Предлагаются новые химические соединения, конкретно производные 4-(2l-оксиперфторизопропил)-2,6-динитроанилина общей формулы
R′--O-NH-R где при R' -OCH3, R -C4H9-н (I),
-C7H15-н (II), OH (III); при R' -OC4H9-изо R (IV); при R' -C6H5 R -C4H9-н (V), которые могут быть использованы в качестве ингибиторов реакционного центра фотосистемы 2 растений в биохимии при изучении процессов фотосинтеза.
Цель изобретения изыскание среди производных анилина соединений, обладающих высокой ингибирующей активностью по отношению к реакционному центру фотосистемы 2 растений.
П р и м е р 1. 4-(2'-Метоксикарбонилоксиперфторизопропил)-2,6-динитро-N-бу- тиланилин (I).
В круглодонную колбу емкостью 50 мл помещают 2,5 г (0,006 моль) 4-(2'-метоксикарбонилоксиперфторизопропил)-2,6-ди- нитрохлорбензола и 15 мл н-бутиламина. Реакционную смесь кипятят 2 ч с обратным холодильником, затем добавляют 25 мл эфира, выпавший осадок отфильтровывают. Фильтрат промывают 0,1 н. раствором НСl (2 х 35 мл), водой до рН 7, сушат над сульфатом магния и упаривают досуха. В итоге получают 1,44 г (53,5%) соединение I с т.пл. 68-69оС.
Найдено, N 9,32.
С15Н15F6N3O7.
Вычислено, N 9,07.
П р и м е р 2. 4-(2'-Метоксикарбонилоксиперфторизопропил)-2,4-динитро-N-геп-тиланилин (II).
В круглодонную колбу емкостью 50 мл помещают 2,5 г (0,006 моль) 4-(2'-метоксикарбонилоксиперфторизопропил)-2, 6-динитрохлорбензола и 15 мл н-гептиламина. Реакционную смесь кипятят 2 ч с обратным холодильником. Затем добавляют 25 мл эфира и отфильтровывают выпавший осадок. Фильтрат промывают 0,1 н. раствором НСl (2х35 мл), водой (3х50 мл), сушат над сульфатом магния и упаривают досуха. В итоге получают 2,33 г (79,0%) соединение II с т.пл. 69-70оС.
Найдено, С 42,51; Р 4,68; N 7,90.
С18Н21F6N3O7
Вычислено, С 42,78; Н 4,19; N 8,31.
П р и м е р 3. 4-(2'-Метоксикарбонилоксиперфторизопропил)-2,4-динитро-N-n-оксифениланилин (III).
В одногорлую колбу емкостью 25 мл помещают раствор 1,15 г (0,0027 моль) 4-(2'-метоксикарбонилоксиперфторизопропил)-2,6- динитрохлорбензола в 10 мл хлороформа, при перемешивании магнитной мешалкой добавляют 0,59 г (0,0054 моль) n-аминофенола. Затем реакционную смесь кипятят 3 ч с обратным холодильником и обрабатывают по примеру 1. В итоге получают 1,0 г (80,0%) соединение III с т.пл. 173-174оС.
Найдено, С 40,58; Н 2,33; N 8,36.
С17Н11F6N3O8.
Вычислено, С 40,89; Н 2,22; N 8,45.
П р и м е р 4. В круглодонную колбу емкостью 50 мл помещают раствор 1,26 г (0,0027 моль) 4-(2'-изобутоксикарбонилоксиперфторизопропил)-2, 6-динитрохлорбензола в 10 мл хлороформа. При перемешивании магнитной мешалкой добавляют 0,59 г (0,0054 моль) о-аминофенола. Реакционную смесь кипятят 3 ч с обратным холодильником. Затем отфильтровывают выпавший осадок, фильтрат промывают 0,1 н. раствором НСl (2х25 мл), водой (3х50 мл), сушат над сульфатом магния и упаривают досуха. В итоге получают 1,2 г (81,6%) соединения IV с т.пл. с 160-161оС.
Найдено, С 44,03; Н 3,17; N 7,37.
С20Н17F6N3O8.
Вычислено, С 44,37; Н 3,17; N 7,76.
П р и м е р 5. 4-(2'-Бензоилоксиперфторизопропил)-2,6-динитро-N-бутиланилин (V).
В круглодонную колбу емкостью 50 мл помещают 2,8 г (0,006 моль) 4-(2'-бензоилоксиперфторизопропил)-2, 6-динитрохлорбензола и 20 мл н-бутиламина. Реакционную смесь кипятят 2 ч с обратным холодильником и затем обрабатывают по примеру 1. В итоге получают 1,9 г (63,0%) соединения V с т.пл. 69-70оС.
Найдено, N 8,13.
С20Н17F6N3O6
Вычислено, N 8, 25.
Было изучено ингибирующее действие соединений I-V на перенос электрона в фотосистеме 2 (ФС-2), которое определяли по влиянию этих соединений на величину фотоиндуцированных изменений выхода флуоресценции хлорофилла (ΔФ) ФС-2, связанных с фотовосстановлением первичного акцептора электрона QA. При освещении светом (λ> 600 нм) хлоропластов или субхлоропластных препаратов, обогащенных ФС-2, наблюдается флуоресценция хлорофилла. Функционально различают постоянную (Фo) и переменную (ΔФ) флуоресценции. Постоянная флуоресценция испускается хлорофиллом антенны и не связана с функционированием электрон-транспортной цепи (ЭТЦ).
На примере соединения IV было изучено влияние описываемых соединений на фотоиндуцированные изменения выхода флуоресценции хлорофилла реакционного центра (РЦ) ФС-2 (ΔФ) на субхлоропластных препаратах, обогащенных ФС-2 (ДТ-20). Субхлоропластные препараты ДТ-20 выделяли с помощью 0,4% дигитонина и 0,1% тритона Х-100 из листьев гороха. Использованные субхлоропластные препараты ДТ-20 содержат один РЦ на 100-200 молекул хлорофилла.
Опыты проводили в кварцевой кювете (l 10 мм) в среде А, содержащей: 15 мМ трис-НСl (рН 7,8), 35 мМ NaCl, 2мМ МgCl2. Концентрация хлорофилла в среде 10 мг/мл. Непосредственно перед каждым измерением брали 10 мл ДТ-20 с исходной концентрацией 2,0 мг/мл и доводили средой А до 2 мл. Маточный раствор вещества IV готовили в диметилсульфоксиде (ДМСО) марки х.ч. затем доводили средой А до нужной концентрации. Содержание ДМСО в реакционной среде не превышало 2% В предварительных опытах было установлено, что наличие в реакционной среде даже 15-20% ДМСО не влияет на фотохимическую активность ФС-2.
Измерение фотоиндуцированных изменений выхода флуоресценции хлорофилла проводили на двухлучевой фосфороскопической установке. Сначала регистрировали уровень постоянной флуоресценции (Фo), возбуждаемой измерительным светом (λ= 480 нм, 50 эрг ˙ см-2 ˙с-1), а затем фотоиндуцированные ΔФ, вызываемые включением действующего света (λ> 600 нм, 2˙ 105 эрг ˙см-2 ˙с-1). Это значение ΔФ, полученное в отсутствие соединения V, принимали за 100% (контроль). Таким образом проводили измерение подавления ΔФ различными концентрациями соединения IV. Полученные результаты представлены в табл. 1.
На основании полученных данных определяли значение величины J50(концентрации, вызывающей 50%-ное подавление ΔФ). Аналогично была изучена ингибирующая способность соединений I-IV в сравнении с известными ингибиторами фотосистемы 2: диносебом и диуроном. Рассчитаны значения величин J50 и J100 (концентрации, вызывающей 100%-ное подавление ΔФ). Полученные результаты представлены в табл. 2.
Кроме того, определяли количество молекул ингибитора на один РЦ ФС-2. Как показали расчеты, ингибирование ФС-2 происходит при добавлении одной молекулы соединений I-V на один РЦ ФС-2.
Ввиду того, что уменьшение величины фотоиндуцированных ΔФ можно вызвать не только усилением оттока электронов от первичного восстановленного акцептора электрона QA добавлением экзогенного акцептора электрона (феррицианида или дихлорфенолиндофенола), но и блокированием потока электронов на уровне реакционного центра или нарушением потока электронов к реакционному центру от донорного участка ФС-2 путем его инактивирования различными обработками была изучена обратимость ингибирующего действия описываемых соединений на фотоиндуцированные ΔФ препаратов ФС-2. Причем, если инактивирование или ингибирование фотохимической активности ФС-2 происходит на уровне донорного участка и не затрагивает реакционного центра, то внесение экзогенных доноров электронов ФС-2 (MnCl2 или аскорбата натрия) вызывает реактивацию (восстановление) активности, близкой к первоначальной. Это наблюдается при добавлении аскорбата натрия к трис-обработанным препаратам ФС-2 (препараты с инактивированным донорным участком). Измерение фотоиндуцированных ΔФ и их ингибирование проводили, как описано выше, но с тем отличием, что соединения I-V вносили в реакционную смесь сразу в концентрации, вызывающей 90%-ное инактивирование фотохимической активности ФС-2. Затем в реакционную смесь вносили аскорбат натрия и измеряли изменения инактивированных фотоиндуцированных ΔФ. Полученные результаты представлены в табл. 3.
В результате проведенных исследований установлено, что добавление аскорбата натрия в реакционную смесь вплоть до концентрации 1 мг/мл не реактивирует фотохимическую активность препаратов ФС-2, предварительно обработанных предлагаемыми соединениями.
Кроме того, было изучено действие соединений I-V на перенос электрона в фотосистеме 1 (ФС-1) по их влиянию на фотоиндуцированные изменения поглощения (Δ А) при λ= 700 нм, связанные с фотоокислением первичного донора электрона РЦ ФС-1. Выделение хлоропластов и субхлоропластных препаратов, обогащенных ФС-1, и определение ΔА проводили по известной методике. Полученные результаты представлены в табл. 4.
Как видно из данных, приведенных в табл. 4 соединения I-V не оказывают ингибирующего действия на фотоиндуцированные ΔА П700 реакционных центров ФС-1.
В результате проведенных исследований установлено, что описываемые соединения I-V обладают высокой избирательной ингибирующей активностью непосредственно по отношению к реакционному центру фотосистемы 2 растений, не затрагивая акцепторную и донорную стороны ФС-2, в отличие от диурона, который действует на акцепторную сторону ФС-2 и не действует на реакционный центр. Кроме того, следует отметить, что соединения I-V по ингибирующей способности превосходят диносеб в 50-100 раз. Указанные свойства описываемых соединений позволяют использовать их при изучении тонких механизмов первичных процессов фотосинтеза, а также в фундаментальных исследованиях функциональной организации реакционного центра фотосистемы 2 растений и механизмов фотосинтетического окисления воды и выделения кислорода в качестве эффективных и специфических ингибиторов переноса электрона в фотосистеме 2 растений.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Способ определения количества реакционных центров фотосистемы-2 растений | 1987 |
|
SU1494880A1 |
Способ выделения реакционных центров фотосистемы 2 растений | 1990 |
|
SU1718754A1 |
Способ определения количества реакционных центров фотосистемы 2 растений | 1989 |
|
SU1664176A1 |
АМИНОАМИДЫ В РЯДУ БАКТЕРИОХЛОРОФИЛЛА A, ОБЛАДАЮЩИЕ ФОТОДИНАМИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТЬЮ, И СПОСОБ ИХ ПОЛУЧЕНИЯ | 2013 |
|
RU2548675C9 |
ПРЕПАРАТ ДЛЯ ФОТОДИНАМИЧЕСКОЙ ТЕРАПИИ И СПОСОБ ФОТОДИНАМИЧЕСКОЙ ТЕРАПИИ РАКА С ЕГО ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ | 2012 |
|
RU2521327C1 |
ПЕПТИДНЫЙ АНТИБИОТИК БАКТЕРИАЛЬНОГО ПРОИСХОЖДЕНИЯ ЛАТЕРОЦИН, ПОДАВЛЯЮЩИЙ РАЗВИТИЕ МИКРОСКОПИЧЕСКИХ ВОДОРОСЛЕЙ | 2010 |
|
RU2430966C1 |
СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ОТНОСИТЕЛЬНОЙ УСТОЙЧИВОСТИ СОРТОВ ЯЧМЕНЯ И ПШЕНИЦЫ К ОБЫКНОВЕННОЙ КОРНЕВОЙ ГНИЛИ ЗЛАКОВ | 1999 |
|
RU2188538C2 |
СПОСОБ ПОВЫШЕНИЯ ПРОДУКТИВНОСТИ РАСТЕНИЙ КАРТОФЕЛЯ В ОПТИМАЛЬНЫХ И СТРЕССОВЫХ УСЛОВИЯХ ВЫРАЩИВАНИЯ | 2019 |
|
RU2711577C1 |
ФОТОБИОКАТАЛИЗАТОР ДЛЯ ОБРАЗОВАНИЯ ВОДОРОДА И ФОТОКАТАЛИТИЧЕСКИЙ СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ВОДОРОДА | 2012 |
|
RU2511053C2 |
СПОСОБ ДИСТАНЦИОННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ ФУНКЦИОНАЛЬНОГО СОСТОЯНИЯ ФОТОСИНТЕТИЧЕСКОГО АППАРАТА РАСТЕНИЙ | 2010 |
|
RU2453829C2 |
Изобретение относится к оксиаминам, в частности к производным 4-( 2′ -оксиперфторизопропил) 2,6 динитроанилина, которые могут быть использованы в качестве ингибиторов реакционного центра фотосистемы 2 растений в биохимии при изучении процессов фотосинтеза. Цель - выявление соединений, обладающих высокой ингибирующей активностью. Получение ведут кипячением смеси избытка алкиламинов или аминофенолов с соответствующими бензоилокси- или алкоксикарбонилокси-перфторизопропилдинитрохлорбензолами в органическом растворителе. Структура соединения где при R′= -OCH3; R = -C4H9 (I), при R′= -OC4H9-изо при R′= -C6H5 R = -C4H9-H (V). 4 табл.
Производные 4-(2′-оксиперфторизопропил) -2,6-динитроанилина общей формулы
где при R′ -OCH3 R= C4H9, -C7H15-н,
при R′ -C6H5 R -C4H9-н,
в качестве ингибиторов реакционного центра фотосистемы 2 растений.
Van | |||
Assohe C.J., Carles P.M | |||
Аппарат для очищения воды при помощи химических реактивов | 1917 |
|
SU2A1 |
Biochemical responses induced by herbicides | |||
Washington: Americar Chemical Society Press, 1982, p.1. |
Авторы
Даты
1995-12-20—Публикация
1987-12-18—Подача