Изобретение относится к биотехнологии.
Гранулоцитарный колониестимулирующий фактор человека (чГ-КСФ) является гликопротеином, состоящим из 174 аминокислот. чГ-КСФ необходим для прогрессии от плюрипотентной стволовой клетки до зрелых дифференцированных клеток крови и обладает также способностью влиять на функцию последних.
чГ-КСФ широко используется в онкологии для лечения нейтропении, а также с целью предупреждения миелосупрессии при интенсификации химиотерапии. Применение этого препарата позволяет резко уменьшить число опасных для жизни инфекционных осложнений, которые могут развиться у больных с нейтропенией, получающих цитостатики при злокачественных немиелоидных опухолевых заболеваниях, а также при трансплантации костного мозга (Morstyn G, et al. Clinical studies with granutients receiving cytoxic chemoterapy. Behring Inst. mitt., 1988, Aug. (83), 234-239.).
Известен метод получения чГ-КСФ из таких источников, как кровь, где он присутствует в норме. Этот метод трудоемок и дорог в связи с низкой концентрацией биологически активных веществ и ограниченным количеством исходного сырья (Werner RG, Berthold W. Purification of proteins produced by biotechnological process. Arzneimittelforschung, 1988, Mart, 38(3):422-428). Другим недостатком этого метода является возможность присутствия в конечной продукции инфекционных для человека агентов, например, таких как вирусы.
Известен также способ получения чГ-КСФ с использованием рекомбинантных микроорганизмов. Обычно в качестве продуцента используется адаптированный штамм Escherichia coli (Perez-perez J., et al. Supplementation improves the periplasmic production of human granulocyte-colony stimulating factor in Escherichia coli, Biochem. Biophys. Reg. Commun, 1995, 16, 210 (2), 524-529). Однако получение рекомбинантных белков с использованием прокариот не обеспечивает таких посттрансляционных модификаций как гликолизилирование, силиконирование, правильный фолдинг белка и отщепление лишнего метионина с N-конца белка, что приводит к снижению устойчивости и биологической активности получаемого препарата. В настоящее время имеется импортный препарат нейпоген (Neupogen, фирма Hofman la Roche), который представляет собой негликолизированный рекомбинантный человеческий гранулоцитарный колониестимулирующий фактор, имеющий на N-конце аминоскислотной цепи дополнительный метионин. Это высокоочищенный белок биологически активен, хотя и в меньшей степени, в сравнении с его гликозилированной формой чГ-КСФ.
Известен метод получения гликолизированной формы гранулоцитарного колониестимулирующего фактора путем использования в качестве продуцента культуры клеток млекопитающих. Обычно для этого используется культура клеток яичника китайского хомячка (СНО) (Rotondaro L. et al., High-level expression of a cDNA for human granulocyte colony - stimulating factor in Chinese Hamster ovary cells. Effect ot 31-noncoding seguences mol. Biotechnol., 1997, Jun; 7(3), 231-240; Nolloway W. DNA technology in the production of glycosylated recombinant human granulocyte colony stimulating factor, Eur. J. Cancer, 1994; 30A Suppl. 3, 2-6; Nissen C. Glycosylation of recombinant human granulocyte colony stimulating factor: implications for stability and potency. Eur. J. Cancer, 1994, 30A, Suppl. 3, 12-14). Гликозилированная форма гранулоцитарного колониестимулирующего фактора в 2 раза превосходит по способности стимулировать рост колоний гранулоцитов и в 4 раза быстрее обеспечивает проявление положительного эффекта по сравнению с негликолизированным рекомбинантным белком, получаемым с использованием микроорганизмов.
Несмотря на то, что в рекомбинантном белке в культуре клеток млекопитающих происходят все необходимые посттрансляционные модификации, концентрация получаемого рекомбинантного белка очень низкая, а сам процесс культивирования дорогостоящий и требует высокого технологического обеспечения.
Известен метод получения рекомбинантных белков с использованием трансгенных животных, которые секретируют эти вещества с молоком (патент RU # 2157846 С1 "Способ получения трансгенного животного, экспрессирующего в молочной железе гранулоцитарный колониестимулирующий фактор человека и гибридный ген h-GM-1 для осуществления способа"). Метод базируется на микроинъекции генетической конструкции в пронуклеус оплодотворенной яйцеклетки в половые пути ложно беременной самки. Генетическая конструкция обеспечивает секрецию рекомбинантного белка только в молочной железе лактирующей трансгенной самки. Для этого структурный ген в генетической конструкции помещен под контроль регуляторных элементов генов белков молока. Этот метод, в отличие от использования культуры бактериальных клеток, обеспечивает получение высокой идентичности рекомбинантного белка нативному, выделенному из крови, и, по сравнению с использованием метода культуры клеток млекопитающих, значительно снижает стоимость получаемого продукта. Это обусловлено тем, что в молочной железе плотность продуцирующих клеток в 100 раз выше, чем в жидкой культуре: в тканях органа содержится 109 клеток/грамм, тогда как в культуре тканей 107 клеток/мл (Н. Meade а. С. Ziomer, Urine as a substitute for milk. Nature Biotechnology, 1998, v. l6, January, 21-22). К тому же стоимость содержания и доения трансгенных животных составляет лишь 1/10 часть стоимости обслуживания биореактора.
Предложен способ получения гранулоцитарного колониестимулирующего фактора человека (чГ-КСФ) с молоком трансгенных животных. Последовательность ДНК гена, кодирующего белок чГ-КСФ представлена на фиг.1.
Получение трансгенных животных является одним из наиболее перспективных направлений для получения различных рекомбинантных белков. Существует большое количество научно-исследовательских работ, позволяющих использовать данную технологию для получения трансгенных животных-продуцентов биологически активных белков человека.
Спектр видов животных, способных выступить в роли продуцентов, достаточно широк: кролик (Brem G. et al. Expression of synthetic cDNA sequences encoding human insulin-like grows factor-1 in the mammary gland of transgenic rabbits. Gene, 1994, v. 149, p. 351-355), корова (Rudolph N.S. Biopharmaceutical production in transgenic livestock. Trends in Biotechnology, 1999, sept., v. 17, p. 367-374; van Berkel P.H. et al. Large scale production of recombinant human lactoferrin in the milk of transgenic cows. Nature biotechnology, 2002, v. 20, p. 484-487), коза (Ebert K.M. et al. Transgenic production of a variant of human tissue-type plasminogen activator in goat milk: generation of transgenic goats and analysis of expression. Biotechnology, 1991, v. 9, sept., p. 835-838), овца (Wright G. et al. High level expression of active human alpha-1-antiyrypsin in the milk of transgenic sheep. Biotechnology, 1991, v. 9, sept., p. 830-834), свинья (Velander W. et al. High-level expression of a heterologous protein in the milk of transgenic swine using the cDNA encoding human protein C. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1992, v. 89, p. 12003-12007). Использование мышей для этих целей ограничено тем, что получаемый за время лактации объем молока не превышает 2-5 мл, что абсолютно нетехнологично. С точки зрения технологии получения трансгенных животных принципиального различия между перечисленными видами нет. Во всех случаях используется микроинъецирование генетической конструкции в пронуклеус оплодотворенной яйцеклетки с последующей подсадки ее в половые пути синхронизированной самки-реципиента.
Введение генетического материала в животное с целью дальнейшей его экспрессии может осуществляться несколькими способами.
- Микроинъецирование раствора генетического материала в пронуклеус оплодотворенной яйцеклетки является наиболее ранним разработанным методом. Этим методом получено наибольшее количество трансгенных животных в мировой практике (Juhani Janne et. al. Transgenic Animals as Bioproducers of Therapeutic Proteins Trends in Molecular Medicine, Annals of Medicine, 1992, v. 24, p. 273-280).
- Инфекция ранних яйцеклеток, бластоцист, ранних предимплантационных эмбрионов и тканей взрослого животного (например, молочной железы) различными вирусными векторами. Наиболее часто используют ретровирусные и лентивирусные вектора (Rudolf Jaenisch. Transgenic Animals Science, 1988, v. 240, р. 1468-1473).
- Перенос трансфецированных ядер эмбриональных или соматических клеток в энуклеированную яйцеклетку. Метод позволяет с большой эффективностью получать заведомо трансгенных животных с использованием заранее трансфецированной и проверенной культуры клеток соответствующего вида (Angelika E. Schnieke et. al. Human Factor IX Transgenic Sheep Produced by Transfer of Nuclei from Transfected Fetal Fibroblasts Science, 1997, v. 278, p. 2130-2133).
В качестве трансгенных животных были использованы кролики с гибридным геном h-GM-1 человека, который содержит геномную копию гена гранулоцитарного колониестимулирующего фактора человека и регуляторные элементы генов молока, направляющие выделение белка чГ-КСФ в молоко.
Исходных трансгенных самцов спаривали с нетрансгенными самками и получили трансгенное потомство. Определение трансгенности потомства проводили методом полимеразной цепной реакции с праймерами специфичными к последовательности вектора h-GM-1. Трансгенных самок спаривали с нетрансгенными или трансгенными самцами и, после родов, собирали молоко для выделения чГ-КСФ. Сбор молока проводили ручным или машинным доением после предварительной обработки животного окситоцином.
Концентрацию и биологическую активность чГ-КСФ человека в молоке трансгенных кроликов определяли несколькими методами. Биологическую активность тестировали по степени стимулирования пролиферации и колониеобразования стволовых гранулоцитарных клеток костного мозга человека. Концентрацию белка чГ-КСФ в молоке тестировали иммуноферментным методом с использованием моноклональных антител против чГ-КСФ (ELISA).
Выделение чГ-КСФ из молока трансгенных кроликов проводили следующим образом: молоко, собранное от крольчихи, центрифугировали на лабораторной центрифуге при 10 тыс. g в течение 30 минут. Удаляли жировую фракцию, отбирали супернатант и использовали его для дальнейшего выделения чГ-КСФ.
Полученный раствор разводили в два раза буфером А (20мМ фосфат калия рН 6.5, 3.5М мочевины, 200мМ ЕДТА, 0.2мМ ДТТ) и интенсивно перемешивали на мешалке для. Эти достигалось разрушение мицелл молока и превращение его в истинный раствор белков. В полученный раствор добавляли 1/5 объема насыщенного раствора сульфата аммония (4М) до конечной концентрации 1М.
Для контроля потерь белка чГ-КСФ в процессе выделения определяли его количество в растворе методом иммуноферментного анализа ELISA.
Затем полученный раствор наносили на колонку К-16 (размер 20 см) заполненную октил-сефарозой (Octyl Sepharose 4 Fast Flow, кат 17-0946-10, фирмы "Амершам-Фармация"), уравновешенной в буфере В (10 мМ фосфата калия рН 6.5, 1.8М мочевины, 10мМ ЕДТА, 1М сульфата аммония, 0.2мМ ДТТ). Скорость прохождения раствора через колонку составляла 20 мл/час.
Элюцию проводили с использованием линейного градиента с понижающейся концентрацией сульфата аммония до нуля и при повышении рН до 7.5, а детергента Tween-20 до 0.2% от буфера В к буферу С (10 мМ калий фосфата рН 6.5, 1.8М мочевины, 10мМ ЕДТА, 1М сульфата аммония, 0.2мМ ДТТ, 0.2% Tween-20). Скорость прохождения раствора через колонку составляла 20 мл/час. Всего собирали 22 фракции. Основная часть балластных белков выходит во фракциях 10-19. чГ-КСФ элюируется в конце градиента во фракциях 20-21. Потери активности чГ-КСФ в этом процессе составили 30%.
Элюаты, содержащие чГ-КСФ, объединяли, разводили в 4 раза буфером (2мМ фосфат калия рН 7.2, 0.15М хлорид калия), и наносили на колонку К-9 (размер 6 см) наполненную иммуносорбентом с иммобилизованными на нем моноклональными антителами против чГ-КСФ (носитель активированная бромцианом sepharose 4B фирмы "Амершам-Фармация"). Промывали колонку буфером (2мМ фосфат калия рН 7.2, 0.5М хлорид калия) около 10 объемов колонки. Элюцию с колонки проводили 0.1М лимонной кислотой.
Полученный элюат диализовали против буфера (2мМ фосфат калия рН 7.5), концентрировали различными методами и использовали для дальнейшей работы.
Пример 1
Образцы молока для тестирования на присутствие чГ-КСФ и его биологическую активность брали от трансгенных кроликов. Молоко трансгенных кроликов перед тестированием фракционировали центрифугированием для отделения жировой фракции и испытывали в различных разведениях.
Моделью для тестирования служили стволовые гемопоэтические клетки доноров костного мозга, культивируемые в полужидких питательных средах. Ядерные клетки костного мозга культивировали in vitro в среде RPMI 1640 с 0,3% агаром, 30% эмбриональной бычьей сывороткой (FBS) и содержащей необходимые компоненты для поддержания роста гемопоэтических клеток в краткосрочной культуре (14 дней) при 37oС в атмосфере 5% СО2.
Результат роста клеток в соответствующих условиях оценивали по их количеству на 14 день культивирования визуальным подсчетом в камере Горяева. В качестве положительного контроля клетки культивировали с гранулоцитарным колониестимулирующим фактором человека, полученным из культуры клеток млекопитающих - стандартным коммерческим препаратом, используемым в клинической практике Granocyte (международное наименование филграстим, производство фирмы Rhone Poulenc Rorer).
Отрицательным контролем считали рост клеток в присутствии экстрактов из молока нетрансгенного кролика в соответствующих разведениях, а также без исследуемых добавок.
Одновременно прослеживали способность исследуемых клеток костного мозга в присутствии экстрактов из молока кроликов трансгенных по чГ-КСФ образовывать гранулоцитарно-макрофагальные колонии культивированием их в полужидкой среде с метилцеллюлозой (Metho Cult Medium), используемой для анализа гемопоэтических клеток на колониеобразование по методу, предложенному The Terry Fox Laboratory Media Preparation Service (1992).
В качестве отрицательного контроля использовали интактные клетки (ИТК), а в качестве положительного контроля - коммерческий препарат чГ-КСФ Granocyte в разведениях от 1:10 до 1:10000.
В культурах клеток, инкубированных с образцами экстрактов молока трансгенных кроликов, число жизнеспособных клеток в 2-3 раза превышало аналогичный показатель в контрольной интактной культуре стволовых клеток (с базовым содержанием ростового фактора) и в культуре с добавлением молока нетрансгенных кроликов.
По морфологическим признакам клетки, выращенные в культуре с добавлением экстрактов из молока трансгенных кроликов, обладали более высокой степенью дифференцировки, чем клетки в культурах с отрицательным контролем.
Ориентировочная концентрация белка чГ-КСФ, полученная на основе сравнения удельной биологической активности с препаратом Granocyte, в протестированных образцах молока составляет 50-100 мг/л в эквиваленте на активность препарата филграстим.
Пример 2
Определение концентрации чГ-КСФ иммуноферментным методом проводили в иммунологических плашках на наборе ProCon G-CSF (производство фирмы 000 "Протеиновый контур", г. Санкт-Петербург). Буфера А, В и С поставляются в составе набора.
Первые антитела (АТ-1) разводили в буфере Ар (100 мкл антител на 10 мл буферы). Вносили в лунку планшета 1 по 100 мкл раствора первых антител.
Инкубировали планшет при непрерывном встряхивании в течение одного часа при комнатной температуре. Конъюгат вторых антител (АТ-2) разводили в 20 раз в буфере С. В лунку А2 добавляли 25 мкл стандарта чГ-КСФ (0,5 мкг/мл), тщательно перемешивали и титровали кратно 2, перенося по 25 мкл в следующую ячейку и тщательно перемешивали, до лунки Е1 (до концентрации стандарта 31,25 нг/мл). Лунка А1 оставалась для отрицательного контроля. В остальные лунки планшета 2 вносили по 25 мкл образцов обезжиренного молока. Во все ячейки планшета 2, содержащие образцы стандарта и испытуемые образцы, добавляли по 100 мкл раствора вторых антител. Планшет 2 инкубировали в течение 40-60 мин при комнатной температуре при непрерывном встряхивании. Удаляли жидкость из ячеек планшета 1 и трижды промывали буфером В 300 мкл на одну ячейку (состав буфера В согласно производителя набора). Проводили полную аспирацию оставшейся жидкости. Дважды промывали ячейки планшета струей дистиллированной воды. Осушали планшет путем постукивания по поверхности лабораторного стола. Готовили раствор субстрата с красителем. Для этого смешивали в равных отношениях растворы с маркировкой "Субстрат" и "Реагент", учитывая, что на 1 стрип требуется 3,2 мл готового раствора. Вносили во все лунки по 100 мкл раствора субстрата с красителем. Инкубировали стрипы 5-15 мин при комнатной температуре на шейкере. Наблюдали развитие голубой окраски. Останавливали реакцию добавленем 50 мкл раствора 1N серной кислоты в каждую лунку. Производили учет результатов с использованием автоматического фотометра для микропланшетов при длине волны 450 нм. Строили калибровочную кривую "оптическая плотность-концентрация" пользуясь данными по концентрациям, указанным для растворов стандартов. Определяли концентрацию чГ-КСФ в образцах.
В качестве отрицательного контроля использовали молоко нетрансгенного кролика, а в качестве положительного контроля - коммерческий препарат чГ-КСФ, Granulocyte производства фирмы Rone Poulenc Rorer.
Содержание чГ-КСФ в различных пробах молока трансгенных кроликов варьировало в пределах 20-100 мг/л.
При сравнении данных по определяемому количеству чГ-КСФ в молоке с интактными казеиновыми мицеллами и в образцах с разрушенными мицеллами было получено увеличение показаний в 1,6 раза. Это говорит о том, что значительная часть белка чГ-КСФ содержится внутри мицеллярной структуры.
Пример 3
Идентификацию чГ-КСФ в молоке трансгенных кроликов проводили методом электрофореза белков в полиакриламидном геле с последующим переносом на мембрану и окраской моноклональными антителами против чГ-КСФ конъюгированными с щелочной фосфатазой.
В качестве отрицательного контроля использовали молоко нетрансгенного кролика, а в качестве положительного - коммерческий препарат негликозилированного чГ-КСФ Neupogen (фирма Amgen).
Негликозилированная форма чГ-КСФ имеет молекулярную массу 19,6 кДа. Гликозилированная форма имеет молекулярную массу 23-24 кДа в зависимости от вариантов гликозилирования (Nicola N.A., J. Cell. physiol., 1981, 109, 253).
На электрофорез наносили обезжиренные фракции молока от трансгенных и нетрансгенных кроликов, а также положительный контроль Neupogen в чистом виде и в смеси с молоком нетрансгенного кролика (фиг.2).
После окраски мембраны специфическими антителами было обнаружено, что в пробах положительного контроля содержится белок размером около 20 кДа, а в пробах молока трансгенных кроликов содержится белок размером около 24 кДа, специфически связывающийся с моноклональными антителами против чГ-КСФ.
Данные результаты показывают, что в молоке трансгенных кроликов содержится гликозилированная форма чГ-КСФ.
Пример 4
Выделение чГ-КСФ из молока трансгенных кроликов проводили следующим образом: молоко, собранное от крольчихи, цент рифугировали на лабораторной центрифуге при 10 тыс. g в течение 30 минут. Удаляли жировую фракцию, отбирали супернатант и использовали его для дальнейшего выделения чГ-КСФ.
Полученный раствор разводили в два раза буфером А (20мМ фосфат калия рН 6.5, 3.5М мочевины, 200мМ ЕДТА, 0.2мМ ДТТ) и интенсивно перемешивали на мешалке для. Эти достигалось разрушение мицелл молока и превращение его в истинный раствор белков. В полученный раствор добавляли 1/5 объема насыщенного раствора сульфата аммония (4М) до конечной концентрации 1М.
Для контроля потерь белка чГ-КСФ в процессе выделения определяли его количество в растворе методом иммуноферментного анализа ELISA.
Затем полученный раствор наносили на колонку К-16 (размер 20 см), заполненную октил-сефарозой (Octyl Sepharose 4 Fast Flow, кат 17-0946-10, фирмы "Амершам-Фармация"), уравновешенной в буфере В (10мМ фосфата калия рН 6.5, 1.8М мочевины, 10мМ ЕДТА, 1М сульфата аммония, 0.2мМ ДТТ). Скорость прохождения раствора через колонку составляла 20 мл/час.
Элюцию проводили с использованием линейного градиента с понижающейся концентрацией сульфата аммония до нуля и при повышении рН до 7.5, а детергента Tween-20 до 0.2% от буфера В к буферу С (10 мМ калий фосфата рН 6.5, 1.8М мочевины, 10мМ ЕДТА, 1М сульфата аммония, 0.2мМ ДТТ, 0.2% Tween-20). Скорость прохождения раствора через колонку составляла 20 мл/час. Всего собирали 22 фракции. Основная часть балластных белков выходит во фракциях 10-19. чГ-КСФ элюируется в конце градиента во фракциях 20-21. Потери активности чГ-КСФ в этом процессе составили 30%.
Элюаты, содержащие чГ-КСФ, объединяли, разводили в 4 раза буфером (2мМ фосфат калия рН 7.2, 0.15М хлорид калия), и наносили на колонку К-9 (размер 6 см), наполненную иммуносорбентом с иммобилизованными на нем моноклональными антителами против чГ-КСФ (носитель активированная бромцианом sepharose 4B фирмы "Амершам-Фармация"). Промывали колонку буфером (2мМ фосфат калия рН 7.2, 0.5М хлорид калия) около 10 объемов колонки. Элюцию с колонки проводили 0.1М лимонной кислотой.
Фракции нейтрализовали 1М гидроксида калия и образцы наносили на PAG-SDS электрофорез.
Часть проб осаждали трихлоруксусной кислотой, центрифугировали, осадки промывали 70% метанолом, растворяли в электродном буфере, доводили буфером для нанесения до требуемого объема, прогревали и наносили на гель. Окрашивали с помощью красителя Кумаси G-250 (фиг.3).
Как видно на электрофореограмме в элюате содержится две полосы белка с молекулярной массой примерно 25 000 и 50 000 дальтон. Более легкая полоса соответствует размеру гликозилированного чГ-КСФ. Минорная тяжелая полоса является димерной формой чГ-КСФ.
Данная технология может применяться для получения субстанции чГ-КСФ, используемой для приготовления лекарственной формы препарата.
Список литературы
1. Morstyn G, et al. Clinical studies with granutients receiving cytoxic chemoterapy. Behring Inst. mitt., 1988, Aug. (83), 234-239.
2. Werner RG, Berthold W. Purification of proteins produced by biotechnological process. Arzneimittelforschung 1988 Mar; 38(3):422-428.
3. Perez-perez J., et al. Supplementation improves the periplasmic production of human granulocyte-colony stimulating factor in Escherichia coli, Biochem. Biophys. Reg. Commun, 1995, 16, 210 (2), 524-529.
4. Rotondaro L. et al. High-level expression of a cDNA for human granulocyte colony - stimulating factor in Chinese Hamster ovary cells. Effect ot 31-noncoding seguences mol., Biotechnol., 1997, Jun; 7(3) 231-240.
5. Nollowway DNA technology in the production of glycosylated recombinant human granulocyte colony stimulating factor, Eur. J. Cancer, 1994; 30A Suppl. 3., 2.
6. Nissen С. Glycosylation of recombinant human granulocyte colony stimulating factor: implications for stability and potency. Eur. J. Cancer, 1994, 30A, Suppl. 3, 12-14.
7. H. Meade а. С. Ziomer. Urine as a substitute for milk. Nature Biotechnology, 1998, v. l6, Jannary, 21-22.
8. Патент RU #2157846 Cl "Способ получения трансгенного животного, экспрессирующего в молочной железе гранулоцитарный колониестимулирующий фактор человека и гибридный ген h-GM-1 для осуществления способа".
9. Nicola N.A. J. Cell. physiol, 1981, 109, 253.
10. Brem G. et al. Expression of synthetic cDNA sequences encoding human insulin-like grows factor-1 in the mammary gland of transgenic rabbits. Gene, 1994, v. 149, p. 351-355.
11. Rudolph N.S. Biopharmaceutical production in transgenic livestock. Trends in Biotechnology, 1999, sept., v. 17, p. 367-374.
12. van Berkel P.H. et al. Large scale production of recombinant human lactoferrin in the milk of transgenic cows. Nature biotechnology, 2002, v. 20, p. 484-487.
13. Ebert K.M. et al. Transgenic production of a variant of human tissue-type plasminogen activator in goat milk: generation of transgenic goats and analysis of expression. Biotechnology, 1991, v. 9, sept., p. 835-838.
14. Wright G. et al. High level expression of active human alpha-1-antiyrypsin in the milk of transgenic sheep. Biotechnology, 1991, v. 9, sept., p. 830-834.
15. Velander W. et al. High-level expression of a heterologous protein in the milk of transgenic swine using the cDNA encoding human protein C. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1992, v. 89, p. 12003-12007.
16. Juhani Janne et. al. Transgenic Animals as Bioproducers of Therapeutic Proteins Trends in Molecular Medicine, Annals of Medicine, 1992, v. 24, p. 273-280.
17. Rudolf Jaenisch. Transgenic Animals Science, 1988, v. 240, p. 1468-1473.
18. Angelika E. Schnieke et. al. , Human Factor IX Transgenic Sheep Produced by Transfer of Nuclei from Transfected Fetal Fibroblasts Science, 1997, v. 278, p. 2130-2133.
Предложен способ получения чГ-КСФ с молоком трансгенных животных. В качестве трансгенных животных были использованы кролики с гибридным геном h-GM-1 человека, который содержит геномную копию гена гранулоцитарного колониестимулирующего фактора человека и регуляторные элементы генов молока, направляющие выделение белка чГ-КСФ в молоко. Способ позволяет получать очищенный белок чГ-КСФ в гомогенном состоянии, пригодном для дальнейшего использования в фармакологии и получении лекарственной формы препарата чГ-КСФ. 4 з.п. ф-лы, 3 ил.
| ПРОДУКТ, СОДЕРЖАЩИЙ ГРАНУЛОЦИТАРНЫЙ КОЛОНИЕСТИМУЛИРУЮЩИЙ ФАКТОР (G - CSF) И TNF-СВЯЗУЮЩИЙ ПРОТЕИН | 1995 |
|
RU2139084C1 |
