существенное влияние на скорость процесса экстрагирования и полноту извлечения флавоноидов из растительного сырья оказывает температурный режим экстракции на водяной бане. В таблице 4 представлена зависимость выхода флавоноидов из травы аврана лекарственного от температуры (60°С, 80°С и 100°С). Максимальный выход флавоноидов из травы аврана лекарственного при однократном извлечении сырья наблюдался на кипящей водяной бане.
Таблица 4 – Зависимость выхода флавоноидов из травы аврана лекарственного от температуры (60°С, 80°С и 100°С)
Нами было изучено влияние продолжительности экстракции на кипящей водяной бане (табл. 5). Время проведения извлечения флавоноидов из травы Аврана лекарственного варьировали от 30 минут до 90 минут.
Таблица 5 – Зависимость выхода флавоноидов из травы аврана лекарственного от времени экстракции на кипящей водяной бане
Максимальное количество флавоноидов извлекается при экстракции продолжительностью 60 мин, дальнейшее увеличение времени до 90 мин не приводит к увеличению выхода флавоноидов.
Изучение оптимального времени реакции комплексообразования флавоноидов с хлоридом алюминия показало, что значения оптической плотности растворов возрастало и после 40 мин оставались стабильными. Таким образом, оптимальным временем реакции комплексообразования было выбрано 40 минут.
Таким образом, были установлены оптимальные условия для определения суммы флавоноидов из травы аврана лекарственного в пересчете на лютеолин-7-глюкозид экстракция сырья с размером частиц 2 мм этиловым спиртом 70% на кипящей водяной бане в течение 60 минут при соотношении «сырье-экстрагент» - 1:100. (извлечение:хлорид алюминия Количество 5% раствора хлорида алюминия в 70% этиловом спирте, необходимого для комплексообразования – 1:2) в течение 40 минут.
Способ количественного определения суммы флавоноидов в траве аврана лекарственного реализуется следующим образом.
Аналитическую пробу сырья измельчают до размера частиц, проходящих сквозь сито с отверстиями диаметром 2 мм. Около 1,0 г (точная навеска) измельчённого сырья помещают в коническую колбу вместимостью 250 мл, прибавляют 100 мл спирта 70%. Таким образом, соотношение «сырье-экстрагент» составляет 1:100. Колбу присоединяют к обратному холодильнику и нагревают на кипящей водяной бане в течение 60 мин. После охлаждения полученное извлечение фильтруют через бумажный фильтр в мерную колбу вместимостью 100 мл. Доводят объём раствора тем же растворителем до метки и перемешивают (испытуемый раствор А).
Для реакции комплексообразования используют в соотношении к водно-спиртовому извлечению из травы аврана лекарственного 5% спиртовой раствор хлорида алюминия 1:2, например, 2,5 мл испытуемого раствора помещают в мерную колбу вместимостью 25 мл, добавляют 5,0 мл 5% спиртового раствора алюминия хлорида в 70% этиловом спирте, доводят объем раствора спиртом 70% до метки и перемешивают (испытуемый раствор Б).
Оптическую плотность испытуемого раствора Б измеряют через 40 мин на спектрофотометре при длине волны 398 нм в кювете с толщиной слоя 10 мм относительно раствора сравнения. В качестве раствора сравнения используют раствор, состоящий из 2,5 мл испытуемого раствора А, доведенного этиловым спиртом 70% до метки в мерной колбе вместимостью 25 мл.
Параллельно измеряют оптическую плотность раствора СО лютеолин-7-глюкозида в таких же условиях. В качестве раствора сравнения используют раствор, состоящий из 7,5 мл раствора СО лютеолин-7-глюкозида, доведенного этиловым спиртом 7% до метки в мерной колбе вместимостью 50 мл.
Содержание суммы флавоноидов в пересчете на лютеолин-7-глюкозид в абсолютно сухом сырье в процентах (Х) вычисляют по формуле: где A – оптическая плотность испытуемого раствора Б; Aо – оптическая плотность раствора СО лютеолин-7-глюкозида; а – навеска сырья, г; ао – навеска СО лютеолин-7-глюкозида, г; P – содержание основного вещества в СО лютеолин-7-глюкозида, %; W – влажность сырья, %.
В случае отсутствия СО лютеолин-7-глюкозида для расчета целесообразно использовать теоретическое значение удельного показателя поглощения при 398 нм - 318:
где A – оптическая плотность испытуемого раствора Б;
– удельный показатель поглощения комплекса лютеолин-7-глюкозида с алюминия хлоридом при длине волны 398 нм, равный 318; а – навеска сырья, г; W – влажность сырья, %.
Приготовление раствора СО лютеолин-7-глюкозида. Около 0,010 г (точная навеска) СО лютеолин-7-глюкозида помещают в мерную колбу вместимостью 100 мл, прибавляют 80 мл спирта 70%, перемешивают при нагревании до полного растворения, охлаждают, доводят объем раствора тем же растворителем до метки и перемешивают.
Пример 1
Аналитическую пробу сырья аврана лекарственного измельчают до размера частиц 2 мм (заготовлено в Саратовской области, июль 2022 г.). 1,0004 г измельченного сырья помещают в коническую колбу вместимостью 250 мл, прибавляют 100 мл 70% этилового спирта. Колбу присоединяют к обратному холодильнику и нагревают на кипящей водяной бане в течение 60 минут. После охлаждения полученное извлечение фильтруют через бумажный фильтр в мерную колбу вместимостью 100 мл. Доводят объём раствора тем же растворителем до метки и перемешивают (испытуемый раствор А).
Испытуемый раствор для анализа суммы флавоноидов готовят следующим образом:
2,5 мл испытуемого раствора помещают в мерную колбу вместимостью 25 мл, добавляют 5,0 мл 5% спиртового раствора алюминия хлорида в 70% этиловом спирте, доводят объем раствора спиртом 70% до метки и перемешивают (испытуемый раствор Б).
Раствор сравнения готовят следующим образом: 2,5 мл испытуемого раствора А, доведенного этиловым спиртом 70% до метки в мерной колбе вместимостью 25 мл.
Для расчета содержания суммы флавоноидов готовят раствор СО лютеолин-7-глюкозида, добавляют к нему 5% спиртовой раствор хлорида алюминия, измеряют оптическую плотность окрашенного комплекса при длине волны 398 нм и определенное значение оптической плотности используют в формуле расчета.
Приготовление раствора СО лютеолин-7-глюкозида
Около 0,010 г (точная навеска) СО лютеолин-7-глюкозида помещают в мерную колбу вместимостью 100 мл, прибавляют 80 мл спирта 70%, перемешивают при нагревании до полного растворения, охлаждают, доводят объем раствора тем же растворителем до метки и перемешивают (раствор СО 1).
После чего 7,5 мл раствора СО 1 лютеолин-7-глюкозида помещают в мерную колбу вместимостью 50 мл, добавляют 15 мл 5% спиртового раствора алюминия хлорида, затем доводят объем раствора до метки спиртом этиловым 70%. Раствор сравнения готовят следующим образом: 7,5 мл полученного раствора помещают в мерную колбу вместимостью 50 мл, доводят объем раствора до метки спиртом этиловым 70%.
Измерение оптической плотности проводят при длине волны 398 нм в кювете с толщиной слоя 10 мм относительно раствора сравнения через 40 минут после приготовления всех растворов.
Содержание суммы флавоноидов в пересчете на лютеолин-7-глюкозид и абсолютно сухое сырье вычисляют по формуле:
где 0,451 – оптическая плотность испытуемого раствора Б;
0,485 – оптическая плотность раствора СО лютеолин-7-глюкозида;
1,0004 – навеска сырья, г;
0,010 – навеска СО лютеолин-7-глюкозида, г;
100 – содержание основного вещества в СО лютеолин-7-глюкозида, %;
9 – влажность сырья, %.
Содержание суммы флавоноидов в пересчете на лютеолин-7-глюкозид равно 1,53%.
Пример 2
При необходимости определения суммы флавоноидов в траве аврана лекарственного в отсутствии СО лютеолин-7-глюкозида, необходимо провести все действия из примера 1 до приготовления СО. После измерения оптической плотности извлечения из травы аврана лекарственного при длине волны 398 нм, содержание суммы флавоноидов в пересчете на лютеолин-7-глюкозид и абсолютно сухое сырье вычисляют по формуле, используя теоретическое значение удельного показателя поглощения при 398 нм - 318.
0,451 – оптическая плотность испытуемого раствора Б;
318 – удельный показатель поглощения ( ) комплекса лютеолин-7-глюкозида с алюминия хлоридом при длине волны 398 нм, равный 318;
1,0004 – навеска сырья, г;
9 – влажность сырья, %.
Содержание суммы флавоноидов в пересчете на лютеолин-7-глюкозид равно 1,55%, что сравнимо со значением, полученном в примере 1.
Все результаты были статистически обработаны. Ошибка единичного количественного определения составила 3,7%. Таким образом, установлено, что расчет суммы флавоноидов в траве аврана лекарственного в соответствии с заявляемым способом является достоверным с точки зрения установленных параметров комплексообразования с применением СО и определении их в его отсутствии.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
СПОСОБ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ СУММЫ ФЛАВОНОИДОВ В ТРАВЕ ТЫСЯЧЕЛИСТНИКА ОБЫКНОВЕННОГО | 2022 |
|
RU2806035C1 |
СПОСОБ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ СУММЫ ФЛАВОНОИДОВ В КОРЕ ОРЕХА ЧЕРНОГО | 2020 |
|
RU2747417C1 |
СПОСОБ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ СУММЫ ФЛАВОНОИДОВ В ТРАВЕ БОДЯКА ПОЛЕВОГО | 2022 |
|
RU2786835C1 |
СПОСОБ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ СУММЫ ФЛАВОНОИДОВ В ТРАВЕ МОНАРДЫ ДУДЧАТОЙ | 2018 |
|
RU2696770C1 |
Способ получения средства, обладающего желчегонной, противовоспалительной и антиоксидантной активностью | 2017 |
|
RU2665968C1 |
СПОСОБ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ СУММЫ ФЛАВОНОИДОВ В ЦВЕТКАХ БАРХАТЦЕВ ОТКЛОНЕННЫХ | 2021 |
|
RU2772821C1 |
СПОСОБ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ СУММЫ ФЛАВОНОИДОВ В ТРАВЕ СОЛОДКИ ГОЛОЙ | 2022 |
|
RU2806047C1 |
Способ количественного определения суммы флавоноидов в траве лабазника вязолистного | 2023 |
|
RU2811264C1 |
СПОСОБ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ СУММЫ ФЛАВОНОИДОВ В ТРАВЕ ЧЕРНУШКИ ПОСЕВНОЙ | 2022 |
|
RU2786440C1 |
СПОСОБ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ СУММЫ ФЛАВОНОИДОВ В ЛИСТЬЯХ ОРЕХА ГРЕЦКОГО | 2020 |
|
RU2747482C1 |
Изобретение относится к химико-фармацевтической промышленности. Раскрыт способ количественного определения суммы флавоноидов в траве аврана лекарственного, включающий экстракцию сырья этиловым спиртом в концентрации 70%, с последующим определением суммы флавоноидов методом дифференциальной спектрофотометрии при аналитической длине волны 398 нм по реакции комплексообразования в течение 40 минут с 5% спиртовым раствором хлорида алюминия в пересчете на лютеолин-7-глюкозид, при этом для реакции комплексообразования используют соотношение объемов извлечения из сырья травы аврана лекарственного и 5% спиртового раствора хлорида алюминия 1:2, для получения водно-спиртового извлечения из травы аврана лекарственного проводят экстракцию на кипящей водяной бане в течение 60 минут, сырье предварительно подготавливают путем измельчения травы аврана лекарственного до 2 мм, при использовании на 1 г навески сырья 100 мл этилового спирта в концентрации 70%, рассчитывают содержание суммы флавоноидов в пересчете на лютеолин-7-глюкозид и абсолютно сухое сырье. Изобретение обеспечивает разработку способа количественного определения суммы флавоноидов в траве аврана лекарственного, обладающего высокой специфичностью и точностью за счет обработки многомерных спектральных данных. 4 ил., 5 табл., 2 пр.
Способ количественного определения суммы флавоноидов в траве аврана лекарственного, включающий экстракцию сырья этиловым спиртом в концентрации 70%, с последующим определением суммы флавоноидов методом дифференциальной спектрофотометрии при аналитической длине волны 398 нм по реакции комплексообразования в течение 40 минут с 5% спиртовым раствором хлорида алюминия в пересчете на лютеолин-7-глюкозид, при этом для реакции комплексообразования используют соотношение объемов извлечения из сырья травы аврана лекарственного и 5% спиртового раствора хлорида алюминия 1:2, отличающийся тем, что для получения водно-спиртового извлечения из травы аврана лекарственного проводят экстракцию на кипящей водяной бане в течение 60 минут, сырье предварительно подготавливают путем измельчения травы аврана лекарственного до 2 мм, при использовании на 1 г навески сырья 100 мл этилового спирта в концентрации 70%, содержание суммы флавоноидов в пересчете на лютеолин-7-глюкозид и абсолютно сухое сырье вычисляют по формуле:
где A – оптическая плотность испытуемого раствора;
Aо – оптическая плотность раствора стандартного образца лютеолин-7-глюкозида;
а – навеска сырья, г;
ао – навеска стандартного образца лютеолин-7-глюкозида, г;
P – содержание основного вещества в стандартном образце лютеолин-7-глюкозида, %;
W – влажность сырья, %;
в случае отсутствия стандартного образца лютеолин-7-глюкозида для расчета целесообразно использовать теоретическое значение удельного показателя поглощения при 398 нм - 318:
где A – оптическая плотность испытуемого раствора;
– удельный показатель поглощения комплекса лютеолин-7-глюкозидас алюминия хлоридом при длине волны 398 нм, равный 318;
А – навеска сырья, г;
W – влажность сырья, %.
ПОЛУКОНОВА Н.В | |||
и др | |||
Химический анализ и способ получения новой билогически активной композиции из травы аврана лекарственного // Химия растительного сырья, 2013, N 4, стр | |||
Устройство для отыскания металлических предметов | 1920 |
|
SU165A1 |
СРЕДСТВО, ОБЛАДАЮЩЕЕ ПРОТИВОТУБЕРКУЛЕЗНЫМ ДЕЙСТВИЕМ | 2014 |
|
RU2549477C1 |
СПОСОБ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ СУММЫ ФЛАВОНОИДОВ В ЛИСТЬЯХ ОРЕХА ГРЕЦКОГО | 2020 |
|
RU2747482C1 |
CN 106511577 B, 20.12.2019 | |||
ЗОЛОТОВ Ю.А | |||
Основы аналитической химии // Издательский центр "Академия", Москва, |
Авторы
Даты
2024-10-31—Публикация
2023-12-28—Подача