Изобретение относится к технике выращивания микроорганизмов, исполь зуемых для получения биомассы на питательной среде, содержащей метанол в качестве источника углерода. Известен способ получения биомас сы путем культивирования микроорганизмов - бактерий рода Methy1oraonas на питательной среде, содержащей метанол в качестве источника углерода источник азота и необходимые соли в условиях аэрации с последующим в.ьще ле.нием биомассы одним из известных способов Недостатком известного способа является то, что иcпoльзye 1ыe в нем микроорганизмы не обеспечивают дост точно эффективного использования ме танола и имеют невысокую скорость роста, вследствие чего содержание белка в биомассе невысокое и биомас са не может быть использована в качестве пищевой добавки. Цель изобретения - повышение содержания белка в биомассе и возможkocTb ее использования в качестве пищевой добавки. Это достигается тем, что в предлагаемом способе получения биомас-сы из рода бактерий Methylomonas используют, штамм Methylomonas probus FERM-P 3193, при этом культивирование ведут при температуре среды 35З7с и рН 6,3-7. При этом концентрация метанола в питательной среде составляет до 4 об.%. Кроме того, скорость аэрации среды в процессе культивирования увеличивают с 40 л/ 20 л/мин до 60 л/ /20 л/мин. Культивирование микроорганизмов осуществляют с постоянной скоростью аэрации среды, равной 10л/20 л мин или 20 Л/20Л/МИН или 40 л/20л/мин или 60 л/20 л/мин или 80л/20 л/мин или 100 л/20 л/мин. Способ осуществляют следующим образом. Микроорганизмы - бактерии рода Methy1omonas-штамм Hethylomonas probus FE RM-P № 3193 культивируют на питательной среде, содержащей в качестве источника углерода метанол,, при этом концентрация последнего в питательной среде не превышает 4 об.%, источник азота и необходимые соли в условиях аэрации. Культивирование ведут при температуре среды 15-41 с/ прелпочтительно 35-37 0 и рН в пределах 5,3-9,1, предпочтительно 6,3-7,
Скорость роста бактерий снижается постепенно, если концентрация метанола превьлиает 4 об. %. Метанол по мере увеличения размера колонии бактерий, в случае необходимости, добав-j ляют в течение всего времени выращивания.
Скорость аэрации среды в процессе культивирования увеличивают с 40 л/20 л/мин до 60 л/20 л/мин. Культивирование микроорганизмов осуществляют также с постоянной скоростью аэрации среды, равной 10 л/20 л/мин или 20 л/20л/мин, или 40 л/20 л/мин, или 60 л/20 л/мин, или 80 л/20 л/мин, или 10.0 л/20 л/мин.
Максимальное количество бактериальных клеток получают примерно через 48 ч после начала выршцивания.
Содержание грубого протеина в бактериальных клетках может быть равным, примерно 80%.
Бактериальные клетки имеют высокую питательную ценность, не токсичны и обеспечивают получение источника протеина, добавляемого в корм и пищу.
Используемый штамм Methy lomon.as probus FERM-P№ 3193 имеет следующие характеристики.
Морфологические признаки.
Форма и размер клетрк: 1 или 2 до 3 цепная бацилла с размерами 0,5-0,,0-1,5 мкм; клетки не обладают полиморфизмом, передвигаются при помощи единственного полярного жгутика, споры отсутствуют,, результат окрашивания по способу Грэма отрицательный.
Морфологические свойства исследуют на клетках, выращенных в синтетической среде неорганических солей при в течение 24-48 ч, содержащей, г (NN4 )г НР043 ,5 j 1,5; l,5;MgSO4-7H2.0 0,3; CaCl22H2 0 0,01; FeS04 7Н,0 0,01; метанол 2 об.%, вода 1 л.
Штамм не обладает устойчивостью относительно кислоты.
Условия роста.
На агаровой пластинке с культурой в синтетической среде неорганических солей бактерии быстро размножаются и образуют ровные, сплощные и выпуклые круглые колонии.Колонии полупрозрачные с блеском сероватого, белого или розового цвета.
На скошенном агаре с культурой в синтетической среде неорганических солей рост бактерий наблюдается во всей среде. Колонии имеют нитевидную (iiopMy с блеском сероватого, белого или розового цвета. Смешанной окраски не наблюдается.
В чашке с бульонным агаром нет признаков роста или слабый рост. Колония имеет размеры менее 0,5 мм.
после выращивания 48 час при . Колония имеет ровную, круглую фору, блеск и прозрачность.
На бульонном скошенном агаре нет признаков роста или слабый рост. В последнем случае, колония имеет нитевидную Форму и прозрачность.
На бульонной жидкости нет никаких признаков роста.
На насыщенном желатиновом бульоне нет никаких признаков роста, и желатина не разжижается.
На лакмусовом молоке не наблюдается никаких изменений. Добавленле 1% метанола не производит никаких изменений.
Физиологические свойства.
Нитраты восстанавливает. Индол не образует.
Сернистый водород не образует крахмал не гидролизует, лимонную кислоту не использует. Образование пигмента: образует небольшое количество желтого пигмента, растворимого в воде, в синтетической жидкой среде неорганических солей. Бактериальные клетки серовато-розовые.
Использование источников азота, хлорид, сульфат, нитрат аммония, первичный и вторичный фосфат аммония, мочевина, карбонат аммония и полипептон в неорганических питательных растворах. Используют нитрат, нитрит, метиламин и экстракт дрожжей.
Мочевину образует. Окисляется, катализ положительный.
Условия роста: рН 5,3-9,1, предпочтительно 6,3-7,0.
Температура.15-41°С, предпочтительно 35-37оС.
Отношение к кислороду - аэроб.
Образование газа и кислоты не наблюдается по способу Хью Лейфсона.
Пара-оксибензоат не использует. Аммоний не образует.
Ферментации Сахаров (при наблюдении в течение 30 дней раствора пептона с добавлением 1% Сахаров: L-apaбиноза Д-ксилоза Д-глюкоза Д-манноза: Д-фруктоза, Д-галактоза, мальтоза ) сукроза, лактоза, треалоза, L-рамноза, маннит, сорбит, глицерин, крахмал) не образует.
Пример 1. Компоненты растворяют в 1 л ионообменной воды в
количестве, г: -(NN4) KII2.PO4 1,5; 1,5; MgSO4-7H2 O 0,5; FeS047H O 0,1, получая раствор с рН 7,0.
Затем по 100 мл этого раствора помещают в несколько колб, емкостью 300 мл, а после стерилизации в каждую колбу доб.авляют 1, б г метанола, получая среду для выращивания бактерий Methylomonas probus FERM-P . № 3193, которые до этого выращивают на среде со скошенным агаром.
Процесс ведут при взбалтывании культурь4 в. течение двух дней при
0 С. Затем клетки отделяют в сепара оре, промывают ионообменной водой сушат при 110°С до стабилизации еса, получая 7,2 г сухих клеток на л культуральной жидкости.
Выход составляет 45,0% в пересчете на добавленный метанол.
Пример 2. 200 мл метанола 1 % объем/объем вводят в ферментер емкостью 30 л, содержащий 20. л аствора при рН 7,0 следующего состава, r:(NH4)iliPO 4,0; КН2Р04 1,0; KiHPO 1,0; MgS0. О, 5 и 7Н20 0,1 в 1 л ионообменной воды.
Раствор стерилизуют и в эту среду засевают 2% объем/объег1 j бактерий Methylomonas probus FERH-P t 3193) которые до этого Быра11ивают в той же среде.
Процесс ведут при перемешивании со скоростью 500 об/мин, З5с и аэрации со скоростью 30 л/20 л/мин (1,5 объем/объем/мин) в течение 48 ч, при этом скоростью аэрации увеличивают постоянно до 40 л/ /20 л/мин, 2,0 объем/объем/мин/ и алее до 50л/20 л/мин/ 2,5 объем/объем/мин и до 60 л/20 л/мин (3,0 объем/ /объем,мин.)-В течение процесса выраивания рН поддерживают автоматически на уровне от 6,6 до 7,2 добавлением 14% аммиачной воды. Содержание метанола поддерживают автоматически так, что его потребление составляет от 0,3 до 1,0%, а контроль осуществляют при помощи газовой хроматографии.
Затем клетки отделяют в центробежном сепараторе, промывают ионообменной водой и сушат при до стабилизации веса.
Выход сухих бактериальных клеток составляет 25,0 г/л через 28 часов после началавыращивания )40,7 г/л через 40 часов и 53,8 г/л - через 48 часов.
Пример 3. Готовят смесь при следу 1 щем содержании компонентов, г: (NH4)2HP04 4; ( О 0,8; 1,0;К2НРО4 1,0; Мд5Ол7Н О 0,7; finS04-4-6 0,01; CuSO 5Н,О 0,01; CoCl2 6Нз,0 0,01;Fe SO-. 7Н2.О 0,1; ZnSa-7H;jO 0,01;CaCl22H.O 0,01; (NH ) Mo,O24 4Hj,O 0,01 компоненты растворяют в ионообменной воде, получая 1 л смеси.
20 л указанной смеси подают в 30л ферментер, стерилизуют при 120с 15 минут, добавляют 2% /объем/объеМ метанола и получают среду для выращивания культуры, в последнюю засевают раствор культуры Methylomonas probus FERM-P ff 3193, которую предварительно выращивают 18 ч в средетого же состава (содержание метанола 1,0% объем/объем и 2,0% Гобъём/ /объем3 . Культуру выращивают 28 ч при и перемешивании со скоростью 500 об/мин при скорости аэрации.
30 л/20 л/мин fl,5 объем/объем/мин рН среды поддерживают 6,6-7,2 с добавлением 1% аг.1миачной воды. Кон-, центрацию метанола в среде выращивания контролируют при помощи газовой хроматографии. Метанол непрерывно добавляют микронасосом так, что его концентрация остается на уровне 0,3-2,0% объем/объем 3 в течение всего процесса выращивания. Общее добавляемое количество метанола до
0 завершения процесса выращивания составляет 1,035 т.
Бактериальные клетки выделяют в центробежном сепараторе при до стабилизации веса, получая 25,6 г
5 сухих клеток на 1 л культуральной жидкости, что соответствует производительности 49,5% в пересчете на добавленный метанол.
Содержание грубого протеина соста0вляет 80,3%.
Скоростьроста бактерий определяют при помощи измерения помутнения раствора для выращивания культуры колориметром.
Максимальная удельная скорость
5 роста составляет 0,32 ч, а время образования 51 мин.
Пример 4. Бактерии того же штамма, как в предыдущих примерах, выращивают при помощи циклического
0 процесса при условиях, как в примере 3. Так как концентрация растворенного кислорода в растворе для выращивания культуры уменьшается с ростом клеток,скорость аэрации среды воз5растает до 40л/20 л/мин (2,0 объем/ /объем/мин), затем до 50 л/20 л/мин (2,5 объем/объем/мин) и наконец до 60 л/20 л/мин (3,0 объем/объем/мин), последовательно и в момент, когда
0 концентрация клеток в растворе достигает 43,6 г/л. Выращивание, как процесс периодического действия, переключается на непрерывное выращивание при ПОМО1ЦИ непрерывной подачи среды, аналогичной той, которую
5 используют при периодическом выращивании, в раствор со скоростью разбавления 0,28 ч-. Одновременно из ферментера удаляют равное количество культуральной жидкости, рН среды под0 .держивают на уровне 6,6-7,2-добавлением 14% аммиачной воды,концентрацию метанола в процессе выращийания поддерживают на уровне от 0,3 до 1,0% объем/объем}, а контроль осуществ5ляют при помощи газовой хроматографии.
Непрерывный процесс выращивания проводят при условиях наиболее высокой продуктивности 8,1 г/л в течение
0 всего процесса.
П р и м е р 5. Бактерии того же штамма, как в примере 3, выращивают при таких же условиях при непрерыв5ном процессе при скорости аэрации
30 л/20 л/мин (1,5 объем/объем7мин). Продуктивность составляет до 4,2 г/л.
П р и м ер 6. Выращивание проводят, как в примере 3 того же штамма, непрерывно при тех же условиях, при скорости аэрации 40 л/20 л/мин (2,0 объем/объем/мин). Продуктивность составляет 5,6 г/л-ч.
П р и .м е р 7. Выращивание проводят, как в примере 3, непрерывно, при скорости аэрации 50 л/20 л/мин (2,5 объем/объем/мин). Продуктивность составляет 7,3 г/л.ч .
Пример 8. Выращивание проводят при тех же условиях с использованием того же штамма, как описано в примере 3, непрерывно, при скорости аэрации 60 л/20 л/мин (3,0 объем/ /объем/мин). Продуктивность составляет 8,1 г/л- ч .
Пример 9. Непрерывное выра.щивание проводят-при скорости аэрации 80 л/20 л/мин (4,0 объем/объем/ /мин) при тех же условиях, с использованием того же штамма, как в примере 3. Продуктивность составляет 9,3 г/лЧ .
Пример 10. Непрерывное выращивание проводят при скорости аэрации 100 л/2О л/мин (5 объем/объем/ /мин) при тех же условиях с использованием того же штамма, как в примере 3. Продуктивность составляет 12,2 г/л,ч.
Пример 11. Проводят испытание, связанное с кормлением самцов крыс при использовании клеток Methylomonas probus FERM-P № 3193, вырагденных в соответствии с описанными примерами.
Испытание проводят на 60 крысах Вистера (возраст 3 недели) с применением основного корма, следующего состава, % : казеин (без витаминов) 12,0; сахар 5,0; масло соевых бобов 6,0; витамин группы В 0,3; пшеничный крахмал 61,0; порошок целлюлозы 11,5; витамины А и D 0,2; минеральные вещества 4,0, кроме того 0,2 г. После кормления крыс основным кормом в течение 5 дней их разделяют на 3 группы по 20 в каждой. Крысам первой группы продолжают давать непрерывно основной корм и используют в качестве контроля, а две другие группы подвергают испытанию и группе 1 дают в пищу основной корм без 12% витаминного казеина с добавлением 20% сухих бактериальных клеток по изобретению, а группа П - основной корм без 16% витаминного казеина с добавлением 10% сухих бактериальных клеток,
Крысы трех групп получают корм указанного состава 5 недель. Одновременно фиксируют вес животных и количество потребляемого корма.
Данные испытания приведены в таблице.
название | год | авторы | номер документа |
---|---|---|---|
Штамм метанокисляющих бактерий Methylococcus capsulatus ГБС-15 для получения микробной белковой массы | 2016 |
|
RU2613365C1 |
Способ получения биомассы | 1976 |
|
SU731903A3 |
Способ получения обогащенной каротиноидами белковой биомассы на природном газе с использованием штамма метанокисляющих бактерий Methylomonas koyamae В-3802D | 2023 |
|
RU2822163C1 |
Способ получения биомассы | 1980 |
|
SU1015831A3 |
Способ получения биомассы микроорганизмов | 1978 |
|
SU686459A1 |
Питательная среда для культивирования метанотрофных бактерий | 2023 |
|
RU2809198C1 |
Способ культивирования аэробных метанассимилирующих микроорганизмов | 2021 |
|
RU2768401C1 |
Способ получения аденозин-5 -трифосфата | 1980 |
|
SU1144619A3 |
ЖИДКАЯ ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ БАКТЕРИЙ HAEMOPHILUS PLEUROPNEUMONIAE | 1993 |
|
RU2076903C1 |
МИКРООРГАНИЗМЫ ДЛЯ ПОВЫШЕННОГО ПРОДУЦИРОВАНИЯ АМИНОКИСЛОТ И СВЯЗАННЫЕ С НИМИ СПОСОБЫ | 2015 |
|
RU2688486C2 |
59,9+3,0. 175,2t115,3+ ,
. 16,617,0
60,1+3,1 175,5+115,4t
14; 514,9
59,8±3,0 176,3+116,5+
15,5 15,4
Результаты испытаний показывают, то различие в увеличении веса живот ных, а также.в потреблении пищи незначительное.
Внешне по блеску шерсти и подвижности животные групп I, П и контрольной группы не различаются.
Проверка внутренних органов всех групп при помощи вскрытия не обнаруживает каких-либо отклонений от нормального состояния.
4,20+ 0,41
4,04+ 0,34
4,01+ 0,3l
Таким образом, полученная биомасса имеет высокое качество и может быть использована в качестве источника протеина в кормах животных.
Формула изобретения
на питательной среде, содержсицей ме-3. Способ поп.1, отличаюТанол в качестве источника углерода,щ и и с я тем, что скорость аэрации
источник азота и необходимые соли всреды в процессе культивирования
условиях аэрации с последующим выде-увеличивают с 40 л/20 л/мин до
лением биомассы одним из известнйх60 л/20 л «.мин.
способов,отличающийся 4. Способ поп.1, отллчаютем, что, с целью повышения содержа-щ и П с я тем, что культивирования
НИН белка в биомассе и возможности«микроорганизмов осуществляют с поее использования в качестве пищевойстоянной скоростью аэрации среды
добавки, из рода бактерий Methylo-равной 10 л/20 л/мин или 20 л/
monas используют штамм Methylomonas|. /20 л/мин или 40 л/20 л/мин или
probus FERM-P № 3193, при этом куль-60 л/20 л/мин или 80 л/20 л/мин или
тивирование ведут при температуре100 л/20 л/мин, среды ЗЗ-ЗТ С и рН 6,3-7.
щ и и с я тем, что концентрация ме-принятые во внимание при экспертизе
танола в питательной среде составля-15 1. Патент Великобритании
ет до 4 об.%- 1420264, кл. С 6 F , опублик.1976.
Авторы
Даты
1980-12-07—Публикация
1977-02-28—Подача