Изобретение относится к биотехнологии, в частности к технологии выращивания растительных тканей, и может быть использовано для получения биологически активных веществ, в частности экдистероидов.
Питательная среда для выращивания клеточной культуры Ajuga reptans L. из патентных источников не выявлена. Наиболее близкой к заявленному изобретению является агаризованная питательная среда для выращивания клеточной культуры Ajuga reptans L. (Володин В.В. Экдистероиды в интактных растениях и клеточных культурах // Автореферат дис. доктора биол. наук. 1999. Москва. 52 с.) следующего состава: макро- и микросоли по Мурасиге-Скугу, сахароза - 30 г/л, инозитол - 100 мг/л и витамины по Стаба, мг/л: фолиевая кислота - 0,5; рибофлавин - 0,5; биотин - 1; Са-пантотенат - 1; пиридоксин - 1; тиамина хлорид - 1; никотинамид - 2; кобаламин - 0,0015 и поливинилпиролидон - 2 г/л. Данный состав питательной среды не позволяет получить клеточные культуры с высоким содержанием экдистероидов.
Технический результат настоящего изобретения состоит в определении состава питательной среды для получения клеточной культуры Ajuga reptans L. с высоким содержанием экдистероидов.
Технический результат достигается тем, что клеточную культуру Ajuga reptans L. выращивают на агаризованной питательной среде, которая в отличие от прототипа содержит дополнительно β -ситостерин 5-50 мг/л или дополнительно MnSO4·5H2O 606,5 мг/л.
Пример 1. Контроль (по прототипу).
Для получения клеточной культуры Ajuga reptans L. готовили питательную среду, используя химически чистые реактивы. Готовили агаризованную питательную среду следующего состава: макро- и микросоли по Мурасиге-Скугу, сахароза - 30 г/л, инозитол - 100 мг/л и витамины по Стаба, мг/л: фолиевая кислота - 0,5; рибофлавин - 0,5; биотин -1; Са-пантотенат - 1; пиридоксин - 1; тиамина хлорид - 1; никотинамид - 2; кобаламин - 0,0015 и поливинилпиролидон - 2 г/л. Среду стерилизовали в автоклаве 10 мин при 1 атм. Чашки Петри стерилизовали в сухожаровом шкафу при 180° С, завернутые в бумагу Крафт. В стерильном боксе в чашки Петри разливали по 40 мл питательной среды. Первичную клеточную культуру Ajuga reptans L. пассировали на агаризованную среду. Чашки Петри термостатировали при 26±1°С в условиях темноты. Спустя 4 недели определяли интенсивность роста и содержание экдистероидов в клеточной культуре. Интенсивность роста определяли по изменению сырой массы клеток в цикле выращивания. Повторность вариантов для клеточных культур 5-ти кратная.
Экдистероиды определяли в биомассе клеточных культур, которую высушивали при 60° С в течение 24 часов. 50-80 мг высушенной измельченной пробы экстрагировали метанолом в течение 16-18 ч. После центрифугирования аликвоту 1 мл разбавляли дистиллированной водой (1:4) и пропускали через концентрирующий патрон Диапак С 16 (БиоХимМак, Россия). Сорбированные экдистероиды элюировали 3 мл 60%-ного метанола и анализировали ВЭЖХ. Анализ экдистероидов из клеточных культур проводили на хроматографической системе Varian, Pro Star (США), колонка Diasorb C16/T (150× 4мм) (БиоХимМак, Россия), размер частиц 7 мкм; состав элюента: ацетонитрил-вода (100:20, по объему); скорость элюции - 1.5 мл/мин. Детектирование проводили при λ =242 нм. В качестве стандартов веществ использовали эталонные образцы экдистероидов, полученные в лаборатории биохимии и биотехнологии растений (Институт биологии Коми НЦ УрО РАН). Количество экдистероидов рассчитывали методом абсолютной калибровки.
Содержание в клеточной культуре Ajuga reptans L. 20-гидроксиэкдизона составило 0,293±0,010 мг/г сухой массы, 29-норциастерона + 29-норсенгостерона - 0,031±0,001 мг/г, аюгалактона - 0,096±0,010 мг/г, суммы экдистероидов - 0,420 мг/г.
Пример 2-4.
Получение клеточной культуры проводят аналогично примеру 1, различием является добавление в среду β -ситостерина в количестве 5 мг/л; 25 мг/л; 50 мг/л. Результаты представлены в таблице 1.
ция β - ситостерина в среде, мг/л
рон + 29-норсенгос
терон
При концентрации в среде β -ситостерина 5 мг/л увеличение концентрации аюгалактона составляет 242%. При концентрации в среде β -ситостерина 25 мг/л увеличение концентрации 20-гидроксиэкдизона составляет 355%, концентрации 29-норциастерона + 29-норсенгостерона - 1830%, концентрации аюгалактона - 549%, суммы экдистероидов - 508%. При концентрации в среде β -ситостерина 50 мг/л увеличение концентрации 20-гидроксиэкдизона составляет 419%, концентрации 29-норциастерона + 29-норсенгостерона - 535%, концентрации аюгалактона - 1102%, суммы экдистероидов - 584%.
Пример 5.
Получение клеточной культуры проводят аналогично примеру 1, различием является добавление в среду дополнительно МnSO4·5Н2О 606,5 мг/л. Результаты представлены в таблице 2.
При концентрации в среде MnSO4·5H2O 630,6 мг/л увеличение концентрации 20-гидроксиэкдизона составляет 309%, концентрации 29-норциастерона + 29-норсенгостерона - 1294%, концентрации аюгалактона - 638%, суммы экдистероидов - 456%.
Таким образом, применение предлагаемого состава питательной среды позволяет увеличить содержание экдистероидов в клеточной культуре Ajuga reptans L.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
ШТАММ КУЛЬТИВИРОВАННЫХ КЛЕТОК РАСТЕНИЙ AJUGA REPTANS L. | 2005 |
|
RU2296154C1 |
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ КУЛЬТУРЫ ИЗОЛИРОВАННЫХ КОРНЕЙ Silene linicola К1601 - ПРОДУЦЕНТА ЭКДИСТЕРОИДОВ | 2016 |
|
RU2605912C1 |
ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ КАЛЛУСНОЙ ТКАНИ LEMNA MINOR L. | 2000 |
|
RU2171840C1 |
ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ КАЛЛУСНОЙ КУЛЬТУРЫ БОЛИГОЛОВА ПЯТНИСТОГО (Conium maculatum L) | 2015 |
|
RU2596402C1 |
ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ КАЛЛУСНОЙ ТКАНИ SILENE VULGARIS (MOENCH) GARCKE | 1999 |
|
RU2171841C2 |
ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ КАЛЛУСНОЙ ТКАНИ SILENE VULGARIS (MOENCH) GARCKE | 1999 |
|
RU2169769C1 |
ШТАММ КУЛЬТИВИРОВАННЫХ КЛЕТОК РАСТЕНИЙ SERRATULA CORONATA L. | 2005 |
|
RU2296155C1 |
ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ КАЛЛУСНОЙ КУЛЬТУРЫ ARTEMISIA ANNUA L. | 2009 |
|
RU2393217C1 |
Способ получения каллусной культуры чайного растения (Camellia sinensis. L.) | 2019 |
|
RU2709692C1 |
СРЕДСТВО (ВАРИАНТЫ) И СПОСОБ ПОВЫШЕНИЯ СОДЕРЖАНИЯ ЭКДИСТЕРОИДОВ В ЛЕКАРСТВЕННЫХ РАСТЕНИЯХ (ВАРИАНТЫ) | 2004 |
|
RU2279803C1 |
Изобретение относится к биотехнологии, в частности к технологии выращивания растительных тканей, и может быть использована для получения биологически активных веществ, в частности экдистероидов. Питательная среда, позволяющая выращивать клеточную культуру Ajuga reptans L. на агаризованной модифицированной питательной среде, содержит макро- и микросоли по Мурасиге-Скугу, сахарозу – 30 г/л, инозитол – 100 мг/л. Витамины по Стаба содержит, мг/л: фолиевая кислота – 0,5; рибофлавин – 0,5; биотин – 1, Са-пантотенат – 1, пиридоксин – 1, тиамина хлорид – 1, никотинамид – 2, кобаламин – 0,0015 и поливинилпиролидон – 2 г/л, с добавлением β -ситостерина от 5 мг/л до 50 мг/л или MnSO4·5Н2О 606,5 мг/л. Изобретение позволяет увеличить содержание экдистероидов в клеточной культуре Ajuga reptans L. 2 табл.
Питательная среда для выращивания клеточной культуры Ajuga reptans L., характеризующаяся тем, что она содержит компоненты в следующем количественном соотношении, мг/л:
Агар-агар 8000
KNO3 1900
NH4NO3 1650
СаСl2 332
MgSO4·7Н2О 370
КН2РО4 170
FeSO4·7Н2О 27,85
Nа2 ЭДТА 37,25
Н3ВО3 6,2
МnSO4·5Н2O 24,1
ZnSO4·7Н2О 8,6
Nа2МоО4 0,25
КI 0,83
CuSO4·5Н2О 0,025
СоСl2·6Н2О 0,025
сахароза 30000
инозитол 100
фолиевая кислота 0,5
рибофлавин 0,5
биотин 1
Са-пантотенат 1
пиридоксин 1
тиамина хлорид 1
никотинамид 2
кобаламин 0,0015
поливинилпиролидон 2000
β -ситостерин или 5-50
MnSO4·5Н2О 606,5
вода до 1 л
ВОЛОДИН В.В | |||
Экдистероиды в интактных растениях и клеточных культурах | |||
Автореферат диссертации на соискание уч | |||
ст | |||
д.б.н | |||
- М., 1999 | |||
Биология растений: культура клеток | |||
- М.: ВО “Агропромиздат”, 1989, с.10-15 | |||
Штамм культивируемых клеток растений UNGeRNIa VIстоRIS - продуцент алкалоидов группы галантамина и ликорина | 1990 |
|
SU1806188A3 |
Авторы
Даты
2005-05-27—Публикация
2004-01-22—Подача