Изобретение относится к области сельского хозяйства и может быть использовано при хранении здорового семенного материала картофеля в коллекции in vitro.
Известен способ хранения материала при низких плюсовых температурах (+8…10°С), согласно которому ингибируется рост и развитие растений, задерживается формирование морфологических структур, что позволяет осуществить повторное черенкование микрорастений с периодичностью 8-12 месяцев /1/.
К недостаткам известного способа хранения in vitro материала относятся высокие материальные затраты на круглогодичное обеспечение фито- и температурного режима, обеспечивающих сохранность здорового исходного материала в виде микрорастений. Немаловажным фактором также является хранение ограниченного количества эксплантов (не более 10-и по каждой линии), что сдерживает процесс подготовки и сертификации in vitro материала при необходимости тиражирования сорта для дальнейшего использования в процессе оригинального семеноводства.
Известен способ хранения in vitro материала с применением криоконсервации. При температуре жидкого азота клеточное деление прекращается и останавливается метаболизм растения. В таких условиях растительный материал может быть сохранен без изменений на протяжении долгого периода времени 121.
К недостаткам известного способа хранения относится его исключительное использование с целью долгосрочного хранения генетических ресурсов. Хранение с учетом системного применения биоматериала для поддержании активной коллекции и ускоренного клонального микроразмножения не целесообразно.
Задачей, на решение которой направлено изобретение, является консервация микрочеренков сортов картофеля с целью сохранения качественных характеристик in vitro материала для практичности их использования в реализации семеноводческих программ и тиражирования до необходимых объемов.
Технический результат достигается тем, что консервация микрочеренков картофеля в биокапсулах позволяет увеличить срок беспересадочного хранения биоматериала в активной коллекции in vitro и сохраняет возможность поддержания большого количества посадочных единиц, которые при необходимости могут быть использованы в программе клонального размножения и доведения до необходимых объемов микрорастений.
Для приготовления биокапсул используют стерильные лабораторные инструменты и посуду, автоклавированные составы питательных сред и дистиллированную воду. Маточные и питательные среды готовят на магнитных мешалках с обогревом.
Способ консервации оздоровленного in vitro материала картофеля характеризующийся тем, что предварительно готовят в дистиллированной воде маточные растворы (таб. 1) макросолей, содержащие 11,5 г/л NH4H2PO4, 40,4 г/л KNO3, 24,6 г/л MgSO4⋅7H2O; маточный раствор смеси микросолей, содержащий в 1 л дистиллированной воды 8,4 г MnSO4⋅H2O, 2,9 г ZnSO4⋅7H2O, 0,3 г CuSO4⋅5H2O, 6,2 г Н3 ВО3, 0,3 г Na2Mo4-2H2O, 0,03 г CoCl2⋅6H2O; маточный раствор витаминов, содержащий 0,8 г/л Ki, 10,0 г/л меоинозита, 1,0 г/л тиамина, 0,5 г/л никотиновой кислоты, 0,5 г/л пиридоксина; маточный раствор хелата железа, содержащий на 100 мл 557,0 мг FeSO4⋅7H2O и 745,0 мг трилон Б, затем для получения питательной среды 1 (таб. 2) маточные растворы смешивают в 100 мл рабочего раствора в количествах 2,0 мл NH4H2PO4, 3,0 мл KNO3, 3,0 мл MgSO4⋅7H2O 0,1 мл маточного раствора смеси микросолей, маточные растворы витаминов в количествах 1,0 мл меоинозита, по 0,1 мл Ki, тиамина, никотиновой кислоты, пиридоксина, маточный раствор хелата железа в количестве 5,0 мл; добавляют 2,0 г сахарозы и 3,0 г альгината натрия до получения однородной массы; затем готовят питательную среду 2 (таб. 3), смешивая маточные растворы макросолей в 200 мл рабочего раствора в количествах 4,0 мл NH4H2PO4, 3,0 мл KNO3, 3,0 мл MgSO4⋅7H2O, 0,2 мл маточного раствора микросолей, аналогичного раствору, используемому в приготовлении питательной среды 1, маточные растворы витаминов в количествах 2,0 мл меоинозита, по 0,2 мл Ki, тиамина, никотиновой кислоты, пиридоксина, маточный раствор хелата железа в количестве 1,0 мл; 3,0 г CaCl2⋅2H2O; добавляют 4,0 г сахарозы; питательные среды 1 и 2 автоклавируют при температуре 120-121°С в течении 20 мин, в работе их используют в холодном виде, при этом маточные и питательные среды хранят не более 6 месяцев при температуре 4°С; затем из микрорастений выделяют сегменты с пазушными почками не более 0,5 см и помещают в питательную среду 1 не более, чем на 10 мин, затем перемещают в питательную среду 2 на 15 мин, образовавшиеся капсулы пропускают через сито, промывают дистиллированной водой, размещают в стерильные чашки Петри, плотно закрывают парафильмом и хранят при 3-4°С и освещении 1-2 тыс.люкс.
Заключение биоматериала в оболочку из хлорида кальция способствует защите инкапсулируемого объекта от негативного воздействия окружающей среды и сохраняет его жизнеспособность к регенерации в течение определенного периода времени. Для таких целей целесообразно использовать специализированные инкубаторы, где поддерживается температурный и световой режим. Жизнеспособность инкапсулированных микрочеренков в такие условия сохраняется до двух лет. Альтернативным способом хранения могут оказаться бытовые холодильники, однако в отсутствие освещения период консервации не превышает одного года.
Для использования биокапсул в целях клонального микроразмножения необходимое количество чашек Петри перемещают в асептических условиях ламинар-бокса, где с соблюдением стерильности открывают и поочередно размещают биокапсулы в пробирки с питательной средой. После культивирования биокапсул на новую питательную среду пробирки
размещают в условиях фитотрона при 16-часовом (шестнадцати часовом) фотопериоде и 23-25°С. Регенерация микрорастений из биокапсул зависит от длительности периода хранения и сортовых особенностей законсервированных эксплантов.
Согласно требованиям действующего отраслевого стандарта /3/ от момента получения линии in vitro и до ее использования для высадки на субстрактах допускается проведение не более 10 (десяти) черенкований. При известном способе поддержание генетического материала в культуре in vitro в виде растущих микрорастений с периодичным депонированием и соблюдением требований отраслевого стандарта возможно использование биоматериала в семеноводческих программах не более двух лет. Внедрение метода биоинкапсуляции микрочеренков позволит сохранять сорта и использовать линии in vitro на семенные цели до 7-8 лет, увеличивая потенциал их сохранения и применения в 3-4 раза, соответственно.
Практическое применение нового метода хранения активной коллекции в виде биокапсул позволяет:
- уменьшить ежегодный объем проводимых работ в культуре ткани;
- минимизировать затраты на поддержание in vitro материала в виде растущих микрорастений;
- сократить периодичность черенкований и увеличить период использования линий in vitro материала;
- исключить снижение качественных характеристик при систематическом черенковании биоматериала;
- обеспечить сохранность здорового состояния исходного материала.
Разработанный способ хранения сортов картофеля в культуре in vitro в виде биокапсул относится к категории краткосрочного хранения и позволяет систематически включать нужные сорта в процесс клонального микроразмножения и тиражировать их до необходимых объемов.
Предложенный способ прост в исполнении, не требует дополнительных материальных вложений, сокращает затраты на поддержание коллекции in vitro и позволяет сохранить качество исходного оздоровленного материала картофеля.
Способ консервации оздоровленного in vitro материала картофеля
Источники информации
1. Westcott, R. J., 1981. Tissue-culture storage of potato germplasm. Minimal growth storage. Potato Research, 24 (3): 331-342.
2. Mix G., 1984. Long-term storage in vitro of potato gene material. Plant Research and Development. 19: 122-127.
3. Отраслевой стандарт OCT 10 004-93 «Картофель семенной оздоровленный исходный материал. Выращивание в условиях in vitro».
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
СПОСОБ МИКРОКЛОНАЛЬНОГО РАЗМНОЖЕНИЯ КАРТОФЕЛЯ IN VITRO СОРТА ХОЗЯЮШКА | 2022 |
|
RU2789460C1 |
Способ микроклонального размножения картофеля | 2018 |
|
RU2702765C2 |
Способ микроклонального размножения in vitro микрорастений картофеля сорта СОЛНЕЧНЫЙ | 2023 |
|
RU2814473C1 |
ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ КАЛЛУСНОЙ КУЛЬТУРЫ БОЛИГОЛОВА ПЯТНИСТОГО (Conium maculatum L) | 2015 |
|
RU2596402C1 |
ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ УКОРЕНЕНИЯ ПОБЕГОВ ВИНОГРАДА В КУЛЬТУРЕ IN VITRO | 2017 |
|
RU2676127C2 |
Оптимизированная питательная среда для укоренения побегов винограда в культуре in vitro, сорт "Надежда АЗОС" | 2020 |
|
RU2746067C1 |
Оптимизированная питательная среда для укоренения побегов винограда в культуре in vitro, сорт "Августин" | 2020 |
|
RU2751114C1 |
ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ КЛЕТОЧНОЙ КУЛЬТУРЫ Atragene speciosa Weinm | 2009 |
|
RU2422515C1 |
Способ получения каллусной культуры борца бородатого (Aconitum barbatum Patr. ex Pers.) | 2016 |
|
RU2631927C1 |
Способ получения микрорастений подвоя косточковых культур (ПК СК 1) | 2021 |
|
RU2779139C1 |
Изобретение относится к сельскому хозяйству и биотехнологии. Осуществляют консервацию микрочеренков картофеля в биокапсулах, которая заключается в использование пазушных почек микрорастений размером не более 0,5 см и двух составов питательных сред. В питательной среде 1 подобран минеральный и витаминный состав, обеспечивающий жизнедеятельность экспланта. Состав питательной среды 2 образует оболочку, способствующую защите инкапсулируемого объекта от негативного воздействия окружающей среды и обеспечивающую его сохранность в течение 1,5-2 лет. Биокапсулы хранят в условиях климатической камеры при температуре 3-4°С и освещении 1-2 тыс. люкс. Изобретение позволяет увеличить срок беспересадочного хранения материала в in vitro коллекции и сохраняет возможность поддержания большого количества посадочных единиц. 5 ил., 3 табл.
Способ консервации оздоровленного in vitro материала картофеля, характеризующийся тем, что предварительно готовят в дистиллированной воде маточные растворы макросолей, содержащие 11,5 г/л NH4H2PO4, 40,4 г/л KNO3, 24,6 г/л MgSO4⋅7H2O; маточный раствор смеси микросолей, содержащий в 1 л дистиллированной воды 8,4 г MnSO4⋅H2O, 2,9 г ZnSO4⋅7H2O, 0,3 г CuSO4⋅5H2O, 6,2 г Н3ВО3, 0,3 г Na2Mo4⋅2H2O, 0,03 г CoCl2⋅6H2O; маточный раствор витаминов, содержащий 0,8 г/л Ki, 10,0 г/л меоинозита, 1,0 г/л тиамина, 0,5 г/л никотиновой кислоты, 0,5 г/л пиридоксина; маточный раствор хелата железа, содержащий на 100 мл 557,0 мг FeSO4⋅7H2O и 745,0 мг трилон Б, затем для получения питательной среды 1 маточные растворы смешивают в 100 мл рабочего раствора в количествах 2,0 мл NH4H2PO4, 3,0 мл KNO3, 3,0 мл MgSO4⋅7H2O, 0,1 мл маточного раствора смеси микросолей, маточные растворы витаминов в количествах 1,0 мл меоинозита, по 0,1 мл Ki, тиамина, никотиновой кислоты, пиридоксина, маточный раствор хелата железа в количестве 5,0 мл; добавляют 2,0 г сахарозы и 3,0 г альгината натрия до получения однородной массы; затем готовят питательную среду 2, смешивая маточные растворы макросолей в 200 мл рабочего раствора в количествах 4,0 мл NH4H2PO4, 3,0 мл KNO3, 3,0 мл MgSO4⋅7H2O, 0,2 мл маточного раствора микросолей, аналогичного раствору, используемому в приготовлении питательной среды 1, маточные растворы витаминов в количествах 2,0 мл меоинозита, по 0,2 мл Ki, тиамина, никотиновой кислоты, пиридоксина, маточный раствор хелата железа в количестве 1,0 мл; 3,0 г CaCl2⋅2H2O; добавляют 4,0 г сахарозы; питательные среды 1 и 2 автоклавируют при температуре 120-121°С в течение 20 мин, в работе их используют в холодном виде, при этом маточные и питательные среды хранят не более 6 месяцев при температуре 4°С; затем из микрорастений выделяют сегменты с пазушными почками не более 0,5 см и помещают в питательную среду 1 не более чем на 10 мин, затем перемещают в питательную среду 2 на 15 мин, образовавшиеся капсулы пропускают через сито, промывают дистиллированной водой, размещают в стерильные чашки Петри, плотно закрывают парафильмом и хранят при 3-4°С и освещении 1-2 тыс. люкс.
СПОСОБ ДЛИТЕЛЬНОГО ХРАНЕНИЯ IN VITRO РАСТЕНИЙ ОСИНЫ | 2012 |
|
RU2522823C2 |
СПОСОБ ДЛИТЕЛЬНОГО СОХРАНЕНИЯ IN VITRO РАСТЕНИЙ ВИНОГРАДА | 1995 |
|
RU2110172C1 |
СПОСОБ ДЛИТЕЛЬНОГО ХРАНЕНИЯ IN VITRO МИКРОРАСТЕНИЙ БЕРЕЗЫ | 2016 |
|
RU2634409C1 |
Авторы
Даты
2020-07-30—Публикация
2019-05-17—Подача