ТАБЛЕТИРОВАННАЯ ЖИВАЯ РЕКОМБИНАНТНАЯ БИВАКЦИНА "РЕВАКС ВКТ" ПРОТИВ НАТУРАЛЬНОЙ ОСПЫ И ГЕПАТИТА В И СПОСОБ ЕЕ ПОЛУЧЕНИЯ Российский патент 2004 года по МПК A61K39/12 A61P31/12 

Описание патента на изобретение RU2242246C2

Изобретение относится к медицине, в частности к иммунологии, и может быть использовано для специфической профилактики инфекционного вирусного гепатита В и натуральной оспы.

Известна живая рекомбинантная вакцина для профилактики гепатита В и натуральной оспы для накожного применения (патент РФ №2073524, МПК А 61 К 39/29; С 12 N 15/86, опубл. 20.02.97 г.). Вакцина содержит штамм рекомбинантно-го вируса осповакцины (ВОВ) ГКВ №2131 с титром (3-5)×108 ООЕ/мл, способного синтезировать preS2 и HbsAg вируса гепатита В и пептон в качестве стабилизатора при следующем соотношении компонентов, мас.%:

штамм рекомбинантного вируса оспо-

вакцины ГКВ №2131 с указанным титром 90-95

пептон 5-10

Недостатком известной вакцины является то, что в ней используют в качестве стабилизирующей добавки один пептон, что недостаточно обеспечивает сохранение активности вирусного материала в процессе его лиофилизации. Кроме того, низка производительность применения этого препарата при накожной вакцинации, необходимость квалифицированного медицинского персонала для проведения вакцинации, угроза инфицирования прививаемого пациента вирусами иммунодефицита, гепатитов и др. При вакцинации скарификацией возможно выделение вируса осповакцины в окружающую среду, что грозит неконтролируемой его передачей к непривитым людям с риском развития тяжелых осложнений.

Известен способ получения живой рекомбинантной вакцины для профилактики гепатита В и натуральной оспы для накожного применения, включающий пассирование рекомбинантного штамма ВОВ ГКВ №2131 двукратно на куриных эмбрионах и однократно на коже теленка, далее вируссодержащий материал накапливают на коже теленка и собирают путем соскоба образовавшихся оспин, гомогенизируют с фреоном, выделяют вирус центрифугированием в надосадочную жидкость, содержащую вирус с титром (3-5)×108 ООЕ/мл, вносят 5-10 мас.% пептона, после чего полученную вакцину разливают в ампулы и лиофильно высушивают (патент РФ №2073524, МПК А 61 К 39/29; С 12 N 15/86, опубл. 20.02.97 г.).

Недостатком указанного способа является использование дорогостоящей и дефицитной биологической системы (продуцента) для наработки вируса (телята и развивающиеся куриные эмбрионы - РКЭ), параметры которой сложно стандартизировать и поддерживать. В России практически отсутствуют фермы по производству РКЭ в соответствии с международными стандартами, гарантирующие отсутствие посторонней микрофлоры в РКЭ и стандартные показатели развития эмбриона. Это в свою очередь приводит к браку в производстве вакцин, а также может отрицательно повлиять на ее свойства. Еще в большей степени эти недостатки проявляются при наработке вируса на телятах.

Наиболее близким аналогом-прототипом вакцины является таблетированная живая рекомбинантная бивакцина против натуральной оспы и гепатита В на основе вируса осповакцины для перорального применения, содержащая в одной таблетке, покрытой кислоустойчивой оболочкой, лиофилизированный вирусный материал, наработанный на основе рекомбинантного штамма ВОВ ГКВ №2131 с типичными свойствами вируса осповакцины, экспрессирующего preS 2-Ag и HbsAg вируса гепатита В с активностью 6,5-8,0 lg OOE на таблетку, лактозу, сахарозу, стеарат кальция и ванилин (патент РФ №2076735, МПК А 61 К 39/00; С 12 N 15/00, опубл. 10.04.97 г.).

Недостатком известной вакцины является то, что в ней используют в качестве стабилизирующей добавки одну лактозу, что недостаточно обеспечивает сохранение активности вирусного материала в процессе его лиофилизации и особенно таблетирования. Кроме того, активный вирусный материал нарабатывается на РКЭ, что не исключает содержание в препарате дополнительных примесей и его контаминацию посторонней микрофлорой, требует дополнительный биологический контроль.

Наиболее близким способом-прототипом получения таблетированной бивакцины против гепатита В и натуральной оспы является способ получения таблетированной живой рекомбинантной бивакцины против натуральной оспы и гепатита В, включающий пассирование рекомбинантного штамма ВОВ ГКВ №2131 на РКЭ, получение вируссодержащего материала с титром не менее 8,0 lg OOЕ/мл, его лиофилизацию со стабилизирующей добавкой, измельчение, смешивание с наполнителем, прессование и покрытие кислотоустойчивой оболочкой (патент РФ №2076735, МПК А 61 К 39/00; С 12 N 15/00, опубл. 10.04.97 г.).

Недостатком указанного способа-прототипа является использование дорогостоящей и дефицитной биологической системы (продуцента) для наработки вируса (РКЭ), параметры которой сложно стандартизировать и поддерживать. В России практически отсутствуют фермы по производству РКЭ в соответствии с международными стандартами, гарантирующие отсутствие посторонней микрофлоры в РКЭ и стандартные показатели развития эмбриона. Это в свою очередь приводит к браку в производстве вакцин, а также может отрицательно повлиять на ее свойства.

Техническим результатом предлагаемых изобретений является создание такой бивакцины против натуральной оспы и гепатита В и способа ее получения, которые позволили бы получить вируссодержащий материал в более концентрированном и очищенном виде, обеспечить сохранение активности этого вируссодержащего материала в процессе лиофилизации и таблетирования, снизить вероятность контаминации готового препарата посторонней микрофлорой, а также упростить технологию производства и обеспечить возможность стандартизации основных технологических этапов получения вакцины.

Указанный технический результат достигается тем, что в таблетированной живой рекомбинантной бивакцине против натуральной оспы и гепатита В на основе вируса осповакцины для перорального применения, содержащей в одной таблетке лиофилизированный вирусный материал, наработанный на основе рекомбинантного штамма ВОВ ГКВ №2131 с типичными свойствами ВОВ, экспрессирующего preS 2-Ag и HbsAg вируса гепатита В с активностью 6,5-8,0 lg ЦПД50 на таблетку, лактозу, сахарозу, стеарат кальция и ванилин, согласно изобретению, вакцина дополнительно содержит пептон, желатозу и буфер, а ВОВ наработан на перевиваемых культурах клеток животных при следующем соотношении компонентов на одну таблетку, мас.%:

лиофилизированный вирусный

материал осповакцины с активностью

6,5-8,0 lg ЦПД50 на таблетку 1,04-31,3

пептон 0,12-3,8

желатоза 0,06-1,9

сахароза 10,1-11,55

буфер 0,001-0,027

стеарат кальция 1,94-2,0

ванилин 0,17-0,2

лактоза остальное до 100%

Бивакцина дополнительно может содержать мочевину в количестве 0,01-0,2 мас.%.

Указанный технический результат достигается также тем, что в способе получения таблетированной живой рекомбинантной бивакцины против натуральной оспы и гепатита В, включающем пассирование рекомбинантного штамма ВОВ ГКВ №2131 в биологической системе для культивирования вирусов, получение вируссодержащего материала с титром не менее 8,0 lg ЦПД50/мл, его лиофилизацию со стабилизирующими добавкой, измельчение, смешивание с наполнителем, прессование, согласно изобретению в качестве биологической системы для культивирования вируса используют перевиваемую культуру клеток животных с дозой заражения вирусом осповакцины не более 1,0 ЦПД50 на клетку, наработку вируса осуществляют на монослое указанных клеток животных в роллерах на питательной среде до 50%-ного цитопатического действия (ЦПД) с последующей заменой этой среды на буферный раствор с объемом, меньшим, чем объем питательной среды; получение вируссодержащего материала осуществляют после замены питательной среды на буферный раствор путем экстракции вируса при трехкратном замораживании и оттаивании клеточного монослоя, а в качестве стабилизирующих добавок при лиофильном высушивании используют пептон, сахарозу и желатозу в конечной их концентрации в смеси, мас.%: 2,0-4,0; 2,0-3,0; 1,0-3,0 соответственно.

В качестве перевиваемой культуры клеток животных используют клетки почки зеленой мартышки №4647 или VERO, в качестве питательной среды для наработки вируса - среду ДМЕМ или Игла MEM с 2%-ной сывороткой крупного рогатого скота или 2%-ной эмбриональной телячьей сывороткой, в качестве буферного раствора используют 0,01 М Tris, pH 8, а при смене питательной среды на буферный раствор объем его уменьшают не менее чем в 10 раз.

В качестве дополнительного компонента стабилизирующей добавки при лиофильном высушивании бивакцины используют мочевину в конечной концентрации в смеси 1,0-2,0 мас.%.

Ниже приведены примеры 1-4 составов таблетированной живой рекомби-нантной бивакцины против натуральной оспы и гепатита В.

Пример 1.

лиофилизированный вирусный материал

осповакцины с активностью 6,5 lg

ЦПД50 на таблетку 1,04

пептон 0,12

желатоза 0,06

сахароза 10,10

мочевина 0,20

буфер 0,001

стеарат кальция 2,0

ванилин 0,20

лактоза остальное до 100%

Пример 2.

лиофилизированный вирусный материал

осповакцины с активностью 7,0 lg

ЦПД50 на таблетку 3,20

пептон 0,38

желатоза 0,19

сахароза 10,29

мочевина 0,01

буфер 0,003

стеарат кальция 1,99

ванилин 0,2

лактоза остальное до 100%

Пример 3.

лиофилизированный вирусный материал

осповакцины с активностью 7,5

lg ЦПД50 на таблетку 10,40

пептон 1,20

желатоза 0,60

сахароза 10,85

буфер 0,009

стеарат кальция 1,97

ванилин 0,19

лактоза остальное до 100%

Пример 4.

лиофилизированный вирусный материал

осповакцины с активностью 8,0 lg

ЦПД50 на таблетку 31,30

пептон 3,80

желатоза 1,90

сахароза 11,55

буфер 0,027

стеарат кальция 1,94

ванилин 0,17

лактоза остальное до 100%

Рекомбинантный штамм ВОВ ГКВ №2131 (b7,5S2-S BOB) депонирован в государственной коллекции вирусов Института вирусологии им. Д.И.Ивановского (патент РФ №1575576, С 12 N 15/00, опубл. 1994 г.).

Желатоза - частично гидролизованный желатин - компонент стабилизатора; мочевина - хелатирующий агент, компонент стабилизатора. Лактоза (ТУ 6-09-2293-77), стабилизатор и наполнитель; сахароза (ГОСТ 5833-75), стабилизатор и органолептик; стеарат кальция (ТУ 6-09-4233-76) - скользящая добавка; ванилин (ГОСТ 16599-71), органолептик.

Пример 5. Способ получения таблетированной живой рекомбинантной бивакцины "Ревакс ВКТ"

Вначале проведена проверка однородности вирусных материалов, полученных путем 10-кратного пассирования музейного штамма ГКВ №2131 (b7,5S2-S BOB) на перевиваемых культурах клеток Vero и 4647. Для этого проведены исследования пассажного материала (5 и 10-й пассажи) путем анализа экспрессии HBs-антигена - методом ИФА и наличия встройки pre-S2-S гена в вирусной ДНК - методом ПЦР. Необходимость этих исследований диктуется требованиями производства препарата, когда количество пассажей производственного штамма на клеточных культурах-продуцентах может достигнуть 10. В результате этих исследований было отмечено, что пассажный материал (5 и 10-й пассажи на культурах клеток Vero и 4647) не содержат примесей ВОВ дикого типа и экспрессирует HBs-антиген на уровне 100-200 нг/106 клеток. Это свидетельствует о высокой стабильности созданной генетической конструкции и открывает перспективы использования любой из испытанных культур клеток для производства бивакцины против натуральной оспы и гепатита В.

После этого выращивают монослои перевиваемых культур клеток почки зеленой мартышки №4647 или VERO на питательной среде ДМЕМ или Игла MEM с 10%-ной КРС или 10%-ной эмбриональной телячьей сывороткой в роллерных бутылях объемом, например, 2 литра. Использованную ростовую среду сливают и клеточный монослой заливают поддерживающей питательной средой ДМЕМ или Игла MEM с 2%-ной сывороткой КРС или 2%-ной эмбриональной телячьей сывороткой в количестве 200 мл на бутыль. Клетки инфицируют рекомбинантным штаммом ВОВ ГКВ №2131 (b7,5S2-S BOB) с дозой заражения не более 1,0 ЦПД50 на клетку. Культивирование проводят при скорости вращения бутылей 3-12 оборота в минуту до 50% ЦПД (при этом условии достигается наиболее высокая урожайность вируса). Ниже в таблице 1 приведены результаты культивирования.

Далее питательную среду (200 мл в одной бутыли) заменяют на буферный раствор с объемом (20 мл), т.е. в 10 раз меньшим, чем объем питательной среды. В качестве буферного раствора используют 0,01 М Tris для поддержания рН 8. Замена питательной среды на меньший по объему буфер (0,01М Tris с рН 8,0) перед экстракцией вируса из животных клеток производится с целью снижения объема вирусной биомассы (при сохранении общего количества жизнеспособных вирусных частиц), что сокращает финансовые и временные затраты при проведении процесса последующей лиофилизации вирусного материала. Получение вируссодержащего материала осуществляют после замены питательной среды на буферный раствор путем экстракции вируса при трехкратном замораживании при температуре минус 20°С в течение не менее 5 часов и оттаивании клеточного монослоя при температуре плюс 20°С в течение не менее 1 часа. Далее полученную вируссодержащую суспензию отстаивают и отделяют целевую надосадочную фракцию с титром не менее 8,0 lg ЦПД50/мл, в которую вводят стабилизирующие добавки: пептон, сахарозу и желатозу в конечной их концентрации в смеси, мас.%: 2,0-4,0; 2,0-3,0; 1,0-3,0 соответственно или мочевину, пептон, сахарозу и желатозу в конечной их концентрации в смеси, мас.%: 1,0-2,0; 2,0-4,0; 2,0-3,0; 1,0-3,0 соответственно. Полученную жидкую препаративную форму разливают в емкости, которые размещают в лиофильной установке типа СУПЕР-4. После проведения стандартной процедуры лиофилизации в препарате практически не снижается инфекционная вирусная активность, что свидетельствует о высокой устойчивости штамма b7,5S2-S BOB к лиофилизации в присутствии заявляемых стабилизирующих добавок. Далее сухой материал измельчают и смешивают с наполнителем. Ниже в таблице 2 приведен рецептурный состав таблеток с разной активностью вакцинного материала (в соответствии с примерами 1-4).

Прессование в таблетки препарата производят на двенадцатипуансонном таблетпрессе модели К-VIII (Дрезден, Германия). Количество вируссодержащего материала в каждой таблетке закладывают столько, чтобы концентрация жизнеспособного вируса в них по расчетным данным исходя из активности лиофильно высушенных материалов находилась в диапазоне от 6,5 до 8,0 lg ЦПД50/таблетку.

Пример 6. Данные по исследованию активности таблетированной формы бивакцины "Ревакс ВКТ"

Экспериментальные исследования активности полученных таблеток показали, что в процессе приготовления таблеток бивакцины “Ревакс ВКТ” на базе лиофилизированного вирусного материала в присутствии стабилизирующей добавки не наблюдалось достоверной инактивация вирусного компонента. Расчетные данные по концентрации вируса в таблетках совпали с результатами раститровок вируса в таблетках: 7,2; 7,2; 7,2; 7,0 lg ЦПД50/таблетку, а сама таблетированная форма соответствовала по своим физико-биологическим свойствам всем требованиям, предъявляемым к таким препаратам, что следует из приведенной ниже таблицы 3.

Пример 7. Данные по оценке реактогенности субстанции заявляемой бивакцины "Ревакс ВКТ"

Для оценки реактогенности субстанции заявляемой бивакцины была изучена динамика развития инфильтратов у кроликов, вакцинированных внутрикожно субстанциями штаммов вируса вакцины, полученными разными способами:

- на основе заявляемого способа (при культивировании штамма ГКВ №2131 BOB на культурах клеток);

- на основе способа-прототипа (при культивировании штамма ГКВ №2131 BOB на РКЭ);

- на основе способа-прототипа (при культивировании родительского штамма Л-ИВП на РКЭ);

Данные приведены ниже в таблице 4.

Животных инфицировали по методу Гротта. Максимальное развитие инфильтрата у кроликов наблюдалось на 4-е сутки после вакцинации в месте введения 5 lg ООЕ/0,1 мл и 4 lg ООЕ/0,1 мл штаммов b7,5S2-S эмбрионального и Л-ИВП. Причем появление же инфильтратов в обоих случаях было зарегистрировано на вторые сутки после инфицирования. При этом наименьшие по площади инфильтраты образовывались при введении штамма b7,5S2-S эмбрионального (Р<0,05) по сравнению со штаммам Л-ИВП. В то же время внутрикожное введение кроликам 5 lg TЦД50/0,1 мл и 4 lg ТЦД50/0,1 мл штамма b7,5S2-S культурального приводило к появлению инфильтратов на месте введения лишь на 7-е сутки с максимумом по площади на 8-е сутки. Кроме того, размеры этих инфильтратов были достоверно меньшими (Р<0,05) по сравнению даже с таковыми для штамма b7,5S2-S эмбрионального.

Полученные результаты свидетельствуют, что рекомбинантный штамм b7,5S2-S культурального происхождения обладает достоверно более низкой реак-тогенностью по сравнению с таковым эмбрионального происхождения.

Таким образом, заявляемая таблетированная бивакцина "Ревакс ВКТ", наработанная на перевиваемых культурах клеток животных, и способ ее получения по сравнению с такой же таблетированной формой вакцины "Ревакс ВТ", наработанной на РКЭ, менее реактогенна, так как содержит меньше посторонних примесей, не контаминируется посторонней микрофлорой, более технологична при изготовлении в промышленных масштабах.

Похожие патенты RU2242246C2

название год авторы номер документа
НАБОР ТАБЛЕТИРОВАННОЙ ЖИВОЙ РЕКОМБИНАНТНОЙ ОРАЛЬНОЙ БИВАКЦИНЫ ПРОТИВ НАТУРАЛЬНОЙ ОСПЫ И ГЕПАТИТА B И СПОСОБ ВАКЦИНАЦИИ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ УКАЗАННОГО НАБОРА 2005
  • Сергеев Александр Николаевич
  • Плясунов Игорь Владимирович
  • Сандахчиев Лев Степанович
  • Нетесов Сергей Викторович
  • Генералов Владимир Михайлович
  • Сергеев Артемий Александрович
  • Шишкина Лариса Николаевна
  • Петрищенко Валентина Алексеевна
  • Евтин Николай Константинович
  • Мистюрин Юрий Николаевич
  • Скарнович Максим Олегович
  • Мельников Сергей Алексеевич
  • Подкуйко Валерий Николаевич
RU2302259C2
ЖИВАЯ РЕКОМБИНАНТНАЯ ВАКЦИНА ДЛЯ ПРОФИЛАКТИКИ ГЕПАТИТА В И НАТУРАЛЬНОЙ ОСПЫ ДЛЯ НАКОЖНОГО ПРИМЕНЕНИЯ И СПОСОБ ЕЕ ПОЛУЧЕНИЯ 1992
  • Муратов П.Ю.
  • Беляев А.С.
  • Дмитриев И.П.
  • Нетесов С.В.
  • Рукавишников М.Ю.
RU2073524C1
ЖИВАЯ РЕКОМБИНАНТНАЯ ВАКЦИНА ГЕПАТИТА В НА ОСНОВЕ ВИРУСА ОСПОВАКЦИНЫ ДЛЯ ПЕРОРАЛЬНОГО ПРИМЕНЕНИЯ И СПОСОБ ЕЕ ПОЛУЧЕНИЯ 1994
  • Муратов П.Ю.
  • Сандахчиев Л.С.
  • Дмитриев И.П.
  • Беляев А.С.
  • Бектемиров Т.А.
  • Перекрест В.В.
  • Григорьева Л.В.
  • Шалунова Н.В.
  • Подкуйко В.Н.
  • Дыканов Г.А.
  • Дорохина Т.В.
  • Евстигнеев О.В.
  • Михайлов В.В.
  • Краснянский В.П.
  • Колосков А.В.
  • Махлай А.А.
RU2076735C1
Живая аттенуированная культуральная вакцина для профилактики натуральной оспы и других ортопоксвирусных инфекций на основе вируса осповакцины и способы ее получения и применения 2022
  • Щелкунов Сергей Николаевич
  • Максютов Ринат Амирович
  • Гаврилова Елена Васильевна
  • Колосова Ирина Валерьевна
  • Якубицкий Станислав Николаевич
  • Трегубчак Татьяна Владимировна
  • Нестеров Андрей Егорович
  • Сергеев Александр Александрович
  • Богрянцева Марина Поликарповна
  • Даниленко Елена Дмитриевна
  • Нечаева Елена Августовна
  • Гамалей Светлана Георгиевна
  • Усова Светлана Владимировна
RU2781070C1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ЖИВОЙ КОРЕВОЙ ВАКЦИНЫ 1996
  • Сандахчиев Л.С.
  • Попов В.Ф.
  • Махлай А.А.
  • Михайлов В.В.
  • Подкуйко В.Н.
  • Дорохина Т.В.
  • Нечаева Е.А.
  • Шалаев Е.Ю.
  • Вараксин Н.А.
  • Рябичева Т.Г.
  • Колокольцова Т.Д.
RU2123331C1
СРЕДСТВО ДЛЯ КУПИРОВАНИЯ НЕЖЕЛАТЕЛЬНЫХ ПОСТВАКЦИНАЛЬНЫХ РЕАКЦИЙ И ОСЛОЖНЕНИЙ ПРИ ПЕРВИЧНОМ ОСПОПРИВИВАНИИ ОСПЕННЫМИ ВАКЦИНАМИ И СПОСОБ ЕГО ПРИМЕНЕНИЯ 2013
  • Горбатовская Дарья Олеговна
  • Сергеев Артемий Александрович
  • Шевцова Елена Валерьевна
  • Титова Ксения Александровна
  • Сергеев Александр Александрович
  • Замедянская Алена Сергеевна
  • Булычев Леонид Егорович
  • Шишкина Лариса Николаевна
  • Сергеев Александр Николаевич
  • Агафонов Александр Петрович
RU2542490C1
РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК PC-NS3, ОБЕСПЕЧИВАЮЩАЯ ИНТЕГРАЦИЮ КОМПЛЕКСА ГЕНОВ C, PRM, E, NS1, NS2A, NS2B, NS3 ВИРУСА КЛЕЩЕВОГО ЭНЦЕФАЛИТА (ВКЭ) В ГЕНОМ ВИРУСА ОСПОВАКЦИНЫ (ВОВ) И РЕКОМБИНАНТНЫЙ ШТАММ ВИРУСА ОСПОВАКЦИНЫ, ЭКСПРЕССИРУЮЩИЙ В КЛЕТКАХ ИММУНИЗИРОВАННОГО ОРГАНИЗМА КОМПЛЕКС ГЕНОВ C, PRM, E, NS1, NS2A, NS2B, NS3 ВИРУСА КЛЕЩЕВОГО ЭНЦЕФАЛИТА 1995
  • Гайнуллина М.Н.
  • Дмитриев И.П.
  • Добрикова Е.Ю.
  • Хромых А.А.
  • Игнатьев Г.М.
  • Пугачев К.В.
  • Агеенко В.А.
  • Воробьева М.С.
  • Плетнев А.Г.
  • Беляев А.С.
  • Сандахчиев Л.С.
RU2112038C1
ВАКЦИНА ПРОТИВ ЧУМЫ, АДЕНОВИРУСНЫХ ИНФЕКЦИЙ, ПАРВОВИРУСНОГО И КОРОНАВИРУСНОГО ЭНТЕРИТОВ, ЛЕПТОСПИРОЗА И БЕШЕНСТВА СОБАК 2013
  • Непоклонов Евгений Анатольевич
  • Алипер Тарас Иванович
  • Мусиенко Мария Ивановна
  • Соболева Галина Леонидовна
  • Мухин Алексей Николаевич
RU2546247C2
Штамм рекомбинатного вируса осповакцины V 7,5 С - продуцент корового антигено вируса гепатита В 1991
  • Дмитриев Игорь Павлович
  • Муратов Петр Юрьевич
  • Беляев Александр Сергеевич
SU1788012A1
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ВАКЦИНЫ ПРОТИВ ОСПЫ ОВЕЦ 1998
  • Балышев В.М.
  • Башаев В.В.
  • Жестерев В.И.
  • Вишняков И.Ф.
  • Горшкова Т.Ф.
  • Щетникова Л.А.
  • Исакова Н.Б.
  • Юрков С.Г.
RU2138291C1

Реферат патента 2004 года ТАБЛЕТИРОВАННАЯ ЖИВАЯ РЕКОМБИНАНТНАЯ БИВАКЦИНА "РЕВАКС ВКТ" ПРОТИВ НАТУРАЛЬНОЙ ОСПЫ И ГЕПАТИТА В И СПОСОБ ЕЕ ПОЛУЧЕНИЯ

Изобретение относится к области биотехнологии. Бивакцина содержит в одной таблетке лиофилизированный вирусный материал, наработанный на основе рекомбинантного штамма вируса осповакцины ГКВ № 2131 с типичными свойствами вируса осповакцины, экспрессирующего preS2-Ag и HbsAg вируса гепатита В с активностью 6,5-8,0 lg ЦПД50 на таблетку, лактозу, сахарозу, стеарат кальция и ванилин, пептон, желатозу и буфер. Вирус осповакцины наработан на перевиваемых культурах клеток, животных при следующем соотношении компонентов на одну таблетку мас.%: лиофилизированный вирусный материал осповакцины с активностью 6,5-8,0 lg ЦПД50 на таблетку 1,04-31,3; пептон 0,12-3,8; желатоза 0,06-1,9; сахароза 10,1-11,55; буфер 0,001-0,027; стеарат кальция 1,94-2,0; ванилин 0,17-0,2; лактоза - остальное до 100%. Способ получения бивакцины включает пассирование штамма рекомбинантного вируса осповакцины ГКВ №2131 в биологической системе для культивирования вирусов, получение вируссодержащего материала с титром не менее 8,0 lg ЦПД50/мл, его лиофилизацию со стабилизирующими добавками, измельчение, смешивание с наполнителем, прессование. В качестве биологической системы для культивирования вируса используют перевиваемую культуру клеток животных 4647 или VERO с дозой заражения рекомбинантным штаммом вируса осповакцины не более 1,0 ЦПД50 на клетку. Наработку вируса осуществляют на монослое указанных клеток животных в роллерах на питательной среде до 50%-го цитопатического действия (ЦПД) с последующей заменой этой среды на буферный раствор с объемом меньшим, чем объем питательной среды. Получение вируссодержащего материала осуществляют после замены питательной среды на буферный раствор путем экстракции вируса при трехкратном замораживании и оттаивании клеточного монослоя. В качестве стабилизирующих добавок при лиофильном высушивании используют пептон, сахарозу и желатозу в конечной их концентрации в смеси, мас.%: 2,0-4,0; 2,0-3,0; 1,0-3,0 соответственно. Вакцина сохраняет свою активность в процессе сушки и таблетирования, содержит меньше посторонних примесей. Способ ее получения более технологичен, 2 н. и 3 з.п. ф-лы, 4 табл.

Формула изобретения RU 2 242 246 C2

1. Таблетированная живая рекомбинантная бивакцина против натуральной оспы и гепатита В на основе вируса осповакцины для перорального применения, содержащая в одной таблетке, лиофилизированный вирусный материал, наработанный на основе рекомбинантного штамма вируса осповакцины ГКВ № 2131 с типичными свойствами вируса осповакцины, экспрессирующего preS2-Ag и HbsAg вируса гепатита В, с активностью 6,5-8,0 lg ЦПД50 на таблетку, лактозу, сахарозу, стеарат кальция и ванилин, отличающаяся тем, что вакцина дополнительно содержит пептон, желатозу и солевой буфер, а вирус осповакцины наработан на перевиваемых культурах клеток животных при следующем соотношении компонентов на одну таблетку, мас.%:

Лиофилизированный вирусный материал

осповакцины с активностью

6,5-8,0 lg ЦПД50 на таблетку 1,04-31,3

Пептон 0,12-3,8

Желатоза 0,06-1,9

Сахароза 10,1-11,55

Буфер 0,001-0,027

Стеарат кальция 1,94-2,0

Ванилин 0,17-0,2

Лактоза Остальное до 100%

2. Таблетированная живая рекомбинантная бивакцина по п.1, отличающаяся тем, что она дополнительно содержит мочевину в количестве 0,01-0,2 мас.%.3. Способ получения таблетированной живой рекомбинантной бивакцины против натуральной оспы и гепатита В, включающий пассирование штамма рекомбинантного вируса осповакцины ГКВ №2131 в биологической системе для культивирования вирусов, получение вируссодержащего материала с титром не менее 8,0 lg ЦПД50/мл, его лиофилизацию со стабилизирующими добавками, измельчение, смешивание с наполнителем и прессование, отличающийся тем, что в качестве биологической системы для культивирования вируса осповакцины используют перевиваемую культуру клеток животных с дозой заражения вирусом осповакцины не более 1,0 ЦПД50 на клетку, наработку вируса осуществляют на монослое указанных клеток животных в роллерах на питательной среде до 50%-го ЦПД с последующей заменой этой среды на буферный раствор с объемом меньшим, чем объем питательной среды; получение вируссодержащего материала осуществляют после замены питательной среды на буферный раствор путем экстракции вируса при трехкратном замораживании и оттаивании клеточного монослоя, а в качестве стабилизирующих добавок при лиофильном высушивании используют пептон, сахарозу и желатозу в конечной их концентрации в смеси мас.%: 2,0-4,0; 2,0-3,0; 1,0-3,0 соответственно.4. Способ по п.3, отличающийся тем, что в качестве перевиваемой культуры клеток животных используют клетки почки зеленой мартышки №4647 или VERO, в качестве питательной среды для наработки вируса - среду ДМЕМ или Игла МЕМ с 2%-ной сывороткой крупного рогатого скота или 2%-ной эмбриональной телячьей сывороткой, в качестве буферного раствора используют 0,01 М Tris, рН=8, а при смене питательной среды на буферный раствор объем его уменьшают не менее чем в 10 раз.5. Способ по п.3, отличающийся тем, что в качестве дополнительного компонента стабилизирующей добавки при лиофильном высушивании бивакцины используют мочевину в конечной концентрации в смеси 1,0-2,0 мас.%.

Документы, цитированные в отчете о поиске Патент 2004 года RU2242246C2

ЖИВАЯ РЕКОМБИНАНТНАЯ ВАКЦИНА ГЕПАТИТА В НА ОСНОВЕ ВИРУСА ОСПОВАКЦИНЫ ДЛЯ ПЕРОРАЛЬНОГО ПРИМЕНЕНИЯ И СПОСОБ ЕЕ ПОЛУЧЕНИЯ 1994
  • Муратов П.Ю.
  • Сандахчиев Л.С.
  • Дмитриев И.П.
  • Беляев А.С.
  • Бектемиров Т.А.
  • Перекрест В.В.
  • Григорьева Л.В.
  • Шалунова Н.В.
  • Подкуйко В.Н.
  • Дыканов Г.А.
  • Дорохина Т.В.
  • Евстигнеев О.В.
  • Михайлов В.В.
  • Краснянский В.П.
  • Колосков А.В.
  • Махлай А.А.
RU2076735C1
SU 1575576 А1, 07.07.1993
ЖДАНОВ В.М
и др
Вирусные гепатиты
- М.: Колос, 1986, с.130-136.

RU 2 242 246 C2

Авторы

Сергеев А.Н.

Сандахчиев Л.С.

Петрищенко В.А.

Сергеев А.А.

Пьянков О.В.

Евтин Н.К.

Нетесов С.В.

Шишкина Л.Н.

Ведерников Б.Ф.

Генералов В.М.

Шишкин А.В.

Сафатов А.С.

Кочнева Г.В.

Михеев М.В.

Даты

2004-12-20Публикация

2002-08-15Подача