Изобретение относится к области биотехнологии, а именно генной инженерии, и может быть использовано для создания микробиологического дрожжевого продуцента рекомбинантного поверхностного антигена вируса гепатита В.
Известны различные штаммы, являющиеся продуцентами поверхностного антигена вируса гепатита В.
Известен штамм Е. coli ВКПМ В - 6955, являющийся продуцентом корового антигена вируса гепатита В. Для получения штамма - продуцента корового антигена с экспонированным на его поверхности главным нейтрализующим эпитопом HBsAg, компетентные клетки бактерий Е. coil JM 103 трансформируют сконструированной плазмидой рКНВсЗЗ.
Патент RU 2112039, 1995, C 12 N 15/51.
Известен также штамм дрожжей Saccharomyces cerevisiae KCTC 0098ВР, являющийся продуцентом поверхностного антигена вируса гепатита В, содержащего пре S2 пептид.
Патент RU №2122430, 1995, C 12 N 15/51.
Аналогом изобретения является патент, в котором описан штамм дрожжей Saccharomyces cerevisiae ВКПМ Y-2203-продуцент поверхностного антигена вируса гепатита В.
Патент РФ №2088664, 1996 г., А 61 К 39/29.
При осуществлении изобретения в соответствии с указанным патентом при использовании штамма дрожжей S. cerevisiae невозможно добиться высоких уровней синтеза антигена. Описанные до сих пор способы достижения высокого уровня синтеза HBsAg в клетках дрожжей предполагали введение в клетки большого числа копий гена, его кодирующего. Проблема заключается в том, что некоторые из копий могут получать мутации, что, в свою очередь, может менять свойства получаемого белка. При этом контроль за возникновением мутаций на фоне высокой копийности гена практически невозможен. Более того, очень высокий уровень синтеза чужеродной РНК может приводить к истощению в клетке некоторых тРНК, в результате чего соответствующие им кодоны транслируются при помощи других тРНК. Это приводит к появлению в конечном продукте примеси мутантных форм полипептида, содержащих аминокислотные замены.
Задачей изобретения является создание эффективного микробиологического дрожжевого продуцента, обеспечивающего высокий выход рекомбинантного поверхностного антигена вируса гепатита В серотипа ayw.
Используемые для выделения антигенов дрожжевые продуценты должны обладать следующими свойствами: 1) способ получения продуцента должен позволять контролировать отсутствие мутаций в экспрессируемом чужеродном гене; 2) уровень экспрессии не должен быть очень высоким, чтобы увеличить точность трансляции чужеродной мРНК, и при этом выход целевого белка должен быть достаточно высоким, чтобы обеспечить экономическую целесообразность использования продуцентов.
Задача решена тем, что, согласно изобретению, одна копия синтетической последовательности ДНК, кодирующей HBsAg/ayw, интегрирована в геном штамма Hansenula polymorpha. В соответствии с изменениями, внесенными в классификацию дрожжей, Н. Polymorpha обозначается и как Pichia angusta.
Для увеличения уровня синтеза антигена используется штамм с нарушенным геном МОХ, кодирующим алкогольоксидазу. Отсутствие мутаций, которые могли образоваться в гене, кодирующем HBsAg/ayw, в процессе его введения в геном дрожжей или при культивировании штамма-продуцента может быть выявлено определением нуклеотидной последовательности продукта полимеразной цепной реакции с праймерами к этому гену.
Дрожжи Pichia angusta являются предпочтительными по сравнению с S. cerevisiae, поскольку позволяют добиваться более высоких уровней синтеза антигена при более простых способах получения культур высокой плотности.
Заявленный штамм дрожжей Pichia angusta (H. polymorpha), являющийся продуцентом поверхностного антигена вируса гепатита В серотипа ayw, является новым и ни в патентной, ни в научно-технической литературе не описан.
Изобретение может быть проиллюстрировано следующими примерами.
При этом все рутинные генно-инженерные операции осуществляют согласно стандартным методикам и инструкциям компаний - производителей ферментов и наборов для манипуляций с ДНК in vitro. Для ПЦР во всех случаях использовали полимеразу Vent (NEB). Синтез олигонуклеотидов производился ЗАО ″Синтол″ г. Москва. В работе для получения антигена серотипа ayw использовали следующие олигонуклеотиды:
1u.catcaatctaaagtacaaaaacaaaatggagaacattacttctggtttcctaggtccattgttggttttg
2u.gaattttgactattccacaaagtctagactcttggtggacttctttgaattttttgggtgg
3u.cgcagtccccaacctccaatcactcaccaacctcctgtcctccaacttgtcctggttatagatggatgtg
4u.gtgtttgatcttcttgttggttcttctggactatcaaggtatgttgcccgtttgtcctc
5u.ctggtccatgtagaacttgtatgactactgctcaaggaacctctatgtatccctcctgttgctg
6u.cccatcccatcatcctgggctttcggaaaattcctatgggagtgggcctcagccc
7u.gttcaatggttcgttggtttgtctccaactgtttggctttcagttatatggatgatgtgg
8u.ctctattttgtctccatttttgccattgttgccaattttcttctgtttgtgggtttac
1L.gtggaatagtcaaaattctagtcagcaggaaaaaaccagcttgcaaaaccaacaatgg
2L.ggaggttggggactgcgaattttggccaagacacacggtagttccacccaaaaaattc
3L.gaagatcaaacacaacaacaaaatgaacaagaaaataataaatcttctcaaacacatccatctataac
4L.gttctacatggaccagtagaagtagttgaagatcctggaattagaggacaaacgggc
5L.gcccaggatgatgggatgggaatacaggtgcaatttccgtccgaaggtttggtacagcaacaggaggg
6L.ccaacgaaccattgaacaaatggaaccaacaaagacaaccaggagaaacgggctgaggcccactccc
7L.ggagacaaaatagagtacaaagatggaccccaataccacatcatccatataaс
8L. ggagcctgagtagccaagatctattaaatgtaaacccacaaacagaagtrpU5. agatcttggctactcaggctcc
trpL3. gagctcagcatcttgagaatcag
moxU5. ccttttccagaggcagtctc
moxL3. ccattttgtttttgtactttagattgatgtcacc
MOX. cacggtggtgacatc
TRP. ggagcctgagtagccaag
Пример 1. Получение фрагмента ДНК, кодирующего HBsAg/ayw (фрагмент А).
Реакционную смесь, содержащую олигонуклеотиды lu и 8L по 1 мкМ, олигонуклеотиды со 2u по 8u; с 1L по 7L по 10пМ, ThermoPol буфер (10 mМ КСI, 20 mМ tris-HCI рН 8.8, 10 mМ (NH4)SC4, 2 mМ MgSO4, 0,1% Triton X-100, 250 uM dNTP) и 5 единиц активности Vent полимеразы инкубируют в течение 30 циклов изменения температуры. Каждый цикл включает инкубацию при 95°С в течение 30 с, при 50°С 30 с, при 72°С 90 с. После этого продукты реакции разделяют электрофоретически в 1% агарозном геле, и изолируют фрагмент размером 730 пар оснований. Соответствие выделенного фрагмента нужному размеру определяют также путем электрофореза в 1% агарозном геле, сравнивая его подвижность с подвижностью полос маркеров молекулярного веса.
Пример 2. Получение фрагмента геномной ДНК Pichia angusta (H. polymorpha), содержащего промотор гена МОХ (фрагмент Б).
Суспендируют 2-3 мкг клеток штамма Hansenula polymorpha BKM 4-2559 (Получен из почвы СС4 38-22-2 Институт биохимии и физиологии микроорганизмов РАН) в 0,1 мл 0,25% раствора додецилсульфата натрия и инкубируют на кипящей водяной бане в течение 5 мин. Клетки осаждают центрифугированием при 10000 g 5 мин. 1 мкл полученного супернатанта добавляют к 25 мкл смеси, содержащей олигонуклеотиды moxU5 и moxL3 по 1 мкМ, ThermoPol буфер (10 mM KCI, 20 mМ tris-HCI pH 8.8, 10 mМ (NH4)2SO4, 2 mМ MgSO4, 0,1% Triton X-100, 250 uM dNTP) и 5 единиц активности Vent полимеразы. Реакционную смесь инкубируют в течение 30 циклов изменения температуры. Каждый цикл включает инкубацию при 95°С в течение 30 с, при 50°С 30 с, при 72°С 90 с. После этого продукты реакции разделяют электрофоретически в 1% агарозном геле и изолируют фрагмент размером 850 пар оснований. Соответствие выделенного фрагмента нужному размеру определяют также путем электрофореза в 1% агарозном геле, сравнивая его подвижность с подвижностью полос маркеров молекулярного веса.
Пример 3. Получение фрагмента геномной ДНК Pichia angusta (H. polymorpha), содержащего часть гена TRP 3 (фрагмент В).
Суспендируют 2-3 мкг клеток штамма H. polymorpha BKM 4-2559 в 0,1 мл 0,25% раствора додецилсульфата натрия и инкубируют на кипящей водяной бане в течение 5 мин. Клетки осаждают центрифугированием при 10000 g 5 мин. 1 мкл полученного супернатанта добавляют к смеси, содержащей олигонуклеотиды trpU5 и trpL3 no 1 мкМ, ThermoPol буфер (10 mM КС1, 20 mМ tris-HCI pH 8.8, 10 mМ (NH4)2SO4, 2 mM MgSO4, 0,1% Triton Х-100, 250 uM dNTP) и 5 единиц активности Vent полимеразы. Реакционную смесь инкубируют в течение 30 циклов изменения температуры. Каждый цикл включает инкубацию при 95°С в течение 30 с, при 50°С 30 с, при 72°С 120 с, при 50°С 30 с, при 72°С 120 с. После этого продукты реакции разделяют электрофоретически в 1% агарозном геле и изолируют фрагмент размером 1360 пар оснований. Соответствие выделенного фрагмента нужному размеру определяют также путем электрофореза в 1% агарозном геле, сравнивая его подвижность с подвижностью полос маркеров молекулярного веса.
Пример 4. Получение фрагмента ДНК Pichia angusta (H. polymorpha), содержащего последовательность, кодирующую HBsAg/ayw, слитую с промотором МОХ и геном TRP 3 (фрагмент Г).
Реакционную смесь (0.05 мл), содержащую олигонуклеотиды moxU5 и trpL3 по 1 мкМ, фрагменты А, Б и В по 1 пг, ThermoPol буфер (10 mM KCI, 20 mM tris-HCI pH 8.8, 10 mM (NH4)2SO4, 2 mM MgSO4, 0,1% Triton X-100, 250 uM dNTP) и 5 единиц активности Vent полимеразы инкубируют в течение 30 циклов изменения температуры. Каждый цикл включает инкубацию при 95°С в течение 30 с, при 50°С 30 с, при 72°С 3 мин. После этого продукты реакции разделяют электрофоретически в 1% агарозном геле и изолируют фрагмент размером 2,9 тысяч пар оснований. Соответствие выделенного фрагмента нужному размеру определяют также путем электрофореза в 1% агарозном геле, сравнивая его подвижность с подвижностью полос маркеров молекулярного веса.
Пример 5. Интеграция последовательности, кодирующей HBsAg/ayw, в геном Pichia angusta (H. polymorpha).
Штамм H. polymorpha DLT (Agaphonov et al., 2002; коллекция штаммов лаборатории молекулярной генетики РКНПК МЗ РФ) выращивают в течение 15-20 ч в среде YNB-D, содержащей триптофан 20 мг/л, при 37°С в условиях интенсивной аэрации. 0,5 мл культуры добавляют к 30 мл такой же среды и инкубируют в тех же условиях в течение 4-х часов. Клетки собирают центрифугированием при 3000g 5 мин и суспендируют в 15 мл буфера Т (10mМ tris-HCl pH 7.4; 100 mМ СН3СООLi; 0.5 mМ EDTA). После инкубации в течение 30 мин при 30°С клетки вновь осаждают и суспендируют в 200 мкл буфера Т. К 0,05 мл суспензии добавляют 1 мкг фрагмента Г, перемешивают, добавляют 120 мкл 70% раствора ПЭГ 4000, вновь перемешивают и инкубируют 1 час при 30°С.
Трансформационную смесь инкубируют при 45°С 15 мин, охлаждают до комнатной температуры и высевают на чашки Петри со средой, содержащей 50 мг/мл лейцина. Выросшие колонии трансформантов проверяют на способность расти на среде, содержащей метанол в качестве единственного источника углерода. Отбирают клоны, не способные расти на такой среде, и проверяют их на способность синтезировать HBsAg/ayw.
Полученный штамм дрожжей Pichia angusta (H. polymorpha) является продуцентом поверхностного антигена вируса гепатита В (HBsAg/ayw). Штамм депонирован во Всесоюзной коллекции микроорганизмов Института биохимии и физиологии микроорганизмов РАН им. Г.К.Скрябина под номером VKM Y-2924D, 25.02.2003.
Пример 6. Анализ способности штамма синтезировать HBsAg/ayw.
Тестируемый штамм засевают в среду YPD (1% дрожжевого экстракта, 2% пептона и 2% глюкозы) и инкубируют при 37°С в течение 15-20 часов в условиях высокой аэрации. Полученную культуру разводят в пять раз средой YPM (1%дрожжевого экстракта, 2% пептона и 2% метанола) и инкубируют в тех же условиях в течение 30-50 ч. Клетки из 0,5 мл культуры собирают центрифугированием, суспендируют в 0,2 мл дистиллированной воды, добавляют 0,2 мл 0,2 М NaOH и инкубируют на кипящей водяной бане 8 мин. Суспензию центрифугируют 10 мин при l0000 g, после чего супернатант анализируют методом электрофореза и иммуноблоттинга с использованием антител к HBsAg/ayw. В качестве стандарта используют очищенный белок HBsAg/ayw. В дорожках, соответствующих штаммам, которые синтезируют HBsAg/ayw, выявляется полоса на уровне 24-27 кДа такая же, как и в случае очищенного белка.
Пример 7. Определение последовательности гена HBsAg/ayw в геноме дрожжей.
Суспендируют 2-3 мкг клеток анализируемого штамма в 0,1 мл 0,25% раствора додецилсульфата натрия и инкубируют на кипящей водяной бане в течение 5 мин. Клетки осаждают центрифугированием при 10000 g 5 мин. 1 мкл полученного супернатанта добавляют к смеси, содержащей олигонуклеотиды МОХ и TRP по 1 мкМ, ThermoPol буфер (10 mM КС1, 20 mМ tris-HCI рН 8.8, 10 mM (NH4)2SO4, 2 mM MgSO4, 0,1% Triton X-100, 250 uM dNTP) и 5 единиц активности Vent полимеразы. Реакционную смесь инкубируют в течение 30 циклов изменения температуры. Каждый цикл включает инкубацию при 95°С в течение 30 с, при 50°С 30 с, при 72°С 2 мин. После этого продукты реакции разделяют электрофоретически в 1% агарозном геле и изолируют фрагмент размером 800 пар оснований. Фрагмент секвенируют с использованием праймеров МОХ и TRP. Совпадение результатов секвенирования с исходной последовательностью показывает отсутствие мутаций в интегрированном в геном дрожжей гене HBsAg/ayw.
Пример 8. Выделение HBsAg(ayw) из клеток Pichia angusta (H. polymorpha).
После ферментации исходного штамма дрожжей Pichia angusta (H. polymorpha) антиген HBsAg выделяют согласно общепринятой методике по следующей схеме. Клетки из культуральной жидкости осаждают центрифугированием при 4000 g на центрифуге Beckman. Осажденную биомассу ресуспендируют до концентрации 250 г влажных клеток на 1 л в буфере экстракции PBS рН 6.8 с добавлением EDTA, PMSF и Tween-20.
Далее клетки разрушают в мельнице Dyne-Mill типа KDL, используя стеклянные шары диаметром 0.5-0.7 мм. Основную массу нецелевых белков из полученного гомогенизата осаждают добавлением полиэтиленгликоля (PEG) до концентрации 4.5%. Осажденные белки отделяют центрифугированием. Полученный супернатант фильтруют на ультрафильтрах (500 кДа) Реllicоn. При этом отделяются белки с мол. массой меньше 500 килоДальтон, а также удаляется PEG, и раствор HBs антигена переводится в буфер PBS рН 6.7. Одновременно происходит концентрирование раствора, что существенно для следующей стадии абсорбции на стекло. Посадку HBsAg на макропористое стекло (МПС) осуществляют в колонках системы StreamLine, разработанной фирмой Pharmacia (Sweden). Для удаления неспецифически связанных белков колонку промывают тем же буфером PBS. Антиген элюируют карбонатным буфером (КБ) рН 9.5. Элюат концентрируют ультрафильтрацией и разделяют при помощи ультрацентрифугирования на зональном роторе (Beckman) в градиенте глицерин/сахароза. Полученные фракции анализируют на содержание HBsAg, используя РОПГА набор, и фракции, содержащие антиген, объединяют и очищают гельфильтрацией на сорбенте Тоуореаrl HW-65 (ToyoSoda Corp., Japan). Чистоту полученного таким образом HBs антигена определяют методом SDS-PAGE. Если чистота продукта недостаточна (<95%), производят дополнительную очистку при помощи ионообменной хроматографии на сорбенте TSK-DEAE (ToyoSoda Corp., Japan). Выход антигена 25-30 мг с 1 л культуральной жидкости. Полученный раствор HBsAg анализируют рядом методов.
1. Антигенную активность измеряют наборами РОПГА (реакция обратной пассивной гемагглютинации эритроцитов) по методике производителя (НПО “Диагностические Системы”, Нижний Новгород) с использованием в качестве стандарта отраслевой стандартный образец активности HBsAg (ОСО 42-28-153-88), выпускаемый ГИСК им. Л.А.Тарасевича.
2. Чистота рекомбинантного HBsAg определяется электрофорезом в полиакриламидном геле в восстанавливающих условиях (SDS-PAGE) с окрашиванием серебром и Coomassie Brilliant Blue R-250. Чистота выделенного антигена не <95%.
3. Иммуноспецифичность антигена определяют методом иммуноблотинга. Первичные антитела для этой цели получали иммунизацией кролей рекомбинантным HBsAg (производства Комбиотех), восстановленным в присутствии 2% SDS и 5% меркаптоэтанола. Иммунными антисыворотками окрашивали иммуноблот с последующей визуализацией при помощи специфических антител к иммуноглобулинам кролей, конъюгированных с пероксидазой хрена, по методике улучшенной хемилюминисценции (ECL) (Amersham, UK).
Рекомбинантный HBs антиген представлен в виде полосы мономера 24-27 кДа и слабых полос димера и тримера.
Культурально-морфологические особенности штамма: клетки округлой формы, небольшие по размеру; на агаризованной среде YPD образуют крупные круглые колонии с выраженной выпуклой серединой.
Активность штамма - не менее 30 мг/л культуральной жидкости.
Хранение при - 70°С в виде суспензии клеток в стерильном (30-50)%-ном растворе глицерина.
Генетические особенности: ауксотроф по лейцину, фаги у дрожжей не обнаружены. Штамм не является зоопатогенным или фитопатогенным.
Способ определения активности: в осветленном гомогенизате клеток методом иммуноферментного анализа.
Способ, условия и состав сред для размножения штамма: инкубирование прокачиванием при 30°С в питательной среде состава: 2% пептона, 1% дрожжевого экстракта, 2% глюкозы.
Условия и состав среды для ферментации: прокачивание при 29 ± 1°C и рН 5,0-5,5 в среде, содержащей до 10-15% глицерина и соли.
Выделенный антиген вируса гепатита В серотипа ayw может быть использован для создания на его основе вакцин против гепатита В.
Изобретение относится к биотехнологии, а именно генной инженерии. Предложен штамм дрожжей Pichia angusta VKM Y-2924D – продуцент рекомбинантного поверхностного антигена вируса гепатита В серотипа ayw. Штамм был получен путем введения в клетки дрожжей последовательности ДНК, кодирующей HbsAg/ayw, слитой с промотором гена МОХ и геном TRP3. Штамм обеспечивает высокий выход рекомбинантного антигена вируса гепатита В серотипа ayw при более простых способах получения культур высокой плотности. Изобретение может быть использовано для микробиологического получения рекомбинантного поверхностного антигена вируса гепатита В.
Штамм дрожжей Pichia angusta VKM Y-2924D, трансформированный последовательностью ДНК, кодирующей HBsAg/ayw, слитой с промотором гена МОХ и геном TRP3, - продуцент рекомбинантного поверхностного антигена вируса гепатита В.
| РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК PDES20, КОДИРУЮЩАЯ ПОВЕРХНОСТНЫЙ АНТИГЕН ВИРУСА ГЕПАТИТА В (HBSAG/AYW), ШТАММ ДРОЖЖЕЙ SACCHAROMYCES CEREVISIAE, СОДЕРЖАЩИЙ РЕКОМБИНАНТНУЮ ПЛАЗМИДНУЮ ДНК PDES20 - ПРОДУЦЕНТ ПОВЕРХНОСТНОГО АНТИГЕНА ВИРУСА ГЕПАТИТА В (HBSAG/AYW) | 1996 |
|
RU2088664C1 |
