Изобретение относится к области цветоводства и может быть использовано для микроразмножения и оздоровления растений гладиолуса in vitro.
Известен способ микроразмножения гладиолуса, включающий вычленение экспланта, посадку его на питательную среду, культивирование, разделение на сегменты (SU №1695854, МПК 7 А 01 Н 4/00, 07.12.1991 г.).
Недостатком данного способа является невысокий коэффициент размножения на разных этапах культивирования.
Технический результат заключается в повышении выхода размножаемого материала за счет увеличения интенсивности побегообразования, улучшения роста и развития эксплантов при положительном влиянии оптимальной концентрации минерального и органического питания регуляторов роста.
Сущность изобретения заключается в том, что в способе размножения гладиолуса in vitro, включающем вычленение эксплантов, посадку на питательную среду Мурасиге-Скуга, культивирование, разделение их на сегменты, после вычленения экспланты высаживают на агаризованную питательную среду Мурасиге-Скуга с 1/4 концентрации макро - и микросолей при постоянном освещении люминесцентными лампами с интенсивностью 3000-3500 лк при температуре 22-24°С. Затем размноженные экспланты переносят на агаризованную питательную среду с 1/2 концентрации солей по прописи Мурасиге-Скуга, которую дополняют 30-40 г/л сахарозы и регуляторами роста 0,5-1,0 мг/л 6-бензиламинопурина и 0,5-1,0 мг/л α-нафтилуксусной кислоты, кроме того, параллельно культивирование проводят также через каллусогенез на агаризованной питательной среде, дополненной 0,5-1,0 мг/л 6-бензиламинопурина и 1,0-1,5 мг/л 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты, с последующим укоренением на агаризованной питатальной среде с половинной концентрацией солей по прописи Мурасиге-Скуга, дополненной 0,5-1,5 мг/л α-нафтилуксусной кислоты, 30-40 г/л сахарозы и 4-5 г/л активированного угля.
Добавление сахарозы в питательную среду более 40 г/л снижает рост и развитие эксплантов.
При 1/4 концентрации макро- и микросолей и интенсивности освещения 3000-3500 лк при температуре 22-24°С наблюдается наибольшее образование побегов эксплантов гладиолусов (табл.1).
Добавление в питательную среду регуляторов роста с концентрациями 0,5-1,0 мг/л 6-бензиламинопурина и 0,5-1,0 мг/л α-нафтилуксусной кислоты, 1,0-1,5 мг/л 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты наиболее оптимально для роста эксплантов гладиолусов и не вызывает токсического действия (табл.2, 3).
Способ осуществляют следующим образом.
В качестве эксплантов берут пазушные и апикальные почки гладиолуса, стерилизуют и в стерильных условиях высаживают в колбы на питательную среду Мурасиге-Скуга с рН 5,8-5,9, содержащую 7,0-7,5 г/л агара. Для экспериментальной проверки предлагаемого способа на этапе введения в культуру варьируют концентрацию макро- и микросолей в питательной среде (табл.1).
Культивирование проводят при постоянном освещении белыми люминесцентными лампами с интенсивностью 3000-3500 лк при температуре 22-24°С. В течение 3-4 недель культивирования на среде с 1/4 концентрации макро- и микросолей по прописи Мурасиге-Скуга образуется максимальное число побегов, которые отделяют от почки и пересаживают на питательную среду Мурасиге-Скуга для последующего микроразмножения. На этапе собственно микроразмножения субкультивирование побегов проводят на среде, содержащей 1/2 концентрации солей по прописи Мурасиге-Скуга, дополненной 30-40 г/л сахарозы и регуляторами роста: 0,5-1,5 мг/л 6-бензиламинопурином и 0,5-1,5 мг/л α-нафтилуксусной кислотой (табл.2).
Наряду с прямой регенерацией растений из первичного экспланта на данном этапе процесса клонального микроразмножения регенерацию растений проводят также через каллусогенез, для чего в питательную среду добавляют 0,5-1,5 мг/л 6-бензиламинопурина и 0,5-1,5 мг/л 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты (табл.3).
Укоренение проводят на питательной среде Мурасиге-Скуга с 1/2 концентрации минеральных солей, дополненной 30-40 г/л сахарозы, 0,5-1,5 мг/л α-нафтилуксусной кислоты, 4-5 г/л активированного угля. После укоренения размноженные растения переносят в почву и выращивают обычным способом.
В результате использования данного способа клонального микроразмножения гладиолуса величина побегообразования на этапе введения в культуру in vitro составила 4,6 побега/эксплант, на этапе собственно микроразмножения - от 14,2 (через пассирование пазушных побегов) до 17,5 побегов/эксплант (через каллусогенез). Процент укоренения составил 100%, что приводит к высокой жизнеспособности растений-регенерантов при последующей высадке в почву.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
СПОСОБ РАЗМНОЖЕНИЯ ГВОЗДИКИ IN VITRO | 2014 |
|
RU2553545C1 |
СПОСОБ МИКРОКЛОНАЛЬНОГО РАЗМНОЖЕНИЯ ГЛАДИОЛУСА | 2000 |
|
RU2180165C2 |
СПОСОБ РАЗМНОЖЕНИЯ ЛИЛИЙ IN VITRO | 2008 |
|
RU2384050C1 |
ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ МИКРОКЛОНАЛЬНОГО РАЗМНОЖЕНИЯ ГРУШИ | 1996 |
|
RU2141524C1 |
Способ клонального микроразмножения гибридов карельской березы | 1990 |
|
SU1752284A1 |
ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ РАЗМНОЖЕНИЯ ЯБЛОНИ И ГРУШИ IN VITRO | 2012 |
|
RU2486237C1 |
Способ микроклонального размножения кирказона маньчжурского (Aristolochia manshuriensis Kom.) | 2023 |
|
RU2807740C1 |
Питательная среда для микроклонального размножения аралии континентальной Aralia continentalis Kitag | 2020 |
|
RU2751913C1 |
Способ выращивания растительного сырья ириса сибирского (Iris sibirica L.) с заданным содержанием экстрактивных веществ | 2021 |
|
RU2773523C1 |
Способ клонального микроразмножения растений сем. Betulaceae | 2016 |
|
RU2627194C1 |
Изобретение относится к области садоводства и может быть использовано для микроразмножения и оздоровления растений гладиолуса in vitro. Способ включает вычленение эксплантов, посадку на питательную среду Мурасиге-Скуга, культивирование, разделение их на сегменты. После вычленения экспланты высаживают на агаризованную питательную среду Мурасиге-Скуга, с 1/4 концентрации макро- и микросолей при постоянном освещении люминесцентными лампами с интенсивностью 3000-3500 лк при температуре 22-24°С. Затем размноженные экспланты переносят на агаризованную питательную среду с 1/2 концентрации солей по прописи Мурасиге-Скуга, которую дополняют 30-40 г/л сахарозы и регуляторами роста 0,5-1,0 мг/л 6-бензиламинопурина и 0,5-1,0 мг/л α-нафтилуксусной кислоты. Кроме того, параллельно культивирование проводят также через каллусогенез на агаризованной питательной среде, дополненной 0,5-1,0 мг/л 6-бензиламинопурина и 1,0-1,5 мг/л 2,4-дихлорфеноксиуксуной кислоты, с последующим укоренением на агаризованной питательной среде с половинной концентрацией солей по прописи Мурасиге-Скуга, дополненной 0,5-1,5 мг/л α-нафтилуксусной кислоты, 30-40 г/л сахарозы и 4-5 г/л активированного угля. Изобретение позволяет повысить выход размножаемого материала за счет увеличения интенсивности побегообразования, улучшения роста и развития эксплантов. 3 табл.
Способ размножения гладиолуса in vitro, включающий вычленение эксплантов, посадку на питательную среду Мурасиге-Скуга, культивирование, разделение их на сегменты, отличающийся тем, что после вычленения экспланты высаживают на агаризованную питательную среду Мурасиге-Скуга, с 1/4 концентрации макро- и микросолей при постоянном освещении люминесцентными лампами с интенсивностью 3000-3500 лк при температуре 22-24°С, затем размноженные экспланты переносят на агаризованную питательную среду с 1/2 концентрации солей по прописи Мурасиге-Скуга, которую дополняют 30-40 г/л сахарозы и регуляторами роста 0,5-1,0 мг/л 6-бензиламинопурина и 0,5-1,0 мг/л α-нафтилуксусной кислоты, кроме того, параллельно культивирование проводят также через каллусогенез на агаризованной питательной среде, дополненной 0,5-1,0 мг/л 6-бензиламинопурина и 1,0-1,5 мг/л 2,4-дихлорфеноксиуксуной кислоты, с последующим укоренением на агаризованной питательной среде с половинной концентрацией солей по прописи Мурасиге-Скуга, дополненной 0,5-1,5 мг/л α-нафтилуксусной кислоты, 30-40 г/л сахарозы и 4-5 г/л активированного угля.
Способ микроразмножения гладиолуса | 1989 |
|
SU1695854A1 |
СПОСОБ МИКРОКЛОНАЛЬНОГО РАЗМНОЖЕНИЯ ГЛАДИОЛУСА | 2000 |
|
RU2180165C2 |
СОЮЗПРОВОДМЕХАИИЗАЦИЯ» | 0 |
|
SU244211A1 |
US 4338745 A, 13.07.1982 | |||
WO 8802211 A, 07.04.1988. |
Авторы
Даты
2006-10-27—Публикация
2005-02-17—Подача