Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии, в частности к штаммам вируса африканской чумы свиней, и может быть использовано при проведении мониторинговых исследований с новыми изолятами вируса, выделенными на территории РФ от кабанов и домашних свиней, а также при изучении патогенеза вызванной ими болезни.
Африканская чума свиней (АЧС) - контагиозная вирусная болезнь, характеризующаяся лихорадкой, геморрагическим диатезом, воспалительными, дистрофическими, некротическими изменениями в различных органах, а также высокой смертностью свиней всех пород и возрастных групп. Заболевание вызывает ДНК-содержащий вирус семейства Asfaviridae рода Asfavirus.
Впервые АЧС описал английский исследователь Р. Монтгомери, который в начале XX века наблюдал гибель европейских пород свиней, завезенных в Восточную Африку. До 1957 г. АЧС регистрировали только в африканских странах. В 1957 г. заболевание впервые было занесено на европейский континент - в Португалию, а затем в Испанию, которые оставались неблагополучными по АЧС около 30 лет. Вспышки этой болезни регистрировали и в других европейских странах - Франции, Италии, Мальте, Бельгии, Голландии и бывшем СССР. На острове Сардиния по настоящее время АЧС регистрируют у кабанов с признаками хронического и бессимптомного течения болезни [1].
Начало новой эпизоотии АЧС в Европе связано с заносом возбудителя болезни в 2007 году в Грузию, затем Армению, Абхазию и Россию (Чеченскую республику) [2]. Несмотря на жесткие меры борьбы с болезнью, связанные с убоем всех свиней в очаге болезни и первой угрожаемой зоне, АЧС была занесена и в другие регионы РФ, в т.ч. и в Центральный Федеральный округ, где в эпизоотический процесс в настоящее время вовлечены кабаны.
В странах Африканского, Американского и Европейского континентов выделены изоляты вируса АЧС, обладающих различными биологическими свойствами. Для их классификации используют реакцию задержки гемадсорбции (РЗГАд) в культуре клеток костного мозга свиней (KMC) или лейкоцитов свиней (ЛС), рестрикционный анализ ДНК, генотипирование вируса и др. [3, 4, 5].
На основании разработанной в ГНУ ВНИИВВиМ серотиповой классификации, имеющиеся в коллекции института паспортизированные штаммы вируса АЧС отнесены к 9 серотипам, а на основании секвенирования фрагментов гена, кодирующего структурный белок Р 72 к 5 генотипам - I, II, V, VIII и X [6, 7].
Циркулирующий в н.в. на территории России вирус АЧС отнесен к VIII серотипу и II генотипу, по этим показателям он отличается от вируса, вызвавшего эпизоотию АЧС в Европе в 1957 году [2].
Согласно данным Россельхознадзора в 2014 г. АЧС регистрировали в 13 регионах РФ в которых было выявлено 77 вспышек болезни (30 у домашних свиней и 47 у кабанов) [8]. Это указывает на возможность образования при пассировании в популяции кабанов слабопатогенных изолятов вируса АЧС, что существенно затруднит диагностику и борьбу с болезнью.
Близким аналогом предлагаемого изобретения является вирулентный штамм «Ставрополь 01/08», выделенный в 2008 году в начале эпизоотии АЧС в РФ от павшей домашней свиньи в Ставропольском крае. Патентуемый штамм отличается от аналога по ряду фенотипических признаков - длительности течения болезни, выраженности патологоанатомических изменений, характеру ГАд в культуре клеток и др., которые приведены в таблице 3.
Цель изобретения - получение нового со стабильными биологическими свойствами вирулентного штамма вируса АЧС, циркулирующего в Российской Федерации в популяции диких свиней - кабанов, который может быть использован в качестве референтного при проведении мониторинговых исследований с изолятами вируса, выделенными от кабанов и домашних свиней, а также при изучении патогенеза вызванной ими болезни.
Поставленная цель достигнута путем выделения вируса АЧС от убитого кабана в охотхозяйстве «Озерное» Медынского района Калужской области в 2014 г., который является новым, ранее не известным штаммом, длительно циркулирующим в популяции диких свиней - кабанов.
Полученный вирулентный штамм вируса АЧС получил название «Калуга-2014» и депонирован в Государственной коллекции микроорганизмов ГНУ ВНИИ ветеринарной вирусологии и микробиологии Россельхозакадемии под №3115.
Новый вирулентный штамм характеризуется следующими основными характеристиками:
Морфологические и молекулярно-генетические свойства. При электронной микроскопии обнаруживают округлые вирионы диаметром 175-215 нм, состоящие из плотного нуклеотида, 2-слойного икосаэдрического капсида и наружной оболочки. Плавучая плотность вириона в CsCl составляет 1.19-1.24 г/см3, коэффициент седиментации 1800-8000 S. Нуклеотид содержит ДНК, белок и окружен электронно-прозрачным слоем.
Геном вируса представлен неинфекционной, двуспиральной, линейной молекулой ДНК, состоящей из 170-190 тыс. пар нуклеотидов.
На основании результатов секвенирования фрагментов гена, кодирующего структурный белок Р 72, штамм отнесен к 2 генотипу вируса АЧС. Нуклеотидные последовательности генов E183L(p54), EP402R(СД2v) и межгенного участка I17/1329RL штамма «Калуга-2014» идентичны указанным последовательностям генов референс-штамма «Ставрополь 01/08» вируса АЧС.
Антигенные свойства. Вирусспецифические антигены выявляются в реакциях преципитации, связывания комплемента, иммуноферментного анализа, иммунофлуоресценции, гемадсорбции и др.
Типовая принадлежность. По результатам РЗГАд с использованием имеющихся в Коллекции ВНИИВВиМ типовых референс-сывороток штамм «Калуга-2014» отнесен к вирусу АЧС VIII серотипа, что подтверждено постановкой биопробы на иммунных животных.
Культуральные свойства. Штамм размножается в первичных (KMC и ЛС) и перевиваемых (A4C2, A4C2/9к) культурах клеток, репродукция вируса сопровождается специфической адсорбцией эритроцитов свиней (феномен гемадсорбции) на инфицированных клетках на 3-5 сутки культивирования и их лизисом через 4-6 суток. Гемадсорбция (ГАд) имеет «плотный» и «рыхлый» характер, о чем свидетельствует соответственно многослойная и однослойная адсорбция эритроцитов свиней на инфицированных клетках. Это указывает на наличие в исходной вирусной популяции вирионов, обладающих различной патогенностью для свиней. Накопление вируса в эти сроки в культурах клеток KMC, ЛС составляет 6,0-7,0 lgГАЕ50/см3, A4C2 и A4C2/9к - 4,5 -5,5 lgГАЕ50/см3. В течение 10 серийных пассажей в культурах клеток (срок наблюдения) штамм «Калуга 2014» сохраняет эти свойства. Без предварительной адаптации штамм не репродуцируется в перевиваемых культурах клеток почки поросенка (РК-15, ПСГК), тестикул поросенка (ПТП), почки сайги (ПС), и почки африканской зеленой мартышки (CV-1).
Патогенные свойства. Штамм патогенен только для домашних и диких свиней всех пород и возрастных групп. При внутримышечном заражении в дозе 1000 ГАЕ50 и выше вызывает их гибель на 9-11 сутки после инфицирования с признаками острой формы болезни. У заболевших свиней на 4-8 сутки после заражения отмечают повышение температуры тела до 41,2-41,7°C, угнетение, отказ от корма, одышку, нарушение координации движений, парез задних конечностей.
Патологоанатомические изменения. На серозных оболочках внутренних органов имеются кровоизлияния, в грудной и брюшной полостях скопление серозно-геморрагического экссудата, междольковая ткань легких отечна с признаками серозно-геморрагической пневмонии. Лимфоузлы: подчелюстные, средостенные мезентериальные не увеличены или увеличены незначительно, с кровоизлияниями, желудочные и портальные - сильно увеличены, геморрагически воспалены, темного цвета, имеют вид сгустка крови, «дряблые». Селезенка незначительно увеличена, естественного цвета, под капсулой единичные точечные кровоизлияния. Печень и почки без выраженных патологических изменений, характерных для АЧС.
Контагиозность. Штамм контагиозен для свиней. Интактные свиньи заболевают АЧС при совместном содержании с инфицированными штаммом «Калуга - 2014» животными.
Контаминация бактериями, грибами, микоплазмами и посторонними вирусами.
Штамм не контаминирован бактериями, грибами, микоплазмами и посторонними вирусами.
Способ получения и условия хранения. Штамм хранят при минус 50°C в виде лиофилизированной или гепаринизированной вируссодержащей крови, которую получают от внутримышечно зараженных свиней, находящихся в атональном состоянии. Периодичность освежения штамма - один раз в 10 лет, при активности штамма выше 4,5 lg ГАЕ50/см3 срок хранения продлевается.
Сущность изобретения поясняется следующими примерами.
Пример 1.
В таблице 1 приведены сведения по культивированию штамма «Калуга -2014» вируса АЧС в культурах клеток ЛС, A4C2/9к, РК - 15, и CV-1 в течение 10 последовательных пассажей.
Как видно из табл. 1, в течение 10 последовательных пассажей (срок наблюдения) штамм «Калуга -2014» вируса АЧС стабильно размножается в монослое культур клеток ЛС и A4C2/9к с образованием специфической ГАд и накапливается в них в титрах 6,0-7,0 lg ГАЕ50/см3 и 4,0-5,5 lg ГАЕ50/см3 соответственно. В монослое перевиваемых культур клеток РК-15 и CV-1 вирус не размножался.
Пример 2.
Результаты определения типовой принадлежность штамма в РЗГАд со специфическими референс-сыворотками I-IX серотипов приведены в таблице 2.
Как видно из таблицы 2, специфическая ЗГАд - сыворотка, полученная на референс-штамм «Ставрополь 01/08» вируса АЧС VIII серотипа, вызывает задержку гемадсорбции штамма «Калуга-2014». На основании этих результатов штамм «Калуга - 2014» отнесен к VIII серотипу вируса АЧС.
Пример 3
Основные биологические свойства штамма «Калуга-2014», которые должны использоваться при проведении мониторинговых исследований с новыми изолятами вируса АЧС, циркулирующими на территории РФ, приведены в таблице 3.
Биологические характеристики штамма «Калуга 2014» вируса АЧС приведены в сравнительном аспекте с аналогичными свойствами референс-штамма «Ставрополь 01/08», выделенного в 2008 г. от павшей домашней свиньи в Ставропольском крае, и штаммом «Чечня 02/07», выделенным от павшего кабана в 2007 г. в Республике Чечня.
Как видно из представленных в таблице 3 результатов, штамм «Калуга-2014» вируса АЧС по некоторым биологическим характеристика отличается от референс-штамма «Ставрополь 01/08» и штамма «Чечня 02/07» - по срокам гибели свиней после внутримышечного заражения, характеру ГАд на инфицированных клетках и выраженности патологоанатомических изменений у павших свиней.
Эти и другие представленные в таблице 3 характеристики штамма «Калуга 2014», должны учитываться при проведении мониторинговых исследований с новыми изолятами вируса АЧС, циркулирующими среди кабанов, а также выделенными от домашних свиней в РФ.
Источники информации
1. Инфекционная патология животных. А.Я. Самуйленко, Б.В. Соловьев, Е.А. Непоклонов и др. - Москва, 2005. - С. 806-821.
2. Балышев В.М., Калантаенко Ю.Ф., Болгова М.В., Прудникова Е.Ю. Сероиммунологическая принадлежность вируса африканской чумы свиней, выделенного в российской Федерации // Доклады РАСХН. 2011. 54. С. 52-53.
3. Диагностика африканской чумы свиней. И.Ф. Вишняков, Н.И. Митин, А.Н. Курносов, В.М. Колосов, Ф.А. Бадаев, И.В. Федорищев, В.А. Бурлаков // Материалы научной конференции ВНИИВВиМ. - Покров, 1992. - С. 57-70.
4. Селянинов Ю.О. Вирус африканской чумы свиней: физическое картирование генома штаммов / Ю.О. Селянинов, В.М. Балышев, С.Ж. Цыбанов // Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук. - 2000. - №5. - С. 75-76.
5. Genotyping fielstraing of African swine fever by partial p72 gene characterization. A.D.S. Bastos [et al.] // Arch. Virol - 2003, vol. 148, - P. 693-706.
6. Паспортизация изолята «Девис» вируса африканской чумы свиней / Болгова М.В., Балышев В.М., Пономарев В.Н., Неверовская Н.С. // Материалы междунар. научно.-практической конференции, посвященной 55-летию ВНИИВВиМ, часть 1, Покров 2014. - С. 43-47.
7. Биологические свойства вируса африканской чумы свиней, выделенного в Российской Федерации / Балышев В.М., Куриннов В.В., Цыбанов С.Ж. и др. // Ветеринария - 2010. - №7. - С. 25-27.
8. Эпизоотическая ситуация по АЧС на территории Российской Федерации в 2014 г. [Электронный ресурс]. Режим доступа: www fsvps/ru/ - Загл. с экрана/
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Аттенуированный штамм "СКА-2015 ВНИИВВиМ" вируса африканской чумы свиней VIII серотипа для вирусологических и молекулярно-генетических исследований | 2016 |
|
RU2607791C1 |
ШТАММ "СТАВРОПОЛЬ 01/08" ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ ДЛЯ ВИРУСОЛОГИЧЕСКИХ, МОЛЕКУЛЯРНО-ГЕНЕТИЧЕСКИХ И МОНИТОРИНГОВЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ | 2010 |
|
RU2439152C1 |
Штамм "АЧС/ВНИИЗЖ/ CV-1" вируса африканской чумы свиней, со сниженной вирулентностью для свиней, для вирусологических, диагностических, молекулярно-генетических и мониторинговых исследований | 2018 |
|
RU2675535C1 |
Аттенуированный штамм "ASFV/CV60/2020" вируса африканской чумы свиней семейства Asfarviridae, рода Asfivirus для изучения иммунологических реакций, молекулярно-генетического анализа, генетической модификации и создания прототипа вакцины против АЧС | 2021 |
|
RU2760399C1 |
ШТАММ ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ 8-ГО СЕРОТИПА, АДАПТИРОВАННЫЙ К ПЕРЕВИВАЕМОЙ КУЛЬТУРЕ КЛЕТОК COS-1 | 2014 |
|
RU2575079C1 |
РЕКОМБИНАЦИОННАЯ КАССЕТА, СОДЕРЖАЩАЯ ГЕНЫ EP153R И EP402R ШТАММА Ф-32 ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ И РЕКОМБИНАНТНЫЙ ШТАММ DswCongo/FranceLectinCD2 ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ | 2014 |
|
RU2571858C1 |
АТТЕНУИРОВАННЫЙ ШТАММ ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ 2-ГО СЕРОТИПА ДЛЯ РАЗРАБОТКИ ДИАГНОСТИЧЕСКИХ И ВАКЦИННЫХ ПРЕПАРАТОВ | 2010 |
|
RU2452511C1 |
Рекомбинационная кассета, содержащая гены EP153R и EP364R штамма Congo (КК-262) вируса африканской чумы свиней и рекомбинантный штамм ΔСongoCD2v вируса африканской чумы свиней | 2016 |
|
RU2654586C2 |
СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АНТИГЕННОГО РОДСТВА ГЕМАДСОРБИРУЮЩИХ ИЗОЛЯТОВ ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ | 1996 |
|
RU2122211C1 |
ПЕРЕВИВАЕМАЯ ГИБРИДНАЯ СУБЛИНИЯ КЛЕТОК АС/9к SUS SCROFA, ИСПОЛЬЗУЕМАЯ ДЛЯ ВИРУСОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ | 2013 |
|
RU2545720C1 |
Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии и касается штамма вируса африканской чумы свиней. Штамм выделен от убитого кабана в охотхозяйстве «Озерное» Медынского района Калужской области в 2014 г., паспортизирован с названием «Калуга-2014» и депонирован в Государственной Коллекции микроорганизмов ГНУ Всероссийского научно-исследовательского института ветеринарной вирусологии и микробиологии Россельхозакадемии под №3115. Штамм обладает высокой инфекционной активностью, накапливается в культурах клеток костного мозга свиней и лейкоцитах свиней в титре 6,0-7,0 lgГАЕ50/см3. Гибель зараженных свиней наступает с признаками острой формы АЧС через 6-8 суток после проявления клинических признаков болезни. Изобретение может быть использовано в качестве референс-штамма при проведении мониторинговых исследований в РФ с новыми изолятами вируса, циркулирующими в популяции кабанов, а также выделенными от домашних свиней. 3 табл., 3 пр.
Штамм «Калуга-2014» вируса АЧС семейства Asfarviridae рода Asfivirus, депонированный в Государственной Коллекции микроорганизмов ГНУ Всероссийского научно-исследовательского института ветеринарной вирусологии и микробиологии Россельхозакадемии под №3115, для проведения мониторинговых исследований и изучения патогенеза болезни.
ШТАММ "СТАВРОПОЛЬ 01/08" ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ ДЛЯ ВИРУСОЛОГИЧЕСКИХ, МОЛЕКУЛЯРНО-ГЕНЕТИЧЕСКИХ И МОНИТОРИНГОВЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ | 2010 |
|
RU2439152C1 |
A M | |||
GONZAGUE et al., Isolation of a non-haemadsorbing, noncytopathic strain of African swine fever virus in Madagascar, Epidemiol | |||
Infect., 2001, Vol.126, pp.453-459.. |
Авторы
Даты
2016-03-20—Публикация
2015-04-01—Подача