Изобретение относится it биологии и медицине, а именно определению антител к экзотоксину коклюшных бактерий.
Известен твердофазный иммунофер- ментный метод определения антител к экзотоксину коклюшных бактерий, включающий адсорбцию экзотоксина на поверхности полистирола, внесение исследуемых антител, коньюгата антивидовых антител с ферментом и субстрата.
Недостатками такого способа являются необходимость использования высокоочищенного препарата коклюшного экзотоксина, зависимость чувствительности и специфичности анализа от беспорядочной сорбции молекул токсина на полистироле и сорта полистирола.
Цель изобретения - повышение чувствительности и специфичности анализа.
Сущность изобретения заключается в том, что перед адсорбцией препарата коклюшного экзотоксина поверхность полистирола обрабатывают частично денатурированным церулоплазмином человека, в результате чего достигается упорядоченная пространственная ориентация молекул токсина, обеспечивающая повышение чувствительности и специфичность реакции, а также возможность использования дешевого неочищенного препарата.
Пример 1. Определение оптимальной дозы церулоплазмина для адсорбции на планшете.
Церулоплазмин человека частично денатурируют прогреванием при 60°С в течео о
00
VI 00 CJ
ние 16 ч и адсорбируют на полистироле в дозах 20, 10, 5, 2,5 мкг/мл при следующих условиях: карбонат-бикарбонатный буфер (рН 9,6),время инкубации 3 ч, температура 22 ±2°С, объем вносимого в лунку образца 0,1 мл. После адсорбции церулоплазмина планшеты промывают фосфатным буфером рН 7,2, содержащим 0,05% твина-80. Затем в лунки планшета вносят коклюшный токсин в различных разведениях, раститрован- ный с двукратным шагом начиная с 500, нг/мл. В контрольные лунки токсин не вно-1 сят. Плашки инкубируют при в течение 1,5 ч, отмывают несвязавшийся токсин двухкратным буфером, содержащим дополнительно 0,5 М хлорида натрия, и вносят антисыворотку к коклюшному токсину. После инкубации при 37°С в течение 1,5 ч несвязавшиеся антитела отмывают фосфатным буфером, вносят антивидовой конъю- гат и инкубируют при 20°С 1 ч. Лунки вновь отмывают фосфатным буфером, вносят субстрат и через 15 мин останавливают реакцию 4 н,серной кислотой. Учет реакции проводят при 490 нм.
Оптимальной дозой церулоплазмина для адсорбции на полистироле является 10 мкг/мл, поскольку увеличение ее до 20 мкг/мл не оказывает влияния на характер кривой титрования, а уменьшение до 5 мкг/мл снижает чувствительность реакции.
Пример 2. Использование неочищенного препарата коклюшного токсина в ИФА.
Частично денатурированный церулоп- лазмин адсорбируют в лунках пояистироло- вых планшет, как описано в примере 1. После отмывки неадсорбированного церулоплазмина в одни лунки планшеты вносят очищенный токсин в концентрации 10 мкг/мл в объеме 100 мкл, а в другие - неочищенный в объеме, содержащем такое же количество токсина, как очищенный препарат. Далее анализ проводят, как описано в примере 1, используя рефернс-сыворотку, активность которой 5000 ЕД/мл, и тест-сыворотку с неизвестной активностью. Активность тест-сыворотки при использовании высокоочищенного токсина: 6,252,8; 6,182,6; 6,052,8; 6,202,8; 6,002,0; 6,346,0 ЕД/мл, а при использовании неочищенного токсина: 6,196,2; 5.986,4; 6,202,0: 6.642.6; 6,006,6; 6,240,0 ЕД/мл. Таким образом, независимо от использованного препарата данные об активности антитоксической сыворотки идентичны, высокий уровень кор- 1 рекции свидетельствует о возможности использования неочищенных препаратов коклюшного токсина.
Пример 3. Специфичность реакции в отношении антигенов коклюшного микроба.
Церулоплазмин адсорбируют в первых четырех рядах планшеты, как описано в примере 1. Затем адсорбируют очищенный токсин в четырех рядах лунок на церулоп- лазмин и в последующих непосредственно на полистирол. В лунки с адсорбированным токсином вносят антисыворотку к дефектному по продукции токсина штамму коклюшных бактерий и далее последующие этапы ИФА проводят, как описано в примере 1.
Результаты исследования приведены в табл. 1.
Использование церулоплазмина в качестве аффинной подложки обеспечивает полное отсутствие перекрестных реакций с антителами против других антигенов кок- люшного микроба в то время как при непосредственной сорбции коклюшного токсина они наблюдаются.
Пример 4. Межвидовая специфичность реакции.
В лунки полистироловой планшеты с ад- сорбированным на их поверхность церулоп- лазмином, а затем коклюшным токсином вносят антисыворотки к дифтерийному токсину, экзотоксину синегнойной палочки и токсину коклюшного микроба. Далее анализ проводят, как описано в примере 1.
Результаты испытаний приведены в табл. 2.
Отсутствие перекрестных реакций с ан- тисыворотками к дифтерийному и синегной- ному токсинам с-видетельствует о специфичности предлагаемого способа.
Пример 5. Чувствительность ИФА при различных вариантах сорбции коклюш- ного токсина.
В лунки планшеты с адсорбированным церулоплазмином и без него вносят коклюшный токсин в различных дозах и далее анализ проводят, как описано в примере 1. Результаты испытаний приведены в табл. 3.
Использование церулоплазмина в качестве аффинной подложки обеспечивает увеличение чувствительности ИФА в четыре раза. Последнее достоверное значение (прямолинейный участок кривой титрования) составляет при сорбции токсина на полистирол 0,52 ЕД оптической плотности, что соответствует 15,6 нг/мл, а при сорбции на церулоплазмин - 0,6 ЕД и, соответственно 33 нг/мл.
Приведенные данные свидетельствуют о возможности использования неочищенных препаратов коклюшного токсина в
предложенном способе ИФА, о его высокой чувствительности и специфичности.
Формула изобретения Способ определения антител к экзотоксину коклюшных бактерий методом имму- ноферментного анализа, включающий адсорбцию экзотоксина на поверхности полистирола, внесение изучаемых антител, конъюгата антивидовых антител с ферментом и субстрата, отличающийся тем, что, с целью повышения чувствительности и специфичности анализа, поверхность полистирола предварительно обрабатывают частично денатурированным церулоплаз- мином человека.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ СПЕЦИФИЧЕСКИХ АНТИТЕЛ К ВИРУСУ ЭНТЕРИТА ГУСЕЙ | 2006 |
|
RU2323743C2 |
СПОСОБ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ КОКЛЮШНОГО ЭНДОТОКСИНА | 1994 |
|
RU2081417C1 |
СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ СПЕЦИФИЧЕСКИХ АНТИТЕЛ К ВИРУСУ ГЕПАТИТА УТЯТ ТИПА I | 2018 |
|
RU2684417C1 |
Иммуноферментная тест-система для серологической диагностики анаэробной энтеротоксемии животных и контроля напряженности поствакцинального иммунитета | 2016 |
|
RU2625031C1 |
СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АНТИТЕЛ К АНТИГЕНУ РЕОВИРУСНОГО ТЕНОСИНОВИТА КУР | 2000 |
|
RU2192012C2 |
НАБОР ДЛЯ ОБНАРУЖЕНИЯ АНТИТЕЛ К БЛЕДНОЙ СПИРОХЕТЕ TREPONEMA PALLIDUM, РЕКОМБИНАНТНЫЙ ПОЛИПЕПТИДНЫЙ АНТИГЕН TREPONEMA PALLIDUM 15 КДА, РЕКОМБИНАНТНЫЙ ПОЛИПЕПТИДНЫЙ АНТИГЕН TREPONEMA PALLIDUM 17 КДА И РЕКОМБИНАНТНЫЙ ПОЛИПЕПТИДНЫЙ АНТИГЕН TREPONEMA PALLIDUM TMP A | 1995 |
|
RU2103362C1 |
КЛОН КУЛЬТИВИРУЕМЫХ ГИБРИДНЫХ КЛЕТОК ЖИВОТНОГО MUS MUSCULUS L. Н-24-ПРОДУЦЕНТ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ, СПЕЦИФИЧНЫХ К СТАФИЛОКОККОВОМУ ЭНТЕРОТОКСИНУ Н (SEH) | 2016 |
|
RU2616289C2 |
Способ оценки эффективности вакцинации против коклюша, дифтерии и столбняка | 2016 |
|
RU2626679C1 |
ШТАММ ГИБРИДНЫХ КУЛЬТИВИРОВАННЫХ КЛЕТОК ЖИВОТНЫХ MUS MUSCULUS ХТ 2Е5 - ПРОДУЦЕНТ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ ИЗОТИПА G 1 К В-СУБЪЕДИНИЦЕ ХОЛЕРНОГО ТОКСИНА | 2015 |
|
RU2583306C1 |
ШТАММ ГИБРИДНЫХ КУЛЬТИВИРОВАННЫХ КЛЕТОК ЖИВОТНЫХ MUS MUSCULUS ХТ 3Е5 - ПРОДУЦЕНТ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ ИЗОТИПА G 2А К В-СУБЪЕДИНИЦЕ ХОЛЕРНОГО ТОКСИНА | 2015 |
|
RU2590587C1 |
Изобретение относится к биологии и медицине, а именно определению антител к экзотоксину коклюшных бактерий. Цель изобретения - повышение чувствительности и специфичности анализа. Предложенный способ определения антител к экзотоксину коклюшных бактерий методом иммуноферментного анализа включает адсорбцию экзотоксина на поверхности полистирола, внесение исследуемых антител, коньюгата антивидовых антител с ферментом и субстрата, отличается тем, что перед адсорбцией токсина поверхность полистирола обрабатывают частично денатурированным церулоплазмином человека. Применение церулоплазмина обеспечивает повышение чувствительности и специфичности анализа, позволяет снизить его стоимость за счет возможности использования неочищенных препаратов коклюшного экзотоксина. 3 табл. (Л С
10
Табл и ца1
Таблица 2
Таблица 3
Ashworth L | |||
et at | |||
Antigens in whooping cough vaccine and antibody levels induced by vaccination of child red - Lancet | |||
Гребенчатая передача | 1916 |
|
SU1983A1 |
Способ получения верной кислоты | 1926 |
|
SU8355A1 |
Прибор для нагревания перетягиваемых бандажей подвижного состава | 1917 |
|
SU15A1 |
Авторы
Даты
1991-12-15—Публикация
1989-10-24—Подача