СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ КУЛЬТУРЫ КЛЕТОК ДАЛЬНЕВОСТОЧНЫХ ЛОСОСЕЙ Российский патент 2011 года по МПК C12N5/00 

Описание патента на изобретение RU2412994C1

Изобретение относится к биотехнологии, а именно к способам получения культуры клеток дальневосточных лососей.

Известен способ получения эмбриональных клеток морского двустворчатого моллюска, где отдельные клетки получают диссоциацией эмбрионов 0,1%-ным раствором коллагеназы на искусственной морской воде без ионов Са2+ и Mg2+ при температуре 6-10°С. Этот способ приемлем для узкого круга клеток морских беспозвоночных животных (см. авторское свидетельство 1745767, C12N 5/00, 1992).

Известен способ получения культур клеток путем обработки органов ферментным препаратом коллагеназы, полученным из патогенного микроорганизма Clostridium histolyticum. Основным недостатком данного способа является то, что препарат клостридиальной коллагеназы, полученный из вышеуказанного микроорганизма, содержит значительное количество патогенных и пирогенных примесей, которые практически невозможно исключить при очистке любым известным способом, что отрицательно сказывается на проценте выхода живых клеток. Кроме того, клостридиальная коллагеназа не способна гидролизовать неколлагеновые белки, что необходимо для более полной дезагрегации тканей и органов и, как следствие, увеличения выхода живых клеток. Данная коллагеназа проявляет максимальную активность при температуре 37°С (заявка ФРГ №3413960, MKИ C12N 5/00).

Известен способ получения культур клеток, включающий обработку тканей и органов раствором комплекса коллагенолитических ферментов, полученного из пищеварительных органов гидробионтов, согласно изобретению в качестве указанного комплекса используют комплекс, полученный из пищеварительных органов головоногих моллюсков, при концентрации комплекса по белку 0,01-0,4 мг/мл при температуре 0-18°С (патент РФ 2126832, C12N 5/00, 1997).

Однако до настоящего времени не получали культуру клеток лососей из плавников данного вида.

Технической задачей заявленного способа является получение клеток из плавников рыб и повышение выхода жизнеспособных клеток.

Поставленная задача решается в способе получения культуры клеток дальневосточных лососей, при котором в качестве материала для культивирования клеток берут плавники у молоди рыб, обрабатывают раствором Хенкса, содержащим 1 мкг/мл амфотерицина Б и 200 ед./мл гентамицина, и центрифугируют, при этом обработку с центрифугированием осуществляют не менее 5 раз, а затем проводят механическое измельчение ткани до кусков размером 1 мм в среде DMEM с содержанием глюкозы не менее 4,5 г/л, 10% эмбриональной телячьей сыворотки, 40 ед./мл гентамицина и далее инкубируют в той же среде с добавлением 1 мг/мл коллагеназы 1 типа в течение 60 мин при температуре 18-20°С, затем коллагеназу отмывают путем двукратного центрифугирования, а осадок ресуспендируют средой DMEM с содержанием глюкозы 4,5 г/л, 10% эмбриональной телячьей сыворотки, 25 мМ Hepes, 40 ед./мл гентамицина, 0,25 мкг/мл амфотерицина Б и 10 нг/мл человеческого рекомбинантного основного фактора роста фибробластов и помещают в культуральный флакон для инкубации при температуре 18°С, с заменой среды каждые 3-4 дня, и после достижения клетками монослоя осуществляют пересев, используя трипсин или смесь трипсин версен.

На фиг.1. Мальки кеты (сверху) и горбуши (снизу), фиг.2. Миграция клеток из фрагмента хвостового плавника горбуши, фиг.3. Миграция клеток из фрагмента грудного плавника горбуши.

Получение культуры клеток

Молодь кеты и горбуши была доставлена с Соколовского завода (о.Сахалин). Икра была отложена в 2008 г. Размер кеты составлял около 35 мм при весе около 1 г. Размер горбуши около 20 мм при весе около 250 мг.

После полной остановки дыхания на воздухе мальков кратковременно (до 4 сек) обрабатывали 85%-ным этиловым спиртом, после чего переносили в условия стерильного ламинарного шкафа. С помощью стерильных хирургических инструментов отделяли либо хвостовой плавник, либо грудной, либо спинной. Фрагменты ткани размером несколько мм переносили в пробирки со стерильным раствором Хенкса, содержащим 1 мкг/мл амфотерицина Б и 200 ед./мл гентамицина. Пробирки с фрагментами центрифугировали 200g в течение 10 мин при 4°С, при этом обработку с центрифугированием осуществляли не менее 5 раз, с тем чтобы с большой вероятностью избавиться от контаминации бактериями или дрожжами, супернатант выбрасывали, а образцы переносили в новые стерильные пробирки. Для переноса использовали стерильные Пастеровские пипетки с широким носиком.

После последнего центрифугирования образцы с помощью стерильных Пастеровских пипеток переносили в чашки Петри диаметром 3 см, далее в среде DMEM с содержанием глюкозы не менее 4,5 г/л, 10% эмбриональной телячьей сыворотки, 40 ед./мл гентамицина, с помощью стерильных ножниц в условиях шкафа со стерильным протоком воздуха образцы измельчали до размера не более 1 мм.

После этого аккуратно отсасывали среду и заливали образцы той же средой с добавлением 1 мг/мл коллагеназы 1 типа и инкубировали при температуре 18-20°С в течение 60 мин, затем коллагеназу отмывали путем двукратного центрифугирования, а осадок ресуспендируют средой DMEM с содержанием глюкозы 4,5 г/л, 10% эмбриональной телячьей сыворотки, 25 мМ Hepes, 40 ед./мл гентамицина, 0,25 мкг/мл амфотерицина Б и 10 нг/мл человеческого рекомбинантного основного фактора роста фибробластов и помещают в культуральный флакон для инкубации при температуре 18°С, с заменой среды каждые 3-4 дня, и после достижения клетками монослоя осуществляют пересев, используя трипсин или смесь трипсин версен.

Пример 1.

Берут молодь кеты, размер которой составляет около 35 мм при весе около 1 г, после полной остановки дыхания на воздухе мальков кратковременно (до 4 сек) обрабатывают 85%-ным этиловым спиртом, после чего переносят в условия стерильного ламинарного шкафа. Затем отделяют хвостовой плавник. Фрагменты ткани переносят в пробирки со стерильным раствором Хенкса, содержащим 1 мкг/мл амфотерицина Б и 200 ед./мл гентамицина. Пробирки с фрагментами центрифугировают 200g в течение 10 мин при 4°С, при этом обработку с центрифугированием осуществляют 5 раз, с тем чтобы избавиться от контаминации бактериями или дрожжами, супернатант выбрасывают, а образцы переносят в новые стерильные пробирки.

После последнего центрифугирования образцы с помощью стерильных Пастеровских пипеток переносят в чашки Петри диаметром 3 см, далее в среде DMEM с содержанием глюкозы не менее 4,5 г/л, 10% эмбриональной телячьей сыворотки, 40 ед./мл гентамицина, с помощью стерильных ножниц в условиях шкафа со стерильным протоком воздуха образцы измельчают до размера не более 1 мм.

После этого отсасывают среду и заливают образцы той же средой с добавлением 1 мг/мл коллагеназы 1 типа и инкубируют при температуре 20°С в течение 60 мин, затем коллагеназу отмывают путем двукратного центрифугирования, а осадок ресуспендируют средой DMEM с содержанием глюкозы 4,5 г/л, 10% эмбриональной телячьей сыворотки, 25 мМ Hepes, 40 ед./мл гентамицина, 0,25 мкг/мл амфотерицина Б и 10 нг/мл человеческого рекомбинантного основного фактора роста фибробластов и помещают в культуральный флакон для инкубации при температуре 18°C, с заменой среды каждые 4 дня. После достижения клетками монослоя осуществляют пересев, используя трипсин.

Пример 2.

Берут молодь горбуши, размер которой составляет около 30 мм при весе около 0,8 г, после полной остановки дыхания на воздухе мальков кратковременно (до 4 сек) обрабатывают 85%-ным этиловым спиртом, после чего переносят в условия стерильного ламинарного шкафа. Затем отделяют спинной плавник. Фрагменты ткани переносят в пробирки со стерильным раствором Хенкса, содержащим 1 мкг/мл амфотерицина Б и 200 ед./мл гентамицина. Пробирки с фрагментами центрифугировают 200g в течение 10 мин при 4°С, при этом обработку с центрифугированием осуществляют 5 раз, с тем чтобы избавиться от контаминации бактериями или дрожжами, супернатант выбрасывают, а образцы переносят в новые стерильные пробирки.

После последнего центрифугирования образцы с помощью стерильных Пастеровских пипеток переносят в чашки Петри диаметром 3 см, далее в среде DMEM с содержанием глюкозы не менее 4,5 г/л, 10% эмбриональной телячьей сыворотки, 40 ед./мл гентамицина, с помощью стерильных ножниц в условиях шкафа со стерильным протоком воздуха образцы измельчают до размера 0,8 мм.

После этого отсасывают среду и заливают образцы той же средой с добавлением 1 мг/мл коллагеназы 1 типа и инкубируют при температуре 18°С в течение 60 мин, затем коллагеназу отмывают путем двукратного центрифугирования, а осадок ресуспендируют средой DMEM с содержанием глюкозы 4,5 г/л, 10% эмбриональной телячьей сыворотки, 25 мМ Hepes, 40 ед./мл гентамицина, 0,25 мкг/мл амфотерицина Б и 10 нг/мл человеческого рекомбинантного основного фактора роста фибробластов и помещают в культуральный флакон для инкубации при температуре 18°С, с заменой среды каждые 3 дня. После достижения клетками монослоя осуществляют пересев, используя смесь трипсин версен.

Похожие патенты RU2412994C1

название год авторы номер документа
БИОТРАНСПЛАНТАТ ДЛЯ КОРРЕКЦИИ ДЕФЕКТОВ МЯГКИХ ТКАНЕЙ (ВАРИАНТЫ), СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ БИОТРАНСПЛАНТАТА (ВАРИАНТЫ) И СПОСОБ КОРРЕКЦИИ ДЕФЕКТОВ МЯГКИХ ТКАНЕЙ 2009
  • Зорин Вадим Леонидович
  • Зорина Алла Ивановна
RU2428996C2
БИОТРАНСПЛАНТАТ, СПОСОБ ЕГО ПОЛУЧЕНИЯ И СПОСОБ ЛЕЧЕНИЯ ЗАБОЛЕВАНИЙ ПАРОДОНТА 2009
  • Зорин Вадим Леонидович
  • Зорина Алла Ивановна
RU2418571C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ КЛЕТОЧНОГО МАТЕРИАЛА ИЗ ПЛАЦЕНТЫ ЧЕЛОВЕКА 2015
  • Бурунова Вероника Вячеславовна
  • Ярыгин Константин Никитич
RU2599418C1
Способ получения биобезопасной культуры мезенхимальных стволовых клеток из Вартонова студня пуповины человека 2016
  • Сухих Геннадий Тихонович
  • Полтавцева Римма Алексеевна
  • Полтавцев Андрей Михайлович
  • Зарайский Евгений Ильич
RU2674344C2
Способ получения биобезопасной культуры мезенхимальных стволовых клеток из ворсин хориона человека 2016
  • Сухих Геннадий Тихонович
  • Полтавцева Римма Алексеевна
  • Полтавцев Андрей Михайлович
  • Зарайский Евгений Ильич
RU2645255C1
Способ выделения фибробластов из стромы роговицы 2021
  • Черных Валерий Вячеславович
  • Суровцева Мария Александровна
  • Краснер Кристина Юрьевна
  • Повещенко Ольга Владимировна
  • Трунов Александр Николаевич
  • Садрутдинов Ренат Шагитович
RU2764077C1
Способ выделения эндотелия микрососудов мозга крысы 2021
  • Капкаева Марина Рафаилевна
  • Салмина Алла Борисовна
  • Хилажева Елена Дмитриевна
  • Воронков Дмитрий Николаевич
RU2774603C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ КЛЕТОЧНОЙ КУЛЬТУРЫ ДЛЯ ЛЕЧЕНИЯ СОСУДИСТЫХ И ДЕМИЕЛИНИЗИРУЮЩИХ ЗАБОЛЕВАНИЙ НЕРВНОЙ СИСТЕМЫ И КЛЕТОЧНАЯ КУЛЬТУРА, ПОЛУЧЕННАЯ ЭТИМ СПОСОБОМ (ВАРИАНТЫ) 2007
  • Ступин Виктор Александрович
RU2347579C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ МИОБЛАСТОВ, ИСПОЛЬЗОВАНИЕ БИОПТАТА ДЕСНЫ, ПРЕПАРАТ МИОБЛАСТОВ ДЛЯ ЛЕЧЕНИЯ ПАТОЛОГИЙ МЫШЕЧНОЙ ТКАНИ И СПОСОБ ЕГО ПОЛУЧЕНИЯ 2014
  • Зорин Вадим Леонидович
  • Копнин Павел Борисович
  • Зорина Алла Ивановна
  • Еремин Илья Игоревич
  • Черкасов Владимир Рюрикович
RU2576842C2
Способ получения и культивирования фибробластоподобных клеток из пульпы молочных зубов 2020
  • Болтовская Виолетта Викторовна
  • Волова Лариса Теодоровна
  • Россинская Виктория Викторовна
  • Кулагина Лариса Николаевна
RU2726554C1

Иллюстрации к изобретению RU 2 412 994 C1

Реферат патента 2011 года СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ КУЛЬТУРЫ КЛЕТОК ДАЛЬНЕВОСТОЧНЫХ ЛОСОСЕЙ

Изобретение относится к биотехнологии. Плавники молоди рыб обрабатывают раствором Хенкса, содержащим 1 мкг/мл амфотерицина Б и 200 ед./мл гентамицина. Центрифугируют 200g в течение 10 мин при 4°С, не менее 5 раз. Проводят механическое измельчение ткани до кусков размером 1 мм в среде DMEM с содержанием глюкозы не менее 4,5 г/л, 10% эмбриональной телячьей сыворотки, 40 ед./мл гентамицина. Инкубируют в среде с добавлением 1 мг/мл коллагеназы 1 типа в течение 60 мин при температуре 18-20°С. Коллагеназу отмывают путем двукратного центрифугирования, осадок ресуспендируют средой DMEM с содержанием глюкозы 4,5 г/л, 10% эмбриональной телячьей сыворотки, 25 мМ Hepes, 40 ед./мл гентамицина, 0,25 мкг/мл амфотерицина Б и 10 нг/мл человеческого рекомбинантного основного фактора роста фибробластов. Помещают в культуральный флакон для инкубации при температуре 18°С с заменой среды каждые 3-4 дня. После достижения клетками монослоя осуществляют пересев, используя трипсин или смесь трипсин версен. Способ позволяет получить культуру клеток дальневосточных лососей. 3 ил.

Формула изобретения RU 2 412 994 C1

Способ получения культуры клеток дальневосточных лососей, характеризующийся тем, что в качестве материала для культивирования клеток берут плавники у молоди рыб, обрабатывают раствором Хенкса, содержащим 1 мкг/мл амфотерицина Б и 200 ед./мл гентамицина и центрифугируют, при этом обработку с центрифугированием осуществляют не менее 5 раз, а затем проводят механическое измельчение ткани до кусков размером 1 мм в среде DMEM с содержанием глюкозы не менее 4,5 г/л, 10% эмбриональной телячьей сыворотки, 40 ед./мл гентамицина и далее инкубируют в той же среде с добавлением 1 мг/мл коллагеназы 1 типа в течение 60 мин при температуре 18-20°С, затем коллагеназу отмывают путем двукратного центрифугирования, а осадок ресуспендируют средой DMEM с содержанием глюкозы 4,5 г/л, 10% эмбриональной телячьей сыворотки, 25 мМ Hepes, 40 ед./мл гентамицина, 0,25 мкг/мл амфотерицина Б и 10 нг/мл человеческого рекомбинантного основного фактора роста фибробластов и помещают в культуральный флакон для инкубации при температуре 18°С, с заменой среды каждые 3-4 дня, и после достижения клетками монослоя осуществляют пересев, используя трипсин или смесь трипсин версен.

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 2011 года RU2412994C1

СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ КУЛЬТУР КЛЕТОК 1997
  • Климова О.А.
  • Чеботарев В.Ю.
RU2126832C1
Способ получения эмбриональных клеток двустворчатого моллюска МIZUснорестеN YeSSoeNSIS 1990
  • Одинцова Нэлия Адольфовна
  • Хоменко Александр Васильевич
SU1745767A1
DE 3413960 A1, 17.10.1995
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ КУЛЬТУР КЛЕТОК 1992
  • Балахнин С.М.
  • Зиновьев В.В.
  • Малыгин Э.Г.
  • Мацкова Л.В.
  • Овечкина Л.Г.
  • Подчерняева Р.Я.
  • Попова С.Р.
  • Сандахчиев Л.С.
  • Царева А.А.
  • Юрченко Н.Д.
RU2067995C1

RU 2 412 994 C1

Авторы

Зеленина Дарья Александровна

Микодина Екатерина Викторовна

Егоров Егор Евгеньевич

Вишнякова Хава Сафиулловна

Даты

2011-02-27Публикация

2010-01-20Подача