Изобретение относится к области вирусологии, в частности к получению аттенуированного штамма КК-262/С вируса африканской чумы свиней (АЧС), и может быть использовано в научно-исследовательских и диагностических центрах при проведении вирусологических, молекулярно-генетических исследований и разработке диагностических и вакцинных препаратов при АЧС.
С этой целью используют вирулентные и аттенуированные штаммы вируса АЧС, размножающиеся в первичных культурах клеток костного мозга свиней (KMC) и лейкоцитов свиней (ЛС), а также в перевиваемых культурах клеток гомологичного и гетерологичного происхождения (1).
С использованием реакции задержки гемадсорбции (РЗГАд), предложенной для серологического типирования штаммов, установлено 8 серотипов вируса АЧС, отличающихся между собой в иммунной пробе, что обуславливает необходимость получения аттенуированных штаммов для каждой иммуногруппы (2).
За рубежом получены и охарактеризованы аттенуированные штаммы и варианты вируса АЧС: Хинде-169, Катанга-105, Мадейра-105 1-го серотипа и др., которые выращивают в первичных культурах клеток KMC или ЛС. Указанные штаммы характеризуются высокими реактогенностью и виремией, осложнениями, низкой иммуногенностью, что затрудняет их использование при разработке вакцинных препаратов.
Для устранения указанных недостатков используют перемежающиеся пассажи вируса в первичных и перевиваемых культурах клеток, методы селекции, основанные на иммуносорбции и отборе термочувствительных клонов и др. Полученные штаммы Катанга-350, ЛС-72, Кимаки-155 и др. характеризовались умеренной реактогенностью и виремией и защищали 60-70% иммунизированных животных на 21 сутки после контрольного заражения (КЗ) гомологичным вирулентным вирусом (3).
Наиболее близким аналогом предполагаемого изобретения является селекционированный во ВНИИВВиМ штамм КК-202, используемый для получения вируссодержащего сырья, который типируется в РЗГАд специфической референс-сывороткой 2-го иммуносеротпа, а по результатам генотипирования отнесен ко 2 генотипу.
Получение вируссодержащего сырья в стационарном монослое первичной культуры клеток KMC. С этой целью культуру клеток, выращенную в матрасах вместимостью 1,0 или 1,5 дм3, заражают штаммом КК-202 в дозе 0,01-0,001 ГАЕ50/клетку. В качестве ростовой среды при выращивании вируса применяют среду 0,1% ГЛА или Игла MEM с 8,0-10,0% сыворотки крови свиней. Культивирование вируса проводят в течение 5-7 сут при температуре (37,0±0,5)°С. Титр вируса в вируссодержащем сырье составляет не менее 6,5-7,0 lg ГАЕ50/см3.
Этот штамм обладает высокой реактогенностью, низкой иммуногенностью и наличием осложнений (угнетение, высокая температурная реакция и виремия, кровоизлияния в паренхиматозных органах и др.) у привитых животных, а также невозможностью использования роллерной технологии при получении вируссодержащего сырья, как более технологичной.
В перевиваемых линиях клеток почки и тестикул поросенка (ПП-66б, ППК, РК-15, ПТП) вирус не размножается.
Штамм КК-262/С 2-го серотипа вируса АЧС получен путем адаптации к культуре клеток ППК-66б штамма КК-202 в течение 50 пассажей и последующей селекции вируса методом предельных разведений в этой культуре клеток и культуре клеток KMC.
Штамм КК-262/С 2-го серотипа депонирован в коллекции штаммов микроорганизмов ГНУ ВНИИВВиМ, инв. №1831.
Аттенуированный штамм КК-262/С вируса АЧС обладает следующими свойствами.
Культуральные свойства. Размножается в перевиваемой культуре клеток ППК-66б, выращенной стационарным (матрасы) или роллерным способом (роллерные бутыли) с характерными для вируса АЧС цитоплазматическими изменениями с последующей деструкцией монослоя. При этом он сохраняет способность размножаться в культуре клеток KMC и ЛС, вызывая в них выраженную гемадсорбцию и последующий лизис клеток, что дает возможность использовать эти культуры клеток для определения инфекционной активности вируса. Титр вируса, выращенного в культуре клеток ППК-66б при стационарном и роллерном способах культивирования, достигает 7,0-7,5 lg ГАЕ50/см3.
Антигенные свойства. При внутримышечном введении свиньям штамм вызывает образование комплемент связывающих, преципитирующих и ЗГАд-антител.
Безвредность. Безвреден для свиней при внутримышечном введении в максимальной (107,0-107,5ГАЕ50) дозе. Для лабораторных животных (кроликов, морских свинок, мышей) является не патогенным.
Контагиозность и реверсибельность. Вирус не передается при совместном содержании от привитых интактным свиньям.
Не восстанавливает вирулентные свойства после пяти последовательных внутримышечных пассажей на свиньях.
Реактогенность. Слабореактогенен для свиней при внутримышечном введении. У отдельных свиней, привитых в дозе 106,0-107,5 ГАЕ50, может вызывать в течение 3-5 суток повышение температуры тела до 40,6-40,9°С.
Иммуногенные свойства. После внутримышечного введения в дозе 106,0-107,5 ГАЕ50 вызывает защиту свиней против гомологичного вирулентного референс-штамма К-49 на 21 сутки после прививки в течение не менее 4-х месяцев.
Основные биологические свойства штаммов КК-262/С и КК-202 вируса АЧС приведены в табл.1
Как видно из таблицы, аттенуированный штамм КК-262/С вируса АЧС превосходит по основным биологическим показателям штамм КК-202 этого серотипа.
Контаминация бактериями, грибами, микоплазмами и посторонними вирусами. Вирус не контаминирован бактериями, грибами, микоплазмами и другими микроорганизмами.
Стабильность генетических и иммунобиологических признаков. Основные биологические свойства штамма стабильно сохраняются на протяжении 20 пассажей культивирования в культуре клеток ППК-66б и KMC (срок наблюдения).
Способ, срок хранения, периодичность пассажей. Штамм КК-262/С хранят в лиофилизированном состоянии при температуре не выше минус 40°С и «освежают» пассированием в культурах клеток ППК-66б или KMC один раз в 10 лет.
Для подтверждения преимущества настоящего изобретения приведены примеры конкретного его исполнения.
Пример 1. Адаптация вируса АЧС к перевиваемой культуре клеток ППК-66б
Адаптацию вируса к культуре клеток проводили путем инокуляции ее аттенуированным штаммом КК-202, выращенным в первичной культуре клеток KMC (первый пассаж), а в последующих пассажах материалом предыдущего. Инфицированную культуру клеток, выращенную в матрасах, инкубировали при (37,0±0,5)°С в течение 6-9 суток. О размножении вируса в клетках судили по проявлению цитопатического действия. На уровне 6-8-х пассажей специфическую дегенерацию у инфицированных клеток (30,0-40,0) % отмечали на 4-5 сутки, титр вируса на 8-9 сутки выращивания составлял 5,5-6,0 lg ТЦД50/см3. Репродукция вируса в последующих пассажах характеризовалась специфическими дегенеративными изменениями, появление которых отмечали на 3-4 сутки, и накопление вируса на 6-7 сутки составило 7,0-7,5 lg ТЦД50/см3.
Пример 2. Культивирование штамма КК-262/С вируса АЧС в перевиваемой культуре клеток ППК-66б роллерным способом
В результате выполненных исследований были отработаны оптимальные параметры роллерного способа культивирования штамма, которыми являлись:
- множественность заражения 0,1-0,01 ГАЕ50/кл;
- содержание сыворотки крови свиней в среде 0,1 ГЛА или Игла-МЕМ 8-10,0%;
- скорость вращения роллерных бутылей 12-16 об/ч;
- рН среды 7,2-7,4;
- длительность культивирования 6-7 суток;
- температурный режим (37,0±0,5)°С;
- объем заполнения роллерных трехлитровых бутылей 0,3-0,5 дм3.
Данные режимы культивирования позволяли получать вируссодержащий материал с активностью 7,0-7,5 lg ГАЕ50/см3. Результаты наработки вирусного сырья 3 опытных серий на основе штамма КК-262/С вируса АЧС представлены в табл.2.
Как видно из табл.2, активность 3-х серий вируссодержащего сырья, полученного роллерным способом в культуре клеток ППК-66б, составляла 7,0-7,5 lg ГАЕ50/см3.
Пример 3. Проверка реверсибельности штамма КК-262/С вируса АЧС
С этой целью проводили 5 пассажей штамма КК-262/С вируса АЧС на восприимчивых животных. При проведении первого пассажа культуральный вирус вводили подсвинку 3-месячного возраста в дозе 7,25 lg ГАЕ50 внутримышечно в средней трети шеи. На 6-е сутки подсвинка убивали, у него отбирали бронхиальные и предлопаточные лимфоузлы, из которых готовили 10,0% суспензию на физиологическом растворе. Полученный материал дважды промораживали при минус 40,0°C и после осветления (1500 об/мин в течение 15 минут) вводили внутримышечно следующему животному в объеме 1,0 см3 (второй пассаж). Аналогично проводили последующие пассажи.
У опытных животных отсутствовала клиническая реакция на прививку, а также реакция на месте введения вируса. Подсвинок 5-го пассажа не заболел АЧС в течение 21 суток после введения материала (срок наблюдения). Это указывало на то, что штамм КК-262/С вируса АЧС не реверсибелен.
Пример 4. Проверка иммунобиологических свойств штамма
Безвредность штамма изучали на 3-х подсвинках 3-4 месячного возраста. Штамм вводили внутримышечно в области средней трети шеи. Двух подсвинков прививали вирусом в дозе 7,5 lg ГАЕ50, а одного - в дозе 7,0 lg ГАЕ50. В течение 15 суток иммунизированные подсвинки оставались клинически здоровыми. У привитых животных на 7-9 сутки отмечали повышение температуры тела до 40,6-40,7°C в течение 2-3 суток.
Иммуногенность штамма определяли по результатам контрольного заражения привитых животных гомологичным вирулентным штаммом К-49 в дозе 1000 ГАЕ(LD)50/см3.
С этой целью по 2 подсвинка 3-4-х месячного возраста прививали вирусом в дозе 7,0 и 6,0 ГАЕ50 соответственно. У привитых животных отмечали повышение температуры до 40.7°C в течение 3 суток.
Через 21 сутки после введения вируса всех привитых животных и одного контрольного заражали гомологичным вирулентным вирусом. Одновременно с этими животными заражали свиней, используемых в опыте по определению безвредности (табл.3).
Контрольный подсвинок погиб на 9-е сутки после заражения с признаками АЧС (температура тела до 41.8°C, синюшность кожных покровов, угнетение, анорексия, диарея, гиперплазия лимфоузлов, увеличение и полнокровие селезенки и др.), тогда как привитые животные оставались клинически здоровыми в течение всего периода наблюдения.
Полученные данные показывают, что адаптированный к перевиваемой культуре клеток ППК-66б штамм КК-262/С создает через 21 сутки у животных, привитых в дозе 6,0-7,0 lg ГАЕ50, защиту против вирулентного вируса АЧС. Штамм слабореактогенен, не реверсибелен и безвреден для свиней.
Источники информации
1. В.А.Сергеев. Вирусные вакцины. 1993 г.
2. В.М.Балышев. Иммунобологические и молекулярно-генетические свойства изолятов вируса африканской чумы свиней, выделенных в Российской Федерации. / В.М.Балышев, Ю.Ф.Калантаенко, А.Н.Жуков, С.Ж.Цыбанов, И.М. Калабеков / Ориентированные фундаментальные исследования и их реализация в агропромышленном комплексе России: материалы Всероссийской научной конференции. - М., 2010. - С.94-98.
3. Черятников Л.Л. Получение аттенуированных вариантов из различных изолятов вируса АЧС и их сравнительная оценка. / Л.Л.Черятников, Ю.И.Петров, Н.И.Митин / Вопросы ветеринарной вирусологии, микробиологии и эпизоотологии 1992. - Ч.1. - С.56.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Аттенуированный штамм "СКА-2015 ВНИИВВиМ" вируса африканской чумы свиней VIII серотипа для вирусологических и молекулярно-генетических исследований | 2016 |
|
RU2607791C1 |
ШТАММ ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ 8-ГО СЕРОТИПА, АДАПТИРОВАННЫЙ К ПЕРЕВИВАЕМОЙ КУЛЬТУРЕ КЛЕТОК COS-1 | 2014 |
|
RU2575079C1 |
Аттенуированный штамм "ASFV/CV60/2020" вируса африканской чумы свиней семейства Asfarviridae, рода Asfivirus для изучения иммунологических реакций, молекулярно-генетического анализа, генетической модификации и создания прототипа вакцины против АЧС | 2021 |
|
RU2760399C1 |
Штамм "АЧС/ВНИИЗЖ/ CV-1" вируса африканской чумы свиней, со сниженной вирулентностью для свиней, для вирусологических, диагностических, молекулярно-генетических и мониторинговых исследований | 2018 |
|
RU2675535C1 |
ШТАММ "КАЛУГА-2014" ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ ДЛЯ МОНИТОРИНГОВЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИЗУЧЕНИЯ ПАТОГЕНЕЗА БОЛЕЗНИ | 2015 |
|
RU2577997C1 |
ШТАММ "СТАВРОПОЛЬ 01/08" ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ ДЛЯ ВИРУСОЛОГИЧЕСКИХ, МОЛЕКУЛЯРНО-ГЕНЕТИЧЕСКИХ И МОНИТОРИНГОВЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ | 2010 |
|
RU2439152C1 |
ШТАММ "АС-21/07" ВИРУСА АУЕСКИ ДЛЯ ИЗГОТОВЛЕНИЯ ВАКЦИННЫХ И ДИАГНОСТИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ | 2010 |
|
RU2439150C1 |
ШТАММ ВИРУСА PESTIS SUUM, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ КОНТРОЛЯ ИММУНОГЕННОЙ И АНТИГЕННОЙ АКТИВНОСТИ ВАКЦИН И ИЗГОТОВЛЕНИЯ БИОПРЕПАРАТОВ ДЛЯ СПЕЦИФИЧЕСКОЙ ПРОФИЛАКТИКИ И ДИАГНОСТИКИ КЛАССИЧЕСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ | 2002 |
|
RU2237713C2 |
РЕКОМБИНАЦИОННАЯ КАССЕТА, СОДЕРЖАЩАЯ ГЕНЫ EP153R И EP402R ШТАММА Ф-32 ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ И РЕКОМБИНАНТНЫЙ ШТАММ DswCongo/FranceLectinCD2 ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ | 2014 |
|
RU2571858C1 |
АТТЕНУИРОВАННЫЙ ШТАММ ВИРУСА ОСПЫ КОЗ | 2006 |
|
RU2325437C1 |
Изобретение относится к области вирусологии и касается аттенуированного штамма вируса африканской чумы свиней (АЧС) 2-го серотипа. Штамм получен путем адаптации к культуре клеток ПИК-66б в течение 50 пассажей и последующей селекции вируса методом предельных разведений в этой культуре и клетках КМС и депонирован в коллекции штаммов микроорганизмов ГНУ ВНИИВВиМ под номером 183. Представленный штамм может быть использован в научно-исследовательских и диагностических центрах при проведении эпизоотологического мониторинга, вирусологических, молекулярно-генетических исследованиях и разработке диагностических и вакцинных препаратов при АЧС. 3 табл., 3 пр.
Аттенуированный штамм вируса африканской чумы свиней 2-го серотипа, семейство Asfarviridae, род Asfivirus, депонированный в Коллекции микроорганизмов ГНУ Всероссийского научно-исследовательского института ветеринарной вирусологии и микробиологии РАСХН, №1831 для разработки диагностических и вакцинных препаратов.
СПОСОБ ИНДИКАЦИИ И ДИФФЕРЕНЦИАЦИИ ВАКЦИННЫХ ШТАММОВ И ПОЛЕВЫХ ИЗОЛЯТОВ ВИРУСА КЛАССИЧЕСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ | 2001 |
|
RU2196992C2 |
СПОСОБ ДИФФЕРЕНЦИАЦИИ И ИДЕНТИФИКАЦИИ ИЗОЛЯТОВ И ШТАММОВ ВИРУСА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ | 1996 |
|
RU2121002C1 |
LINDA K.DIXON et al | |||
Genetic Diversity of African Swine Fever Virus Isolates from Soft Ticks (Omithodoros moubata) Inhabiting Warthog Burrows in Zambia, J.Gen | |||
ViroL, 1988, v.69, p.2981-2993. |
Авторы
Даты
2012-06-10—Публикация
2010-11-16—Подача