Изобретение относится к медицине, а именно к способам получения ингибиторов клеточной пролиферации.
В настоящее время в качестве клеточной пролиферации наибольшее применение получили цитостатики [1]
Недостатком препаратов является наличие многочисленных побочных эффектов, связанных с нарушением иммунного статуса.
Известно получение ингибитора клеточной пролиферации путем обезвоживания и обезжиривания лимфоцидных тканей млекопитающих с последующей экстракцией водой и лиофилизацией. Препарат угнетает лейкозные клетки, при этом оказывает слабое стимулирующее действие на нормальные [2]
Прототипом заявляемого изобретения является усовершенствованный метод получения препаратов из лимфоидных тканей (селезенки), заключающийся в том, что перед извлечением селезенки в организм водят циклофосфат или иные препараты, разрушающие ткань [3]
Недостатками прототипа являются невозможность получения высокоселективного препарата, нетехнологичность процесса получения.
Проблема получения более эффективного препарата за счет более технологического способа решается путем, предложенным авторами.
Способ включает в себя гомогенизацию измельченных тканей, экстракцию их водой при 4-10o в течение 16-20 часов с последующим отделением нерастворимых частиц фильтрованием, после чего продукт подвергают ультрафильтрации на мембранах со средним размером пор , смешивают со стабилизатором конечной концентрации последнего в соотношении 0,05-1% и лиофилизуют, а затем готовят лекарственную форму. В качестве стабилизатора используют полиглюкин, реополиглюкин или желатиноль, которые обеспечивают образование защитного комплекса с активными центрами. В качестве лимфоидных тканей используют селезенку свиней, кролика.
Для получения лекарственной формы лиофилизат растворяют в воде, исходя из требуемой удельной активности, выдерживают не менее двух часов для созревания, затем стерилизуют и фасуют.
Отличиями заявляемого способа от прототипа являются: использование для очистки продукта ультрафильтрации на мембранах, введение соединений, стабилизирующих активные центры препаратов, а также введение новой технологии получения готовой лекарственной формы, включающей созревание препарата, и выдерживание его при пониженной температуре не менее двух часов.
Ранее в литературе данная совокупность операций не описана. В литературе известно применение в качестве источников сырья лимфоидных тканей с последующей экстракцией, отделением водной части центрифугированием, осаждением целевого продукта этанолом, растворением в воде и гельхроматографией на сефадексе G-75 [4] (а. с. 1506669, недоступное неограниченному кругу лиц, что исключает его выбор в качестве прототипа). Однако эта технология не позволяет получить конечный продукт высокой активности, а также непригодна для использования в производстве, кроме того получаемый препарат пирогенен.
Значительные отличия заявляемого способа от аналога, получение высокоактивного препарата, не достижимого при известных методах переработки, подтверждают соответствие изобретения критерию "изобретательский уровень".
Сущность изобретения и возможность практического использования иллюстрируются примерами.
Пример 1. 1,0 кг лимфоузлов свиньи помещали в гомогенизатор при 4000 об/мин на 4 минуты, после чего заливали шестикратным объемом стерильной дистиллированной воды и помещали в холодильник (при 4-10oC) по крайней мере на 16 часов (оптимально 18-20 часов), после чего фильтровали через марлю на воронке Бюхнера. В результате получали 5,5 л фильтрата.
Фильтрат помещают в половолоконную установку ультрафильтрации (размер пор ), где проводят очистку при скорости подачи 100-150 л/час при давлении 0,8- 1,0 атмосфер до полного расхода жидкости. После вводят полиглюкин из расчета образования до конечной концентрации в фильтрате до 0,1±0,05% и подвергают раствор сублимационной сушке. Получают 25 г препарата с активностью 3-166 ЕИА.
Полученный препарат стерилизуют, затем растворяют в воде до активности 3000 ЕИА/мл и помещают для созревания в холодильник при 4-6o на 14-18 часов, после чего подвергают повторной стерилизующей фильтрации через мембраны с размером пор не менее 0,22 мк, сублимационно высушивают и фасуют.
Пример 2. Испытание специфической активности ингибитора пролиферации, получившего наименование "лимфотилин".
Влияние лимфотилина на синтез ДНК в лимфоцитах периферической крови доноров изучали в тесте РБТ, стимулированных ФГА клеток. Лимфоциты из плазмы крови выделяли в градиенте плотности фиколлверографина. Количество клеток в культуре 2 • 106 кл/мл. Клетки культивировали в среде 199 с добавлением 15% активированной сыворотки человека группы АВ, стрептомицина (100 мкг/мл) и пенициллина (100 Е/мл). Концентрация ФГА в культуре составляла 4 мкг/мл. Клетки инкубировали в СО2-инкубаторе при 37o и 5% CO2 в воздухе в течение 72 часов. Лимфотилин вводили в культуру одновременно с ФГА в начале инкубации. Были испытаны концентрации препарата от 0,1 ЕИА/мл до 500 ЕИА/мл 3Н-тимидин в концентрации 1 мкк/мл вносили в культуру за 6 часов до снятия проб. После культивирования клетки переносили на фильтры, отмывали и высушивали. Фильтры переносили в виалы с сцинцилляционной жидкостью для подсчета радиоактивности на счетчике Рак-Бета.
В результате исследований с помощью данного метода было выявлено ингибирующее влияние препарата на указанную реакцию. Ингибирующий эффект проявился в широком диапазоне концентраций (указанных выше) и составил от 45 до 86%
Влияние лимфотилина на синтез ДНК в трансформированных клетках периферической крови и костного мозга крыс и людей, больных лейкозами, изучали в культурах с использованием той же среды, что и при культивировании лимфоцитов периферической крови доноров. Количество клеток в культуре было равно 2 • 106 в 1 мл.
Лимфотилин вносили в культуру клеток в начале инкубации и испытывали в концентрациях от 0,1 ЕИА/мл до 500 ЕИА/мл. Клетки костного мозга инкубировали в CO2 инкубаторе при 37o, 5% СO2 в воздухе в течение 2-х часов, клетки крови в течение 2 и 21 часа. 3Н-тимидин вводили в культуру при краткосрочной инкубации вместе с лимфотилином, при суточной инкубации за 6 часов до снятия проб. Обработка клеток после инкубации проводилась так же, как и при постановке РБТ с лимфоцитами доноров.
По окончании срока инкубации во всех опытах проверяли жизнеспособность клеток в тесте с трипановым синим. Жизнеспособными были 987-100% клеток, взятых после культивирования.
Влияние лимфотилина на синтез ДНК в костномозговых клетках крыс определяли в широком диапазоне концентраций препарата (от 0,1 до 500 ЕИА). Результаты приведены в таблице 1. Данные показывают, что ингибирующее действие на гемопоэтические клетки лимфотилин проявляет во всех использованных концентрациях.
Пример 3. 1,2 кг лимфоузлов свиньи помещают в гомогенизатор при 4000 об/мин на 4 мин, после чего гомогенизат заливают шестикратным объемом стерильной дистиллированной воды и помещают в холодильник (при 4-10oC) по крайней мере на 16 часов (оптимально 18-20 часов), после чего взвесь фильтруют на воронке Бюхнера через марлю. В результате получают 6-6,5 л фильтрата.
Берут 1,0 л фильтрата и помещают в ультрафильтрационную установку, в которой в качестве разделительных элементов используются плоские мембраны и мембраны в виде полых плоских волокон с различными средними размерами пор.
Процесс фильтрационной очистки ведут при тангенциальной скорости подачи раствора 0,25-0,35 м/сек, давлении 0,8-1,2 атм, комнатной температуре. После прохождения в фильтрат 0,9 л раствора опыт прекращают, отбирают 2 см3 интегрального фильтрата и определяют его биологическую активность по подавлению включения меченого тимидина в растущие клетки. Кроме того определяют пирогенность полученных образцов.
Результаты приведены в таблице 2.
Как видно из таблицы, положительные результаты получают при использовании мембран с размерами пор .
Пример 4. 100 г селезенки кролика помещают в гомогенизатор при 4000 об/мин на 4 мин, после чего гомогенизат заливают 600 мл дистиллированной стерильной воды и помещают в холодильнике при 4oC на 20 часов, после чего взвесь фильтруют на воронке Бюхнера через марлю. В результате получают 0,55 л фильтрата, которые фильтруют на установке с полыми волокнами со средним размером пор при давлении 1±0,2 атм, тангенциальной скорости подачи раствора 0,3 м/сек. После прохождения в фильтрат 0,5 л раствора отбирают пробу, которую тестируют на биологическую активность и пирогенность. Полученный фильтрат апирогенен и имеет активность 120 ЕИА/мл.
Пример 5. 0,2 кг свиных лимфоузлов помещают в гомогенизатор при 4000 об/мин на 4 мин, после чего гомогенизат заливают дистиллированной водой в количестве 1,2 л помещают в холодильник на 20 часов, затем фильтруют через марлю, потом через полые волокна с размером пор в соответствии с условиями примера 1.
В 100 мл фильтрата растворяют навеску стабилизатора (в качестве которых используют полиглюкин, реополиглюкин, желатиноль и др.), полученный раствор лиофильно высушивают и перерастворяют в 20 мл апирогенной воды, выдерживают не менее 2 часов при пониженных температурах, стерильно разливают в ампулы по 1,0 мл и лиофильно высушивают.
Вскрывают одну ампулу, растворяют ее содержимое в 1 мл дистиллированной воды и испытывают на биологическую активность и проверяют присутствие механических включений.
В таблице 3 приведены результаты экспериментов.
Полученные результаты показали, что при осуществлении процесса в заявляемом интервале условий удается получить высокоактивный препарат, применяемый для медицинских целей.
В настоящее время по препарату "лимфотилин" оформлена документация в Ветфармкомитет. ТТТ1
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
ПЕПТИДЫ, ОБЛАДАЮЩИЕ ИММУНОСТИМУЛИРУЮЩЕЙ АКТИВНОСТЬЮ, СПОСОБ ИХ ПОЛУЧЕНИЯ, ЛЕКАРСТВЕННЫЙ ПРЕПАРАТ НА ИХ ОСНОВЕ СПЛЕНОПИД И ЕГО ПРИМЕНЕНИЕ | 1998 |
|
RU2152219C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ РАДИОАКТИВНО МЕЧЕННОГО РАДИОНУКЛИДАМИ ЙОДА АЛЬФА-ФЕТОПРОТЕИНА И СПОСОБ ЕГО ПРИМЕНЕНИЯ ДЛЯ ДИАГНОСТИКИ ЗЛОКАЧЕСТВЕННЫХ НОВООБРАЗОВАНИЙ | 2009 |
|
RU2404812C1 |
СРЕДСТВО ДЛЯ ЛЕЧЕНИЯ ОЖОГОВ И РАН НА ОСНОВЕ ЦИТОКИНОВ И ФАКТОРОВ РОСТА, СЕКРЕТИРУЕМЫХ МЕЗЕНХИМНЫМИ КЛЕТКАМИ ЧЕЛОВЕКА, СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ СРЕДСТВА И СПОСОБ ЛЕЧЕНИЯ ОЖОГОВ И РАН | 2014 |
|
RU2574017C1 |
СПОСОБ ОЦЕНКИ ТОКСИЧНОСТИ ВАКЦИННЫХ КОКЛЮШНЫХ ПРЕПАРАТОВ | 1994 |
|
RU2092844C1 |
ИММУНОДЕПРЕССАНТ | 2016 |
|
RU2637642C1 |
ИММУНОДЕПРЕССАНТ | 2016 |
|
RU2637643C1 |
ПРЕПАРАТ НА ОСНОВЕ РЕКОМБИНАНТНОГО АЛЬФА-2 ИНТЕРФЕРОНА ЧЕЛОВЕКА ДЛЯ ИНЪЕКЦИЙ В СУХОЙ ЛИОФИЛИЗИРОВАННОЙ ФОРМЕ | 2002 |
|
RU2236866C2 |
СПОСОБ ИММОБИЛИЗАЦИИ ОСТЕОГЕННЫХ СТРОМАЛЬНЫХ СТВОЛОВЫХ КЛЕТОК КОСТНОГО МОЗГА | 2006 |
|
RU2329055C2 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ РАСТВОРА И РАСТВОР ДЛЯ ЛЕЧЕНИЯ, ПРОФИЛАКТИКИ ЗАБОЛЕВАНИЙ И ПОВРЕЖДЕНИЙ РОГОВИЦЫ | 2006 |
|
RU2336862C2 |
СПОСОБ ИНДУКЦИИ АНТИПРОЛИФЕРАТИВНОГО, ЦИТОТОКСИЧЕСКОГО ЭФФЕКТА В ОПУХОЛЕВЫХ КЛЕТКАХ ЛИНЕЙНЫХ И СВЕЖЕВЫДЕЛЕННЫХ КУЛЬТУР | 2008 |
|
RU2392668C1 |
Способ получения ингибитора клеточной пролиферации используется для получения высокоактивных лекарственных препаратов. Способ включает в себя гомогенизацию лимфоидных тканей животных, водную их экстракцию, очистку ультрафильтрацией на мембранах со средними размерами пор . Перед лиофилизацией в фильтрат вводят стабилизатор (полиглюкин, реополиглюкин, желатиноль), который обеспечивает образование защитного комплекса с активными центрами, до концентрации 0,05-1%, выдерживают не менее 2 часов, стерилизуют и готовят лекарственную форму. Проверка показывает апирогенность и высокую биологическую активность препарата. 3 з.п. ф-лы, 3 таб-цы.
3. Способ по пп.1 и 2, отличающийся тем, что в качестве стабилизатора используют полиглюкин, реополиглюкин, желатиноль.
Печь для непрерывного получения сернистого натрия | 1921 |
|
SU1A1 |
Ravazzolo R., Bianchi-Scarra J., Carpa V | |||
et al | |||
Способ получения молочной кислоты | 1922 |
|
SU60A1 |
Eur.I.Haematol., 1990, v.44, 3, p.150 - 153 | |||
Аппарат для очищения воды при помощи химических реактивов | 1917 |
|
SU2A1 |
Федяхина P.Ф | |||
и др | |||
Влияние экстракта лимфатических узлов на гемопоэтические и лимфоидные клетки в норме и при различных формах лейкоза | |||
Экспериментальная онкология, 1990, т | |||
Способ гальванического снятия позолоты с серебряных изделий без заметного изменения их формы | 1923 |
|
SU12A1 |
Переносная печь для варки пищи и отопления в окопах, походных помещениях и т.п. | 1921 |
|
SU3A1 |
Свирновский А.И | |||
и др | |||
Способ получения вещества, угнетающего лейкозные клетки, авторское свидетельство СССР N 8З9090, 1979. |
Авторы
Даты
1996-10-20—Публикация
1993-03-22—Подача