СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ПРЕПАРАТА "СПОРОБАКТЕРИН" Российский патент 1996 года по МПК A61K35/74 C12N1/20 

Описание патента на изобретение RU2056855C1

Изобретение относится к микробиологии, касается способа получения препарата "Споробактерин", представляющего собой микробные клетки штамма Bacillus subtilis 534. Препарат предназначен для лечения и профилактики хирургических инфекций и дисбактериозов, вызванных патогенными и условно-патогенными бактериями, дрожжевыми грибками.

Известные способы культивирования различных штаммов B.subtilis направлены на получение из культуральной жидкости ряда ферментов, таких как α-амилаза (1, 2, 3), протеаза (4), пектат-трансаминаза (5), а также ряда антибиотехнических веществ (6, 7). Они основаны на использовании периодического и непрерывного глубинного культивирования на жидких питательных средах.

Поскольку эти методы предусматривают получение продуктов метаболизма сенной палочки, что не обеспечивают максимального возможный выход бактериальных клеток и не могут быть использованы для получения биомассы B.subtilis 534. Кроме того, применяемые в них питательные среды, физические параметры и длительность проведения процессов не обеспечивают проявления антагонистических свойств бактериальной массой выращиваемого штамма.

Наиболее близким по совокупности признаков является способ получения препарата "Споробактерин" путем выращивания штамма B.subtilis 534 на твердой питательной среде в матрасах со скошенным мясо-пептонным агаром в термостате при (37± 1)оС в течение 24 ч. Выращенную биомассу смывают и разводят средой высушивания до нужной концентрации, разливают по ампулам и высушивают методом сублимации.

Недостатком способа является трудоемкость, нетехнологичность этапов засева и смыва культуры с агара, повышенная опасность контаминации целевого продукта посторонней микрофлорой из-за многократности открывания матрасов, отсутствие возможности получения стандартного по количеству микробных клеток препарата ввиду особенностей роста культуры штамма на плотной питательной среде (В виде врастающей в агар слизевой трудноразбиваемой пленки).

Целью настоящего изобретения является разработка способа глубинного периодического культивирования штамма B.subtilis 534, обеспечивающего высокий выход биомассы с выраженной антагонистической активностью для получения стандартного препарата "Споробактерина".

Поставленная цель достигается тем, что культивирование штамма проводят в ферментере при перемешивании и аэрации в жидкой питательной среде. Получение экспоненциальной маточной культуры в ферментере проводят в условиях повышенной аэрации, достигающей 50-70% от полного насыщения среды кислородом. Основной процесс культивирования проводят в том же ферментере и начинают, используя посевную дозу 1,0-2,0 .109 микробных клеток в 1 мл; после 8-10 ч выращивания культуры, когда происходит изменение рН в щелочную сторону (рН 8,1 и выше), для устранения этого явления в последующие часы проводят рН-статирование процесса на уровне рН 7,5-8,0 до конца культивирования, микробную массу отделяют методом микрофильтрации и отмывают в режиме диафильтрации.

Сравнение существенных признаков предлагаемого технического решения с прототипом показывает, что общим для них является проведение процесса культивирования на питательной среде с целью получения биомассы штамма B.subtilis 534, обладающей антагонистической активностью в отношении ряда тестовых штаммов патогенных и условно-патогенных бактерий.

Однако при известных условиях выращивания невозможно получить стандартный по количеству микробных клеток препарат "Споробактерин" из-за особенностей роста штамма на плотной питательной среде в виде врастающей в агар плотной слизевой пленки.

Отличительными особенностями предлагаемого способа являются: реакторное гомогенное глубинное культивирование штамма B.subtilis 534 на жидкой питательной среде, включающее:
получение маточной экспоненциальной культуры в ферментере в условиях повышенной аэрации с целью исключения опасности контаминирования культуры B.subtilis 534 посторонней микрофлорой и сокращения времени ее получения с 72 ч (5), 24 ч (3), 18 ч (1,3) до 4-6 ч;
рН-статирование культуральной жидкости с 8-10 ч от начала культивирования на уровне рН 7,5-8,0 с целью увеличения выхода бактериальной массы за счет продления фазы замедления скорости роста до полного истощения резервов питательной среды;
выделение микробной массы из культуральной жидкости методом микрофильтрации и отмывка ее в режиме диафильтрации с целью получения бактериальной массы, очищенной от примесных компонентов питательной среды.

Приведенная совокупность существенных признаков заявляемого способа в литературе не описана. Она также не следует из научных данных о физиологии микроорганизма B.subtilis, т.е. не вытекает из известного уровня техники, а следовательно, соответствует критериям "новизна" и "изобретательский уровень".

Способ осуществляют следующим образом.

Культуру штамма B.subtilis 534, выращенную на агаре, засевают в ферментер в полусинтетическую картофельно-глицериновую питательную среду. Состав среды описан в заявке N 4899653, кл. С 12 N 1/20, положительное решение от 29.07.91 г. Подращивание проводят при температуре 37оС и аэрации, обеспечивающей 50-70% насыщение среды кислородом. Через 5 1 ч культура достигает экспоненциальной фазы, которой соответствует удельная скорость роста 0,45-0,55/ч, а концентрация микробных клеток составляет 26-28 .109 кл/мл. Основной процесс культивирования осуществляют в этом же ферментере. Посевная доза культуры соответствует 1,0-2,0х109 кл/мл, для ее получения к маточной экспоненциальной культуре добавляют необходимый объем свежей питательной среды. Насыщение среды кислородом снижают до 25-30% После 8-10 ч культивирования проводят рН-статирование процесса на уровне значений рН 7,5-8,0 путем добавления 12,5%-ного раствора HCl. Продолжительность основного процесса культивирования составляет 36 ч. После слива культуральной жидкости микробные клетки отделяют методом микрофильтрации и отмывают от остатков питательной среды в режиме диафильтрации.

Способ иллюстрируется следующими примерами.

П р и м е р 1. Культуру второго пассажа засевают в ферментер марки АК-10 с 2 л питательной среды. Подращивание проводят 5 ± 1 ч при температуре 37оС, подаче воздуха 14,1 л/мин и перемешивании 250-300 об/мин, обеспечивающих 50-70% концентрацию растворенного в среде кислорода. При достижении культурой экспоненциальной фазы роста часть культуральной жидкости сливают, оставляя такое ее количество, чтобы при добавлении 8 л свежей питательной среды получить посевную дозу культуры, равную 1,0-2,0х109 кл/мл. Основное культивирование проводят при аэрации и перемешивании, создающих 25-30%-ное насыщение среды кислородом. Через 8-10 ч от начала процесса, когда рН культуральной жидкости становится 8,1 и выше, начинают рН-статирование 12,5%-ным раствором HCl, поддерживая его значения на уровне рН 7,5-8,0. Продолжительность выращивания соответствует 34-36 ч, при этом конечное содержание бактериальных клеток в среде культивирования составляет 20-24х109 кл/мл. Клетки отделяют от среды культивирования микрофильтрацией на мембранах марки "мифил" и отмывают физраствором в режиме диафильтрации. Полученную биомассу проверяют на наличие антагонистической активности в отношении тестовых штаммов (таблица).

Сравнительный анализ предлагаемого способа культивирования с прототипом.

Расход питательной среды на одну серию препарата "Споробактерин" в объеме 1000 ампул: по способу-прототипу расходуется 60 л питательной среды, разлитой в 240 матрасов по 250 мл; по заявляемому способу требуется только 10 л питательной среды без агара.

Антагонистическая активность биомассы штамма B.subtilis 534:
антагонистическая активность биомассы, получаемой по способу-прототипу и по заявляемому способу, существенно не отличается.

Стандартность конечного продукта-препарата "Споробактерин".

Способ-прототип не обеспечивает стандартность по количеству клеток препарата "Споробактерин" из-за особенностей роста штамма на твердой питательной среде в виде трудноразбиваемой слизевой пленки, врастающей в агар. Заявляемый способ свободен от этого недостатка.

Таким образом, сравнительный анализ заявляемого способа с прототипом показывает, что заявляемый способ отличается технологичностью, меньшими затратами (в 6 раз меньший расход питательной среды на 1 серию препарата в 1000 ампул), позволяет получать стандартный пот количеству микробных клеток препарат "Споробактерин".

П р и м е р 2. Подращивание маточной культуры в ферментере проводят при аэрации и перемешивании, обеспечивающих 30-40%-ное насыщение среды кислородом. Остальные условия как в примере 1. Культура достигает экспоненциальной фазы через 8-10 ч от начала подращивания, это удлиняет процесс культивирования по сравнению с примером 1 на 4 ч.

П р и м е р 3. Подращивание маточной культуры и процесс культивирования осуществляют как в примере 1, однако рН-статирование не проводят. При этом после 8-10 ч культивирования рН культуральной жидкости достигает значений 9-10, а конечная концентрация полученной биомассы составляет 14-16х109 кл/мл, т.е. на 8-10х109 кл/мл ниже, чем в примере 1.

Таким образом, из примеров 2 и 3 видно, что снижение концентрации растворенного в среде кислорода на стадии подращивания культуры, отсутствие рН-статирования удлиняют процесс культивирования и снижают выход биомассы, т.е. не позволяют достичь того результата, который может быть получен в условиях, заявленных в формуле изобретения.

Похожие патенты RU2056855C1

название год авторы номер документа
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЭКЗОТОКСИНА А ИЗ PSEUDOMONAS AERUGINOSA 1988
  • Михайлова Н.А.
  • Кузнецова Т.Н.
  • Баснакьян И.А.
RU1587723C
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЭКЗОТОКСИНА А СИНЕГНОЙНОЙ ПАЛОЧКИ 1986
  • Михайлова Н.А.
  • Кузнецова Т.Н.
  • Шаймухаметов Ф.А.
  • Мороз А.Ф.
  • Баснакьян И.А.
RU1410527C
СПОСОБ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ БАКТЕРИОФАГОВ ЭНТЕРОБАКТЕРИЙ 1982
  • Ворошилова Н.Н.
  • Баснакьян И.А.
  • Казакова Т.Б.
  • Михайлов А.И.
  • Каримов Р.М.
SU1058283A1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ПИОБАКТЕРИОФАГА 1992
  • Ворошилова Н.Н.
  • Казакова Т.Б.
  • Горбаткова Г.А.
  • Боговазова Г.Г.
  • Афанасьева Э.В.
  • Бондаренко В.М.
RU2036232C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЭКЗОТОКСИНА А PSEUDOMONAS AERUGINOSA 1989
  • Михайлова Н.А.
  • Шаймухаметов Ф.А.
  • Кузнецова Т.Н.
RU1596770C
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ МЕНИНГОКОККОВОГО СЕРОГРУППЫ В ЛИПООЛИГОСАХАРИДА 1993
  • Баснакьян И.А.
  • Стукалова Н.В.
  • Алексахина Н.Н.
  • Артемьева Т.А.
  • Карабак В.И.
  • Львов В.Л.
  • Вернер И.К.
RU2089215C1
ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ ВЫРАЩИВАНИЯ ШТАММА BACILLUS SUBTILIS N 534 1991
  • Михайлова Н.А.
  • Кузнецова Т.Н.
  • Шаяхметов А.Ш.
  • Кунягина О.В.
SU1835845A1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ВИРУССОДЕРЖАЩЕГО МАТЕРИАЛА ДЛЯ ИЗГОТОВЛЕНИЯ АНТИРАБИЧЕСКОЙ ВАКЦИНЫ 1994
  • Шафеева Р.С.
  • Фролова А.В.
RU2083668C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ПРОТЕОЛИТИЧЕСКИХ ФЕРМЕНТОВ ИЗ БАКТЕРИЙ РОДА BACILLUS 1997
  • Михайлова Н.А.
  • Кузнецова Т.Н.
  • Зобова Т.И.
  • Нафиков Р.С.
  • Холодная Ж.В.
RU2112035C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЧЕЛОВЕЧЕСКОГО ЛЕЙКОЦИТАРНОГО ИНТЕРФЕРОНА 1990
  • Хафизова Л.Г.
  • Бобкова Е.В.
RU1709615C

Иллюстрации к изобретению RU 2 056 855 C1

Реферат патента 1996 года СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ПРЕПАРАТА "СПОРОБАКТЕРИН"

Использование: микробиология, получение препарата "Споробактерин", штамма Bacillus subtilis 534. Сущность изобретения: способ включает культивирование штамма в ферментере при перемешивании и аэрации в жидкой питательной среде. Посевную культуру получают непосредственно в ферментере в условиях повышенной аэрации, достигающей 50 - 70% от полного насыщения среды кислородом, основной процесс культивирования проводят в том же ферментере, используя посевную дозу 1 - 2 • 109 кл/мл. После 8 - 10 ч выращивания культуры, когда происходит изменение pH в щелочную сторону, начинают pH-статирование процесса на уровне pH 7,5 - 8,0 до конца культивирования. После слива культуральной жидкости отделяют микробную массу методом микрофильтрации и отмывают в режиме диафильтрации. Способ обеспечивает высокий выход биомассы Bacillus subtilis 534 с выраженной антагонистической активностью. Получаемый препарат стандартен по количеству микробных клеток. 1 табл.

Формула изобретения RU 2 056 855 C1

СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ПРЕПАРАТА "СПОРОБАКТЕРИН", включающий посев штамма Bacillus subtilis 534 ВКМ N В-1666Д в питательную среду, его выращивание с последующим отделением микробных клеток и выделением целевого продукта, отличающийся тем, что посев проводят в жидкую питательную среду, культуру выращивают в условиях аэрации и перемешивания, обеспечивающих 50 - 70%-ное насыщение среды кислородом до фазы экспоненциального роста, затем осуществляют разведение культуры свежей питательной средой до концентрации (1 - 2) • 109 кл/мл, снижают насыщение среды кислородом и продолжают процесс культивирования при рН-статировании на уровне 7,5 - 8,0, а микробные клетки отделяют микрофильтрацией в режиме диафильтрации.

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 1996 года RU2056855C1

Печь для непрерывного получения сернистого натрия 1921
  • Настюков А.М.
  • Настюков К.И.
SU1A1
Фенцл З., пазларова Я., площек И
и др
- Микробиология, т.X VIII, 1979, вып.1, с.93
Аппарат для очищения воды при помощи химических реактивов 1917
  • Гордон И.Д.
SU2A1
Бахматова И.В., Жариков Г.Г
- Микробиология, т
X VIII, вып
Переносная печь для варки пищи и отопления в окопах, походных помещениях и т.п. 1921
  • Богач Б.И.
SU3A1
Переносная печь для варки пищи и отопления в окопах, походных помещениях и т.п. 1921
  • Богач Б.И.
SU3A1
Куприянова Ф.Г., Решетник О.Ш., Хайртдинов С.А
и Винтер В.Г
- Микробиология, 1979, т
X VIII, вып.2, с.249
Очаг для массовой варки пищи, выпечки хлеба и кипячения воды 1921
  • Богач Б.И.
SU4A1
Чердынцева Т.А., Разиньков В.Г
и Егоров Н.С
- Микробиология, 1982, вып.3, т.51, с.431
Кипятильник для воды 1921
  • Богач Б.И.
SU5A1
Макарова Н.М., Ховрычев М.П
и Бравова Г.Б
Ферменты микроорганизмов
ВНИИ биотехнологии, ВНИИСЭНТИ, 1989, с.160
Приспособление для точного наложения листов бумаги при снятии оттисков 1922
  • Асафов Н.И.
SU6A1
Бойко Н.В., Туряница А.И., Попович Е.П
и Вьюницкая В.А
- Микробиология, 1989, 51, N 1, с.87
Способ восстановления хромовой кислоты, в частности для получения хромовых квасцов 1921
  • Ланговой С.П.
  • Рейзнек А.Р.
SU7A1
Chevanet Catherine, Besson Fragoise, Michel Georges "Can
J
Microbiol.", 1986, 32, N3, 254-258
Топка с несколькими решетками для твердого топлива 1918
  • Арбатский И.В.
SU8A1
Способ размножения копий рисунков, текста и т.п. 1921
  • Левенц М.А.
SU89A1
Устройство для сортировки каменного угля 1921
  • Фоняков А.П.
SU61A1

RU 2 056 855 C1

Авторы

Михайлова Н.А.

Кузнецова Т.Н.

Шаяхметов А.Ш.

Кунягина О.В.

Шаймухаметов Ф.А.

Даты

1996-03-27Публикация

1991-12-02Подача