Способ определения активности фосфолипазы а @ Советский патент 1988 года по МПК C12N9/16 

Описание патента на изобретение SU1364634A1

оэ

Од 4 О9 4

113646342

Изобретение относится к биохимий и 1,2 ма раствора гемоглобина (3,37х

и биотехнологии, а именно к определению активности одного из важнейших ферментов метаболизма липидов - фосфо- g глобина 2,9-10 М) , В опытную и

хЮ- М) в 0,01 М трис-НС буфере рН 7,4 (конечная концентрация гемолипазы А

г

Цель изобретения - упрощение способа определения активности фосфоли- пазы

Способ заключается в том, что анализируемую пробу, содержащую фосфо- липазу А, помещают в одну из кювет, в которых находятся мицеллярная.форма субстрата (яичный лецитин и холат натрия в соотношении 1:2-4), кофактор - соль кальция и гемоглобин, с последующей регистрацией разностных спектров гемопротеида на двухлучевом спектрофотометре. При этом интенсивность спектра между максимумом при 423 нм и минимумах при 405 им пропорциональна количеству жирной кислоты, освобождаемой в результате ферментативной реакциио

контрольную кюветы помещают по 2 мл реакционной смеси, прописывают на приборе Specord нулевую линию. Реакцию начинают добавлением в опытную

10 кювету возрастающего количества

фермента - 2,4,8,12,18 мкл (исходная концентрация ФЛА 0,011 мкг/мкл) Через 10 мин записывают изменение интенсивности между максимумом и ми1Е нимумом в разностном спектре гемоглобина в каждом случае отдельно Сразу же реакцию останавливают добавлением 0,1 мл 0,25 М ЭДТУ для того, чтобы провести параллельно опре20 деление активности фермента уже известным хроматографическим способом. Для этого к содержимому опытной кюветы добавляют двойной объем смеси хлороформа с метанолом в соотнощеглобина 2,9-10 М) , В опытную и

хЮ- М) в 0,01 М трис-НС буфере рН 7,4 (конечная концентрация гемоглобина 2,9-10 М) , В опытную и

контрольную кюветы помещают по 2 мл реакционной смеси, прописывают на приборе Specord нулевую линию. Реакцию начинают добавлением в опытную

кювету возрастающего количества

фермента - 2,4,8,12,18 мкл (исходная концентрация ФЛА 0,011 мкг/мкл) Через 10 мин записывают изменение интенсивности между максимумом и минимумом в разностном спектре гемоглобина в каждом случае отдельно Сразу же реакцию останавливают добавлением 0,1 мл 0,25 М ЭДТУ для того, чтобы провести параллельно определение активности фермента уже известным хроматографическим способом. Для этого к содержимому опытной кюветы добавляют двойной объем смеси хлороформа с метанолом в соотноще

Похожие патенты SU1364634A1

название год авторы номер документа
Способ определения активности фосфолипазы С 1988
  • Решетняк Василий Иванович
  • Еремин Владимир Александрович
  • Дворянцев Сергей Николаевич
  • Логинов Анатолий Сергеевич
  • Рууге Энно Кустович
  • Розенблат Геннадий Фридрихович
SU1682897A1
СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АКТИВНОСТИ ФОСФОЛИПАЗЫ Д 1992
  • Еремин В.А.
  • Янопольская Н.Д.
RU2035719C1
ФОСФОЛИПИДНЫЙ ФЛУОРЕСЦЕНТНЫЙ ЗОНД И ТЕСТ-СИСТЕМА ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АКТИВНОСТИ ФОСФОЛИПАЗЫ А2 В СЫВОРОТКЕ КРОВИ 2012
  • Болдырев Иван Александрович
  • Алексеева Анна Сергеевна
  • Молотковский Юлиан Георгиевич
  • Водовозова Елена Львовна
  • Самойлова Елена Виленовна
  • Коротаева Александра Алексеевна
  • Поздеева Татьяна Алексеевна
RU2517538C1
ФЛУОРЕСЦЕНТНЫЙ ЗОНД И ТЕСТ-СИСТЕМА ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АКТИВНОСТИ ФОСФОЛИПАЗЫ А2 2012
  • Болдырев Иван Александрович
  • Алексеева Анна Сергеевна
  • Молотковский Юлиан Георгиевич
  • Водовозова Елена Львовна
  • Самойлова Елена Виленовна
  • Коротаева Александра Алексеевна
  • Поздеева Татьяна Алексеевна
RU2517746C1
Способ определения концентрации гемоглобина в крови 1986
  • Ахрем Афанасий Андреевич
  • Андреюк Геннадий Михайлович
  • Кисель Михаил Александрович
  • Киселев Петр Андреевич
  • Колб Владимир Гаврилович
  • Дальнова Тамара Сергеевна
  • Светлицкая Светлана Георгиевна
SU1386901A1
СПОСОБ ДИАГНОСТИКИ ФИБРОЗНОГО ПРОЦЕССА В ПЕЧЕНИ ПРИ ХРОНИЧЕСКОМ ВИРУСНОМ ГЕПАТИТЕ 2004
  • Белобородова Эльвира Ивановна
  • Савченко Игорь Валерьевич
  • Белобородова Екатерина Витальевна
  • Рачковский Максим Игоревич
  • Абдрашитов Рафид Фаридович
  • Бурковская Вера Антоновна
  • Варлакова Наталья Николаевна
RU2270451C1
СПОСОБ ДИАГНОСТИКИ ХРОНИЧЕСКИХ ЗАБОЛЕВАНИЙ ПЕЧЕНИ 2000
  • Макаров В.К.
RU2167424C1
СПОСОБ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ АНТИОКСИДАНТНОЙ АКТИВНОСТИ МИКРООРГАНИЗМОВ 2011
  • Сухих Андрей Сергеевич
  • Захарова Юлия Викторовна
RU2465593C1
ПРОИЗВОДНЫЕ ДИАМИНОТРИФТОРМЕТИЛПИРИДИНА ИЛИ ИХ СОЛИ СО ЩЕЛОЧНЫМИ ИЛИ ЩЕЛОЧНОЗЕМЕЛЬНЫМИ МЕТАЛЛАМИ И ФАРМАЦЕВТИЧЕСКАЯ КОМПОЗИЦИЯ, ИНГИБИРУЮЩАЯ ФОСФОЛИПАЗУ A 1991
  • Такахиро Хага[Jp]
  • Хидео Суги[Jp]
  • Итару Сигехара[Jp]
  • Синдзи Одавара[Jp]
  • Суити Ецуа[Jp]
  • Хирохико Кимура[Jp]
  • Казухиро Ямамото[Jp]
RU2057123C1
БЕЛОК 2005
  • Брунстетт Янне
  • Миккельсен Йерн Дальгор
  • Педерсен Хенрик
  • Сеэ Йерн Борк
RU2380414C2

Иллюстрации к изобретению SU 1 364 634 A1

Реферат патента 1988 года Способ определения активности фосфолипазы а @

Изобретение относится к области биохимии и биотехнологии,в частности к определению активности одного из важнейших ферментов липидного метаболизма - фосфолипазы А{. Целью изобретения является повьшение точности и упрощение способа определения. Способ осуществляется путем добавления в измерительную кювету спектрофотометра, содержащую мицеллярную форму субстрата яичный лецитин и холат натрия в соотношении 1:2-4 , анализируемой фосфолипазы и кофакто- .ра-соль кальция, а в контрольную кювету - раствора гемоглобина и регистрации разностных спектров на двухлу- чевом спектрофотометре. При этом интенсивность спектра между максимумом при 423 нм и минимумом при 405 нм пропорциональна количеству жирной кислоты, освобождаемой в результате ферментативной реакции. Отличительным признаком способа является специфичность комплексообразования жирной кислоты с гемоглобином, приводящего к изменению спектральных характеристик гемопротеидао 3 ил ш со

Формула изобретения SU 1 364 634 A1

Пример 1о К 4 мг димиристоил- 25 нии 2:1, интенсивно встряхивают 5фосфатидилхолина приливают 0,04 мл 20%-ного холата Na (молярное соотно- щение.липид/детергент 1;4) и 12,8 ми 0,01 М трис-НС рН 7,4, интенсивно встряхивают, добавляют 0,12 мл 0,1 М CaClj и 1,2 мл раствора гемоглобина (3,37-10 М) в 0,01 М трис- НС , рН 7о4„ В опытную и контрольную кюветы помещают по 2 мл реакционной смеси, прописывают нулевую линию на приборе Specord, Реакцию начинают добавлением в опытную кювету 22 мкл раствора фермента (исходная концентрация фермента 0,01 мкг/мл ), через

10 мин, центрифупируют 10 мин при 3000 об/мин, нижний хлороформный слой .отбиргиот, упаривают и- продукты реакции - ЛФХ, ФХ и жирные кислоты

30 разделяют с помощью тонкостойной хроматографии на силикагелевых плас тинах в системе растворителей хлороформ: метанол (65:25:4 V/V) Пятна, соответствующие лизодимири35 стоилфосфатидилхолину (ЛФХ) и димн- ристоилфосфатидилхолину (ФХ), прояв ляют в парах 1, отмечают их грани цы, дают испариться. Пятна выскреба ют Затем проводят количественное

2,4,6,8 и 10 мин регистрируют измене- 40 определение неорганического фосфата

НИН интенсивности между максш-1умом и минимумом в разностном спектре ге- . моглобина. На фиг,1 показано изменение интенсивности между максимумом и минимумом, которое через 2,4,6,8 и 10 мин равно 0,02 D, 0,035D, 0,060, О,ID, G,145D соответственно.

Наблюдают рост интенсивности между максимумом и минимумом в разностном спектре гемоглобина в зависимости от времени ферментативной реакЦИИ(ФИГ(,1),

Пример 2о Построение калибровочной кривой, К 4 мг дикшристоил- фосфатидилхолина приливают 0,04 мл 20% холата Na (молгярное соотношение липид детергент 1:4), 12,8 млО,01М трис-НС1 рН 7,4, интенсивно встряхивают,, добавляют 0,12 мл 0,1 М CaClj м

10 мин, центрифупируют 10 мин при 3000 об/мин, нижний хлороформный слой .отбиргиот, упаривают и- продукты реакции - ЛФХ, ФХ и жирные кислоты разделяют с помощью тонкостойной хроматографии на силикагелевых пластинах в системе растворителей хлороформ: метанол (65:25:4 V/V) Пятна, соответствующие лизодимиристоилфосфатидилхолину (ЛФХ) и димн- ристоилфосфатидилхолину (ФХ), проявляют в парах 1, отмечают их границы, дают испариться. Пятна выскребают Затем проводят количественное

по методу Васьковского. К пробам добавляют 0,2 мц концентрированной нею 4 и нагревают 10 мин на песчаной бане, к остывшим-пробам приливают по 4,8 мл реагента Васьковского, . помещают в кипя1ЕСую водяную баню на 15 мин и колориметрируют на СФ-26 при А 825 нм. Исходя из полученных данных строят зависимость изменения интенсивности между максимумом и минимумом ( J D) в разностном спектре гемоглобина от концентрации фосфо- ипазы А2(фиг,2) и зависимость скорости накопления продукта реакции

(ЛФХ) от концентрации фосфолипазы А 2 (фиГоЗ), Из этих графиков находят корреляционные, коэффициенты К кК.

Определение К , из графика на фиг,3, бсцисса ордината

6 1 d-i

3,5- 10- 5 -107-10-3 0,85-10; : 4 -10- 0,87-10;

10

10- 0,83-10;

Среднее значение (0,85+0,02)10 Определение К из графика на фаг,2,

ордината : 5-10- ,1 : 6-10 ,1; 3,8-10- ,05; 1,8-10 ,К Среднее значение ,1 Из этих же графиков выводят KI- JD 1,1 - uD (фиг.2); 15 ФПАг А 0,85 -10 А, где А - количество продукта, образованного в единицу времени, выраженное мкМ (активности фермента)о

Кг- dD

известной концентрации предлагаемым способом и ранее применишшмся хрома- тографическим способом полу1 еьш1 5 сравнимые значения.

Определение активности фосфоиитаАбсцисса5,5 10- 6,6-10 4-10- : 2-10 :

зы АЗ описанным способом поы-шгшг специфичность опредален Я, поскольку не зависит от внешних факторов.

20

Отсюда К - А К„ лD А

или

А idD

8,5

8,5-А 1,1 П р

Л D.

Таким образом, способ отличается простотой, позволяет проводить ки-г нетические исследования непосредственно в кювете спектрофотометра, обладает высокой чувствительностью и точностью, В ходе определения активности фосфолипазы не происходит закисления среды, так как реакцию проводят в буферном растворе. Определение не требует уникального оборудования.

Способ может быть легко адаптироК ван для определения активности других липолитических ферментов, в результате действия которых освобожда-. 25 ется жирная кислота (липаза, липо- протеидлипаза и др.).

Способ может найти широкое применение в биохимических исследованиях кинетических закономерностей механизма действия фосфолипазы А, а также в биотехнологии для контроля активности фермента на разных стадиях очистки при промьшшенном выделении из природных источников.

30

им е р 3. Определение активности фо.сфолипазы А,,

Реакционную смесь готовят как в примере 1 и 2. К 2 МП реакционной смеси в опытную кювету добавляют 1 мкл раствора фосфолипазы А } неизвестной концентрации и через 10 мин 35 записывают изменения интенсивности между максиг мом и минимумом в разностном спектре гемоглобина. Оно равно 0,060D, что согласно рассчитанной в примере 2 формулы, соответству- 40 проведение фосфолипазной реакции ет активности 7,7-10 мкМ/мин. Од-анализируемой пробы в присутствии

Формула изобретения

Способ определения активности фосфолипазы А2, предусматриваю1ций

повременно оканчивают реакцию добавлением в опытную кювету 0,1 мл 0,25 М ЭДТУ. Продукты реакции экстрагируют двойным объемом смеси хлороформа с метанолом в соотношении 2:1, встряхивают, слои разделяют центрифугированием, нижний хлороформный слой упаривают и проводят определение , количества образовавшегося продукта хроматографическим способом и количественным определением неорганического фосфора по методу Вась- ковского. Получено при колориметри- ровании значение D ЛФХ, что соответствует активности фермента, равной 7,.-10 мкМ/мин. Из описанного следует, что при расчете активности фосфолипазы А7 не1364634

известной концентрации предлагаемым способом и ранее применишшмся хрома- тографическим способом полу1 еьш1 5 сравнимые значения.

Определение активности фосфоиитазы АЗ описанным способом поы-шгшг специфичность опредален Я, поскольку не зависит от внешних факторов.

10

15

15

20

30

проведение фосфолипазной реакции анализируемой пробы в присутствии

Формула изобретени

Способ определения активности фосфолипазы А2, предусматриваю1ций

соли кальция и мицеллярной субстрата - яичного лецитина с хола- том натрия с последующим измерением

количества жипной кислоты, отщепляющейся от фосфолипида, отличающийся тем, что, с целью упрощения способа анализируемую пробу, содержащую фосфолипазу А, помещают

в одну из двух кювет, в которые дополнительно вводят раствор гемоглобина, соль кальция и мицеллярную форму субстрата, количество жирной кислоты определяют спектрофотометрически по увеличению расстояния между максимумом и минимумом в разностном спектре гемоглобина, а активность фермента оценивают по калибровочному графикуо

550

Ш

500

600 700

28 26 2 22 20 /8 f6 / (Pu2.1

т JSff seo

ШАннн m ftoNf фиг 2

1364634

500

600 700 X,w

xfOOOcfi

-f

нм

i§ Я: 5ij «о ///УА жх/ йс ла тби 4i jOHynu/)f

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 1988 года SU1364634A1

Haas G.HoDe, Postema NoM, Nieurienhuizen W,,Deenen van, Purification and properties of phospholipase A from porcine pancreas
- Bioch, Biophys
Acta, 1968, V
Катодное реле 1918
  • Чернышев А.А.
SU159A1

SU 1 364 634 A1

Авторы

Литвинко Наталья Михайловна

Андреюк Геннадий Михайлович

Кисель Михаил Александрович

Киселев Петр Андреевич

Даты

1988-01-07Публикация

1986-02-10Подача