Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии и биотехнологии, может быть использовано для разработки и изготовления средств диагностики специфической профилактики ящура генотипа О/МЕ-SA/Ind-2001е и контроля антигенной и иммуногенной активности противоящурных вакцин.
К особо опасным, высококонтагиозным, вирусным болезням животных в соответствии с Руководством МЭБ (OIE) относится ящур (Food-and-Mouth Disease), который приносит непоправимый экономический ущерб в связи с затратами на ликвидацию болезни и введением строгих ограничений, налагаемых на внутреннюю и международную торговлю продукцией животноводства [1].
Возбудителем является безоболочечный вирус рода Aphthovirus семейства Picornaviridae. Выделяют 7 различных серотипов вируса ящура: О, А, Азия-1, С и SAT-1, SAT-2, SAT-3, причем самым распространенным является тип О [2]. Геном вируса ящура представлен одноцепочечной молекулой РНК (ssRNA(+)) положительной полярности с длиной около 8400-8500 н.о., кодирует 4 структурных белка: VP1, VP2, VP3, VP4 и множество неструктурных протеинов [2].
Явление мутационной изменчивости вируса в пределах одного генотипа приводит к возникновению новых изолятов, которые отличаются по степени вирулентности и иммуногенности от ранее выделенных штаммов вируса ящура. Каждый серотип генетически разделен на различные топотипы, генетические линии и сублинии (для некоторых штаммов ограничиваются только топотипом, поскольку для них более глубокого разделения не существует на сегодняшний день). Различия между ними определяют при анализе нуклеотидной последовательности 1D-гена (белок VP1), который характеризуется высокой геномной и антигенной вариабельностью [1, 2, 3].
Протеин VP1 вируса ящура является наиболее вариабельным, поскольку на него приходится около 90% мутаций всех структурных генов. Самыми вариабельными областями являются участки 40-60, 130-160 и 190-213 а.о. [3, 4]. Участок поверхностного белка VP1 в регионе 130-160 а.о. отличается высокой изменчивостью, поскольку участвует в распознавании рецепторов клетки-хозяина [4, 5]. Серотипы вируса ящура в среднем на 86% имеют идентичные последовательности, хотя VP1 значительно более вариабелен. Нуклеотидные последовательности кодирующей области VP1 используются для генетической характеристики штаммов ящура из-за их значимости для прикрепления и проникновения вируса в клетку, защитного иммунитета и специфичности серотипа. Филогенетический анализ на основе нуклеотидной последовательности 1D-гена (белок VP1) широко используется для вывода эволюционной динамики, эпидемиологических отношений между генетическими линиями и для отслеживания происхождения и перемещения штаммов вируса ящура [5].
В РНК-содержащих вирусах, в частности, для вируса ящура вариациям в геноме благоприятствуют высокие частоты мутаций во время процесса репликации вируса, а возникающие топотипы, генетические линии и сублинии обусловлены мутациями и явлением рекомбинации. Рекомбинация представляет собой обмен генетическим материалом между двумя несегментированными РНК-геномами и может происходить между вирусами одного и того же серотипа [5]. Данное явление в нуклеиновой кислоте вируса ящура происходит легче в 3'-части генома, чем в участках, кодирующих структурные вирусные белки. Мутации в результате рекомбинации могут привести к обмену генетическим материалом и образованию новых антигенных вариантов, которые зачастую приводят к изменениям тропизма клеток [4, 5].
Антигенные вариации возникают из-за аминокислотных мутаций, которые изменяют распознавание вирусных белков иммунной системой организма. Поверхностно открытые структуры вируса особенно подвержены иммунной атаке. Процесс появления новых антигенных форм определяется сложным взаимодействием поверхностных вирусных белков и факторов клеток-хозяев [5, 6].
Репрезентативные штаммы/изоляты для каждого топотипа вируса ящура могут образовывать основные опорные точки филогенетического дерева. В базе данных GenBank представлены нуклеотидные последовательности для различных топотипов, генетических линий и сублиний.
Серотип О вируса ящура является наиболее изученным и распространенным во всем мире. Данный серотип разделен на 11 топотипов: EAST AFRICA 1-4 (Восточная Африка) (ЕА-1-4), SOUTHEAST ASIA (Юго-Восточная Азия) (SEA), EUROPE-SOUTH AMERICA (Европа-Южная Америка) (EURO-SA), INDONESIA-1 и 2 (Индонезия-1 и 2) (ISA-1 and -2), CATHAY (Китай), MIDDLE EAST-SOUTH ASIA (ME-SA) (Ближний Восток-Южная Азия) и WEST AFRICA (Западная Африка) (WA). Такое высокое генетическое и антигенное разнообразие приводит к проблемам в специфической профилактике ящура при применении культуральных инактивированных противоящурных вакцин, а также затрудняет штаммоспецифическую диагностику выделенных изолятов вируса ящура. В результате возникает необходимость создания новых средств диагностики и специфической иммунопрофилактики в отношении вируса ящура серотипа О и в частности нового генотипа O/ME-SA/Ind-2001e, представители которого стали распространяться на территории Восточной Африки и за ее пределами.
На территории Юго-Восточной, Южной, Восточной Азии вспышки ящура генотипа O/ME-SA/Ind-2001e имеют спорадический характер. Следует отметить, что в последние годы усилились торгово-экономические связи со странами этого региона, в частности, Монголии, Китая, Индии и др. Имеются риски заноса изолятов данного генотипа на территорию Российской Федерации.
Анализируя вспышки, которые регистрировались на территории Югов-Восточной и Восточной Азии, обнаружено, что в Монголии были выявлены изоляты вируса ящура, которые принадлежат к генотипу O/ME-SA/Ind-2001d, в частности, в 2018 г. Начиная с августа 2018 г. в Монголии стали регистрировать возникновение вспышек, вызванных вирусом ящура генотипа O/ME-SA/Ind-2001е. Данный генотип значительно отличается от своего предшественника и, соответственно, вакцина против ящура генотипа О/МЕ-SA/Ind-2001d не обеспечивает полной защиты от генотипа O/ME-SA/Ind-2001e. В Российской Федерации на границах с Монголией с марта 2019 г. стали фиксировать вспышки ящура нового генотипа, что является угрожающим фактором в отношении распространения возбудителя ящура на территории нашей страны и требует исследования штаммов данного генотипа для создания средств диагностики и специфической профилактики ящура генотипа O/ME-SA/Ind-2001е.
Известны производственные штаммы вируса ящура серотипа О, которые применяются для производства средств специфической профилактики ящура:
- штамм «О/Тайвань/1997» (генотип O/CATHAY/CAM 94),
- штамм «О/Приморский/2014» (генотип O/SEA/Mya-98),
- штамм «О/Приморский/2012» (генотип O/ME-SA/PanAsia),
- штамм «О/Саудовская Аравия/2008» (генотип O/ME-SA/PanAsia2),
- штамм «О/Забайкальский/2016» (генотип O/ME-SA/Ind-2001d).
Изолят «O/Orenburg/RUS/2021» вируса ящура был выделен из патологического материала от крупного рогатого скота на территории поселка Карагач Беляевского района Оренбургской области РФ в 2021 году. При проведении научных исследований в ФГБУ «ВНИИЗЖ» был охарактеризован и получил название - штамм «О №2620/Оренбургский/2021».
По результатам сравнительного анализа нуклеотидных последовательностей выделенный штамм принадлежит к генотипу O/ME-SA/Ind-2001е вируса ящура, который значительно отличается от производственных штаммов вируса ящура серотипа О.
Настоящее изобретение позволяет расширить арсенал производственных штаммов вируса ящура серотипа О, обладающих высокой инфекционной, антигенной и иммуногенной активностью в нативном виде, пригодный для контроля антигенной и иммуногенной активности вакцин, изготовления чувствительных и высокоспецифичных диагностических тест-систем и высоко иммуногенных вакцинных препаратов путем получения штамма «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура генотипа O/ME-SA/Ind-2001е.
Штамм вируса ящура «О №2620/Оренбургский/2021» депонирован во Всероссийской государственной коллекции экзотических типов вирусов ящура и других патогенов животных (ГКШМ) ФГБУ «ВНИИЗЖ», под регистрационным номером: №417-деп/22-51 - ГКШМ ФГБУ «ВНИИЗЖ».
Экспериментально подтверждена возможность использования штамма «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура для изготовления средств диагностики и профилактики ящура генотипа O/ME-SA/Ind-2001e.
Сущность изобретения отражена на графическом изображении:
Фиг. 1. - Дендрограмма, отражающая филогенетическое взаимоотношение штамма «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура с эпизоотическими штаммами серологического типа О. Дендрограмма основана на сравнении полных нуклеотидных последовательностей гена VP1. Штамм обозначен по латыни в виде записи «O2620/Orenburg/2021».
Сущность изобретения пояснена следующими перечнями последовательностей:
SEQ ID NO: 1 представляет последовательность нуклеотидов гена белка VP1 штамма «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура генотипа О/МЕ-SA/Ind-2001e;
SEQ ID NO: 2 представляет последовательность аминокислот гена белка VP1 штамма «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура генотипа О/МЕ-SA/Ind-2001e.
Штамм «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура характеризуется следующими признаками и свойствами.
Морфологические признаки
Штамм «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура серотипа О относится к отряду Picornavirales, семейству Picornaviridae, роду Aphthovirus, виду Foot-and-Mouth Disease virus и обладает морфологическими признаками, характерными для возбудителя ящура: форма вириона иксаэдрическая, размер 23-25 нм. Вирион состоит из молекулы одноцепочечной положительно заряженной молекулы РНК и 60 копий полипептида, каждый из которых представлен белками VP4, VP2, VP3, VP1.
Антигенные свойства
По антигенным свойствам штамм «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура относится к серотипу О. Вирус стабильно нейтрализуется гомологичной антисывороткой. Вирус не проявляет гемагглютинирующей активности. У переболевших животных в сыворотке крови образуются типоспецифические антитела, выявляемые в иммуноферментном анализе и реакции микронейтрализации (РМН).
Методом нуклеотидного секвенирования была определена первичная структура 1D-гена белка VP1 штамма «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура. Сравнительный анализ нуклеотидных последовательностей показал, что штамм «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура принадлежит к генотипу O/ME-SA/Ind-2001e (Фиг. 1).
Антигенное родство (r1) штамма «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура изучено в РМН, в перекрестном исследовании штамма со специфическими сыворотками, полученными на следующие производственные штаммы вируса ящура:
- штамм «О/Тайвань/1997» (генотип O/CATHAY/CAM 94),
- штамм «О/Приморский/2014» (генотип O/SEA/Mya-98),
- штамм «О/Приморский/2012» (генотип O/ME-SA/PanAsia),
- штамм «О/Саудовская Аравия/2008» (генотип O/ME-SA/PanAsia2),
- штамм «О/Забайкальский/2016» (генотип O/ME-SA/Ind-2001d).
Титр референтных сывороток крови КРС, полученных путем иммунизации животных моновалентными вакцинами из производственных штаммов вируса ящура серотипа О, против 102 ТЦД50 гомологичного и гетерологичного вируса определяли в РМН при перекрестном титровании, рассчитывая значения с использованием уравнения линейной регрессии, и выражали в lg. Значение r1 определяли, как антилогарифм разности lg титров сыворотки против гетерологичного и гомологичного вируса [7, 8, 9].
Значение r1 в РМН интерпретировали следующим образом:
при ≥0,3 - исследуемый и производственный штаммы вируса ящура являются родственными;
при <0,3 - исследуемый образец штамма вируса ящура значительно отличается от производственного штамма.
Максимальное родство отмечается при значении r1 в РМН, стремящимся к 1,0.
Показатели антигенного родства при изучении штамма «О №2620/Оренбургский/2021» составили r1 от 0,04 до 0,29, что свидетельствует об отсутствии явного антигенного родства с производственными штаммами вируса ящура серотипа О (табл. 1).
Гено- и хемотаксономическая характеристики
Штамм «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура является РНК(+) - содержащим вирусом с молекулярной массой 8,08×106 Д. Нуклеиновая кислота представлена одноцепочной линейной молекулой молекулярной массой 2,8×106 Д. Вирион имеет белковую оболочку, состоящую из четырех основных белков VP1, VP2, VP3 и VP4. Липопротеидная оболочка отсутствует.
Основным антигенным белком является VP1. В вирионе содержится приблизительно 31,5% РНК и 68,5% белка. Вирусная РНК является инфекционной и участвует в образовании белков-предшественников в инфицированных клетках. Предшественники, в свою очередь, расщепляются с образованием более стабильных структурных и неструктурных полипептидов вируса. Из 8 неструктурных полипептидов, накапливающихся в инфицированных клетках, выделяют РНК-зависимую РНК-полимеразу (3D-ген), участвующую в репликации РНК для сборки вирионов.
Физические свойства
Масса вириона составляет 8,4×10-18 г. Плавучая плотность 1,45 г/см3.
Устойчивость к внешним факторам
Штамм «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура устойчив к эфиру, хлороформу, и ацетону. Наиболее стабилен при рН 7,47-7,67. Сдвиги рН в кислую и сильно щелочную сторону ведут к инактивации вируса. Чувствителен к формальдегиду, УФ-облучению, γ-облучению, высоким температурам (выше 38,5°С).
Дополнительные признаки и свойства
Реактогенность - реактогенными свойствами не обладает.
Патогенность - патогенен для парнокопытных животных.
Вирулентность - вирулентен для естественно-восприимчивых животных при контактном, аэрозольном и парентеральном заражении.
Стабильность - сохраняет исходные биологические свойства при пассировании в чувствительных биологических системах в течение 5 пассажей (срок наблюдения) на перевиваемых культурах.
Биотехнологические характеристики
Штамм «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура репродуцируется в перевиваемых культурах клеток: почки сибирского горного козерога (ПСГК-30), почки свиньи (IB-RS-2), почки сирийского хомячка (ВНК-21).
При испытании было проведено 5 последовательных пассажей штамма «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура в перевиваемых культурах клеток ПСГК-30, ВНК-21, IB-RS-2. Биологические свойства характеризовали путем определения инфекционной активности вируса каждого пассажа в перевиваемой клеточной линии IB-RS-2 и на естественно восприимчивых животных - крупном рогатом скоте (КРС) и свиньях.
Сущность предлагаемого изобретения пояснена примерами его исследования, которые не ограничивают объем изобретения.
Пример 1. Исследование биологических свойств штамма «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура при репродукции в монослойных перевиваемых клеточных линиях.
При выделении изолята «O/Orenburg/RUS/2021» вируса ящура с целью получения его однородной популяции, обладающей оптимальными биотехнологическими свойствами, использовали комплекс биологических, вирусологических и биохимических методов, предусмотренных методическими указаниями по выявлению и идентификации штаммов вируса ящура [7].
Биологические и вирусологические методы включали в себя метод выделения в клеточной линии и адаптацию вируса ящура к ним.
Выделение вируса ящура проводили в монослойных перевиваемых клеточных линиях ПСГК-30, IB-RS-2, ВНК-21 с последующей адаптацией в течение 5 последовательных пассажей. Культуры клеток выращивали в соответствующих питательных средах, в стационарных условиях во флаконах с площадью поверхности 25,0 см2, отмывали от ростовой среды и заражали 10%-ной суспензией афтозного материала (множественность заражения составляла 1-10 ТЦД50 на клетку), приготовленной в растворе Хэнкса с 0,5%) гидролизата лактальбумина по стандартной рецептуре. Для удаления микрофлоры и балластных клеточных компонентов вирусную суспензию предварительно обрабатывали 10%-ным раствором хлороформа. После 30-минутного контакта вируса с клеточной культурой при температуре 37±0,5°С во флаконы вносили по 5,0 см3 поддерживающей среды и инкубировали при температуре 37±0,5°С до появления цитопатического действия (ЦПД) в культуре клеток, которое представлено в виде округления клеток, повышения их оптической плотности, дегенерации и отделении клеток от поверхности субстрата. При ЦПД не менее 90% клеток, флаконы подвергали замораживанию-оттаиванию, очистке клеточной взвеси хлороформом и центрифугированию при 3000 g в течение 15 мин. Полученный вируссодержащий материал использовали для последующих пассажей. Вирус считался адаптированным к культурам клеток, если в течение не менее 24 часов проявлялось 90-100% ЦПД в монослое клеточных культур. Адаптация эпизоотического изолята «O/Orenburg/RUS/2021» к различным клеточным линиям наступала на уровне пятого пассажа. Титр инфекционной активности определяли с помощью разработанной ранее методики [10].
Результаты адаптации вируса к различным клеточным культурам представлены в таблице 2, данные которой свидетельствуют о высокой адаптационной способности изолята «O/Orenburg/RUS/2021» вируса ящура к использованным клеточным линиям. В монослойной культуре клеток ПСГК-30 за 14 ч получали вирусную суспензию с активностью в РСК 1:16 и титром инфекционной активности 7,25±0,09 lg ТЦД50/см3. В монослойной культуре клеток IB-RS-2 за 17 ч получали вирусную суспензию с активностью в РСК 1:16 и титром инфекционной активности 7,10±0,10 lg ТЦД50/см3. В монослойной культуре клеток ВНК-21 за 14 ч получали вирусную суспензию с активностью в РСК 1:16 и титром инфекционной активности 7,35±0,10 lg ТЦД50/см3. Каждое исследование и культивирование проводили 8 раз. В итоге получен штамм «О №2620/Оренбургский/2021» с охарактеризованными биологическими культуральными свойствами, который далее использовали для исследования его свойств.
Пример 2. Оценка биологических свойств штамма «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура на крупном рогатом скоте.
Заражение КРС исходным штаммом вируса ящура проводили интрадермолингвально (I пассаж). Адаптацию и наработку штамма «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура на КРС проводили в течение 2 последовательных пассажей. С целью определения титра инфекционной активности адаптированного штамма из афт на этапе 2 пассажа на КРС получали 10%-ную вирусную суспензию, из которой готовили последовательные 10-кратные разведения в 1/15 М фосфатно-солевом буферном растворе (ФСБР). Подготовленные разведения с 10-2 по 10-6 вводили интрадермолингвально в 4 точки по 0,1 см3 двум головам КРС.Учет результатов титрования на животных проводили спустя 24 ч по наличию афт на месте введения разведений вируса ящура штамма «О №2620/Оренбургский/2021». Титр инфекционной активности на КРС данного штамма вируса ящура на стадии первого пассажа на КРС составил 5,00 lg ИД50/0,1 см3, второго пассажа - 5,50 lg ИД50/0,1 см3. Таким образом, была получена 10%-ная афтозная суспензия вируса ящура штамма «О №2620/Оренбургский/2021» (2 пассаж на КРС) с титром инфекционной активности 5,50 lg ИД50/0,1 см3.
Пример 3. Исследование биологических свойств штамма «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура на свиньях.
Заражение свиней исходным штаммом «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура проводили внутрикожно на стадии первого пассажа в область венчика передних конечностей. Адаптацию и наработку штамма «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура на свиньях вели в течение 2 последовательных пассажей. С целью определения титра инфекционной активности адаптированного штамма из афт 2 пассажа на свиньях получали 10%-ную вирусную суспензию, из которой готовили последовательные 10-кратные разведения с использованием в качестве растворителя 1/15 М ФБР. Подготовленные разведения с 10-2 по 10-6 вводили внутрикожно в венчики копытец по 0,1 см3 в 4 точки на каждый палец конечности одного разведения, из расчета 1 разведение на 2 копытца 1 конечности каждому из 2 подопытных подсвинков.
Учет результатов титрования проводили через 24 ч по наличию афт на месте введения разведений. Титр инфекционной активности на свиньях для штамма «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура на свиньях на стадии первого пассажа составил 5,25 lg ИД50/0,1 см3, второго - 5,75 lg ИД50/0,1 см3.
Пример 4. Исследование биологических свойств штамма «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура при репродукции в перевиваемой суспензионной клеточной линии ВНК-21/SUSP/ARRIAH.
Штамм «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура репродуцировали в суспензионной перевиваемой культуре клеток из почки новорожденного сирийского хомячка ВНК-21/SUSP/ARRIAH. В качестве поддерживающей среды использовали среду Игла, с добавлением ферментативного гидролизата мышц сухого, гидролизата белков крови сухого при рН среды 7,47-7,67. Клеточную линию заражали вирусом из расчета 0,005 ТЦД50/клетка.
Культивирование штамма «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура осуществляли при температуре 37,0±0,2°С до достижения ЦПД вируса, соответствующего не менее 90%. Полученную вируссодержащую суспензию контролировали на стерильность и содержание 146S компонента и общего вирусного белка (ОВБ). Полученные суспензии были стерильными. Концентрация ОВБ в суспензии составляла 2,62±0,21 мкг/см3. Значения титра инфекционной активности вируса, а также процентное содержание 146S компонента штамма «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура отражены в таблице 3, из данных которой видно, что при средней концентрации клеток BHK-21/SUSP/ARRIAH, равной 4,08±0,14 млн клеток/см3, дозе заражения 0,005 ТЦД50/клетку и продолжительности репродукции вируса 12,30±0,35 ч средний титр инфекционной активности возбудителя ящура был равен 7,59±0,19 lg ТЦД50/см3. Концентрацию 146S компонента вируса ящура определяли с помощью ранее разработанной методики [11]. Содержание данного компонента составило 68,72±0,70% (1,80±0,14 мкг/см3).
Пример 5. Оценка типовой специфичности и активности штамма «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура
Оценку типовой специфичности и активности штамма «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура проводили в реакции связывания комплемента (РСК).
К полученному антигену штамма «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура, взятому в объеме 0,4 см3 в цельном виде и в разведениях 1:2, 1:4, 1:8, 1:16, 1:32 добавляли по 0,1 см3 гомологичной и гетерологичных гипериммунных сывороток, полученных на вирус ящура в рабочем (удвоенном) титре и 0,1 см3 комплемента в рабочем разведении. Смесь выдерживали в водяной бане в течение 20 мин при температуре 37±0,2°С. Затем вносили по 0,2 см3 гемолитической системы и выдерживали 30 мин при температуре 37±0,2°С. Положительный результат реакции соответствовал 100%-ной задержке гемолиза эритроцитов барана («4 креста»). Параллельно проводили контрольные реакции без сыворотки, без комплемента и компонентов реакции.
В качестве реагентов в РСК использовали сыворотки ящурные типоспецифические гипериммунные морских свинок, полученные на производственные штаммы вируса ящура «А/Турция/06», «О №2620/Оренбургский/2021» {предлагаемое изобретение), «Азия-1/Таджикистан/2011», «SAT-1 №96/62», «SAT-2/SAU7/2000», «О/Забайкальский/2016» комплемент сухой для РСК, гемолизин (сыворотка гемолитическая), эритроциты барана 2% (взвесь на физиологическом растворе, рН=7,05-7,15). В качестве контроля использовали антигены вируса ящура штаммов «А/Турция/06», «О №2620/Оренбургский/2021», «Азия-1/Таджикистан/2011», «SAT-1 №96/62», «SAT-2/SAU7/2000», «О/Забайкальский/2016».
Результаты исследования отражены в таблице 4, из которой следует, что штамм «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура обладает выраженной типовой специфичностью, относится к вирусу ящура серотипа О и активен в РСК в разведении 1:16.
Источники информации, принятые во внимание при составлении описания изобретения к заявке на выдачу патента Российской Федерации на изобретение «Штамм «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура Aphtae epizooticae генотипа O/ME-SA/Ind-2001е для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура».
1. OIE. Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals. 7th ed. Paris, 2018. - Ch. 3.1.8
2. Пономарев А.П., Узюмов В.Л. Вирус ящура: структура, биологические и физико-химические свойства. Владимир: Фолиант, 2006. - 250 с.
3. Alexandersen, S. The pathogenesis and diagnosis of foot and mouth disease / S. Alexsandersen, Z. Zhang, A.L. Donaldson // J. Compr. Pathol. - 2003. - V. 129. - P. 268-282.
4. Жильцова M.B. Биологические свойства эпизоотических изолятов вируса ящура типов А, О и Азия-1: Автореф… дис. кан. наук. - Владимир: 2008. - 23 с.
5. Бурдов А.Н., Дудников А.И., Малярец П.В. и др. Ящур. / Под ред. А.Н. Бурдова. - М., Агропромиздат, 1990, 320 с.
6. Анализ эпизоотической ситуации по ящуру в России с 2010 г. по март 2019 г. / В.П. Семакина, Т.П. Акимова, В.А. Мищенко, А.К. Караулов // Ветеринария. - 2019. - №11. - С. 16-20.
7. Методические рекомендации по выделению и идентификации штаммов вируса ящура / А.А. Гусев, В.М. Захаров, Ж.А. Шажко и др.; ФГУ «ВНИИЗЖ». - Владимир. 2002. - 31 с.
8. Методические рекомендации по определению антигенного соответствия между эпизоотическими изолятами и производственными штаммами вируса ящура в перекрестной реакции микронейтрализации / С.Р. Кременчугская, М.В. Жильцова, Т.К. Майорова; ФГБУ «ВНИИЗЖ». -Владимир, 2012. - 36 с.
9. Эпизоотологические особенности ящура типа А, вызванного гетерологичными штаммами вируса / А.В. Мищенко, В.А. Мищенко, В.В. Дрыгин [и др.] // Ветеринария. - 2014. - №11. - С. 20-24.
10. Патент №2674076 С1 Российская Федерация, МПК A61K 39/135 C12Q 1/68. Способ определения титра инфекционной активности вируса ящура в неинактивированном сырье для вакцины с применением метода обратной транскрипции и полимеразной цепной реакции в режиме реального времени: №2017145889: заявл. 25.12.2017: опубл. 04.12.2018 / Д.А. Лозовой, Д.В. Михалишин [и др.]; заявитель Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ").
11. Патент №2712769 С1 Российская Федерация, МПК G01M 33/58, C12Q 1/68. Способ спектрометрического определения концентрации 146S частиц вируса ящура в неинактивированном сырье для вакцины по оценке количества молекул вирусной РНК, выделенной после иммунного захвата вирионов: №2019116272: заявл. 27.05.2019: опубл. 31.01.2020 / Д.А. Лозовой, Д.В. Михалишин [и др.]; заявитель Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ").
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Вакцина против ящура генотипа O/ME-SA/Ind-2001e из штамма "О N2620/Оренбургский/2021" культуральная инактивированная эмульсионная | 2023 |
|
RU2815537C1 |
Штамм "O N 2241/Эфиопия/2011" вируса ящура Aphtae epizooticae генотипа О/ЕА-3 для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура | 2023 |
|
RU2809223C1 |
Штамм O N 2356/Пакистан/2018 вируса ящура Aphtae epizooticae генотипа O/ME-SA/PanAsia2 для изготовления биопрепаратов для диагностики ящура | 2023 |
|
RU2801950C1 |
Штамм "О N 2222/Тайвань/1/2012" вируса ящура Aphtae epizooticae для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура | 2023 |
|
RU2817031C1 |
Штамм "О/Кения/2017" вируса ящура Aphtae epizooticae генотипа O/EA-2 для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура генотипа O/EA-2 | 2022 |
|
RU2793828C1 |
Вакцина против ящура генотипа О/ЕА-3 из штамма "О N2241/Эфиопия/2011" культуральная инактивированная эмульсионная | 2023 |
|
RU2816264C1 |
Штамм "O/ARRIAH/Mya-98" вируса ящура Aphtae epizooticae для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура | 2023 |
|
RU2811585C1 |
Вакцина против ящура генотипа O/ME-SA/PanAsia2из штамма "О N2356/Пакистан/2018" культуральная инактивированная сорбированная | 2023 |
|
RU2810131C1 |
Штамм А/Египет/EURO-SA/2022 вируса ящура Aphtae epizooticae для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура генотипа A/EURO-SA | 2023 |
|
RU2817256C1 |
Штамм вируса ящура Aphtae epizooticae для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура генотипа SAT-2/VII | 2023 |
|
RU2808493C1 |
Изобретение относится к области биотехнологии и касается нового штамма вируса ящура Aphtae epizooticae генотипа O/ME-SA/Ind-2001e, семейства Picornaviridae, рода Aphthovirus, депонированного во Всероссийской государственной коллекции экзотических типов вируса ящура и других патогенов животных (ГКШМ) ФГБУ «ВНИИЗЖ» под регистрационным номером №417-деп/22-51 - ГКШМ ФГБУ «ВНИИЗЖ» штамм «О №2620/Оренбургский/2021» генотипа O/ME-SA/Ind-2001e вируса ящура. Представленный штамм репродуцируется в перевиваемых культурах клеток почки сибирского горного козерога (ПСГК-30), почки свиньи (IB-RS-2), почки новорожденного сирийского хомячка (ВНК-21). В перевиваемой суспензионной культуре клеток почки сирийского хомячка ВНК-21/SUSP/ARRIAH в течение 12,30±0,35 часов инкубирования концентрация 146S компонента штамма «О №2620/Оренбургский/2021» генотипа О/МЕ-SA/Ind-2001e вируса ящура имеет средние значения 1,80±0,14 мкг/см3 (68,72±0,70%), сохраняя исходные характеристики при пассировании в новой перевиваемой суспензионной клеточной линии ВНК-21/SUSP/ARRIAH. Представленный штамм «О №2620/Оренбургский/2021» может быть использован для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура генотипа O/ME-SA/Ind-2001е и для контроля антигенной активности противоящурных вакцин. 1 ил., 4 табл., 5 пр.
Штамм «О №2620/Оренбургский/2021» вируса ящура Aphtae epizooticae генотипа O/ME-SA/Ind-2001e, семейства Picornaviridae, рода Aphthovirus, депонированный во Всероссийской государственной коллекции экзотических типов вируса ящура и других патогенов животных (ГКШМ) ФГБУ «ВНИИЗЖ» под регистрационным номером №417-деп/22-51 - ГКШМ ФГБУ «ВНИИЗЖ» и предназначенный для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура генотипа O/ME-SA/Ind-2001e.
Штамм "О/Кения/2017" вируса ящура Aphtae epizooticae генотипа O/EA-2 для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура генотипа O/EA-2 | 2022 |
|
RU2793828C1 |
ЖИЛЬЦОВА M.B | |||
Биологические свойства эпизоотических изолятов вируса ящура типов А, О и Азия-1, автореферат диссертации, Владимир, 2008, 23 с | |||
ALEXANDERSEN, S., The pathogenesis and diagnosis of foot and mouth disease, J | |||
Compr | |||
Pathol., 2003, V | |||
Способ применения резонанс конденсатора, подключенного известным уже образом параллельно к обмотке трансформатора, дающего напряжение на анод генераторных ламп | 1922 |
|
SU129A1 |
Способ изготовления гибких труб для проведения жидкостей (пожарных рукавов и т.п.) | 1921 |
|
SU268A1 |
Авторы
Даты
2023-11-01—Публикация
2023-03-14—Подача