Изобретение относится к пищевой, микробиологической и медицинской промышленности.
Известен способ получения кристаллического ликопина, включающий экстракцию каротиноидов из сырой биомассы гриба Phycomyces blakesleeanus NRRL 1555 (-) смесью растворителей метанол : гексан (1:1), разделение экстракта водой, выделение примесей и продуктов жизнедеятельности гриба-продуцента в водном слое и выделение кристаллов ликопина фильтраций из остатка, полученного после упаривания гексанового слоя (Shlomai - P; Ben-Amotz-A; Margalith-p, Production of carotene stercoisomers by Phycomyces blakesleeanus Appl. Microbiol, Biotechnol; 1991, 34, 4, 458-62).
Наиболее близким техническим решением к заявленному является способ получения ликопина из мицелия гриба Blakeslea trispora. Получают биомассу гриба, растирают ее, добавляют ацетон, пропускают через фильтр, отделяют разрушенную биомассу и получают раствор ацетона ярко-оранжевого цвета с последующим извлечением из него н-гексаном (более неполярным растворителем) ликопина. Затем выпаривают и получают насыщенный раствор, который подвергают дальнейшей очистке. (Журнал "Микробиология", 1994 г., т. 63, выпуск 6, с. 1111-1116).
Недостаток способа заключается в низком выходе кристаллического ликопина, использовании смеси растворителей и как следствие, относительно высокой стоимости конечного продукта.
Технический результат заключается в увеличении выхода ликопина, повышении качества и снижении стоимости.
Высокий выход и качество целевого продукта обеспечивают за счет использования предварительно подсушенной биомассы с влажностью не более 20%, использования оптимальных технологических параметров экстракции, кристаллизации и очистки кристаллов ликопина от примесей путем промывки органическими растворителями, например, этанолом или ацетоном.
Ликопин растворяется и экстрагируется только неполярными растворителями. Вода, содержащаяся в биомассе микроорганизмов, препятствует проникновению неполярного экстракта внутрь клеток. Поэтому с целью достижения высокой эффективности экстракции, в систему дополнительно вводят полярный растворитель, например спирт, ацетон или тетрагидрофутан, который сольватирует молекулы воды и способствует образованию гомогенной системы: неполярный экстрагент - вода.
Использование в предложенном способе подсушенной до влагосодержания не более 20% биомассы позволяет экстрагировать ликопин одним неполярным растворителем. Это, во-первых, облегчает процесс экстракции, во-вторых, позволяет исключить стадию регенерации этилового спирта или другого полярного растворителя из водного раствора, что в итоге приводит к значительному снижению удельного расхода биомассы, растворителей и энергоресурсов.
В предложенном способе очистку ликопина проводят промывкой кристаллов органическим растворителем, например этанолом или ацетоном, что позволяет уйти как от хроматографической очистки, так и от применения смеси растворителей в качестве экстрагента.
Разработанные пределы ведения технологического процесса позволяют получать кристаллы, содержание 90-95% ликопина.
Сущность изобретения заключается в следующем. Проводят экстракцию ликопина неполярным органически растворителем, например, хладоном-11 при температуре от 20 до 26oC, этилацетатом - от 40 до 65oC. С подсолнечным маслом от 80 до 95oC, из предварительно подсушенной до влажности не более 20% биомассы гриба Blakeslea trispora в виде (+) и (-) штаммов 8A; затем проводят кристаллизацию ликопина из насыщенного экстракта при 10-22oC в течении 1-5 суток. После фильтрации промывают кристаллы ликопина органическим растворителем при температуре 45-78oC в соотношении (масс. частей): на одну часть кристаллов от 3 до 35 частей растворителя, и сушат.
Ведение процесса получения кристаллического ликопина в указанных технологических параметрах позволяет получить кристаллы, содержащие более 90% ликопина с выходом от 31 до 56% от количества ликопина в исходной биомассе (см. таблицу 5, опыты NN 1, 2, 3).
Выход из границы указанных параметров ведения процесса в сравнении с предложенными, приводит либо к снижению выхода кристаллов и их качества, либо к неоправданному увеличению удельного расхода сырья и растворителей (см. таблицу 5 опыты NN 4, 5 соответственно).
Пример 1.
С целью определения предельного значения влажности биомассы, при которой выход ликопина в экстракт был бы более 90%, проводили опыты, в которых ликопиносодержащую биомассу сушили под вакуумом до влагосодержания 25, 20, 10 и 3%.
Равные навески биомассы указанной влажности помещают в колбы с рафинированным подсолнечным маслом, взятым в соотношении 3:1 от веса биомассы, и проводят экстракцию ликопина при 95oC в течение 30 минут. Шрот отделяют фильтрацией и анализируют содержание ликопина. Представленные в таблице N 2 данные свидетельствуют о том, что увеличение влажности биомассы более 20% значительно снижает выход ликопина в экстракт, а дальнейшее понижение влажности, связанное со значительными энергетическим затратами, дает незначительное увеличение выходы ликопина в экстракт.
Пример 2.
Ликопиносодержащую биомассу загружают в колбу, содержащую подсолнечное масло, в соотношении 1 : 4 по весу и проводят экстракцию при перемешивании, температуре 90oC в течение 30 мин. С целью определения оптимальных условий кристаллизации насыщенный экстракт, содержащий 0,41% ликопина, отделяют от шрота на фильтре, делят на четыре равные части, которые направляют на кристаллизацию при температурах 25-28oC, 18-22oC, 6-8oC, 0 - +4oC соответственно. Во всех вариантах через 0,5, 2, 5, 7 суток выпавшие кристаллы ликопина отфильтровывают, анализируют и определяют выход кристаллов ликопина от загруженного в насыщенном экстракте.
Полученные результаты представлены в таблице 2.
Пример 3.
В колбу загружают ликопиносодержащую биомассу и этилацетата в соотношении 1 : 2,5 (по массе). Экстракцию проводят при перемешивании, температуре 60oC в течение 30 минут. Шрот отфильтровывают по вакуумом. Насыщенный экстракт делят на четыре равные части, которые направляют на кристаллизацию при температурах 25-28oC, 18-22oC, 6-8oC, 0 - +4oC соответственно. Во всех вариантах через 0,5, 1, 5, 7 суток выпавшие кристаллы ликопина отфильтровывают, анализируют, определяют выход кристаллов ликопина от загруженного в насыщенном экстракте.
Полученные результаты представлены в таблице 3.
Пример 4.
В колбу загружают 75 г биомассы и 1175 г хладона 11. Экстракцию проводят при перемешивании, температуре 24-26oC в течение 45 мин. Шрот отфильтровывают под вакуумом. С целью полного извлечения пигмента из шрота проводят вторую экстракцию, в условиях аналогичных первой при соотношении 1 : 9. В результате получили 29,9 г шрота, содержащего 0,027% ликопина и 1177,5 г экстракта. Экстракты объединяют и направляют на отгонку хладона, которую проводят при температуре 20-28oC. Упаренный экстракт оставляют на кристаллизацию на 66 часов при температуре 18-22oC. Выпавшие кристаллы отфильтровывают, вакуумируют на фильтре в течение 1 часа. Выход кристаллов от загруженного в биомассе составляет 55,64%, потери ликопина в шроте и от разрушения - 1,96% и 23,28% соответственно.
Пример 5.
Определение условий очистки кристаллов ликопина проводят в модельных опытах. Сырьем для экспериментов служили образцы кристаллического ликопина с массовой долей основного вещества 16%, полученные в результате экстракции из биомассы подсолнечным маслом (см. Опыт 7 в таблице 2).
Промывку кристаллов проводят этанолом в течение 30-45 минут при перемешивании.
В опытах варьируют соотношение кристаллы: этанол и температуру промывки от 35 до 78oC (температура кипения этанола). Представленные в таблице 4 данные свидетельствуют о том, что промывка этанолом, в соотношении 1 : 3-1 : 35 (в массовых частях), при температуре 45 - 78oC позволяет получать кристаллы с массовой долей основного вещества от 90 до 95%.
Пример 6.
Из всех растворителей, разрешенных для применения в пищевой промышленности, ликопин умеренно растворим в этиловом эфире уксусной кислоты, хладоне-11 (трихлорфторметан), растительном масле.
Вследствие того, что растворимость ликопина в этом ряду уменьшается, то для каждого растворителя существует свои оптимальные параметры экстракции (см. графу "экстракция" в таблице 5). Поэтому выбор технологических режимов экстракции ликопина из биомассы всем классом неполярных органических растворителей проводят определением минимальной и максимальной точки из серии экспериментов, обеспечивающих заданные выход и качество ликопина (см. таблицу 5 опыты NN 1, 2, 3).
В опытах NN 1 и 4 проводят экстракцию ликопина из биомассы гриба (+) (-) 8A Blakeslea trispora подсолнечным маслом при повышенной температуре и постоянном перемешивании. Насыщенные экстракты отфильтровывают и направляют на кристаллизацию. Кристаллы отфильтровывают и промывают этанолом.
Опыт N 2 проводят также, как опыт N 1, за исключением того, что в качестве экстрагента используют этилацетат (этиловый эфир уксусной кислоты), а экстракцию проводят два раза. Экстракты объединяют. Растворитель отгоняют по вакуумом. Выпавшие из кубового остатка кристаллы отфильтровывают, а затем промывают этанолом.
Опыт NN 3 и 5 проводят аналогично опыту N 2, за исключением того, что в качестве экстрагента используют хладон-11.
Опыты NN 4 и 5 проводят за пределами заявленного способа.
Представленные в таблице 5 данные свидетельствуют о том, что опыты проведенные в заявленных пределах (опыты NN 1, 2, 3) позволяют получить кристаллический ликопин с выходом от 31 до 56% и содержанием основного вещества от 90 до 94%. В опытах, проведенных за рамками заявленного способа наблюдалось или снижение выхода кристаллов вследствие недостаточной эффективности экстрации (см. Потери в шроте опыт N 4) или сравнительно высокий расход растворителя при неизменной эффективности процесса (опыт N 5).
Пример 7.
В реактор, снабженный рубашкой и устройством для перемешивания, загружают 300 кг биомассы груби (+)(-) 8A Blakeslea trispora, содержащей 6,7 кг ликопина, высушенной до влажности 7%, и 1200 кг растительного масла. Экстракционную массу нагревают до температуры 90oC, передают на фильтрацию на рамный фильтропроцесс. Насыщенный экстракт направляют на кристаллизацию, которую проводят при температуре 22oC в течение 5 суток, затем массу нагревают до 40oC. Выпавшие кристаллы ликопина отфильтровывают на друк-нутч фильтре и промывают 85 кг этанола при перемешивании и температуре 50oC в течение 10 мин. Промытые кристаллы ликопина отфильтровывают и сушат под вакуумом при до влагосодержания не более 0,5%. В результате получают 2,31 кг ликопина кристаллического ликопина с массовой долей основного вещества 90%.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ КРИСТАЛЛИЧЕСКОГО БЕТА-КАРОТИНА | 1995 |
|
RU2112808C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЛИКОПИНА | 1995 |
|
RU2102416C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЛИКОПИНА, ФОСФОЛИПИДОВ, ЖИРНЫХ КИСЛОТ И ЭРГОСТЕРИНА ПУТЕМ СОВМЕСТНОГО КУЛЬТИВИРОВАНИЯ (+) И (-) ШТАММОВ ГРИБА Blakeslea trispora | 2004 |
|
RU2270868C1 |
МАСЛЯНО-ПОЛИВИТАМИННЫЙ ПРЕПАРАТ | 1996 |
|
RU2137471C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНОГО СРЕДСТВА НА ОСНОВЕ ЛИКОПИНА | 2009 |
|
RU2415916C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЛИКОПИНА | 1997 |
|
RU2115678C1 |
ВЫДЕЛЕНИЕ КРИСТАЛЛОВ КАРОТИНОИДА ИЗ МИКРОБНОЙ БИОМАССЫ | 1998 |
|
RU2235783C2 |
ЛИКОПИНСОДЕРЖАЩИЙ ПРЕПАРАТ | 1996 |
|
RU2112777C1 |
ПАРА ШТАММОВ ГЕТЕРОТАЛЛИЧНОГО ГРИБА BLAKESLEA TRISPORA F - 674(+) И F-551(-), ПРОДУЦИРУЮЩАЯ БЕТА-КАРОТИН | 1993 |
|
RU2053301C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНОГО СРЕДСТВА | 2000 |
|
RU2166868C1 |
Изобретение может быть использовано в пищевой, микробиологической и медицинской промышленности. Проводят экстракцию ликопина из предварительно подсушенной биомассы неполярным органическим растворителем, затем кристаллизуют ликопин из насыщенного экстракта, фильтруют, промывают, кристаллы ликопина органическим растворителем. Высокий выход и качество целевого продукта обеспечивается за счет использования предварительно подсушенной биомассы, использования оптимальных технологических параметров экстракции, кристаллизации и очистки кристаллов ликопина от примесей путем промывки органическими растворителями. 5 з.п.ф-лы. 5 табл.
Печь для непрерывного получения сернистого натрия | 1921 |
|
SU1A1 |
Shlomai - P; Ben-Amotz-A; Margalith-p, Production of carotene stercoisomers by Phycomyces blakesleeanus Appl.Microbiol, Biotechnol; 1991, 34, 4, 458-62 | |||
Аппарат для очищения воды при помощи химических реактивов | 1917 |
|
SU2A1 |
Микробиология, 1994, т | |||
Способ приготовления сернистого красителя защитного цвета | 1915 |
|
SU63A1 |
Авторы
Даты
1999-02-27—Публикация
1996-05-28—Подача