Способ генотипирования полиморфного локуса rs346157 (A>G) гена C19orf53 у человека методом ПЦР в режиме «реального времени» с применением аллель-специфических флуоресцентных зондов Российский патент 2023 года по МПК C12Q1/68 C12Q1/6844 C12Q1/686 C12Q1/6876 

Область техники, к которой относится изобретение.

Изобретение относится к области биотехнологии, молекулярно-генетической диагностики, в частности к оценке однонуклеотидного полиморфизма rs346157 (A>G) гена C19orf53 молекулярно-генетическим методом исследования.

Уровень техники.

Ген C19orf53 кодирует белок, выраженные шапероноподобные свойства которого были открыты в 2020 г. японскими учеными [Tsuboyama K. et al. A widespread family of heat-resistant obscure (Hero) proteins protect against protein instability and aggregation //PLoS Biology. - 2020. - Vol. 18. - №. 3. - P. e3000632]. Это открытие диктует необходимость активного изучения данного гена в аспекте связи с заболеваниями, характеризующимися нарушениями протеостаза, и разработке методик генотипирования полиморфных вариантов данного гена. C19orf53 (Gene ID: 28974) локализован на хромосоме 19p13.13. Согласно SNPinfo Web Server/ LD TAG SNP Selection [https://snpinfo.niehs.nih.gov/snpinfo/snptag.html] полиморфный вариант rs2901077 гена C19orf53 является таргетным (то есть репрезентативным однонуклеотидным полиморфизмом в геномной области с высокой степенью неравновесия по сцеплению с группами других полиморфных локусов, составляющих гаплотип). Однонуклеотидный полиморфизм rs346157, позиция chr19:13777478 (GRCh38.p14) [https://www.ncbi.nlm.nih.gov/snp/rs346157] локализован в интроне и характеризуется заменой A>С,G,T. Однако, аллели C и Т встречаются популяциях мира с чаcтотой <0.0000001, в связи с чем именно замена A>G является актуальной для исследований многофакторных болезней человека. Данный генетический вариант характеризуется высоким регуляторным потенциалом. Согласно биоинформатическому ресурсу GTEx Portal, rs346157 влияет на экспрессию гена C19orf53 в артериях, тканях головного мозга (https://gtexportal.org/home/snp/rs346157). С применением биоинформатического ресурса eQTLGen [https://www.eqtlgen.org] установлено влияние данного SNP на уровень экспрессии генов MRI1 и CCDC130 в крови. Кроме того, обнаружена значительная связь rs346157 с модификациями гистонов, маркирующими промоторы и энхансеры в различных тканях [https://pubs.broadinstitute.org/mammals/haploreg/detail_v4.2.php?query=&id=rs346157]; влияние данного генетического варианта на связывание с транскрипционными факторами [http://atsnp.biostat.wisc.edu/search]. Это создает потребность в создании простого в исполнении, недорого и доступного исследователям, работающим в области генетической эпидемиологии, метода идентификации однонуклеотидного полиморфизма rs346157 гена C19orf53.

Известен способ анализа генетических вариаций в геноме человека методом секвенирования амплифицированных участков ДНК [Mardis E. R. DNA sequencing technologies: 2006-2016 // Nature protocols. - 2017. - Vol. 12. - №. 2. - P. 213-218]. Недостатками метода являются высокая стоимость оборудования и реагентов, что исключает широкое внедрение метода в экспериментальные исследования, особенно изучение многофакторных заболеваний, которые требуют большого размера выборок для обеспечения высокой мощности исследований.

За прототип выбран способ анализа генетических вариаций в геноме человека методом матричноактивированной лазерной десорбционно-ионизационной масс-спектрометрии (MALDI). Метод заключается в том, анализируемая ДНК переносится на подложку, где она кристаллизуется с матрицей. Затем кристаллизованные аналиты переносят, облучают лазером, вызывая десорбцию и ионизацию молекул в вакуумной камере. Положительно заряженные ионы ДНК ускоряются и мигрируют через вакуумную трубку к высокочувствительному детектору с разной скоростью в зависимости от массы ионов, что приводит к различному времени пролета. Используя время пролета отдельных ионизированных ДНК-аналитов, система определяет массу и отображает масс-спектр, идентифицирующий различные генетические мишени [Li D. et al. MALDI-TOF mass spectrometry in clinical analysis and research //ACS Measurement Science Au. - 2022. - Vol. 2. - №. 5. - P. 385-404]. Однако, данный метод характеризуется высокой стоимостью, поскольку требует приобретения наборов спектральных чипов и дорогостоящих реактивов для проведения генотипирования, характеризуется высокой стоимостью оборудования, требует наличия высококвалифицированного персонала, в связи с чем он не может быть воспроизведен при наличии стандартного набора оборудования и реактивов.

Методов таргетного генотипирования rs346157 (A>G) гена C19orf53 с применением аллель-специфических флюоресцентных зондов до настоящего времени разработано не было.

Таким образом, существует реальная потребность в создании быстрого, недорогого и легко воспроизводимого способа идентификации полиморфизма rs346157 (A>G) гена C19orf53, с доступной всем исследователям структурой праймеров и аллель-специфических зондов, который мог бы использоваться в качестве «рутинного» метода генотипирования в любой ПЦР-лаборатории.

Раскрытие сущности изобретения.

Техническим результатом данного изобретения является разработка простого в исполнении и экономически целесообразного способа генотипирования однонуклеотидного полиморфизма rs346157 (A>G), локализованного в позиции chr19:13777478 (GRCh38.p14) гена C19orf53 (Gene ID:28974) методом полимеразной цепной реакции в режиме «реального времени» с применением аллель-специфических сигнальных зондов, содержащие флуорофоры FAM и ROX.

Технический результат достигается тем, что идентификацию аллельных вариантов rs346157 (A>G) гена C19orf53 осуществляют с использованием прямого праймера rs346157 5′- CAGCACACCGTGCTAATTCT-3′ (SEQ ID NO 1), обратного праймера rs346157 5′-CCCTGCCATTCTGAGTTCC-3′ (SEQ ID NO 2), rs346157-А-аллель-специфичного флуоресцентно-меченого зонда 5′-(FAM)CTTCCTGCCTCAGCCTCGCA(RTQ1)-3′ (SEQ ID NO 3), rs346157-G-аллель-специфичного флуоресцентно-меченого зонда 5′-(ROX)CTTCCTGCCTCGGCCTCGCA(BHQ2)-3′ (SEQ ID NO 4).

Изобретение поясняется следующей фигурой: дискриминация аллелей по локусу rs346157 гена C19orf53 при генотипировании методом ПЦР в режиме «реального времени» с применением аллель-специфических флуоресцентных зондов по данным величин RFU (относительные единицы флуоресценции) на амплификаторе CFX96: генотипы rs346157-A/A показаны оранжевыми кругами, генотипы rs346157-A/G показаны зелеными треугольниками, генотипы rs346157-G/G показаны голубыми квадратами; черным ромбом отмечен отрицательный контроль.

Работа над дизайном олигонуклеотидов включала несколько этапов:

1) С применением открытой базы данных Ensembl genome browser 109 [https://www.ensembl.org/index.html] выбран синвенс, фланкирующий искомую однонуклеотидную замену [A/G] rs346157 C19orf53, и затем с помощью доступного онлайн программного обеспечения Primer3web version 4.1.0 [https://primer3.ut.ee/] подобрана последовательность олигонуклеотидов, используемых для проведения ПЦР-реакции:

прямой общий праймер rs346157 5′- CAGCACACCGTGCTAATTCT-3′ (SEQ ID NO 1),

обратный общий праймер rs346157 5′-CCCTGCCATTCTGAGTTCC-3′ (SEQ ID NO 2).

Размер амплифицируемого в ходе ПЦР фрагмента гена C19orf53 составляет 170 пар нуклеотидов:

(CAGCACACCGTGCTAATTCTTTCTTTTAGTACAGATGCAGTCTCGCT

GTGTTGCCCAGGCTGGTCTCGAGTTCCTGGGCTCAAGTGATCTTCCTGCCTC[A/G]

GCCTCGCAAAGTGCTGGGATCACAGGCTTGAGCCACCACACCCAGTCCGTCGGAA

CTCAGAATGGCAGGG).

2) Для дизайна зондов пользовались практическими рекомендациями [Basu C. (ed.). PCR primer design. - New york : Humana Press, 2015]. В реакции использовались гидролизные зонды. Последовательность зонда подбирали таким образом, чтобы он отжигался на матрицу между прямым и обратным праймерами. Каждый зонд снабжали флуорофором и гасителем флуоресценции, спектр поглощения которого соответствует длинам волн спектра флуорофора. Для гашения флуоресценции FAM пользовались гасителем RTQ1; для гашения флуоресценции ROX - гасителем BHQ2.

На основании изложенных критериев и практических рекомендаций были подобраны зонды со следующей структурой:

rs346157-A-аллель-специфичный флуоресцентно-меченый зонд 5′-(FAM)CTTCCTGCCTCAGCCTCGCA(RTQ1)-3′ (SEQ ID NO 3),

rs346157-G-аллель-специфичный флуоресцентно-меченый зонд 5′-(ROX)CTTCCTGCCTCGGCCTCGCA(BHQ2)-3′ (SEQ ID NO 4).

3) Изготовление праймеров и зондов осуществлялось в сервисном центре НПК «Синтол», Москва.

4) С помощью практических экспериментов подобраны оптимальные условия для проведения генотипирования, которые включают следующие этапы: 50°C в течение 2 минут, 95°C в течение 10 минут, затем 39 циклов [95°C в течение 10 секунд и 63°C в течение 1 минуты].

5) Разработанный способ был апробирован в лаборатории геномных исследований на 200 образцах ДНК здоровых индивидуумов биобанка НИИ генетической и молекулярной эпидемиологии КГМУ. Генотипирование осуществляли по данным величин RFU (относительные единицы флуоресценции) зондов с флуоресцентными красителями. По результатам генотипирования rs346157 C19orf53 70 человек (35%) оказались гомозиготами по аллелю A (генотип А/А); 98 человек (49%) являлись гетерозиготами (генотип A/G), 32 (16%) индивидуумов оказались гомозиготами по аллелю G (генотип G/G).

6) Валидацию способа проводили методом масс-спектрометрического анализа на геномном времяпролетном масс-спектрометре MassArray analyzer 4 (Agena Bioscience). Результаты обоих способов генотипирования полностью (100% генотипов) совпали. Однако патентуемый способ генотипирования полиморфного локуса rs346157 (A>G) гена C19orf53 методом ПЦР в режиме «реального времени» с применением аллель-специфических зондов позволяет значительно (на 6 часов) сократить время проведения анализа, а также снижает себестоимость анализа (в 4-5 раз).

Осуществление изобретения.

Способ осуществляют следующим образом:

1. Выделение ДНК из периферической венозной крови. На первом этапе к 0,5 мл крови добавляли 0,5 мл PBS и центрифугировали 10 мин при 12 тыс. об/мин. Надосадочную жидкость сливали, добавляли 1 мл PBS и вновь центрифугировали при тех же условиях. Надосадочную жидкость сливали, добавляли 200 мкл ТЕ-буфера, пипетировали до растворения осадка и затем последовательно добавляли 10 мкл 1% раствора додецилсульфата натрия SDS и 5 мкл протеиназы К. Пробирки инкубировали в термостате при t=37°C 12 ч. В ходе второго этапа проводили четыре последовательных центрифугирования с фенолом и хлороформом согласно протоколу методики (10 мин, 8 тыс. об/мин), после чего ДНК осаждали ледяным раствором 95% этилового спирта и центрифугировали 10 мин при 14,3 тыс. об/мин. По испарении спирта ДНК растворяли в 100 мкл деионизированной дистиллированной воды. Получаемый раствор ДНК в воде имел чистоту в диапазоне А260/280=1,5-2,0 и среднюю концентрацию около 180-200 нг/мкл.

2. Подготовка образцов ДНК к генотипированию. Качество выделенной ДНК оценивали по степени чистоты и концентрации раствора на спектрофотометре NanoDrop (Thermo Fisher Scientific, США). Все анализируемые образцы ДНК были разведены деионизированной водой до концентрации 15-20 нг/мкл при А260/280=1,5-2,0.

3. Анализ полиморфизма rs346157 (A>G) гена C19orf53 с помощью полимеразной цепной реакции в реальном времени с использованием аллель-специфических зондов. Для генотипирования использовали два фланкирующих праймера, прямой (SEQ ID NO 1) и обратный (SEQ ID NO 2), а также аллель-специфические зонды: A-аллель-специфичный флуоресцентно-меченый зонд (SEQ ID NO 3), G-аллель-специфичный флуоресцентно-меченый зонд (SEQ ID NO 4).

ПЦР в «реальном времени» проводили в 25 мл реакционной смеси, содержащей 1,25 ЕД ДНК-полимеразы Hot Start Taq («Биолабмикс», Новосибирск, Россия), 20 нг ДНК, по 10 мкM каждого праймера, по 5 мкM каждого зонда, 0.03 мM каждого dNTP, 2,5 мМ MgCl2; 1xПЦР-буфер [67 мМ Tris-HCl, pH 8,8, 16,6 мМ (NH4)2SO4, 0,01% Tween-20]. Реакция амплификации состояла из стадии нагревания до 50°C в течение 2 минут, 95°C в течение 10 минут, затем 39 циклов [95°C в течение 10 секунд и 63°C в течение 1 минуты].

4. Генотипирование. При проведении ПЦР в амплификаторе с флуоресцентной детекцией (Bio-Rad CFX96 или аналогичном амплификаторе) генотипирование осуществляют по данным величин RFU (относительных единиц флуоресценции). Для rs346157 (A>G) гена C19orf53 зонд с флуоресцентным красителем FAM соответствует аллелю A, зонд с красителем ROX - аллелю G (фиг. 1). На фигуре видно четкое разделение образцов на кластеры, где черный ромб соответствуют отрицательному контролю, кластер оранжевых кругов - соответствует зонду с флуоресцентным красителем FAM и позволяет идентифицировать гомозигот A/A. Кластер синих квадратов соответствует зонду с красителем ROX и позволяет идентифицировать гомозигот G/G. Кластер зеленых треугольников позволяет идентифицировать гетерозигот A/G.

Резюме.

Таким образом, разработан эффективный и недорогой способ для экспресс-идентификации полиморфного варианта rs346157 (A>G) гена C19orf53 у человека методом ПЦР в режиме «реального времени» с применением аллель-специфических флуоресцентных зондов, который может быть использован в медицине при определении наследственной предрасположенности к развитию заболеваний, ассоциированных с носительством полиморфизмов гена C19orf53, а также в научных целях.

Изобретение относится к области биотехнологии. Предложен способ генотипирования полиморфного локуса rs346157 (A>G) гена C19orf53 у человека методом ПЦР в режиме «реального времени» с применением аллель-специфических флуоресцентных зондов, предусматривающий проведение ПЦР с использованием специально подобранных праймеров и зондов c флуорофорами в амплификаторе с детекцией флуоресценции. Технический результат заключается в расширении арсенала средств генотипирования полиморфного локуса rs346157 (A>G) гена C19orf53 у человека. 1 ил.

Способ генотипирования полиморфного локуса rs346157 (A>G) гена C19orf53 у человека методом ПЦР в режиме «реального времени» с применением аллель-специфических флуоресцентных зондов, отличающийся тем, что идентификацию аллельных вариантов rs346157 (A>G) гена C19orf53 осуществляют с использованием прямого праймера rs346157 5′-CAGCACACCGTGCTAATTCT-3′ (SEQ ID NO: 1), обратного праймера rs346157 5′-CCCTGCCATTCTGAGTTCC-3′ (SEQ ID NO: 2), rs346157-A-аллель-специфичного флуоресцентно-меченого зонда 5′-(FAM)CTTCCTGCCTCAGCCTCGCA(RTQ1)-3′ (SEQ ID NO: 3), rs346157-G-аллель-специфичного флуоресцентно-меченого зонда 5′-(ROX)CTTCCTGCCTCGGCCTCGCA(BHQ2)-3′ (SEQ ID NO: 4).