Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS L - продуцент моноклонального антитела к пирофосфатазе ЕSснеVIнIа coLI Советский патент 1992 года по МПК C12N5/00 A61K39/395 

Описание патента на изобретение SU1712412A1

Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано для пбстановки иммуноферментного анализа (ИФА)с пирофосфатазой в качестве, индикаторного фермента..

Целью изобретения является получение гибридного штамма, продуцирующего мр ноклональные антитела (МКА) к пирофосфа-. тазе Е.соИ, пригодные для создания иммуноферментного анализа на OCfoee комплекса пирофосфатаза-антипирофосфата а.. / ,. ; :: -;

Штамм получают следующим образом.

Мышей линии Ва1Ь/с иммунизируютпо двухнедельной схеме 50 мкг пирофосфатазы E.coli в 0,15 М NaCI в сйеси с равным объемом полного адьюванта Фрёйнда дважды вводят внутрибрюшинно с интервалом в 7 дней- За 3, 2 и 1 день до слияния 25 мкг пирофосфатазы Е.соИ вводят внутрибрюшинно в 0,5 мл 0,15 М NaGI. Гибридизацию 1,2-10 клеток селезенки иммунных мышей и 3-10 клеток миеломы мыШи РЗХбЗ-Ад8.653 проводят 50%:ным раствором полизтиленгликоля мол.м. 4000, содержащего 5% диметилсульфоксида, в течение 1,5 мин. После гибридизации и отмывки клеток от полизтиленгликоля, клетки высевают в96-луночные панели по 2 -10 спленоцитов в лунку. Для селекции гибридом используют

среду 1MDM (модифицированная Исковым среда Дульбекко) с добавлением 10% эмбриональной телячьей сыворотки (ЭТС), 10 М гипоксантина, 4-10 М аминоптерина и 1,610 М тимидина. Гибриды-продуценты клонируют 2 раза методом конечных разведений, высевая по 1 клетке в лунку. После 2 клонирований практически 100% субклонов продуцируют МКА к пирофосфатазе Е.соН. Продукция антитела сохраняется как минимум в течение 15 пассажей в культуре.

Специфичность взаимодействия МКА с пирофосфатазой E.coli выявляют методом ИФА.

Штамм обозначают PFBI. Штамм PFBI хранится в Специализированной коллекции перевиваемых соматических клеток животных Института цитологии АН СССР под номером ВСКК/П/442Д и характеризуется следующими признаками.

Культуральные признаки,

Среда для культивирования - 1MDM с 10% ЭТС, 2 мМ глутамина, 100 мкг/мл пенициллина и стрептомицина, 0,05 мМ меркаптоэтанола. Клетки культивируют при 37°С в атмосфере 5% СОа. Посевная доза 2-10 клеток в мл.

Для выращивания гибридомного Штамма в асцитной форме пригодны мыши Balb/c, Мышам за 7-30 дней до инъекции клеток щтамма вводят внутрибрюшинно по 0,5 мл пристана. Клетки инъецируют внутрибрюшинно по 2-5 миллионов в 0,5 мл среды 1MDM. Асцит формируется через 12-14 дней.

Продуктивность штамма.

Через 3-4 дня концентрация антитела в Культуральной жидкости достигает 11-12 мкг/мл. Концентрация антитела в асцитной жидкости достигает 4-5 мг/мл. Характеристика полученного продукта. Штамм продуцирует моноклональные антитела IgGI. Специфичность-пирофосфатаза E.coli.

КЬнтаминация. Бактерии и грибки в культуре не обнаружены при длительном наблюдении и посевах на питательные среды. Заражение микоплазмой не выяв;1ено по характеру включения тимидиновой метки.

Криоконсервирование. Для длительного хранения клетки штамма замораживают в эмбриональной телячьей сыворотке с добавлением 10% диметилсульфоксида. Режим замораживания: 1°С в минуту до -70°С. После замораживания клетки переносят в жидкий азот. Размораживание на водяной бане при , Жизнеспособность клеток

после размораживания 55-60% по окрашиванию трипановым синим.

Пример Для определения специфичности взаимодействия МКА с пирофосфатазой Е.соИ используется метод ИФА. Козьи антимышиные антитела (Caiblochem), разведенные до 0,5 мкг/мл, в 50 мкл 0,1 М карбонатного буфера рН 9,6 вносят в лунки 96-луночных микроплат и сорбировуют ночь

0 при 4°С. После отмывки в лунки вносятпо 50 мкл культуральной среды штамма PFBI и параллельно культуральную среду штамма гибридомы ЗЗБ1.2, продуцирующей антитела к липополисахариду E.coli, а также

5 супернатант спленоцитов мыши стимулированных ФГА (фитогемагглютинином) In vitro. Панель инкубируют 1ч при 20°С, затем отмывают и вносят по 1 мкг на лунку пирофосфатазы E.coli в 50 мкл 0,01 М Трис-НС1 .

0 буфере, рН 7,4, 0,05 MNaCI, 0,05% Твин-20, 0,1% поливинилпирролидона. Послеинкубации в течение 1 ч при 20°С панельотмывают и в лунки добавляют субстрат пирофосфат, 30-50 мкМ в 0,05 М Трис-НС1

5 буфере, рН 9,0, 0,5 мМ MgCl2 и инкубируют 20 мин при 37°С. Окрашивание лунок учитывают после добавления раствора, содержащего молибдат аммония и малахитовый зеленый на спектрофотометре при длине

0 волны 620 нм

Результаты опыта по определению специфичности связывания МКА, продуцируемого клетками штамма PFBI с пирофосфатазой Е.соН, представлены в табл.1.

5 Полученные результаты свидетельствуют о высокой специфичности МКА, вырабатываемого клетками штамма PFBI, и показывают возможность использования этих МКА для.сорбции пирофосфатазы из

0 раствора с сохранением ее ферментативной активности.

П р и М е р 2. Определение антигена в твердофазном ИФА с применением комплекса пирофосфатаза-антипирофосфатаза

5 является аналогом ИФА с применением комплекса пероксидаза-антипероксидаза (ПАП-метод).

Антиген, фактор некроза опухоли-а человека (ФНО-а), в концентрациях от 2мкгдо

0 20 нг/мл в 100 мкл 0,1 М карбонатного буфера рН 9,6 вносят в лунки 96-лунЬчный микроплат и сорбируют в течение 12-18 ч при 4°С. После отмывки в микроплать добавляют по too мкл/лунку 0.01 М Трис-НС1

5 буфера, рН 7,4; 0,05 М NaCI, 0,05% Твин-20,. 0,01% поливинилпирролидона и инкубируют 30 мин при 20°С для блокирования мест неспецифической сорбции белков. Этот же буфер применяется для приготовления всех последующих реагентов и отмывки. Затем в

лунки микроплат вносят по 100 мкл мышиных МКА к ФНО-а в концентрации ТО мкг/мл и инкубируют 1 ч при 20°С. Микроплаты отмывают, добавляют по ТОО мкл/лунку антимышиные антитела (набор для иммунодиагностики Горьковского НИИ эпидемиологии и микробиологии МЗ РСФСР) и инкубируют 1 ч при 20°С. Далее в отмытые лунки микроплат в объеме 10 мкл добавляют преформированный комплекс пирофосфатаза-антипирофосфатаза (20 мкг/мл пирофосфатазы, 10 мкг/мл МКА к пирофос фатазе) и инкубируют при тех же условиях. В качестве субстратного раствора доба1вляют 0,05 М Трис-На, рН 9,0, 0,5.мМ MgCh. содержащий пирофосфат в концентрации 30-50 мкМ и инкубируют 10-30 мин при 37°С.

В табл.2 представлены .результать опыта с использованием набора для иммунодиагностики с помощью комплекса пероксидаза-антипероксидаза.

Как видно из данных табл.2 антитела продуцируемые штаммом PFBI, являются пригодными для использования их в ИФА на основе комплекса пирофосфатаза-антипирофосфатаза. Чувствительность данного анализа при определении ФНО-а человека составляют 30 нг/мл. Пирофосфатаза имеет ряд преимуществ по сравнению с другими ферментами, применяющимися в качестве индикаторной метки, а именно цветовой переход в случае пирофосфатазы благоприятен для визуальной оценки и позволяет регистрировать поглощение, превышающее фоновое всего на 0,1 оптической единицы,, константа Михазлиса, характеризующая пи.рофосфатазную реакцию иа три порядка ниже, чем для реакций пероксидазы и щело1 ной фосфатазы, что позволяет резко сократить расход субстрата, благодаря высокой термостабильности пирофосфатазы ИФА можно проводить при температурах до 60°С, что в несколько раз сокращает продолжительность анализа и увеличивает его специфичность.

Формула изобретения Штамм гибридных культивируемых клеток животных Mus musculus L ВСКК/П/М442Д-продуцент моноклинального антитела к пирофосфатазе Escherlhta coli.

Таблица 1

Похожие патенты SU1712412A1

название год авторы номер документа
Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS,используемый для получения моноклональных антител к мембранному белку ЕSснеRIснIа coLI в препарате рекомбинантного интерлейкина-2 человека 1987
  • Панютич Александр Васильевич
  • Войтенок Николай Николаевич
  • Осипович Олег Анатолиевич
  • Циманис Александр Юрьевич
SU1446154A1
Штамм гибридных культивируемых клеток MUS мUSсULUSL, используемый для получения моноклональных антител к рекомбинантному @ - фактору некроза опухолей человека 1991
  • Шидловская Елена Александровна
  • Панютич Александр Васильевич
  • Лях Людмила Антоновна
  • Петевка Наталия Васильевна
  • Войтенок Николай Николаевич
  • Мисуно Наталия Ивановна
  • Колесникова Татьяна Сергеевна
SU1747484A1
Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS L. - продуцент моноклональных антител к холерному энтеротоксину биотипа эльтор 1990
  • Славянская Татьяна Александровна
  • Мареев Виктор Иванович
  • Кириллова Елена Федоровна
  • Лесных Татьяна Михайловна
SU1742325A1
ШТАММ ГИБРИДНЫХ КЛЕТОК ЖИВОТНОГО Mus musculus L.1B2 - ПРОДУЦЕНТ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ ДЛЯ ВЫЯВЛЕНИЯ НУКЛЕОПРОТЕИНА ВИРУСА ЭБОЛА, СУБТИП ЗАИР (ШТАММ Mainga) (ВАРИАНТЫ), МОНОКЛОНАЛЬНОЕ АНТИТЕЛО, ПРОДУЦИРУЕМОЕ ШТАММОМ (ВАРИАНТЫ), НАБОР ДЛЯ ИММУНОФЕРМЕНТНОЙ ТЕСТ-СИСТЕМЫ ФОРМАТА "СЭНДВИЧ" ДЛЯ ВЫЯВЛЕНИЯ НУКЛЕОПРОТЕИНА ВИРУСА ЭБОЛА, СУБТИП ЗАИР (ШТАММ Mainga) 2008
  • Казачинская Елена Ивановна
  • Перебоев Александр Владимирович
  • Иванова Алла Владимировна
  • Качко Алла Васильевна
  • Субботина Екатерина Леонидовна
  • Чепурнов Александр Алексеевич
  • Разумов Иван Алексеевич
  • Локтев Валерий Борисович
RU2395576C1
ШТАММ ГИБРИДНЫХ КЛЕТОК ЖИВОТНОГО Mus musculus L. - ПРОДУЦЕНТ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ ДЛЯ ВЫЯВЛЕНИЯ БЕЛКА VP40 ВИРУСА МАРБУРГ (ШТАММ Рорр) (ВАРИАНТЫ), МОНОКЛОНАЛЬНОЕ АНТИТЕЛО, ПРОДУЦИРУЕМОЕ ШТАММОМ (ВАРИАНТЫ), НАБОР ДЛЯ ИММУНОФЕРМЕНТНОЙ ТЕСТ-СИСТЕМЫ ФОРМАТА "СЭНДВИЧ" ДЛЯ ВЫЯВЛЕНИЯ МАТРИКСНОГО БЕЛКА VP40 ВИРУСА МАРБУРГ (ШТАММ Рорр) 2008
  • Казачинская Елена Ивановна
  • Сорокин Александр Владимирович
  • Иванова Алла Владимировна
  • Качко Алла Васильевна
  • Беланов Евгений Федорович
  • Разумов Иван Алексеевич
  • Локтев Валерий Борисович
RU2395575C1
Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS,используемый для получения моноклональных антител к мембранному белку ЕSснеRIснIа coLI в препарате рекомбинантного интерлейкина-2 человека 1987
  • Панютич Александр Васильевич
  • Войтенок Николай Николаевич
  • Циманис Александр Юрьевич
  • Бундулис Юрис Петрович
  • Скривелис Виталий Андрисович
SU1446157A1
ШТАММ ГИБРИДНЫХ КЛЕТОК ЖИВОТНОГО MUS MUSCULUS L. 3F9 - ПРОДУЦЕНТ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ, ПРИГОДНЫХ ДЛЯ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ В ИММУНОФЕРМЕНТНОЙ СИСТЕМЕ ФОРМАТА "СЭНДВИЧ" ДЛЯ ВЫЯВЛЕНИЯ БЕЛКА VP35 ВИРУСА МАРБУРГ, И МОНОКЛОНАЛЬНЫЕ АНТИТЕЛА 3F9, ПРОДУЦИРУЕМЫЕ УКАЗАННЫМ ШТАММОМ ГИБРИДНЫХ КЛЕТОК 2008
  • Казачинская Елена Ивановна
  • Сорокин Александр Владимирович
  • Иванова Алла Владимировна
  • Качко Алла Васильевна
  • Беланов Евгений Федорович
  • Разумов Иван Алексеевич
  • Локтев Валерий Борисович
RU2393220C1
Штамм гибридных культивируемых клеток MUS мUSсULUS L, используемый для получения моноклональных антител к общим антигенным детерминантам инсулина человека и свиньи 1990
  • Чередникова Татьяна Васильевна
  • Демчева Марина Вильевна
  • Савицкий Александр Павлович
  • Носыркова Наталья Викторовна
SU1726511A1
Штамм гибридных культивируемых клеток MUS мUSсULUS L., используемый для получения моноклональных антител к легким цепям иммуноглобулинов кролика 1990
  • Аркина Мария Аркадьевна
  • Ратнер Галина Моисеевна
  • Менявцева Татьяна Александровна
  • Мирютова Татьяна Львовна
  • Кускова Зинаида Романовна
  • Лимарева Тамара Давидовна
SU1778184A1
ШТАММ ГИБРИДНЫХ КЛЕТОК ЖИВОТНОГО Mus musculus L.- ПРОДУЦЕНТ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ ДЛЯ ВЫЯВЛЕНИЯ БЕЛКА VP40 ВИРУСА ЭБОЛА, СУБТИП ЗАИР (ШТАММ Mainga) (ВАРИАНТЫ), МОНОКЛОНАЛЬНОЕ АНТИТЕЛО, ПРОДУЦИРУЕМОЕ ШТАММОМ (ВАРИАНТЫ), И НАБОР ДЛЯ ИММУНОФЕРМЕНТНОЙ ТЕСТ-СИСТЕМЫ ФОРМАТА "СЭНДВИЧ" ДЛЯ ВЫЯВЛЕНИЯ БЕЛКА VP40 ВИРУСА ЭБОЛА, СУБТИП ЗАИР (ШТАММ Mainga) 2008
  • Казачинская Елена Ивановна
  • Иванова Алла Владимировна
  • Качко Алла Васильевна
  • Субботина Екатерина Леонидовна
  • Чепурнов Александр Алексеевич
  • Разумов Иван Алексеевич
  • Локтев Валерий Борисович
RU2395577C1

Реферат патента 1992 года Штамм гибридных культивируемых клеток животных MUS мUSсULUS L - продуцент моноклонального антитела к пирофосфатазе ЕSснеVIнIа coLI

Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано для создания иммуноферментного анализа на основе комплекса пирофосфатаза-антипирофосфа- таза. Целью изобретения является получение штамма гибридных культивируемыхклеток мыши, продуцирующего монокло- нальные антитела (МКА) к пирофосфатазе Eseherihia colt. Штамм получают гибридизацией спленоцитов мышей линии Ва1Ь/с, иммунизированных препаратом пирофос- фатазы Е.соИ. с клетками миелом.ы мыши Р3х63-Ад8.653. Клетки культивируют в среде ШОМ (модифицированная Исковым среда Дульбекко) с добавлением 10%- ной эмбриональной телячьей сыворотки при 37°С в атмосфере 5% СОа. Штамм обозначен PFB1 и депонирован под номером ВСКК(П) 4220. Штамм продуцирует моноклрнальное антитело IgCI изотипа, связывающееся с пиг рофосфатазой Е.соП. СодержаниеМКА'В 1 мл культуральной среды и 1 мл асцитнрй жидкости составляет соответственно 11-12 мкг и 4-5 мг. МКА могут быть использованы для создания иммуноферментного анализа на основе комплекса пирофосфатаза-антипи- ро.фосфатаза. 2 табл.•

Формула изобретения SU 1 712 412 A1

Таблица 2

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 1992 года SU1712412A1

Аналогов в Научно-технической и Натен- тной литературе не обнаружено.

SU 1 712 412 A1

Авторы

Фомин Игорь Климентьевич

Петевка Наталья Васильевна

Панютич Александр Васильевич

Даты

1992-02-15Публикация

1990-06-27Подача